Name: 頭頸部血管再建のトレーニング ・ モジュールとしてブタ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: 学ぶ、ブタの上腹部動脈穿通皮弁を用いた頭頸部微小血管再建の実習プロトコル。気管挿管、皮弁採取、血管吻合の技術を習得し、初期外科医のスキル向上と手術自信の増強に役立つ実践的トレーニング法です。

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この仕事は資金し、基本的な科学研究プログラムを通じて国立研究財団の韓国 (NRF) 科学省、ICT および将来計画 (2015R1C1A1A01051907) によって資金を供給によってサポートされています。この作品は、基本的な科学研究開発プログラムを通じて、国立研究財団の韓国 (NRF) 科学省 ICT ・将来計画 (NRF 2016M3A9E9941746) によって資金を供給に支えられ。

本研究は、導かれ、延世大学医科大学評価・研究室動物ケアの認定会の認定を受けて動物資源延医歯薬学研究所の部門によって承認国際。この研究生命科学国立研究評議会のケアの実験動物使用実験動物資源委員会研究所のガイドラインに従った。すべての豚は、操作の前に 1 週間の順応しました。
1. 準備
<ol><li>無料で全身麻酔する前に 12 時間以上食事をせず豚を水にしてください。 注: 6 雌ヨークシャー豚は 25-30 kg それぞれ使用されました。</li>
	<li>後ろと麻酔を開始するのに耳下アザペロン (2 mg/kg)、キシラジン (2 mg/kg)、alfaxan (1 mg/kg を筋肉内注入するのに 1 cm の長さの 16 ゲージの針を使用します。</li>
	<li>首の前正中線と手術の髪除去シェーバーを使用して豚の腹壁を剃る。</li>
	<li>22 G 針で耳介の後部側に中央や縁の耳静脈から静脈内 (IV) ルートを固定します。IV 線経由錠 (1 mg/kg) を挿入します。</li>
	<li>1.2 に従って筋肉アトロピン (0.04 mg/kg) を注入します。セファゾリン (30 mg/kg) を 1.2 で説明されているように筋肉内注入します。</li>
	<li>手術室のテーブルの上に仰臥位に横たわる豚を入れます。</li>
	<li>息 2 L に豚をできるように自発的にイソフルラン麻酔豚からの 5% と酸素のマスクします。</li>
	<li>喉頭鏡を使用して口から声帯を公開、挿管による喉頭を防ぐために 2% リドカイン局所ソリューションの 2 つのパフでそれらをスプレーします。</li>
	<li>6.5 mm チューブ挿管、それに取り付けられた針のない注射器を使って空気の 3-5 ml チューブのカフを膨らませます。 注: は、麻酔器の一部で、気管チューブが適切な位置に、適切な酸素化の指標としてのマシンに CO2があることを確認する capnometry を実行します。</li>
	<li>2% イソフルラン麻酔の挿管後、麻酔を維持します。</li>
	<li>豚の目に獣医軟膏を使用して眼帯カバーを閉じます。</li>
</ol>2. プロシージャ: フロント サイト
<ol><li>首やヨウ素系スクラブ ソリューション 1% で腹壁を消毒します。</li>
	<li>胸骨までブレード第 23 を使用して前方首に垂直正中切開を開始します。</li>
	<li>ストラップの筋肉を解剖し、ケリー ティッシュはさみとレイヒ リトラクターを横方向に使用してそれを撤回します。</li>
	<li>胸郭入口部に最初のリングから気管を公開します。</li>
	<li>その後、総頸動脈と頸静脈吻合を公開します。</li>
	<li>第 2 または第 3 気管軟骨、〜 1 cm 幅ブレード第 11 を使用してウィンドウを作成します。</li>
	<li>作成すると、気管の欠陥を介して気管内チューブを探して、管を通って通気を続けたことを確認漏れなし人工呼吸器を使用して。</li>
</ol>3. 手順: フラップ サイト
