Name: pT3N0M0胃癌組織のパラフィン埋め込みスライド上の弾性染色 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-01T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 36 s
Description: 学ぶ、pT3N0M0胃癌組織のパラフィン包埋スライドにおける弾性染色法。弾性板を識別し、腫瘍細胞の浸潤を正確に評価する病理診断技術です。肺がんや大腸がんへの応用も可能です。

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著者らは、国立自然科学財団(NO.81401902およびNO.81501992)と湖南自然科学財団(NO.2017SK2134、NO.2018JJ2238)からの支援に感謝しています。原稿はグアン・レイによって書かれています。全体の実験は、グアンレイとハイヤンヤンによって行われます。著者らは、病理学者と患者のデータをフォローアップする仲間の支援に感謝します。

1994年から2005年の間に、中央南大学西谷医学部付属癌病院の2人の経験豊富な消化管病理学者によって、胃新生物の胃切除術を受けた患者から、患者サンプルが選ばれた。pT3N0M0段階における胃癌の術後病理学的診断(第7TNMステージングによると)。この研究は倫理審査委員会によって承認された。
1. 断面
<ol><li>パラフィンブロックをそりマイクロトームの固定ホルダーに入れ、ブレードを前後に移動します。ブロックとマイクロトームナイフの間の最適な角度を調整します。 注:最適な角度は、ブレードの形状だけでなく、切断速度とテクニックにも依存します。</li>
	<li>必要に応じてパラフィンブロックをトリミングし、5μm厚の断面に切断します。</li>
	<li>パラフィン5μmのセクションを約40~45°Cの水浴に入れ、水からガラススライドに取り付けます。</li>
	<li>取り付けられた部分をペーパータオルに対して注意深く押して、残留水と気泡を取り除きます。</li>
	<li>セクションを30分間空気乾燥させ、45~50°Cのオーブンで2時間焼きます。</li>
</ol>2. すべてのスライドの脱パラフィン化と水分補給
<ol><li>コプリンの瓶に10分間キシレンのスライドを浸します。</li>
	<li>最初のキシレン瓶からスライドを取り出し、10分間別の瓶にキシレンに浸します。</li>
	<li>さて、100%エタノールでスライドをコプリン瓶に5分間浸します。</li>
	<li>別のコプリン瓶に100%エタノールでスライドを浸し、また5分間。</li>
	<li>95%エタノールのスライドをコプリン瓶に2分間浸します。</li>
	<li>70%エタノールのスライドをコプリン瓶に2分間浸します。 注: 上記の手順を実行しながら、スライドがソリューションに完全に浸されていることを確認します。</li>
	<li>新しい瓶に蒸留水でスライドを短時間すすいでください。</li>
</ol>3. 染色
<ol><li>染色を進める前に、スライド上の組織の周りの余分な溶液をティッシュペーパーで拭き取ります。</li>
	<li>スライダーを室内温度と室湿量条件に置き、染色プロセス全体を通してスライド上の組織の乾燥を避けます。</li>
	<li>過マンガン酸カリウムを数滴で5分間酸化し、過マンガン酸カリウムの体積が各スライドの組織部を覆うのに十分であることを確認します。</li>
	<li>酸化したスライドをコプリン瓶に蒸留水ですすいで、2~3の変化を加えます。組織の青色を観察します。</li>
	<li>さて、これらのスライドを5分間シュウ酸を数滴加えて漂白し、シュウ酸の体積が各スライドの組織セクションを完全に覆うのに十分であることを確認します。</li>
	<li>蒸留水で満たされたコプリンの瓶に浸してスライドをすすいでください。すす2x -3xを実行します。</li>
	<li>次に、これらのスライドを95%のアルコールで短時間洗い、8~24時間のエラスチン溶液(5g/L)にスライドを浸します。 注:エラスチン溶液は揮発性であり、その染色時間は比較的長いので、シールキャップ付きの透明なガラスボトルなどの密閉容器に弾性染色でスライドを浸すことをお勧めします。容器の容量およびエラスチン溶液の容積は、すべてのスライドの完全な浸漬を可能にする限り、浸漬されたスライドの数に依存する。</li>
	<li>これらのスライドを95%エタノールに直接浸し、各組織セクションを十分に区別するために1~2分間浸します。 注:分化とは、組織部の電荷の変化を指し、組織によって吸収される余分な染色を除去し、色を明確にします。エラスチン溶液染色後、分化の困難を避けるために蒸留水でサンプルを洗浄しないでください。必要に応じて、青黒色の弾性繊維の染色と灰色の背景を顕微鏡で確認してください。その後のヴァン・ギーソンのカウンターステインも弾性染色をいくらか抽出できるので、組織をわずかに分化しない方が良い。</li>
	<li>分化後は蒸留水でスライドを完全にすすいでください。</li>
	<li>ヴァン・ギーソンの溶液のスライドを1分間カウンターステインします。 注:ヴァン・ギーソンの溶液の体積は、各スライドのティッシュセクションを完全に浸すことができるのに十分である必要があります。</li>
	<li>95%のエタノールを数秒間、これらのスライスに素早く落とし、各組織セクションをうまく区別します。 注:ヴァン・ギーソンのカウンターステインの後にスライドを水ですすいでください。</li>
</ol>4. 脱水と取り付け
<ol><li>スライドを95%のアルコールで5分間浸し、素早く脱水させます。</li>
	<li>100%アルコールの2つの変化によってこれらのスライスを脱水し続け、毎回5分間スライドを浸します。</li>
	<li>3分間、毎回キシレンの2つの変更にスライドを浸します。</li>
	<li>スライドに樹脂用取り付け媒体を1滴追加し、カバースリップを上部に置きます。</li>
</ol>5. スライドの顕微鏡観察
<ol><li>血清方向を見つけて弾性染色の結果を観察する:弾性繊維(ラミナ)は青黒色染色され、コラーゲン繊維は赤色に染まり、筋線維は黄色に染色される。</li>
	<li>スライド全体で癌細胞を探す:癌細胞は黄色12に染色されています。</li>
	<li>癌細胞と弾性ラミナとの位置関係を決定する。 注: ここでは 2 つの状況があります。スライド全体の弾性ラミナを越えて侵入した腫瘍細胞が1つある限り、この症例は弾性ラミナ侵襲と考えることができる。一方、スライド全体において弾性ラミナを越えて侵入した腫瘍細胞がない場合にのみ、この場合は弾性ラミナ非侵入と考えることができる。</li>
</ol>

