Name: メジャー ナイーブ cd4 陽性 T 細胞の活性化、増殖と骨髄由来樹状細胞による th1 細胞分化をIn Vivoマウス モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-08-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 39 s
Description: 学ぶマウス骨髄由来樹状細胞によるナイーブCD4陽性T細胞の活性化、増殖、Th1分化のin vivo解析法。この技術は免疫応答の動態をリアルタイムで観察し、適応免疫の理解に貢献します。

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英語の編集を博士サイモン バートレットを感謝いたします。この調査・ デ ・ セルバンテス協会からの補助金によってサポートされたサラッド カルロス III (ISCIII) (PI14/00526;PI17/01395;CP11/00145;CPII16/00022)、ミゲル サーブレット プログラム、フンダシオン Areces;共同フォンド エウロペオ ・ デ ・開発地域 (フェダー) から資金調達。CNIC は経済省、業界競争力 (MEIC) とプロの CNIC 財団によってサポートされて、セヴェーロ オチョア Center of Excellence (SEV-2015-0505) です。RTF は、フンダシオン Areces と CNIC、ISCIII、セルバンテス de BHF で VZG によって設立された危惧地方病院 12 デ Octubre (imas12) と JMG-G ISCIII ミゲル サーブレット プログラムと imas12。

実験手順は、フンダシオン セントロ ナシオナル デによって承認された研究 Cardiovasculares カルロス III (CNIC) とスペインやヨーロッパのガイドラインに従ってコムニダード Autónoma デマドリード。マウスは特定病原体無料 (SPF) 条件で飼育し、二酸化炭素 (CO2) 吸入による安楽死されました。
1 脛骨と大腿骨からマウス骨髄細胞の分離
注: C57BL/6 コンジェニック マウスひずみ差分白血球マーカー Ptprcは野生型 C57BL 系統 CD45.2 または Ly5.2 として知られている、 Ptprcbの対立遺伝子を運ぶに対し CD45.1 または Ly5.1、として一般に認識を運ぶ。CD45.1 および CD45.2 バリアントは、抗体を用いたフローサイトメトリーによる区別できます。CD45.1/CD45.2、CD45.2, CD45.1 マウスは、フローサイトメトリーによる細胞集団の追跡を許可する養子の転送のため、細胞ソースまたは宛先として使用できます。年齢を優先的に使用- と 12 週齢以下の性別をマッチさせたのオスかメスのマウス。
<ol><li>
大腿骨と脛骨の準備
	<ol>
<li>制度上のアニマル ・ ケア委員会で承認プロトコルを使用してマウスを安楽死させます。</li>
		<li>後肢を 70% エタノールで動物の表面を噴霧して消毒します。</li>
		<li>滅菌ハサミ、鉗子やメスを使用します。メス、皮膚のカットを行うし、後の四肢を覆う皮膚を含むマウスの遠位部から皮膚を削除します。下のふくらはぎの筋肉の周りの皮膚の皮をむくし、足から皮膚を完全に削除 (図 2 a、2 b)。</li>
		<li>メスを用いた大腿骨から大腿四頭筋を分離します。股関節は、大腿骨頭を壊すことがなく disarticulate します。メス (図 2、2 D) による脛骨から筋肉を削除します。脛骨骨端を壊すことがなく、大腿骨を分離します。</li>
		<li>10% 牛胎児血清 (FBS) と冷たい 1 x ロズウェル パーク記念研究所 (RPMI) 1640 中 1% ペニシリン/ストレプトマイシンを含むペトリ皿に骨をしてください。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
細胞分離 メモ: 汚染を避けるため無菌素材と文化フードの下では、これ以降の手順を行う必要があります。<ol>
<li>滅菌シャーレ、メス各骨の近位および遠位端を慎重にカットします。</li>
		<li>温かみのある完全 RPMI 培地 (RPMI + 10 %fbs、2 ミリメートルの EDTA、1% ペニシリン/ストレプトマイシン、20 mM HEPES、55 μ M 2-メルカプトエタノール、1 mM ピルビン酸ナトリウムと 2 mM L グルタミン) の 10 mL の容量で何度も骨をフラッシュします。1 mL の注射器に接続されている 25 G 針を使用して両端から骨をフラッシュします。</li>
		<li>70 μ m ナイロン web フィルターが装備 50 mL のコニカル チューブ、effluate に転送します。穏やかな攪拌ピペッティングして残骸と細胞集塊を慎重に外します。</li>
		<li>250 × g 10 分間室温 (RT) の細胞懸濁液を遠心します。</li>
		<li>1 mL の冷たい赤血球溶解バッファー (0.15 M NH4Cl + 1 mM KHCO3 + 0.1 ミリメートルの EDTA、0.4 μ m 滅菌、フィルター選択、4 ° C で保存、1 N の HCl で 7.2 調整 pH) で細胞ペレットを再懸濁します。揺れマニュアルと氷上で 5 分間維持します。</li>
		<li>不活性化し、赤い血セル換散バッファーを洗い流すコールド バッファー (リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) + 2 ミリメートルの EDTA + 2% ウシ血清アルブミン (BSA) x 1) 10 mL を追加します。</li>
		<li>4 ° C で 5 分間 250 x gで細胞懸濁液を遠心分離します。</li>
		<li>完全 RPMI 培地 25 mL、250 x gで 4 ° C で 5 分間遠心すると血球を洗浄します。</li>
		<li>完全 RPMI 培地 5 mL に細胞を再懸濁します。細胞懸濁液トリパン ブルーと 1:1 のミックス 50 μ L。顕微鏡下でカウント チャンバーで細胞の数を決定します。数式を使用してセル数を計算する: 細胞/ml = [(非染色細胞数/4) 2 x 10,000 x]12。 注: このメソッドの利回り 40 x 106 60 x 106骨骨髄細胞 12 週齢の c57bl/6 マウスに感染していない 8 あたり。</li>
		<li>4 ° C で 5 分間 250 x gで細胞懸濁液を遠心分離します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. DC 分化、成熟および抗原読み込み