注: 上腹壁動脈 perforator (SEAP) フラップ収穫実行できます、フレデリック ・ ボダン7で説明したメソッドによると。
<ol><li>上腹部外科マーカーペン (図 1 a) によってフラップをデザインします。</li>
	<li>楕円形の皮膚切開 (図 1 b) の描画のフラップの内側に腹部壁の前方の鞘第 23 メスを使用して 4 × 3 cm を作成します。</li>
	<li>穿通、アリスによって筋膜を押しながらしようとして皮弁を探しています (皮)腹直筋からフラップ シースを昇格させます。</li>
	<li>筋肉の解剖を行い、優れた腹部血管 (図 1 b) に、穿通に従ってください。</li>
	<li>今 23 号メス (図 1) を使用して (図 1 a) の設計のフラップの外側皮膚切開を行う</li>
	<li>優れた腹部血管と、止血の家 comitantesを上方にクランプし、止血の下を切り取って縫合糸 3-0 によって、止血上容器を縛るケリー組織用のハサミを使用します。その後、止血を脱ぐ。</li>
</ol>4. 吻合と閉鎖
<ol><li>手術用ルーペに置きます。</li>
	<li>1-2 cm 間隔で 2 つの止血剤を用いた内頚動脈をクランプします。</li>
	<li>にじみ出る頚動脈の間を切り取って二重縫合によって優れた部分を結ぶ使用マイクロはさみを保証しません。</li>
	<li>頚動脈と動脈フラップの間フレームなしダブル クランプを使用します。</li>
	<li>解釈 10-0 縫合単純な全層を用いて吻合を開始します。</li>
	<li>最初 2 つの滞在は約 120 度位 2 3 ステッチの間にし、容器のまわりに離れて縫合糸します。</li>
	<li>クランプをリリースします。ある場合、にじみ出る血はにじみ出るサイトで似たような縫合を行います。</li>
	<li>家 comitantesの静脈の逆流を探します。</li>
	<li>吻合手順 4.1 4.7 内頸静脈の家 comitantes (図 1) を実行します。</li>
	<li>血の滴を見ることによってフラップの生存を確保するため皮膚を刺す注射器針サイズ 18 を使用します。</li>
	<li>気管のウィンドウと縫合糸 3-0 縫合糸を使用してのフラップ、SEAP の筋膜とそれを閉じます。</li>
	<li>外在し、頸部正中皮膚切開 (図 2 a) に SEAP フラップの皮パドルを縫合します。</li>
	<li>腹部の皮膚切開 (図 2 b) を閉じます。</li>
</ol>5. 手術後のケア
<ol><li>豚を腹臥位に戻る。</li>
	<li>イソフルランを中止し、豚を人工呼吸器から離脱。</li>
	<li>動物のケージで回復し、密接にプロシージャからスムーズな回復を確保するために監視する豚を許可します。</li>
	<li>(図 2) を治癒後復興サイトでフラップを探します。</li>
	<li>(2 D 図) のヒーリングの後動物のドナーのサイトを見てください。</li>
	<li>完全復旧まで 150 mL/h の速度でリンガーの乳酸を起動し、鎮痛の 0.3 mg ブプレノルフィンを管理します。</li>
	<li>次の抜管、注視豚の位置と呼吸を維持するために十分な意識を取り戻したが、飲むことができるまで自発的に。</li>
	<li>ない作動させた動物から離れた場所に手術後の豚をしてください。</li>
	<li>1 週間筋肉アモキシシリン-クラブラン酸 (14 mg/kg) を開始します。</li>
	<li>1 週間筋肉メロキシカム (0.2 mg/kg) を開始します。</li>
</ol>6. 安楽死
<ol><li>プロポ フォール静脈内投与 (5-10 mL) を注入することにより豚の麻酔を起動し、5% イソフルランとそれを維持します。</li>
	<li>(1.1、1.2、1.6 1.10) のステップで説明されているように、豚を挿管します。</li>
	<li>40 モル塩化カリウムの静脈注射によって、心不全を誘発します。</li>
</ol>