<ol><li>Jiang, C. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinicopathologic+characteristics+and+prognosis+of+gastric+cancer+invading+the+subserosa%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Surgical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Clinicopathologic characteristics and prognosis of gastric cancer invading the subserosa.</a> Journal of Surgical Oncology. 102 (7), 737-741 (2010).</li>
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</ol>

著者は何も開示していない。

ここで提案されるこの方法は、皮下弾性ラミナを同定するための正確なアプローチを提供する。この方法は、腫瘍細胞がpT3N0M0胃癌12において弾性ラミナに侵入したかどうかを評価するために使用することができる。弾性ラミナは、コラーゲン繊維と容易に区別できないH&E染色部で赤みを帯びており、細胞学や免疫組織化学などの既存の補助診断方法も、限られた診断値を発揮した。心膜灌漑液中の腫瘍細胞の所見は、必ずしも原発性腫瘍の血清侵来の存在を示すものではなく、これはリンパ節転移または他の遠隔転移に起因する可能性がある5。中皮細胞は線維性炎症によって破壊される可能性が高いため、免疫組織化学の診断は実現不可能であり、作業負荷は比較的大きい6.しかしながら、古典的な、特別な染色方法としての弾性染色は、弾性ラミナをはっきりと見えるようにすることができます11,12,<sup class...