<ol><li>
BM の細胞採取
	<ol>
<li>ウェルあたり 5 mL で通常、中の mL あたり 10 の6セルで 6 も超低付着表面板の完全な文化をシードします。分化したマクロファージは、培養皿にアタッチされます。12 h 後 6 ウェル プレート、付着のマクロファージで古い 6 ウェル プレートを破棄することをきれいにする、単球は主に培養上清を転送します。</li>
		<li>20 ng/mL 37 ° C、5% 二酸化炭素 (CO2) で遺伝子組換えマウス GM-CSF を商業的取得を含む完全 RPMI 培地の井戸あたり通常 5 mL の mL あたり 5 x 10 の5セルで非付着細胞の培養細胞の分化を促進して毎日を観察します。</li>
		<li>3 日ごと浮遊細胞スピンダウンし 5 mM PBS で EDTA と付着性のセルを収集し、スピン ・ ダウン。組み合わせるし、5 x 105セル/20 ng/mL rm-GM-CSF を含む新鮮な培地で mL で再懸濁します。</li>
		<li>8 日上記と付着性と戸建の細胞を収集し、非培養処理滅菌シャーレ、高 MHC-II を誘導するために 24 時間を 5 × 105セル/mL 中含む 20 ng/mL に GM-CSF と 20 ng/mL リポ多糖 (LPS) で再懸濁します、CD80 および CD86 の発現。</li>
		<li>2.2 の手順で示されているようにフローサイトメトリーによるチェック DC 分化。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
流れの Cytometry の分化と成熟分析。
	<ol>
<li>4 ° C で 5 分間 250 x gで細胞懸濁液を遠心分離します。この手順を 2 回繰り返します。</li>
		<li>マウス Fc 受容体拮抗薬 (抗マウス IgG CD16/CD322b抗体精製) 製造元の指示に従って 4 ° C で 15 分間で再懸濁細胞ペレットの孵化によってブロック Fc 受容体。</li>
		<li>4 ° C で 5 分間 250 x gで細胞懸濁液を遠心分離します。</li>
		<li>各プローブの 4 ° C で流れ cytometry バッファー (1 × PBS + 2 ミリメートルの EDTA + 2 %bsa) の 300 μ L で 250,000 の細胞を再懸濁します。</li>
		<li>96 ウェル プレートに 30 μ L/ウェルの細胞液を転送します。</li>
		<li>4 ° C で 5 分間 250 x gで細胞懸濁液を遠心分離します。</li>
		<li>上澄みを廃棄し、抗体を含む 30 μ L を追加各メーカーの指示を次もバッファー。4 ° C で 20 分のための抗体を持つ細胞をインキュベートします。 注: は、Dc、単球、マクロファージ、CD11b、CD64、CD115、CD11c、動的、CD80、CD86 通常マーカーを採用 (図 3)。</li>
		<li>250 x g 4 ° C で 5 分間のサンプルを遠心し、死んだ細胞 (propidium ヨウ化など, 4 ', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) またはアミン反応性色素を除外するマーカーを含む冷たい流れ cytometry バッファーの井戸あたり 200 μ L で再懸濁します) 製造元の推奨濃度13。</li>
		<li>0、3、6、9 の日に死んだ細胞を除く流動フローサイトメトリー解析を行うことで、流れの cytometry のチューブにサンプルを転送する細胞分化を監視します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
DC 抗原負荷。
	<ol>
<li>8 日に 250 x g 4 ° C で 5 分間のサンプルを遠心し、200 μ L 中でペレットを再懸濁します (RPMI + 10 %fbs 抗生物質なし)。この手順を 2 回繰り返します。</li>
		<li>10 μ G/ml OVAp (323-339; と Dc を孵化させなさいISQAVHAAHAEINEAGR) 1 x 107 1 mL 中の Dc あたり (RMPI + 1 %fbs) 37 ° C で少なくとも 30 分のプラスチック製のチューブで陰性対照条件として Dc の非 OVAp ロードを使用します。</li>
		<li>250 x g 4 ° C で 5 分間のサンプルを遠心し、200 μ L 完全 RPMI 培地でペレットを再懸濁します。この手順を 2 回繰り返します。</li>
		<li>250 x g 4 ° C で 5 分間のサンプルを遠心し、200 μ L 中でペレットを再懸濁します (RPMI + 10 %fbs) 2 x 106セル/mL で。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. OTII マウスからナイーブ cd4 陽性 T 細胞の分離
注: このメソッドは、12 週齢の c57bl/6 マウスに感染していない 8 あたり約 100 × 106脾臓細胞を生成します。男性と女性の両方を使用できます。CD4 T 細胞は脾臓やリンパ節から分離することができます。CD4 T 細胞はそれぞれ約 25% とこれらの器官の細胞の 50% を占めています。無菌状態で次の手順を実行します。
<ol><li>鼠径部、腋窩、上腕、頚部、および腸間膜のリンパ節および脾臓 OTII トランスジェニック マウス (図 4) から分離し、プラスチック シャーレ完全 RPMI 培地 10 ml に転送。</li>
	<li>完全 RPMI 培地 2 mL でセル ストレーナーを洗浄、50 mL のチューブから取り外します。転送リンパ節および脾臓に 70 μ m の細胞ストレーナーは、50 mL のチューブに配置。シリンジのプランジャー (図 5) を使用して均質化し、媒体を追加 15 mL まで。</li>
	<li>250 x g 4 ° C で 5 分間のサンプルを遠心し、完全 RPMI 培地 15 mL にペレットを再懸濁します。この手順を 2 回繰り返します。</li>
	<li>脾臓細胞懸濁液、細胞ペレットを再懸濁します、1.2.5 の手順で示されているように、赤の血液細胞を溶解します。</li>
	<li>4 ° C で 5 分間 250 x gで細胞懸濁液を遠心分離します。</li>
	<li>完全 RPMI 培地 25 mL、250 x gで室温 5 分間遠心すると血球を洗浄します。</li>
	<li>5 mL の培地で細胞を再懸濁します。トリパン ブルーと 1:1 の細胞懸濁液を 50 μ l 添加をミックスします。顕微鏡下でカウント チャンバーを用いた細胞の数を決定します。数式を使用してセル数を計算する: 細胞/ml = [(非染色細胞数/4) 2 x 10,000 x]12。</li>