<ol><li>Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complications+of+double+free+flap+and+free+flap+combined+with+locoregional+flap+in+head+and+neck+reconstruction%3A+A+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Head+%26+Neck+journal+of+the+Science+and+Specialties+of+the+Head+and+Neck%22%5BJournal%5D)">Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review.</a> Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).</li>
<li>Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perforator+variability+in+the+anterolateral+thigh+free+flap%3A+a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Surgical+and+Radiologic+Anatomy%22%5BJournal%5D)">Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review.</a> Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).</li>
<li>Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eight+free+flaps+in+24+hours%3A+a+training+concept+for+postgraduate+teaching+of+how+to+raise+microvascular+free+flaps%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Oral+and+Maxillofacial%22%5BJournal%5D)">Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps.</a> British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).</li>
<li>Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microvascular+Anastomosis+Simulation+Using+a+Chicken+Thigh+Model%3A+Interval+Versus+Massed+Training%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training.</a> The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).</li>
<li>Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porcine+model+for+free-flap+breast+reconstruction+training%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Porcine model for free-flap breast reconstruction training.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).</li>
<li>Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgery+Workout%3A+A+Novel+Simulation+Training+Curriculum+Based+on+Nonliving+Models%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).</li>
<li>Carey, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simulation+of+plastic+surgery+and+microvascular+procedures+using+perfused+fresh+human+cadavers%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+journal%22%5BJournal%5D)">Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers.</a> Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).</li>
<li>Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structured+assessment+of+microsurgery+skills+in+the+clinical+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).</li>
<li>Matsumura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+newly+designed+training+tool+for+microvascular+anastomosis+techniques%3A+Microvascular+Practice+Card%5BTitle%5D)+AND+%22Surgical+Neurology+Journal%22%5BJournal%5D)">A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card.</a> Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).</li>
<li>Kim, W. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+reconstruction+with+a+free+vascularized+myofascial+flap%3A+preclinical+investigation+in+a+porcine+model+to+human+clinical+application%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application.</a> Scientific Reports. 7 (1), 10022(2017).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

重大な罹患率と欠陥の頭の中に生じることはあり手術中に悪性疾患患者を首します。遊離転送ほとんど復興のために不可欠となっています。フラップの生存率は、椎弓根、触感、視空間能力、外科医8から優れた手術の流れの処理の正確な安定を必要とする重大な問題です。これらのスキルを開発するには、トレーニング モデル3,4,5,6,7,8,9の広範な練習が必要です。
いくつかの研究は、微小血管の練習カードが開発する、ほとんどの研究の焦点となっている血管の吻合を含むこれらのスキルを学習するための方法...

頭頸部の悪性疾患の術後再建は、重大な合併症に関連付けられている困難なプロシージャです。無料弁により再建した血管は以上 20 年1,2,3の復興支援に標準的なアプローチとして定着させてきた。無料弁移動大きい患者の結果頭頸部管理がん患者と、従来の技術を超える疾患の外科的切除の境界を押し上げた後外傷の改善に重要な役割を果たしています。生活の質と長期生存率は1,2,3。再建のため様々 なフラップ回転、移植、無料フラップ。
頭頸部再建における遊離皮弁の役割は拡大しています。熟練と繊細な取り扱いを必要とする、使用する最も困難なフラップです。フラップ失敗は、重大な合併症4、5の致命的なイベントです。したがって、かなりの訓練時間は、成功した手術成績3,4,5,6,7,8、必要な精度を開発に必要な 9。このような手術に関連付けられている急な学習曲線が患者の結果に影響を与えるし、治療管理3,4,5,6,7に影響を与える 8,9。トレーニング時間と術の習得、トレーニング モデルを減らすためには必要人間の生物学を模倣し、提供と同様手術フィールド条件8。
本研究の目的は、アクティブなファッションの技術力向上と人間のケースに似た頭頸部血管再建のための良いトレーニング モジュールとしてブタの可視性を示すことです。
トレーニング費用対効果を提供する無料のフラップ転送、ストレスが少なく頭頸部血管再建に新しい仲間を確実にで臨床実習を補うためブタのモデルの使用を検討と同様無料フラップ プロシージャの機能。豚は、多くの研究および様々 な外科的再建、乳房再建などのためのモデルを教材として使用されています。5ただし、豚は決して10気管狭窄による気管再建のため私たちの研究で除く頭頸部再建のため使用されています。
アイデアは、フレデリック ・ ボダン7、乳房再建のようなフラップを記述した後開始しました。微小血管の訓練の他のモジュールの研究の主な利点は、プロシージャの実際即時結果とアクティブ livening モジュールです。