腫瘍、ノード、および転移(TNM)癌ステージングシステムに起因して、病理学期pT4における胃癌の予後はpT3(第8UICC/AJCC)1よりも有意に悪化している。胃癌では、原発性腫瘍(pT)の分類は、通常、腫瘍侵来2の深さに依存する。病理学的段階pT3胃癌は、筋肉のプロプリアを介して皮下組織に侵入する癌として定義され、一方、pT4胃癌は、内臓頭膜の表面に浸透する癌として定義される。両座面侵襲性の存在は、2つの段階2を区別するための鍵である。しかし、間膜中皮細胞層は非常に薄いため、手術、術後治療、および固定3の間に損傷を受ける可能性がある。さらに、腫瘍関連の炎症性変化および線維症は、両腸骨の正常な解剖学を損傷する可能性があり、H&E染色4のみを用いて腸膜表面の侵来を正確に判断することは非常に困難である。細胞学や免疫組織化学などの現在の補助診断方法は、偽陽性であるか、または低い費用対効果を有するため、限られた診断値5、6である。
血清膜は、胸膜、胸膜、および心膜を含み、中皮、基板膜、および中皮下層7から構成される。血清膜の一般的な組織学的特徴の1つは、中皮細胞8,9に隣接する中皮層中皮中層における弾性層の存在である。弾性ラミナは強い抗損傷能力を有し、中皮細胞が重度の腫瘍関連炎症または線維症3によって破壊された場合、代替予後マーカーとして役立つことができる。弾性ラミナは、主にエラスチンおよびマイクロフィブリル10からなり、弾性染色によって可視化することができる。弾性染色の使用の主な理由は、エラスチンがエラスチン溶液中のレソルシノールのフェノール群と水素結合を形成し、弾性繊維が青黒色に染色されることである。ヴァン・ギーソン(VG)対比染色後、コラーゲン繊維は赤色および筋線維および赤血球を染色することができ、黄色8、11、12、13を染色することができる。
肺癌のTNMステージングの第8版は、内膜胸膜侵開(T2)を弾性ラミナを越えた腫瘍の侵入または内臓胸膜2の表面への侵入として定義する。大腸癌に関する研究は、pT3大腸癌における弾性ラミナ侵食が予後不良の原因である可能性があることを示している。大腸癌の5年間の無病および全体的な生存率はまたpT4a13、14、15のようなものであることが証明されている。弾性染色に関する我々の以前の研究に基づいて、弾性ラミナ侵食はpT3胃癌の予後に有意な悪影響を及ぼすことが判明しており、pT4a胃癌12と同様に治療されるべきである。したがって、このシンプルで費用対効果の高い方法は、H&E染色によって得られた結果の不確実性を排除し、細胞学や免疫組織化学を含む他の補助的な診断方法に関連する他の一般的な制限を排除するのに役立ちます。他。この方法は、特にいくつかのあいまいな場合に、消化管癌の根膜表面の侵入を診断するために効率的に使用することができる。H&Eの汚れやその他の汚れが、通常、このような侵入を識別することが困難にするので便利です。この方法はまた、特に弾性繊維に対して非常に選択的であるため、結果の信頼性を保証する。ここでは、pT3N0M0胃癌12において腫瘍細胞が弾性ラミナに侵入したかどうかを判定するために弾性染色を行う。
この方法は、ホルマリン固定、パラフィン埋め込みセクション上の組織内の弾性繊維を識別するために使用され、同様に凍結セクションに使用することができます。ここでは、細胞および組織形態の最高の維持のためのパラフィン埋め込みセクションを選択します。このプロトコルのすべてのステップは室温で行われます。過マンガン酸カリウム溶液、シュウ酸溶液、エラスチン溶液、およびヴァンギーソンの溶液を含む市販の染色キットを提示された研究で使用する。

<table><tbody><tr><td>Elastin-Van Gieson 染色キット</td><td>Baso</td><td>BA4083B</td><td>弾性繊維、コラーゲン繊維、筋繊維の染色に使用&nbsp;</td></tr><tr><td>Permount TM 封入剤</td><td>MXB Biotechnologies</td><td>DAB-0033</td><td>エ</td></tr><tr><td>タノール</td><td>LMAI Bioの</td>埋込に使用&nbsp;<td>LM64-17-5&nbsp;</td><td>100パーセント</td></tr><tr><td>キシレン</td><td>LMAIバイオ&nbsp;</td><td></td><td></td>LX820585</tr></tbody></table>

pt3n0m0胃癌組織のパラフィン埋め込みスライド上の弾性染色

Elastic Staining on Paraffin-embedded Slides of pT3N0M0 Gastric Cancer Tissue

通常、下中皮層に位置する弾性層は、中皮細胞に隣接し、ヘマトキシリンおよびエオシン(H&E)染色に対して両生性であるが、弾性染色を通じて可視化することができる。弾性染色の重要な利点の1つは、腫瘍細胞が弾性ラミナを越えて侵入したかどうかを容易に判断できることです。これは、腸内炎上の侵襲の程度を調べるのに役立ち、それによって消化管癌におけるpT3およびpT4段階を区別する。本研究では、ホルマリン固定パラフィン埋め込みpT3N0M0胃癌組織部における弾性繊維を同定するプロトコルを提示する。スライドに固定された5μmパラフィンセクションを準備し、すべてのスライドが染色手順中に脱パラフィン化および水分補給されます。その後、すべてのセクションは過マンガン酸カリウムによって酸化され、シュウ酸によって漂白され、弾性染色によって染色され、ヴァン・ギーソンによって逆染色される。最後に、染色の効果を調べます。弾性ラミナは青黒色に染まり、コラーゲン繊維は赤色に染まり、癌細胞は黄色の様々な色合いで染色されます。また、癌細胞と弾性ラミナとの位置関係を決定するために用いられる方法についても詳しく述べる。この方法は、弾性繊維と本物の結果のための優れた選択性のために、消化管癌における腹膜表面の侵入の同定に、シンプルで低コストで広く適用可能です。