	<li>2.2.2 手順を繰り返します。</li>
	<li>製造元の指示に従って、1:800 CD8α、IgM、B220、CD19、MHCII (私 Ab)、CD11b、CD11c、CD44、CD25、DX5 CD4 T 細胞の後で否定的な選択のための氷の上で 30 分間ビオチン化抗体の希釈でセルをインキュベートします。</li>
	<li>製造元の指示に従って、セルの数と、ビーズの容量に基づいて、マイクロ磁気ビーズのストレプトアビジン コーティングの必要量を計算磁気セル区切り記号および適切な cd4 陽性 T 細胞を分離分離カラム。</li>
	<li>完全 RPMI 培地 5 mL に細胞を再懸濁します、3.7 の手順で説明されているように生きているセルをカウントしながら氷の上にそれらを保ちます。</li>
	<li>2 x 10 の5セルを抽出し、メーカー推奨の抗体希釈液を使用して流れの cytometer で蛍光抗体を使用して抗 CD8 B220、CD3、CD4 収集した細胞の純度を確認してください。</li>
	<li>分離ナイーブ CD4/OTII T 細胞を染色するには、500 μ L バッファー (1 × PBS + 2 ミリメートルの EDTA + 2 %bsa) の 10 の6セルを再懸濁します。500 を準備重要な細胞トレーサー染料の最終的なメーカー推奨濃度をダブル μ L バッファー (PBS、2 ミリメートルの EDTA + 2 %bsa × 1) を含みます。ゆっくりと細胞懸濁液に細胞トレーサーのソリューションを追加することによって、両方のソリューションをミックスします。37 ° C で 5 分間細胞をインキュベートします。</li>
	<li>完全 RPMI 培地 5 mL、250 x g で 4 ° C で 5 分間遠心するとセルを洗浄してこの手順を 2 回繰り返します。1 x 107セル/mL で完全 RPMI 培地 1 mL の細胞を再懸濁します。</li>
</ol>4.生体内で活性化、増殖と th1 細胞分化アッセイ
注: 重要な細胞トレーサー染料 carboxyfluorescein ジアセテート サクシニミジルエステル (CFSE) ・その他染色エステル ベースの染料、興奮している、異なる波長の蛍光を発する活躍してリンパ球増殖を評価する流れで高い蛍光強度、長寿命、変動の少ない、低毒性14などフローサイトメトリー。
<ol><li>本静脈内 (静注) 1 x 106ライブの重要な細胞トレーサー染料染色ナイーブ CD4/OTII T 細胞マウスあたり 100 μ L の PBS を転送します。尾静脈またはレトロ軌道注入15; によってラベル付けされた T 細胞、に対して転送できます。両方のケースでの家では、細胞、リンパ器官 (図 6 a)。</li>
	<li>受信者のマウス 1 日後によって挑戦に対して皮下注射 (点火) (図 6 b) で 100,000 LPS 成熟 OVAp ロード DCs を転送します。</li>
	<li>受信者マウス膝窩リンパ節の収穫、3.1 と 3.2 で前述したように同じ手順に従って単一細胞懸濁液の入手まで処理します。予防接種 2 日後 CD4/OTII T 細胞の活性化を測定して増殖と th1 細胞分化を測定する 5 日目には、これを行います。</li>
	<li>2 日目の T 細胞活性化を分析する CD69 CD4, CD25 蛍光抗体と細胞を染色 (必要に応じて CD45.1 および CD45.2) C69 の割合を決定して+CD25+ T 細胞の CD4 人口。フローサイトメトリー (図 7) を分析します。</li>
	<li>5 日目に T 細胞の増殖を確認するには、CD4 と必要に応じて CD45.1 および CD45.2 に対する適切な蛍光抗体を用いて細胞を染色します。フローサイトメトリー (図 8) による CD4 人口の重要な細胞トレーサー染料信号の減衰を分析します。これらの研究は、重要な細胞トレーサー染料、各蛍光ピークの分裂細胞の割合、総細胞の分裂細胞の割合で標識細胞が細胞分裂の数などのいくつかのパラメーターを確認できます。人口。</li>
	<li>/1 μ M イオノマイシンと 10 ng/mL 12 13 フォルボールエステル (PMA) のインキュベーター内の 37 ° C で 6 時間を含む完全 RPMI 培地を 200 μ l 添加の 96 ウェル プレートのウェル プレート 400,000 セル、5 日目で th1 細胞分化を決定します。最後の 4 h 3-10 μ G/ml ブレフェルジン A 媒体にサイトカイン分泌をブロックするを追加します。</li>
	<li>遠心分離機の 4 ° C で 250 x gで 5 分間プレート96 ウェル プレートの急速な反転で上澄みを廃棄します。</li>
	<li>2.2.2 手順を繰り返します。</li>
	<li>メーカー推奨希釈液に含まれている抗体 CD4、必要に応じて CD45.1 および CD45.2 をバッファー (1 × PBS + 2 ミリメートルの EDTA + 2 %bsa) の 30 μ L で 4 ° C で 15 分間インキュベートし、細胞膜を染色します。バッファー (1 × PBS + 2 ミリメートルの EDTA + 2 %bsa) の 150 μ L を追加することによって、細胞を洗浄し、遠心分離機の 4 ° C で 250 x gで 5 分間プレート上澄みを廃棄します。</li>
	<li>1,000 x gで 5 分間、4 ° C の板した遠心分離機で 20 分間 2 %paraformaldehyde/1% ショ糖の 100 μ L を追加することでセルを修復します。上清を捨てます。</li>
	<li>細胞内透過バッファー (1 × PBS + 0.01 M HEPES、0.3% サポニン 0.1 %bsa) の 50 μ L を追加することによって、セルを permeabilize し、4 ° C で 30 分間インキュベート</li>
	<li>破棄した上清に 1,000 x gで 150 μ L の PBS と 5 分間遠心を追加します。</li>
	<li>バッファー (PBS + 0.1% サポニン) で抗肝腎抗体蛍光体共役の 30 μ L を追加することによって細胞内サイトカインを汚し、室温 30 分間インキュベート</li>
	<li>バッファー (PBS + 0.1% サポニン) の 150 μ L を追加することによって、細胞を洗浄します。RT で 1,000 x gで 5 分間プレートを遠心し、上澄みを廃棄します。この手順を 2 回繰り返します。</li>
	<li>(図 8) フローサイトメトリーによる細胞集団を分析します。</li>
</ol>