<table><tbody><tr><td>豚XP Bio、ソウル、韓国</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>外科用脱毛シェーバー</td><td>3M</td><td></td><td></td></tr><tr><td>22ゲージカテーテル</td><td>B.BRAUN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>注射針付き サイズ18</td><td>Jung Rim Medical</td><td></td><td></td></tr> 筋肉<tr><td>内アルファキサン</td><td>ケアサイド</td><td></td><td>10ml/VAL</td></tr><tr><td>筋肉内キシラジン</td><td>バイエル</td><td></td><td></td></tr><tr><td>筋肉内アザペロン</td><td>Sigma-aldrich</td><td></td><td>34223</td></tr><tr><td>筋肉内アトロピン</td><td>Daewon</td><td></td><td>0.5mg/A</td></tr><tr><td>筋肉内セファゾリン</td><td>ユハン</td><td></td><td>1g</td></tr><tr><td>静脈内ケトロラック</td><td>ハナ ファーム</td><td></td><td>30mg</td></tr><tr><td>豚 麻酔マスク</td><td>DRE</td><td></td><td>1392</td></tr><tr><td>気管内カフチューブ 6.5 mm</td><td>SMITH 医療</td><td></td><td>100/150/065</td></tr><tr><td>ansthesia マシン</td><td>Drä</td><td></td> ger <td>PRIMUS IE</td></tr><tr><td>2%リドカイン局所溶液</td><td>テジュン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>獣医軟膏</td><td>ファイザー</td><td></td><td>テラマイシン<img alt="Misc" src="/files/ftp_upload/58104/58104misc1.jpg"></td></tr><tr><td>&gt;アイカバーパッチ</td><td>Innomed</td><td></td><td>S-universal010S</td></tr><tr><td>ベタジン溶液1%。</td><td>韓国製薬</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ガーゼ4 * 4</td>ファースト<td>メディカル</td><td></td><td>22 * 30CM 320S</td></tr><tr><td>ブレードNo.23</td>パラ<td>ゴン</td><td></td><td>23</td></tr>レイ<tr><td>ヒーリトラクターV</td><td>.ミューラーSU3960</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ケリーティッシュはさみ</td><td>SOLCO</td><td></td><td>05-1990</td></tr><tr><td>ブレードNo.11</td><td>パラゴン</td><td></td><td>11</td></tr><tr><td>外科マーキングペン</td><td>アスペン外科</td><td></td><td>レギュラー #2750</td></tr><tr><td>allis</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>SU4055</td></tr><tr><td>tie suture</td><td>Covidein</td><td></td><td>non-needle</td></tr><tr><td>3.5× surgical loupe</td><td>zeiss</td><td></td><td>eyemag smart</td></tr><tr><td>double clamp without frame</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>CH7155</td></tr><tr><td>microscissors</td><td>AESCULAP</td><td></td><td>FD038R</td></tr><tr><td>Ringer's lactate</td><td>大韓</td><td></td><td>500ml / 1袋</td></tr><tr><td>アモキシシリン–クラブラン酸</td><td>イルソン</td><td></td><td>0.6g/V</td></tr><tr><td>メロキシカム</td><td>サミル</td><td></td><td>7.5mg</td></tr><tr><td>プロポフォール</td><td>ドングック</td><td></td><td>120mg/V</td></tr><tr><td>KCl 静注液</td><td>テハン</td><td></td><td>20ml/50P</td></tr><tr><td>蚊が湾曲</td><td>SOLCO</td><td></td><td>013-0111</td></tr><tr><td>蚊帳</td><td>SOLCO</td><td></td><td>05-1050</td></tr><tr><td>エチロン 10-0 縫合</td>糸<td>エチコン</td><td></td><td>10/0W1756</td></tr><tr><td>ビクリル 3-0。</td><td>エチコン</td><td></td><td>3/0W9890</td></tr><tr><td>ブプレノルフィン</td><td>ハンリム</td><td></td><td>0.3mg</td></tr></tbody></table>

