Name: 哺乳類細胞における効率を再封止膜の高スループット測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 7 s
Description: 学ぶ高スループット蛍光アッセイによる哺乳類細胞の細胞膜再封止効率測定法。HeLa細胞を用いて損傷細胞の生存に不可欠な膜修復メカニズムを定量化し、創薬スクリーニングや治療標的発見に貢献します。

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我々 は、私たちはいくつかの予備的な実験のため彼のマルチモード検出プラットフォームを使用する許可していただいた博士ジェシー Kwiek (オハイオ州立大学) を認めます。この記事で報告された研究は、国立研究所のアレルギーとステファニー Seveau を受賞番号 RO1AI107250 の下で健康の国民の協会の感染症によって支持されました。内容は著者の責任と国立衛生研究所の公式見解を必ずしも表さない。

1. 準備
<ol><li>電池めっき 注: ひと子宮頸の上皮細胞、hela 細胞、hela 細胞のヒストン 2B GFP (H2B GFP) を表現するがこのプロトコルで使用されていたが、この試金は他の哺乳類細胞19に合わせることができます。<ol>
<li>0.25% トリプシン-EDTA の 2 mL で細胞を洗浄することにより付着性のセル 75 cm2細胞培養用フラスコからをデタッチします。新鮮なトリプシン-EDTA 0.25 %2 mL に使用されるトリプシンを置き換えます。</li>
		<li>セルが丸みを帯びた、フラスコから切り離されるまでは、5 分の 37 ° C でセルを孵化させなさい。</li>
		<li>8 mL の培 (10% 熱不活化牛胎児血清、100 U/mL ペニシリンおよび 100 μ g/mL ストレプトマイシンを含む DMEM) に細胞を再懸濁します。</li>
		<li>診断および細胞懸濁液の 10 μ L を使用してセルの濃度を決定します。</li>
		<li>2.55セル/mL の 10 倍濃度の培地に細胞を希釈します。</li>
		<li>滅菌ピペット盆地に細胞懸濁液を注ぐし、10 mL の血清ピペットを使用して懸濁液を徹底的にミックスします。</li>
		<li>12 マルチ チャンネル ピペットと 200 μ L のヒントを使用すると、96 ウェル フラット、明確な底、黒ポリスチレン培養処理板で 3 通 (または 4 連) の HeLa 細胞 (104セル/100 μ L/ウェル x 2.5) を配布します。 注: めっきの配置は、図 1の例として提示されます。</li>
		<li>37 ° C、5% CO2で加湿細胞文化のインキュベーターで 24 時間培養します。</li>
	</ol></li>
	<li>貯蔵液の準備
	<ol>
<li>ハンクス平衡塩類溶液, MgCl2 (5 mM) の 0.476 g 95 g を追加することによってバッファー M (M1 と M2 を準備するために使用) の 10 x の在庫の 1 L の準備と水 900 mL に HEPES (100 mM) の 23.83 g。PH 7.4 に調整し、1 l. フィルター滅菌にボリュームを上げます。</li>
		<li>11.26 g d-(+) を追加することによってグルコース (1.25 M) 在庫 x 50 の 50 mL を準備-血糖値が 50 mL の水の合計。フィルター滅菌ソリューションです。</li>
		<li>0.666 CaCl2 g を 50 mL の水の合計に追加することによってカルシウムの (120 mM) 在庫 × 100 の 50 mL を準備します。フィルター滅菌ソリューションです。</li>
		<li>エチレング リコール-bis(2-aminoethylether)-N, N, N の在庫を (50 mM) x 10 の 50 mL を準備 '、N'、グリコールエーテルジアミン四酢酸の 0.951 g を水 40 mL に追加することによって四酢酸 (グリコールエーテルジアミン四酢酸)。8、グリコールエーテルジアミン四酢酸を分解する NaOH を使用して pH を増加し、50 mL にボリュームを上げます。フィルター滅菌ソリューションです。</li>
		<li>単一の 96 ウェル プレート、中 1 の 50 mL を準備 (M1、含んでいる Ca2 +)、中 2 の 50 mL (M2、Ca2 +-無料)、それに応じて、グリコールエーテルジアミン四酢酸を添加した培地 2 の 15 ml:<ol>