<ol><li>Zhu, J., Yamane, H., Paul, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+effector+CD4+T+cell+populations+%28%2A%29%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Differentiation of effector CD4 T cell populations (*).</a> Annual Review of Immunology. 28, 445-489 (2010).</li>
<li>Bustos-Moran, E., Blas-Rus, N., Martin-Cofreces, N. B., Sanchez-Madrid, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orchestrating+Lymphocyte+Polarity+in+Cognate+Immune+Cell-Cell+Interactions%5BTitle%5D)+AND+%22International+Review+of+Cell+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Orchestrating Lymphocyte Polarity in Cognate Immune Cell-Cell Interactions.</a> International Review of Cell and Molecular Biology. 327, 195-261 (2016).</li>
<li>Gonzalez-Granado, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+envelope+lamin-A+couples+actin+dynamics+with+immunological+synapse+architecture+and+T+cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Signaling%22%5BJournal%5D)">Nuclear envelope lamin-A couples actin dynamics with immunological synapse architecture and T cell activation.</a> Science Signaling. 7 (322), ra37(2014).</li>
<li>Rocha-Perugini, V., Gonzalez-Granado, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+envelope+lamin-A+as+a+coordinator+of+T+cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleus%22%5BJournal%5D)">Nuclear envelope lamin-A as a coordinator of T cell activation.</a> Nucleus. 5 (5), 396-401 (2014).</li>
<li>Rocha-Perugini, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD9+Regulates+Major+Histocompatibility+Complex+Class+II+Trafficking+in+Monocyte-Derived+Dendritic+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">CD9 Regulates Major Histocompatibility Complex Class II Trafficking in Monocyte-Derived Dendritic Cells.</a> Molecular and Cellular Biology. 37 (15), (2017).</li>
<li>Kaech, S. M., Wherry, E. J., Ahmed, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effector+and+memory+T-cell+differentiation%3A+implications+for+vaccine+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Immunology%22%5BJournal%5D)">Effector and memory T-cell differentiation: implications for vaccine development.</a> Nature Reviews Immunology. 2 (4), 251-262 (2002).</li>
<li>Iborra, S., Gonzalez-Granado, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vitro+Differentiation+of+Naive+CD4%28%2B%29+T+Cells%3A+A+Tool+for+Understanding+the+Development+of+Atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">In Vitro Differentiation of Naive CD4(+) T Cells: A Tool for Understanding the Development of Atherosclerosis.</a> Methods in Molecular Biology. 1339, 177-189 (2015).</li>
<li>Toribio-Fernandez, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lamin+A%2FC+augments+Th1+differentiation+and+response+against+vaccinia+virus+and+Leishmania+major%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+%26+Disease%22%5BJournal%5D)">Lamin A/C augments Th1 differentiation and response against vaccinia virus and Leishmania major.</a> Cell Death & Disease. 9 (1), 9(2018).</li>
<li>Lee, T., Shevchenko, I., Sprouse, M. L., Bettini, M., Bettini, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retroviral+Transduction+of+Bone+Marrow+Progenitor+Cells+to+Generate+T-cell+Receptor+Retrogenic+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Retroviral Transduction of Bone Marrow Progenitor Cells to Generate T-cell Receptor Retrogenic Mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (113), (2016).</li>
<li>Cruz-Adalia, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conventional+CD4%28%2B%29+T+cells+present+bacterial+antigens+to+induce+cytotoxic+and+memory+CD8%28%2B%29+T+cell+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Conventional CD4(+) T cells present bacterial antigens to induce cytotoxic and memory CD8(+) T cell responses.</a> Nature Communications. 8 (1), 1591(2017).</li>
<li>Quah, B. J., Wijesundara, D. K., Ranasinghe, C., Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+fluorescent+target+arrays+for+assessment+of+T+cell+responses+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">The use of fluorescent target arrays for assessment of T cell responses in vivo.</a> Journal of Visualized Experiments. (88), e51627(2014).</li>
<li>Cruz-Adalia, A., Ramirez-Santiago, G., Torres-Torresano, M., Garcia-Ferreras, R., Veiga Chacon, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T+Cells+Capture+Bacteria+by+Transinfection+from+Dendritic+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">T Cells Capture Bacteria by Transinfection from Dendritic Cells.</a> Journal of Visualized Experiments. (107), e52976(2016).</li>
<li>Cossarizza, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+use+of+flow+cytometry+and+cell+sorting+in+immunological+studies%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies.</a> European Journal of Immunology. 47 (10), 1584-1797 (2017).</li>
<li>Quah, B. J., Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+and+improved+methods+for+measuring+lymphocyte+proliferation+in+vitro+and+in+vivo+using+CFSE-like+fluorescent+dyes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunological+Methods%22%5BJournal%5D)">New and improved methods for measuring lymphocyte proliferation in vitro and in vivo using CFSE-like fluorescent dyes.</a> Journal of Immunological Methods. 379 (1-2), 1-14 (2012).</li>
<li>Yardeni, T., Eckhaus, M., Morris, H. D., Huizing, M., Hoogstraten-Miller, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retro-orbital+injections+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animals+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Retro-orbital injections in mice.</a> Lab Animals (NY). 40 (5), 155-160 (2011).</li>
<li>Warth, S. C., Heissmeyer, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenoviral+transduction+of+naive+CD4+T+cells+to+study+Treg+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Adenoviral transduction of naive CD4 T cells to study Treg differentiation.</a> Journal of Visualized Experiments. (78), (2013).</li>
<li>Liou, H. L., Myers, J. T., Barkauskas, D. S., Huang, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+imaging+of+the+mouse+popliteal+lymph+node%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Intravital imaging of the mouse popliteal lymph node.</a> Journal of Visualized Experiments. (60), (2012).</li>
</ol>