弾性染色に成功すると、pT3胃癌の弾性ラミナおよび癌細胞が明らかに明らかになっています。図1 -低電力場、エラスチン溶液染色後に顕微鏡的にチェック、前述のプロトコルに従ってヴァン・ギーソンのカウンターステインの前に-弾性層がセロサル中皮細胞に近く、青色黒色に染色されているフィラメントの形態であり、腫瘍細胞と弾性ラミナとの間に一定の距離が残っている。図2は、弾性ラミナが青黒色に染色され、コラーゲン繊維が赤色に染色され、筋線維および癌細胞が黄色に染色されるヴァン・ギーソンのカウンターステインを用いた典型的な弾性染色である。弾性ラミナ侵像は弾性ラミナを貫通する癌細胞(図2B)と考えることができるが、弾性ラミナ非侵入は弾性ラミナに近いが侵入しない癌細胞と考えることができる(図2)。 </stro...

ここでは、ホルマリン固定、パラフィン埋め込みセクション上のpT3N0M0胃癌組織における弾性繊維を同定するための弾性染色のプロトコルを提示する。続いて、腫瘍細胞が弾性ラミナを越えて侵入するかどうかを決定する方法について説明する。

pT3N0M0胃癌組織のパラフィン埋め込みスライド上の弾性染色

The elastic lamina, which is usually located in the sub-mesothelial layer, adjacent to the peritoneum mesothelial cells, is amphiphilic on hematoxylin and ...

この方法は、pT3胃癌において、腫瘍細胞が弾性薄層を超えて侵入したかどうかを判断するのに役立つ。pT3胃癌の予後画像における弾性薄層浸食。この技術の主な利点は、弾力性のある層を識別するための便利で正確なアプローチであり、病理学者が腫瘍細胞がpT3胃癌の弾性層層を超えて侵入するかどうかを評価する精度が高いということです。この技術は、肺癌および癌の病理学的検査段階診断に向けて可能である。この方法は、肺癌および直腸癌のTNM段階システムにも適用することができる。まず、スライドをコプリン瓶に10分間浸します。この瓶からスライドを取り出し、別のコプリン瓶に新鮮なキシレンに10分間浸します。スライドを5分間100%エタノールに浸し、さらに5分間新鮮な100%エタノールに移します。次に、95%エタノールにスライドを2分間浸します。70%エタノールを含む瓶にスライドを2分間移します。この後、新しいコプリン瓶に蒸留水でスライドを短時間すすいでください。まず、ティッシュペーパーを使用して、スライドまたは組織の周りの余分な溶液を拭き取ります。室温と湿度に合致する条件でスライドを配置します。各スライドに過マンガン酸カリウムを数滴加え、酸化し、追加されたボリュームが各スライドの組織セクションを覆うのに十分であることを確認します。5分後、酸化したスライドをコプリン瓶の蒸留水ですすいで、すすを2〜3回繰り返し、それぞれのすすいに新しい水瓶を使用します。組織は、観察可能な茶色を持っている必要があります。さて、各スライドにシュウ酸を数滴加え、漂白し、追加されたボリュームが各スライドの組織セクションを覆うのに十分であることを確認します。5分後、漂白したスライドを蒸留水ですすい、すすを2〜3回繰り返し、それぞれのすすめに新しい水瓶を使用します。スライドを95%アルコールで短時間洗います。洗浄したスライドをエラスチン溶液に8~24時間浸漬します。その後、スライドを95%エタノールに直接浸し、各組織セクションをうまく区別します。蒸留水でスライドを完全にすすい。青黒の弾性繊維の染色と灰色の背景がないか、顕微鏡的に確認してください。バンギーソン溶液のスライドに1分間対抗し、使用するボリュームが各スライドの組織セクションを完全に覆うのに十分であることを確認します。次に、95%エタノールを数秒間組織スライスに急速にドロップし、各組織セクションを良好に区別します。まず、スライドを95%アルコールに5分間浸して、素早く脱水します。脱水を続けるには、スライドを100%アルコールに5分間移します。その後、スライドを新鮮な100%アルコールにさらに5分間移します。3分間続く各浸漬とキシレンの2つの異なる変更にスライドを浸します。その後、スライドに樹脂製の取り付け媒体を1滴加え、カバースリップを上に置きます。顕微鏡を使