<li>M1 の 43.5 mL の水に 5 mL のバッファー M、100 x CaCl2, 0.5 mL と 50 x グルコースの 1 mL x 10 を追加します。</li>
			<li>M2、44 mL の水に 5 mL バッファー M x 10 と 50 倍のブドウ糖の 1 mL を追加します。</li>
			<li>M2/グリコールエーテルジアミン四酢酸、追加 10 バッファー M x と 10 の 1.5 mL の 1.5 mL 12 mL の水を x EGTA。 注: propidium ヨウ化 (PI) を含むすべてのソリューションは、直接のセルを追加する前に準備されるべき。</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>プレート リーダー/イメージングの Cytometer 設定 メモ: 検出の 2 台搭載マルチモード プレート リーダーを使用して: 蛍光とイメージングの cytometer。退色、蛍光物質を避けるために蛍光露出を制限します。<ol>
<li>事前分析を実行する前に 37 ° c プレート リーダーを暖かきます。</li>
		<li>したがって運動の試金のためのパラメーターを設定設定モード内。<ol>
<li>光学構成の単色光分光器、 FL (蛍光)、および運動をします、読み取りモード、およびそれぞれの種類を読みます。</li>
			<li>波長の設定] の下で、9 と 15 nm 励起と放射バンドパスをそれぞれ選択します。試金による (PI)、535 と 617 nm それぞれ励起と放射の波長を設定します。</li>
			<li>[板タイプ] プレート形式と黒壁明確な底板に対応する事前設定板構成の96 ウェルを選択します。</li>
			<li>読み取りエリアの下には、運動を通して分析する井戸を強調表示します。</li>
			<li>[光電子増倍管、光学、プリセット6の読み取りあたり点滅し下から読み取りのチェック ボックスをオン。</li>
			<li>「タイミング、 00:30:00 30 分運動の試金ための実行時間の合計ボックスでし間隔の00:05:00を挿入します。 注: たびに、ポイントし、1 つの波長完全 96 ウェル プレートの読書時間は 30 秒。</li>
			<li>右側に設定情報で指定した設定を確認し、 [ok]を選択します。運動を開始するプレス読み取りを実行します。</li>
		</ol>
</li>
		<li>撮像パラメーターを適宜設定設定モード内。<ol>
<li>光学構成のMinimax、イメージング、およびエンドポイントを選択、読み取りモード、およびそれぞれの種類を読みます。</li>
			<li>波長、下ボックスをオン透過光を、いずれかまたは両方、蛍光 456/541 の励起・発光波長に対応する nm (GFP) と 625/713 nm (PI)。</li>
			<li>1.3.2.3 と 1.3.2.4 の手順で定義されているプレート型読み取りエリアの同じオプションを使用します。</li>
			<li>圏域の設定も、[イメージを作成するも内のサイトの数を選択します。 注: 12 のサイトは、完全によく画像に対応します。</li>
			<li>[画像集録設定、透過光、541 (GFP) と 713 (PI) の露光時間を選択します。GFP の 20 ms/画像の露光時間でも全体をイメージします。送信される光 (TL) と PI 蛍光 8 ~ 20 ms の露光時間で各ウェルの中心の単一のイメージをそれぞれ取得します。</li>
			<li>右側の設定情報で指定した設定を確認し、 [ok]を選択します。96 ウェル プレートの各ウェル (12 画像/井戸) の表面全体を撮像と一つの波長の同期捕捉時間は 〜 15 分押して読み取りイメージングを開始します。 注: 96 ウェル プレートの単一のイメージ/井戸の取得時間は 1 つの波長の ~2.5 分/プレートを必要があります。上記のパラメーターは、当研究室では、特定の機器に対応します。カルバゾール測定: 1.0 nm 増分励起波長 (250 850 nm) 調整可能な 9 や 15 nm のバンドパスを表示するキセノン フラッシュ ランプ、光電子増倍管検出器 &gt; 6 ログ ダイナミック レンジと調節可能な 15 または 25 nm の発光帯域通過。イメージングの cytometer: 白色光、460 のことができる、照明光源 nm と 20 nm のバンドパス、541 を中心とした排ガス浄化で 625 nm 励起波長 nm (108 nm バンドパス) と 713 nm (123 nm バンドパス)、それぞれ、4 X 目的が 1.25 に結合し、メガピクセルカメラ 12 ビット電荷結合素子。</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>2. アッセイ