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このプロトコルは、BM から派生した Dc の活性化・増殖・ ナイーブ cd4 陽性 T 細胞の分化を調節する能力の評価を使用できます。また、BM から派生した Dc によって変調する CD4 T 細胞の感受性を評価するために使用もできます。このプロトコルで測定された生体内でこれらのイベントの変更ができます。
調査中の仮説によって T 細胞と DCs のいくつかの組み合わせを使用できます。たとえば、1 つはまたは特定の遺伝子や CD4 T 細胞の活性化や th1 細胞の分化、増殖、特定の刺激の効率をノックのノックの結果を分析できます。Dc や CD4 にこれらの手順を実行することができます細胞または両方のセルのタイプ。したがって、野生型や遺伝子組み換えマウスから cd4 陽性 T 細胞は、野生型マウスから派生した Dc と結合できます。
このプロトコルは、フローサイトメトリーと CD45.1 および CD45.2 に対する抗体を使用して異なるセル人口の起源を区別するために合わせることができます。確かに、CD4...

CD4 T 細胞と抗原提示細胞 (APCs) Dc などは、微生物病原体1,2に免疫の必要なメディエーターです。末梢のリンパ組織における CD4 T 細胞は Apc3,4,5によって提示された特定の抗原の認識に基づいてアクティブ化されます。活性化 cd4 陽性 T 細胞は、増殖し、正しい適応免疫応答6、7の開発に必要な個別の特定エフェクター Th 細胞に分化します。これらのプロセスの制御は、有害な組織損傷8を生成せず、病原体を殺す十分な適応性の防衛を生産するため重要です。Th 細胞は式または表面分子、転写因子やエフェクター サイトカインの生産によると定義され、病原体1への応答で不可欠な機能を実行します。Th1 細胞サブセットの細胞は、転写因子 t-bet とサイトカイン インターフェロン γ (肝腎) を表現、1細胞内の病原体に対する生体防御に参加します。ナイーブな cd4 陽性 T 細胞の活性化・増殖・ th1 細胞分化の定量化は、免疫応答における役割 T 細胞再生を評価するための有用な手段です。
このプロトコルによりin vivo解析で体外の容量には、活性化・増殖・ ナイーブ cd4 陽性 T 細胞の th1 細胞の分化を調節するための Dc の BM の派生が生成されます。プロトコルもナイーブ cd4 陽性 T 細胞活性化、増殖誘導の能力を評価して th1 細胞分化 (図 1)。この汎用性の高いプロトコルは、具体的操作またはプロトコル純粋な生体内での研究セル人口を選択できないことを回避できます。多様な分子と Dc の治療の影響は、治療または分離 BM セル9を遺伝子操作、遺伝子改変マウス5から BM を使用して学ぶことができます。同様に、養子の転送のための T 細胞の異なるソースからまたはいくつかの操作3,8,10後取得することによって T 細胞の反応を探索できます。
このプロトコルの主な利点は 2 つあります。T 細胞の活性化・増殖・ th1 細胞分化を流れの cytometry アプローチ; 分析します。これが生体内で研究、体外で発生する変更を回避したがってと細胞のタイプとだけそのまま臓器11に見られるその他の要因などを含むと組み合わされています。
重要な染料の使用は、放射能の使用を回避しながら増殖を追跡するため広く使用されている手法です。これらの試薬と拡散の測定は、細胞分裂後色素希釈法に基づいています。また、これらの染料は、複数の波長で検出することができます、複数の蛍光抗体またはマーカーと組み合わせてフローサイトメトリーによる分析が簡単に。Th1 細胞分化、増殖、活性化 T 細胞をフローサイトメトリーによる分析する方法を示すことによってこのプロトコルの有用性を強調表示します。