頭頸部血管再建のトレーニング ・ モジュールとしてブタ

Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction

人間の手術の条件のようにライブのモデル トレーニング無料フラップ収穫と吻合が必要です。訓練目的のための動物モデル多くの外科分野で長年使用されています。(簡単な操作手順のため)、女性を用いて深下腹壁動脈 perforator または上上腹動脈 perforator フラップを収穫して頭頸部再建におけるブタのヨークシャー。吻合 (首の皮膚欠損または気管壁の損傷) は総頸動脈と頸静脈は、どの 3.5 × ルーペ倍率として使用された吻合のため我々 は実生活で症例に使用の郭清で用意されていた。この手順は信頼性の高い学習モデルを用いた新しいトレーニング法を示しますライブのシナリオの詳細な解剖学を提供しています。収穫、血管吻合、設計欠陥サイトに合わせてフラップ虚血時間に着目しました。このモデルは、組織の処理を向上させる、適切な器具の使用を繰り返すことができる回数、外科医が人間の手術を開始する前に完全に自信を持って。

私たちの六つの豚の手順を実行: 2 つの豚、2 つの豚と 2 つの豚で血管吻合デバイスをテストする無料フラップ気管再建の頚部皮膚欠損再建。豚が 3 ヶ月間監視され、神経学の赤字の臨床兆候がなかった。
虚血の平均時間は 50 分 (範囲, 35 80 分);手順を繰り返す時間が減少。6 豚の平均収穫時間 55 分であった。ない罹患率起こるドナー サイトで我々 のモジュール。フラップの平均椎人間で頭・首をほとんどに似ている 10 cm であった。平均動脈径が 4.5 mm はかなり人間の 2 mm を超えると実体験をシミュレートする平均静脈径は 5.84 mm 人間 2 mm よりもかなり大きい。25 cm2から 40 cm2フラップ失敗 (表 1) に大きな影響を与えずに至るまで皮膚パドルのサイズ。
<p class="jove_content" fo:keep-tog...

頭頸部血管再建の学習モジュールとして豚上腹壁動脈 perforator フラップの使用のためのプロトコルをご紹介します。

Live models that resemble surgical conditions of humans are needed for training free-flap harvesting and anastomosis. Animal models for training purposes ...