注: 試金の時に、細胞は 70-90% の合流をする必要があります。洗浄手順の間に媒体をから削除され、よく (直接ではなく上記のセル) の側壁に適用する必要があります。3.1.5 のステップまでその凝集を予防する &lt; 4 ° C で LLO の温度を維持します。
<ol><li>30 μ M PI M1 の在庫を準備し、M2 の 30 μ M PI の在庫で 37 ° C に加温します。</li>
	<li>プレート 12 マルチ チャンネル ピペットと 200 μ L ヒントを次のように使用して 1 のセルは水洗いしています。<ol>
<li>修理許容条件の 37 ° C に加温 200 μ L/ウェル M1 で 2 回細胞成長培地と洗浄を削除します。培地を 100 μ L/ウェル暖かい M1 の 30 μ M PI を含むに置き換えます。</li>
		<li>制限条件を修復、成長培地を取り除き、5 mM グリコールエーテルジアミン四酢酸キレート Ca2 +、200 μ L/ウェル M2 と 1 洗浄の順を含む 200 μ L/ウェル暖かい M2 と一度セルを洗浄します。100 μ L/ウェル暖かい M2 30 μ M PI を含む媒体を交換してください。</li>
		<li>成長媒体の洗浄および propidium ヨウ化物を含有する培地に置き換え後は、直接 2.1.3 をステップに移動します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>画像板 1 透過光、GFP と PI の下 1.3.3 (事前運動) の下のとおりです。この手順は、15-20 分かかります。</li>
	<li>2.1.3 の手順で 15 分間プレート 12 マルチ チャンネル ピペットと 200 μ L ヒントを次のように使用して 2 の準備します。<ol>
<li>氷の上の 96 ウェル丸底ポリプロピレン マイクロ プレートを配置します。1 (図 1) をプレートに対応する、実験的なデザインを使用してプレートを構成します。</li>
		<li>修理許容条件追加 100 μ L/ウェル冷たい M1 の 60 μ M 100 の添加に続いて、PI を含む μ L/ウェル冷たい M1 の 4 LLO x かコントロールが含まれています。</li>
		<li>修理制限条件追加 100 μ L/ウェル冷たい M2 の 60 μ M 100 の添加に続いて、PI を含む冷たい m 2 含む 4 LLO x またはコントロールのための μ L/ウェル。</li>
	</ol>
</li>
	<li>イメージング プレート 1 (2.1.3 ステップ)、すぐに後氷との直接接触からプレートを分離するアルミ箔を使って氷の上に配置します。プレート 1 5 分間クールダウンを許可します。</li>
	<li>12 マルチ チャンネル ピペットと 200 μ L のヒントを使用して、対応する井戸に板 1、2 (ステップ 2.1.4) プレートに各ウェルから 100 μ L を転送します。プレート 1 のメディアで毒素を正しく配布するには、メニスカスの下のヒントを挿入し、軽く気泡を導入することがなく、ボリュームを取り出します。 注: はない上下、ピペットのセルを切断可能性があります誤ってこれとして。</li>
	<li>セルにバインドし、すぐに板 1 を蛍光モード (ステップ 1.3.2) を使用して、測定用のプレート リーダーに転送する毒素を許可するようにさらに 1 分間プレートを残します。</li>
	<li>運動アッセイの終わりには、1.3.3 をステップすぐにプレート 1 (運動後) を用いた画像。</li>
</ol>3. 解析: セル列挙
<ol><li>核蛍光マイクロ プレート セル列挙ソフトウェアを使用してに基づく細胞数を決定します。<ol>
<li>設定内で再分析を選択し、画像分析の設定の [カテゴリ] セクションの下で控えめなオブジェクト解析波長として541を使用してオブジェクトを検索するを選択します。</li>
		<li>画像上に描画を方法を見つけることを使用してオブジェクトを検索し、オプションで [設定] タブで、核を選択し、適用を押します。</li>
		<li>[Ok] 、読み取りカウント アルゴリズムはセルを起動するを押します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>また、このようなツールがない場合は、細胞を列挙する ImageJ など画像解析ソフトを使用します。<ol>