<table><tbody><tr><td>エタノール</td><td>VWR ケミカルズ</td><td>20,824,365</td><td>5 L</td></tr><tr><td>はさみ</td><td>ファインサイエンスツール (F.S.T.)</td><td>14001-12</td><td></td></tr><tr><td>鉗子</td><td>ファインサイエンスツール(F.S.T.)</td><td>11000-13</td><td></td></tr><tr><td>ファインフォーセプス</td><td>ファインサイエンスツール(F.S.T.)</td><td>11253-20</td><td></td></tr>メス<tr><td></td><td>ファインサイエンスツール(F.S.T.)</td><td>10020-00</td><td>100ブレードの箱</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>SIGMA</td><td>F7524</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>LONZA</td><td>DE17-602E</td><td></td></tr><tr><td>ロズウェルパークメモリアルインスティテュートミディアム (RPMI)</td><td>GIBCO</td><td>21875-034</td><td></td></tr><tr><td>滅菌ペトリ皿</td><td>Falcon</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>25ゲージ針</td><td>BD Microlance 3</td><td>300600</td><td></td></tr><tr><td>1 mlシリンジ</td><td>Novico</td><td>N15663</td><td></td></tr><tr><td>15 mlコニカルチューブ</td><td>ファルコン</td><td>352096</td><td></td></tr><tr><td>50 mlコニカルチューブ</td><td>ファルコン</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>70 &mu;mナイロンウェブ</td><td>フィルターBDファルコン</td><td>352350</td><td></td></tr>赤<tr><td>血球溶解</td><td>バッファーSIGMA</td><td>R7757</td><td>100 Ml</td></tr><tr><td>EDTA</td>シ<td>グマ</td><td>ED2SS-250</td><td></td></tr>ウ<tr><td>シ血清アルブミン</td><td>SIGMA</td><td>A7906 100</td><td>g</td></tr><tr><td>トリパンブルー</td><td>シグマ</td><td>302643-25G</td><td></td></tr><tr><td>培養プレート</td><td>ファルコン</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジンエタンスルホン酸(HEPES)</td><td>Cambrex</td><td>BE17-737E</td><td></td></tr><tr><td>ベータ-メルカプトエタノール</td><td>メルク</td><td>8-05740-0250</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム</td><td>ロンザ</td><td>BE13-115E</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>ロンザ</td><td>BE17-605E</td><td></td></tr><tr><td>組換えマウス顆粒球マクロファージコロニー刺激因子 (GM-CSF)</td><td>プレポテック</td><td>315-03</td><td></td></tr><tr><td>リポ多糖(LPS)</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>L2018</td><td></td></tr><tr><td>96-well-plate</td><td>Costar</td><td>3799</td><td></td></tr><tr><td>v450 anti-mouse CD11b antibody</td><td>BD Biosciences</td><td>560455</td><td></td></tr><tr><td>PE anti-mouse CD64 antibody</td><td>BioLegend</td><td>139303</td><td></td></tr><tr><td>PE anti-mouse CD115 antibody</td><td>BioLegend</td><td>135505</td><td></td></tr><tr><td>FITC anti-mouseCD11c抗体</td><td>BioLegend</td><td>117305</td><td></td></tr><tr><td>FITC抗マウスMHCII抗体</td><td>BioLegend</td><td>125507</td><td></td></tr><tr><td>APC抗マウスCD86抗体</td><td>BioLegend</td><td>105011</td><td></td></tr><tr><td>APC抗マウスCD80抗体</td><td>BioLegend</td><td>104713</td><td></td></tr><tr><td>フローサイトメトリーチューブ</td><td>Zelian</td><td>300800-1</td><td>PS 12X75 5mL</td></tr><tr><td>OTII オボアルブミンペプチド</td><td>InvivoGen</td><td>323-339</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化 CD8&α; 抗体</td><td>Tonbo Biosciences</td><td>30-0081-U500</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化 IgM 抗体</td><td>BioLegend</td><td>406503</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化 B220 抗体</td><td>Tonbo Biosciences</td><td>30-0452-U500</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化 CD19 抗体</td><td>Tonbo Biosciences</td><td>30-0193-U500</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化MHCII(I-Ab)抗体</td><td>BioLegend</td><td>115302</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化CD11b抗体</td><td>Tonbo Biosciences</td><td>30-0112-U500</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化CD11c抗体</td><td>BioLegend</td><td>117303</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化CD44抗体</td><td>BioLegend</td><td>103003</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化CD25抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>30-0251-U100</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスビオチン化DX5抗体</td><td>バイオレジェンド</td><td>108903</td><td></td></tr><tr><td>ストレプトアビジン被覆磁気マイクロビーズ</td><td>MACS Miltenyi Biotec</td><td>130-048-101</td><td></td></tr><tr><td>磁気セルセパレーター</td><td>MACS Miltenyi Biotec</td><td>130-090-976</td><td>QuadroMACS セパレーター</td></tr><tr><td>セパレーションカラム</td><td>MACS Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td><td></td></tr><tr><td>PE抗マウスCD4抗体</td><td>BioLegend</td><td>100408</td><td></td></tr><tr><td>APC抗マウスCD3抗体</td><td>BioLegend</td><td>100235</td><td></td></tr><tr><td>FITC 抗マウスCD8抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>35-0081-U025</td><td></td></tr><tr><td>セルバイオレットトレーサー</td><td>サーモフィッシャー</td><td>C34557</td><td></td></tr><tr><td>APC抗マウスCD25抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>20-0251-U100</td><td></td></tr><tr><td>Alexa647 抗マウス CD69 抗体</td><td>BioLegend</td><td>104518</td><td></td></tr><tr><td>PerCPCY5.5 抗マウス CD45.1 抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>65-0453</td><td></td></tr><tr><td>APC 抗マウス CD45.1 抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>20-0453</td><td></td></tr><tr><td>PECY7 抗マウス CD45.1 抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>60-0453</td><td></td></tr><tr><td>FITC 抗マウス CD45.2抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>35-0454</td><td></td></tr><tr><td>イオノマイシン</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>I0634</td><td></td></tr><tr><td>ホルボール 12 ミリスチン酸 13 酢酸 (PMA)</td> <td>SIGMA</td><td>P8139</td><td></td></tr><tr><td>ブレフェルジン A (BD GolgiPlug)</td> <td>BD</td><td>555029</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>ミリポア</td><td>8-18715-02100</td><td></td></tr><tr><td>細胞内透過化バッファー</td><td>eBioscience</td><td>00-8333</td><td></td></tr><tr><td>APC 抗マウス IFNg 抗体</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>20-7311-U100</td><td></td></tr><tr><td>Fc-block (anti-mouse CD16/CD32)</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>70-0161-U100</td><td></td></tr><tr><td>B6.SJL CD45.1マウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td>002014</td><td></td></tr><tr><td>BD LSRFortessa&trade;Cell Analyzer</td><td>BD Biosciences</td><td>649225</td><td></td></tr><tr><td>DAPI Solution</td><td>Thermofisher</td><td>62248</td><td></td></tr></tbody></table>