この方法は、微小血管の頭頸部再建のためのライフトレーニングモジュールを設定する方法についての重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、初心者の外科医のための微小血管再建手術スキルのデフロマントを容易にすることです。喉頭鏡を使用して25〜30グラムの雌ヨークシャー豚の口を通して声帯を露出させ、挿管誘発喉頭痙攣を防ぐために2%リドカイン局所溶液の2つのパフでコードをスプレーします。6.5ミリメートルの管で挿管します。そして、3〜5ミリリットルの空気でチューブカフを膨らませるために注射器を使用してください。気管管が適切な位置であることを確認した後、動物の目に軟膏を塗布する。そして、カバーパッチで目を保護します。次に、1%ヨウ素ベースのスクラブ溶液を使用して、首と腹壁を消毒します。そして、胸骨に垂直正中頸部切開を作るために数23ブレードを使用してください。ストラップの筋肉を解剖します。そして、ケリーティッシュハサミとラヒーレトラクターを使用して、筋肉を横に引き戻し、最初のリングから胸部入口に気管を露出させます。吻合のために内部頸静脈の一般的な頸動脈を露出させ、第2または第三の軟骨に1センチメートルの窓を作成するために番号11の刃を使用する。次に気管の欠陥を通して気管チューブを探し、チューブを通して連続的な通気の存在を確認します。上腹部穿壁フラップ収穫を行うには、外科的マーキングペンを使用して上部腹部にフラップを設計し、数23のメスを使用して、フラップの内側側の腹壁の前部鞘を通して4〜3センチメートルの楕円皮膚切開を作成する。アリスによって筋膜を保持しながら、皮膚フラップに行く穿孔を見つけるために直腸腹部筋鞘からフラップを高める。鈍い露出した筋肉組織を解剖する。そして、上部の上端胃血管に穿フォーレータに従ってください。フラップに横の皮膚切開を行うために数23メスを使用してください。そして優れた上端胃血管と精巣のコミタントを血頭体で締め付けます。その後、ケリー組織はさみを使用してヘモスタットの上に切断し、ヘモスタットの取り外しを可能にするために3oh縫合糸でヘモスタットの下の容器をリゲートします。血管の吻合のために外科ルーペを使用して、1〜2センチメートル離れた2つの血痕で頸動脈をクランプする。ヘモスタットの間を切るためにマイクロシザーを使用してください。そして、漏れを防ぐために二重縫合糸で容器の上の部分を結びます。頸動脈とフラップ動脈の間のフレームのない二重クランプを使用して、10ohシンプルな完全な厚さの解釈縫合糸を使用して、最初の2つの滞在縫合糸を容器の円周の周りに約120度離れ、滞在縫合糸の間に2〜3針を配置します。クランプを外して漏れがないか確認します。静脈コミタントからの逆流がない場合は、ちょうど実証したように、内部頸静脈と静脈コミタントのための別の吻合を作成します。18ゲージ針を装着した注射器を使用して、皮膚を刺してフラップの生存率を確認します。血液の滴が現れた場合は、3オー縫合糸を使用して、上側の上端動脈穿頭筋の筋膜で気管の窓を閉めます。次に、フラップの皮膚パネルを頸部中線皮膚切開部に外装して縫合し、腹部皮膚切開を閉じる。手順の最後に、豚を起こしやすい位置に戻し、動物が他の動物なしで回復することを可能にする。リンガーの乳酸を動物が完全に回復するまで1時間あたり150ミリリットルで送達し、鎮痛のために0.3ミリグラムのブプレノルフィンを投与する。動物がリカンベントされると、筋肉内アモキシシリンクラブラン酸およびメロキシカムが1週間開始し、回復部位のドナー部位とフラップを毎日検査して治癒進行を確認する。これらの代表的研究では平均虚血時間は、モデルを繰り返すにつれて手順時間が減少して50分であった。6匹のブタの平均収穫時間は55分であり、このモジュールのドナー部位では罹患率は認められなかった。フラップの平均血小の大きさは、人間の頭頸部で観察されたのと同様に、10センチメートルであった。平均動脈直径は4.4ミリメートルで、平均無駄径は5.75ミリメートルで、両方の血管の人間平均2ミリメートルよりも大きく、人間の解剖学をシミュレートすることができました。皮膚のパドルサイズは、フラップの故障に大きな影響を与えることなく、25〜40センチメートル平方メートルの範囲であった。この手順を試みる間は、慎重に穿点に近づき、良好な静脈逆流を確保することを忘れないでください。その開発後、この技術は、気管再建の分野の研究者が気管欠陥に対する筋膜の使用を探求し、気道を崩壊させることなく適切な安全なフラップサイズを決定する道を開いた。気管再建を行うことは非常に危険であり、気道が特許であり、無傷であることを確認するなどの予防措置は、この手順を実行している間は常に取られるべきであることを忘れないでください。

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我々は、異所性後肢から首への血管化複合異種移植の再現可能なマウスモデルを提示します。この超顕微外科プロトコルは0.3〜0.5mmの血管吻合を含み、ナイロンフィラメント誘導と静脈カフを統合しています。この研究は、血管化複合型異種移植における寛容性、虚血再灌流損傷、免疫学的メカニズムに関する翻訳研究の信頼できるプラットフォームを提供します。...

マウスにおける異所性後肢から頸部への移植:血管化複合型アロ移植の超顕微外科モデル

動物モデルの蝸牛に耳毒性物質を導入するための様々な方法が存在します。提示されているのは、丸い窓のニッチに耳毒性物質を送達するための外科的プロトコルです。この手順は信頼性が高く、標的を絞った蝸牛内病変を作成し、マイクロアーキテクチャへの機械的損傷を回避します。蝸牛の自己修復・再生の検討が可能です。...

蝸牛細胞の変性を誘導するための迅速かつ信頼性の高いテクニック：耳毒性剤送達のためのマウスラウンドウィンドウアプローチ

この記事の目的は、専ら死体中耳内視鏡的郭清の方法論を説明します。また、中耳内視鏡的解剖学の包括的なガイドを提供するために目指しています。...

Transcanal 内視鏡下耳の手術による中耳解剖学の発見: 解剖マニュアル

学ぶ、ブタの上腹部動脈穿通皮弁を用いた頭頸部微小血管再建の実習プロトコル。気管挿管、皮弁採取、血管吻合の技術を習得し、初期外科医のスキル向上と手術自信の増強に役立つ実践的トレーニング法です。

頭頸部血管再建のトレーニング・モジュールとしてブタ

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頭頸部血管再建のトレーニング ・ モジュールとしてブタ

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