<li>ImageJ でスタックとして画像ファイルを開きます。</li>
		<li>メニュー バーでは、種類覆いかぶさるのイメージをクリックしてスタックを 8 ビットのグレースケール画像に変換し、 8 ビットを選択します。</li>
		<li>背景を減算: メニュー バーのクリック画像調整、ホバーし、明るさ・ コントラストを選択します。バック グラウンド ノイズを削除し、選択適用する最小値を調整します。</li>
		<li>バイナリ画像を作成するしきい値: メニュー バーのクリック画像調整、ホバーし、しきい値を選択します。暗い背景、最小値と最大しきい値を調整し、適用をクリックします。</li>
		<li>核をオーバラップ セグメント核へ流域のツールを使用できます。メニュー上でバイナリのプロセスをクリックし、流域を選択します。 注: これは自動的に接続された核が分離されます。</li>
		<li>(サイズと真円度) 核の同定を絞り込むし、細胞の残骸を除外するユーザー指定の基準を適用することによってマスクされたイメージを分析します。<ol>
<li>メニューとし、分析粒子分析をクリックします。目的のサイズを設定 (ピクセル ^2)、(1 の値は完全な円) 真円度の範囲を個々 の細胞核を含めるだけで十分です。</li>
			<li>表示」ドロップ ダウン ボックスで必要なオプションを選択し、集計の方法、 OKセル数を得ることをクリックします。</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 解析: 運動曲線
<ol><li>プレート リーダー ソフトウェアから速度論的データを分析データ ソフトウェアに転送します。</li>
	<li>各条件では, 対応する標準偏差と実験条件ごとに平均の標準誤差、各 timepoint で複製の蛍光強度の平均値します。</li>
	<li>実験条件ごとに対応する運動曲線をトレース: PI 強度 (y 軸) と時間 (x 軸) です。</li>
	<li>与えられた治療条件の resealing の効率を計算するには、(AUC) 曲線の下の領域を計算の + M1 の LLO (AUC(M1)) と + M2 の LLO (AUC(M2))。再シールの効率 (E) を評価するために以下に示す方法を使用します。 <img alt="Equation" src="/files/ftp_upload/58351/58351eq1v2.jpg">
</li>
	<li>以下に示す効率比 (REff) を決定することによりコントロールとテスト治療の比較を実行します。 <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/58351/58351eq2.jpg"> REFF = 1、テスト治療は修復に影響を与えません REFF &lt; 1、テスト治療の修復を阻害します。 REFF &gt; 1、テスト治療改善修理</li>
	<li>次の方程式を使用して曲線の下の領域を計算します。 <img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/58351/58351eq3.jpg">、k はフォロー アップの合計数。</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

この試金は高スループット容量を持つセルの人口レベルで再封止膜の効率を測定します。使用できる細胞成分や細胞膜修復に影響を与える薬物ライブラリの画面に。説明アッセイは 96-well 版のフォーマットを使用、高いスループット 384 ウェル プレートに合わせることができます。このアッセイの利点は、過剰な細胞など細胞の剥離、固定、または蛍光標識後固定処理を必要とせずリアルタイムで付着性細胞の蛍光測定が得られることです。マルチモード プレート リーダー、このプロトコルで使用されるなど 30 ほどの間隔で急速なカルバゾール測定のため十分な感度がある秒 96 ウェル プレートで。蛍光画像の取得は、セルの列挙、最終的な変化を細胞の形態との異なる細胞集団の潜在的な同定などの追加情報を提供します。現在のアッセイの単一セルのレベルで再封止膜動態を確立しないが実験条件 (薬理学的化合物または細胞コンポーネント) に影響する、肯定的または否定的に、プロセスを識別します。セルの人口レベルで膜を再シールします。
いくつかの他の実験的アプローチは、メカニズムを再封止膜を評価するために開発されています。たとえば、...