メジャー ナイーブ cd4 陽性 t 細胞の活性化、増殖と骨髄由来樹状細胞による th1 細胞分化をin vivoマウス モデル

An In Vivo Mouse Model to Measure Na&#239;ve CD4 T Cell Activation, Proliferation and Th1 Differentiation Induced by Bone Marrow-derived Dendritic Cells

ナイーブな cd4 陽性 T 細胞の活性化・増殖・ T ヘルパー 1 への分化の定量化 (Th1) 細胞は免疫応答における T 細胞の役割を評価するために便利な方法です。このプロトコルでは、顆粒球マクロファージ コロニー刺激因子 (GM-CSF) の由来樹状細胞 (Dc) を取得する (BM) 骨髄前駆細胞の in vitro分化について説明します。プロトコルはまた卵白ペプチド (OVAp) の養子の転送を記述-GM 由来 CSF Dc とナイーブ cd4 陽性 T 細胞を生体内で活性化・増殖・ th1 細胞分化を解析するために OTII トランスジェニック マウスからロード、転送 CD4 T 細胞。このプロトコルは、純粋な生体内での方法の具体的操作または調査のセル人口を選択する無力によって課される制限を回避できます。さらに、このプロトコルは生体外で発生する可能性があります機能の要因など細胞の種類とそのまま臓器でのみ発見その他の要因の影響の変化を避けるため生体内の環境で研究をできます。Dc の変更を生成するための便利なツールであり、T 細胞をプロトコル適応免疫応答、潜在的起源や多数の免疫関連疾患の開発を理解するための重要な結果を提供することを変更します。

図 1は、このプロトコルで説明されている手順を示しています。図 2は、マウスの骨髄細胞の培養と分離を示しています。これらの文化に GM-CSF と LP の追加により、体外生成と dc図 3の成熟分化の流れのフローサイトメトリー解析と取得した dc OVAp ロード GM-CSF BM から派生した Dc の成熟を示しています分離された重要なトレース染色 CD4/OTII T 細胞に対してマウスに転送されます。図 4は、CD4/OTII T 細胞の分離に使用されるリンパ節の場所を示しています。50 mL チューブ 70 μ m ナイロン フィルターが装備とリンパ節および脾臓を均質化するために使用するシリンジのプランジャーを図 5に示します。<strong cl...

今回ナイーブ cd4 陽性 T 細胞 (T 細胞) の活性化、増殖、GM-CSF 骨髄 (BM) による th1 細胞分化・生体内で定量のためのプロトコル-由来樹状細胞 (Dc)。さらに、このプロトコルでは、BM と T 細胞の分離、DC 世代と DC および T 細胞の養子移動について説明します。

メジャー ナイーブ cd4 陽性 T 細胞の活性化、増殖と骨髄由来樹状細胞による th1 細胞分化をIn Vivoマウス モデル

Quantification of na&#239;ve CD4 T cell activation, proliferation, and differentiation to T helper 1 (Th1) cells is a useful way to assess the role played ...