elastic-staining-on-paraffin-embedded-slides-pt3n0m0-gastric-cancer

Research

JoVE Journal

Cancer Research

がん研究

PMS2及び/または全体の陰窩におけるERCC1の減少/不在の式はおそらく結腸腺癌、高い可変性​​と癌への進行による視野欠損の基礎の各辺が10 cm以内頻繁にイベントです。...

大腸癌への進行中に視野欠損欠損PMS2、ERCC1、Ku86、CcOI

このビデオでは、消化管腫瘍組織から得られた切片の弾性染色を実演します。この染色手順により、細い弾性線維の可視化が可能になり、弾性ラミナを超えた腫瘍細胞の浸潤を特定するのに役立ちます。...

スライド切片の弾性繊維染色:胃がん転移の観察技術

バレット食道の分子ドライバーを改良し、情報のための識別可能な必要性がある。免疫蛍光染色は、細胞形態学上の細胞シグナル伝達の効果を理解するために有用な技術である。私たちは、バレット食道細胞において治療上の処置を評価するための免疫蛍光染色を使用するためのシンプルで効果的なプロトコルを提示する。...

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ここでは、消化管癌におけるDNAメチル化のゲノム全体解析の手順について説明する。この手順は、遺伝子のメチル化パターンと胃腸癌の発がんに寄与する因子との関係を調査する研究と関連するものである。...

消化器癌におけるDNAメチル化のゲノムワイド解析

このプロトコルは、可能な限り簡単かつ最小限の侵襲性を実現するために、センチネルリンパ節の同定と切除を記述する。...

腹腔鏡検査を用いた早期子宮内膜癌のセンチネルリンパ節マッピングと生検

がん免疫療法の時代、腫瘍微小環境ダイナミクスの解明への関心が飛躍的に高まっています。このプロトコルは、その染色およびイメージングステップに関して質量分析イメージング技術を詳述し、高度に多重化された空間分析を可能にする。...

ホルマリン固定およびパラフィン包埋組織サンプルの質量分析イメージングを用いた腫瘍微小環境の理解を広げる

この実験プロトコルは、主にシングルチャネル抗体のインキュベーション条件を最適化し、抗体とチャネルの設定を調整して、臨床起源の肺癌組織における自家蛍光およびチャネルクロストークの問題を解決することにより、マルチプレックス免疫組織化学(IHC)染色法を説明および最適化します。...

パラフィン包埋肺癌組織のマルチプレックス免疫組織化学染色

このプロトコルは、元々マウス腸向けに開発された「スイスロール」技術を改良した全胃免疫染色法を示しています。...

修正スイスロール技術を用いたマウス胃筋層の空間マッピング強化

このプロトコルは、 ショウジョウバエの眼/触角成虫（EAD）に蛍光マークされ、遺伝的に定義されたクローンの腫瘍を生成する方法を示します。なお、第3齢幼虫とどのように遺伝子発現の変化と腫瘍侵襲性を可視化し、定量化するためにそれらを処理するからEADと脳を分析する方法について説明します。...

ザ<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;成虫盤腫瘍モデル：遺伝的モザイクを用いた遺伝子発現と腫瘍侵襲性の可視化と定量化

多パラメータ蛍光免疫組織化学を用いて、腫瘍微小環境における免疫細胞集団の数、相対分布、および局在を評価することができる。この文献は、口腔咽頭癌におけるT細胞亜集団を分析するためのこの技術の使用を記載している。...

ホルマリン固定パラフィン包埋ヒト卵黄扁平上皮癌試料におけるT細胞亜集団の四色蛍光免疫組織化学

学ぶ、pT3N0M0胃癌組織のパラフィン包埋スライドにおける弾性染色法。弾性板を識別し、腫瘍細胞の浸潤を正確に評価する病理診断技術です。肺がんや大腸がんへの応用も可能です。

pT3N0M0胃癌組織のパラフィン埋め込みスライド上の弾性染色

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