哺乳類細胞膜の完全性の損失で、その結果機械、浸透、および生化学的ストレス予告があります。迅速かつ効率的な再封止、なし損傷した細胞プログラムまたは壊死死にすぐに屈する。プロセスを再封止膜を理解する努力は、1960 年代以降、その機能障害に関連付けられている壊滅的な結果によってが動機になっています。確かに、ベイジュ症候群、糖尿病、肢帯型筋ジストロフィーなどの病気は、突然変異遺伝子符号化ジスフェリン、高度の glycation の最終製品の生産や欠陥による欠損細胞膜修復にリンクされています。ライソゾーム人身売買レギュレータ CHS1、それぞれ1,2,3,4,5,6。しかし、まで、膜の私達の理解を再シールはまだ限られた7です。初期の研究は、細胞外 Ca2 +膜破損した8,9,10までの流入によって膜を再シールを開始することを示しています。その後、いくつか非相互に排他的な Ca2 +の細胞を再シールするのに依存のメカニズムが提案されています。パッチの仮説は、傷口に近接、細胞内小胞がお互いとパッチ11,12,13,14として破損した細胞膜融合を提案します。2 番目のモデルは、カルシウム依存性の開口放出を提案する傷をリソソームのサイト リリース ライソゾーム酵素酸性スフィンゴミエリナーゼは、スフィンゴミエリンをセラミド細胞膜の外側のリーフレットに変換します。脂質組成の変化は、損傷領域15,16,17のセラミド駆動エンドサイトーシスの結果します。最後に、3 つめの提案されたメカニズムには、エンドソーム並べ替えを複雑なトランスポート (ESCRT) 膜18から発芽する外向きの小胞の形成を促進するために必要な役割が含まれます。蛋白質の限定セットのみがこれらのモデルで識別され、その機械をさらに解明する必要があります。
ここ付着性哺乳類細胞における効率を再封止膜が損傷を受けた措置を介する遺伝子組換えリステリオリジン O (LLO)19高スループット試金を記述します。LLO リステリア菌20,21,22通性細胞内病原体によって分泌される孔形成毒素 (PFT) を MACPF/CDC に属する (膜の攻撃の複合体、パーフォリンとコレステロール依存性 cytolysin) スーパーファミリー。MACPF は、哺乳類の気孔形成グラム陽性の病原体の病原性ライフ スタイル23を促進するために宿主細胞に損傷を与えるプロデュース CDCs 主に細菌毒素に対し免疫防御に関与するタンパク質。CDCs は水溶性モノマーとして合成される化や細胞膜に存在コレステロールに結合する二量体まで 50 サブユニットの孔形成前の複合体に oligomerize複雑な prepore は、直径24,25,,262730-50 nm にわたる β バレル型細孔を形成脂質全体の β ストランドを挿入するのには、再配置します。 これらの大きな毛穴がセルのうちイオンと小型携帯電話部品のフラックスを許可します。しかし、いくつかの研究は、小さいサイズの細孔が形成された28,29,30も提案しています。CDCs、間 LLO ハイスループット解析31,32を助長している不可逆的な pH と温度依存性の集計を含む固有のプロパティが表示されます。LLO は 4 ° C、孔複合体の形成ではなく、細胞への結合に許容温度で細胞培養液に追加できます。ポア形成の開始は、細孔生成に関与するフォーム オリゴマーに膜面での毒素分子の効率的な拡散と構造改造を許可する、37 ° C に温度を上げることによって、同期できます。したがって、細胞の損傷の運動、温度スイッチ、次は、細胞膜にバインド毒素の量に依存します。重要なは、水溶性 LLO (細胞膜にはバインドされていない) 迅速かつ不可逆的集約温度 37 ° C、非連結の毒素分子を離れて洗浄する必要性を軽減し、時間をかけて膜損傷の程度を制限に達したとき。最後に、LLO コレステロール バインド コレステロール豊富な膜で毛穴を形作るため、この試金は哺乳類細胞の広い範囲に従う。おいて LLO ホスト細胞の気孔の形成を介して主にシグナル伝達に影響を与えることが重要です間隙に依存しないセルのいくつかの例外を持つシグナルが発生する33,34,35,36 ,37,38,39。したがって、ことはできませんその LLO 活動は細胞膜修復のプロセスに影響を及ぼす信号を除外します。