この方法は、T細胞の活性化、増殖、Th1分化、および適応免疫の抗原提示細胞刺激に関する免疫学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、in vivo環境の研究を可能にすると同時に、in vitroでの細胞操作を可能にすることです。この方法は、臓器と骨の分離と養子移植のステップをテキストによる指示だけでは習得するのが難しいため、視覚的にデモンストレーションすることが重要です。骨髄細胞の単離では、成体マウスの後肢を70%エタノールで消毒し、ハサミを使用して後肢を横切って皮膚を横切開します。脚の内側にハサミを挿入し、後肢の始点までハサミで皮膚をカットします。次に、鉗子を使用して皮膚を脚から分離します。ハサミを使用して、大腿骨と脛骨から筋肉を分離し、ハサミを使用して股関節を分節し、大腿骨の頭を壊します。次に、骨の端を壊さずに脛骨からフェムレを分離し、骨を氷上の完全な媒体のペトリ皿に置きます。すべての骨が採取されたら、メスで各骨の近位端と遠位端を慎重に切り取り、25ゲージの針を備えた1ミリリットルの注射器を使用して、合計10ミリリットルの温かい完全なRPMI培地で骨を繰り返し洗い流します。すべての骨を洗い流したら、ディッシュの内容物全体を70マイクロメートルの細孔ナイロンウェブフィルターを取り付けた50ミリリットルの円錐管に移し、穏やかに攪拌し、ピペッティングしながら破片や細胞の塊を慎重に取り除きます。遠心分離により骨髄細胞を採取します。ペレットをピペッティングで摂氏4度の赤血球溶解バッファー1ミリリットルに再懸濁し、氷上で5分間インキュベートします。インキュベーションの終了時に、10ミリリットルのPVSで溶解を停止し、ペレットを25ミリリットルの完全培地に再懸濁して2回目の遠心分離を行います。次に、細胞を5ミリリットルの新鮮な完全培地に再懸濁してカウントし、細胞を再度遠心分離します。二次リンパ組織細胞の単離のために、OT-IIトランスジェニックマウスから鼠径リンパ節、腋窩リンパ節、上肢リンパ節、頸椎リンパ節、および脾臓を採取し、二次リンパ組織を10ミリリットルの完全RPMI培地を含むプラスチックペトリ皿に移します。すべての組織を採取したら、リンパ節と脾臓を50ミリリットルの円錐管内の70マイクロメートルの細胞ストレーナーに移し、シリンジプランジャーを使用して組織を均質化します。ストレーナーを最大15ミリリットルの培地で洗い流し、遠心分離によって細胞をスピンダウンします。次に、標準プロトコルに従って、磁気ビーズソーティングによりCD4陽性T細胞を単離します。ナイーブOT-II CD4陽性T細胞のin vivo活性化のためには、磁気ビーズ単離T細胞をバイタルセルトレーサー色素で標識し、標準プロトコルに従って、標識細胞をPBS濃度100マイクロリットルあたり10〜6番目の細胞で再懸濁します。次に、尾静脈を介して動物あたり100マイクロリットルの細胞を養子として移植します。注入前にマウスを温めておき、細胞体積全体を送達できるように尾静脈が十分に拡張していることを確認します。24時間後、10個を5番目のLPS成熟OVAペプチド負荷樹状細胞に、各T細胞注入動物のフットパッドに皮下注射して送達します。養子縁組チャレンジの2日後と5日後、実証されているように、組織処理とT細胞単離のために、レシピエント動物から膝蓋リンパ節を採取します。T細胞の活性化を解析するには、2日目に単離した細胞をCD4、CD69、およびCD25に対する蛍光抗体で染色し、フローサイトメトリーによりレシピエントCD4陽性集団内のCD64陽性、CD25陽性T細胞の割合を決定します。T細胞の増殖を評価するには、5日目に単離した細胞をCD4に対する適切な蛍光抗体で染色し、ドナーCD4陽性T細胞集団のバイタルセルトレーサー色素シグナルの崩壊をフローサイトメトリーで解析します。Th1の分化を評価するために、200マイクロリットルの完全培地に1ウェルあたり10〜5日目に5単離T細胞を4回プレートし、1ウェルあたりイオノマイシンとPMAを補充し、96ウェルプレートに入れます。次に、プレートを摂氏37度の細胞培養インキュベーターに6時間置き、各ウェルにブレフェルジンAを添加して、刺激の最後の4時間にサイトカイン分泌をブロックします。インキュベーションの終了時に、プレートを遠心分離し、上清を急速反転して廃棄します。細胞を抗CD4抗体で染色した後、2%パラホルムアルデヒドと1%スクロースを100マイクロリットルに室温で20分間固定します。50マイクロリットルの透過処理バッファーで細胞を4°Cで30分間透過処理した後、ウェルあたり150マイクロリットルのPBSで遠心分離洗浄します。次に、目的の細胞内サイトカインを標準プロトコルに従って室温で30分間染色し、その後、ウェルあたり1%サポニンを添加した150マイクロリットルのPBSで2回の遠心分離洗浄を行います。次に、フローサイトメトリーで細胞を解析します。LPS刺激後のGM-CSF骨髄由来樹状細胞のフローサイトメトリー解析により、MHCII、CD80、CD86などの成熟マーカーのアップレギュレーションが明らかになりました。ナイーブCD4陽性OT-II T細胞は、レシピエント動物への養子移管後、T細胞活性化マーカーのアップレギュレーション、表面発現、および複数回の細胞分裂により活性化されます。活性化すると、増殖するCD陽性OT-II T細胞は、細胞内インターフェロンガンマ発現によって示されるように、Th1表現型を示します。このテクニックは、一度マスターすれば8時間で完成させることができます。この手順を試みる際には、実験の前日にすべての試薬と材料を準備することを忘れないでください。その開発後、この技術は、免疫学の研究者がマウスの樹状細胞とT細胞を研究する道を開きました。このビデオを見れば、マウスの大腿骨や脛骨から骨髄を分離する方法や、T細胞や樹状細胞をレシピエント動物に移植する方法をよく理解できるはずです。針、メス、はさみなどの鋭利な器具での作業は非常に危険である可能性があるため、これらの手順を実行するときは、常に適切な指の保護具を使用するなどの予防措置を講じる必要があることを忘れないでください。

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Research

JoVE Journal

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メジャーナイーブ cd4 陽性 T 細胞の活性化、増殖と骨髄由来樹状細胞による th1 細胞分化をIn Vivoマウスモデル

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