この試金は直接セル、セル非透過性螢光色素 (例えば、ヨウ化 propidium) 受動的負傷者の細胞に入ると核酸に関連付けられると、高輝度になります定款を測定することにより負傷の程度を評価します。.したがって、螢光色素は細胞を傷つけるのリアルタイム解析をできるように、実験を通して細胞培養培地で維持できます。核酸結合色素の蛍光強度は毒素の濃度が増えるし、毒素の濃度が増加時間をかけてすべての細孔が形成され、細胞は完全に修復されか、飽和に達するまで。細胞外 Ca2 +膜の気孔を通して流入は、再封止かやりイベントです。したがって、resealing の効率が直接判明しない細胞 Ca2 +で負傷する Ca2 + (修理寛容な条件) を含む培地の負傷を比較して-無料媒体 (修理制限条件)。核酸結合色素の蛍光強度は直接各ウェルの細胞濃度に比例しているので、すべての井戸で同じ濃度でシード セルに重要です。また、細胞の剥離が発生しないこと、フローティングとして集計されるセルは、データの解釈を複雑にするかもしれない蛍光測定値を隠すことができるように試験の前後に、各ウェルの細胞を列挙することが重要です。細胞を列挙するには、ローカライズされた核ヒストン 2B GFP (H2B GFP) を発現する細胞は、この試金で使用されました。温度制御、マルチモード マイクロ プレート リーダー迅速、高スループット計測計測を組み合わせる (96 または 384 ウェル プレート フォーマットを使用して) 蛍光強度の 37 ° c. で生きている細胞の顕微鏡イメージングの後者は細胞数を列挙し、異なる細胞集団の最終的な形成を観察に使用できます。
最終的には、この試金はホスト分子のスクリーニングによって膜修復機構の複雑さの彼らの知識を拡大する機能をユーザーに提供または外追加化合物膜を制御する修理します。次のプロトコル LLO 細胞の resealing の効率を測定する実験の手順を説明し、ある薬剤または再シール効率で細胞治療の効果を評価します。

<table><tbody><tr><td>SpectraMax i3x マルチモードマイクロプレートリーダー</td><td>分子デバイス</td><td>i3x</td><td></td></tr><tr><td>MiniMax 300 イメージングサイトメーター</td><td>分子デバイス</td><td>5024062</td><td></td></tr><tr><td>TO-PRO-3</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>T3605</td><td></td></tr><tr><td>ヨウ化プロピジウム</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>P3566</td><td></td></tr><tr><td>HeLa</td><td>ATCC</td><td>CCL2</td><td></td></tr><tr><td>HeLaH2B-GFP</td><td>ミリポア</td><td>SCC117</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン-EDTA 0.25%</td><td>サーモフィッシャー サイエンティフィック</td><td>25200056</td><td></td></tr><tr><td>96 ウェル コーニング 平底黒ポリスチレン組織培養処理プレート</td><td>コーニング</td><td>3603</td><td></td></tr><tr><td>ハンクスのバランスの取れた塩</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>H4891</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>ISC BioExpress</td><td>0732-100G</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>BP310-500</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-グルコース、HybriMax</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>G5146-1KG</td><td></td></tr></tbody></table>

哺乳類細胞における効率を再封止膜の高スループット測定

High-throughput Measurement of Plasma Membrane Resealing Efficiency in Mammalian Cells

彼らの生理学的環境で哺乳類細胞はしばしば細胞膜損傷力学的および生化学的ストレスにさらされます。これらの損害に対し、複雑な分子機械は急速にそのバリア機能を回復し、細胞の生存を維持する細胞膜を再シールします。にもかかわらず、この分野の研究の 60 年間、我々 はまだ機械を再シールする細胞の完全に理解を欠いています。細胞成分の同定の目的とその制御膜を再シールまたは、再シールを改善できる薬開発した哺乳類細胞における効率を再封止膜を測定する蛍光ベースの高スループット試金マイクロ プレートで培養しました。細菌の孔形成毒素リステリオリジン O (LLO) は、大規模な 30-50 nm 径のタンパク質はコレステロールを含むの細孔を形成するのにさらされている細胞膜損傷のためのモデル システムとして膜。温度制御マルチモード マイクロ プレート リーダーは、明視野観察と細胞の蛍光顕微鏡との組み合わせで迅速・高感度カルバゾール測定に使用します。膜非透過性核酸結合の螢光によって放射される蛍光強度の速度論的解析および効率を再シールするセルの計算を可能にするセルの人口レベルで再封止膜の範囲を反映します。.蛍光顕微鏡イメージング恒常蛍光核蛋白質ヒストン 2 の b の数の潜在的な変化を考慮するマイクロ プレートの各ウェルに、キメラを表現でき、最終的な細胞の列挙が可能します。異なる細胞集団の同定。この高スループット試金は、宿主遺伝子のスクリーニングを介して膜修復メカニズムの私達の理解を拡大するまたは追加外因の強力なツールは、その制御膜を再シール化合物です。

細胞数測定精度: HeLa 細胞は膜修復機構を探索、モデル哺乳類セルラインとして頻繁に。セルの人口レベルの細胞膜修復を評価し、適切なデータ解釈のすべての井戸で同じ濃度で細胞をプレートすることが重要です。また、井戸の間で、細胞数が同等である試金の時に確認することが重要です。恒常ヒストン 2B (H2B GFP) GFP の融合を表現する HeLa 細胞は、自動的にその蛍光核の検出に基づく細胞を列挙するこのアッセイで導入されました。セル列挙体の精度を確立するには、二重のシリアル希薄 H2B GFP HeLa 細胞の 96 ウェル プレートで帳票と 4 時間培養メッキだった。この時間の長さは細胞接着のための十分な限られた細胞分裂を提供しています。透過光 (TL) の下で完全な井戸をイメージしましたし、GFP 蛍光イルミネーションと細胞数は GFP 蛍光プレート リーダーの解析ソフトウェア (図 2 aおよび2 b) を使ってに基づいて評価しました。細胞播種濃度に対してプロットした平均セ...

ここで細胞の蛍光イメージング解析による効率を再封止膜を測定する高スループット蛍光を用いた測定について述べる。この試金は、薬や哺乳類細胞における原形質膜を再シールするターゲット遺伝子をスクリーニングするために使用できます。

In their physiological environment, mammalian cells are often subjected to mechanical and biochemical stresses that result in plasma membrane damage. In ...

このアッセイは、原形質膜生物学の分野における重要な問題に対処し、損傷を受けた細胞が原形膜を再シールする方法を確立するために開発されました。この技術は、高スループット容量における血漿膜再封入の効率を測定し、特定のタンパク質および血漿膜再封を媒介する対応する経路を同定するために使用することができる。まず、増殖培地懸濁液1ミリリットル当たり2.5倍の10倍のHeLa細胞を無菌ピペット盆地に20ミリリットルを加え、10ミリリットルの血清ピペットを使用して細胞を完全に混合します。次に、マルチチャネルマイクロピペットを使用して、96ウェル平らで透明な底、黒いポリスチレン組織培養処理プレートの三重でウェルあたり100マイクロリットルの細胞を播種する。すべての実験条件間の比較には同等の細胞数が必要であるため、均質な細胞分布が実験を成功させるための鍵となる点に注意してください。加湿した細胞培養インキュベーターで摂氏37度と5%CO2で24時間後、プレートリーダーを摂氏37度にプリウォームし、光学構成をモノクロメータに、読み取りモードを蛍光色に、読み取り型をキネティックに設定します。波長設定の下で、9ナノメートル励起と15ナノメートルの発光バンドパスを選択します。ヨウ化プロピジウムを用いたアッセイの場合は、励起波長と発光波長をそれぞれ535ナノメートルと617ナノメートルに設定します。プレートタイプで、プレートフォーマットに96-ウェルを選択し、黒壁クリアボトムプレートに対応するプリセットプレート構成を選択します。読み取り領域の下で、運動アッセイ全体で分析される井戸を強調します。PMT および光学の下で、読み取りごとの点滅を 6 に事前設定し、下から読み取るボックスをチェックします。タイミングの下で、30分の運動アッセイの合計実行時間に0時間30分0秒を入力し、間隔にゼロ時間5分0秒を入力します。設定情報で指定した設定を確認し、[OK]をクリックします。次に、「読み取り」をクリックして、キネティック・ランを開始します。設定モード内でイメージングパラメータを設定するには、光学式設定のMiniMax、読み取りモードのイメージング、読み取りタイプのエンドポイントを設定します。波長の下で、透過光と、実験励起波長と発光波長に対応する適切な蛍光ボックスを選択します。プレートタイプと読み取り領域をちょうど実証したように設定し、ウェルエリア設定の下で、画像化するウェル内のサイト数を設定します。GFP の画像取得設定で、イメージあたり 20 ミリ秒の露光時間でデバイス全体をイメージするように設定します。透過光の場合、8ミリ秒の露光時間で各ウェルの中心の単一の画像を取得します。ヨウ化プロピジウムの場合、20ミリ秒の露光時間で各ウェルの中心に単一の画像を取得します。次に、設定情報の設定を確認し、[OK]をクリックして読み取り、イメージングを開始します。修復許容条件に対して高スループット蛍光ベースのアッセイを設定するには、ウェルあたり37°CM1培地の200マイクロリットルで細胞を2回洗浄し、2回目の洗浄を廃棄した後に30マイクロモルプロピジウムヨウ化物を添加した新鮮な37度のM1培地を100マイクロリットル加えます。修復制限条件の場合、ウェルあたり5ミリモルEGTAを添加した37°C M2培地の200マイクロリットルで細胞を1回洗浄し、続いて200マイクロリットルのM2培地単独で1回洗浄します。2回目の洗浄を廃棄した後、1ウェルあたり30マイクロモルプロピジウムヨウ化物を添加した新鮮な37度摂氏M2培地100マイクロリットルを加えます。次に、光、GFP、PI の下でプレートをイメージします。プレートがイメージされている間、氷の上に96ウェルラウンドボトムポリプロピレンマイクロプレートを置き、前のプレートのためにちょうど示したようにプレートを構成します。修復の許容条件については、1ウェルあたり60マイクロモルモルプロピジウムヨウ化物を添加した氷冷M1培地の100マイクロリットルを加え、その後、4XリステリアリシンOの有無にかかわらず100マイクロリットルの氷冷M1を添加する。修理制限条件の場合、1ウェルあたり60マイクロモルプロピジウムヨウ化物を添加した氷冷M2培地100マイクロリットルを加え、その後、4XリステリアリシンOの有無にかかわらず100マイクロリットルの氷冷M2を添加する。プレート1が氷上にあり、プレート2が準備されている場合、運動アッセイの開始の約5分前に氷上の適切な実験濃度でリステリアリシンOを調製することが不可欠です。最初のプレートがイメージングを終了したら、すぐに氷上のアルミ箔のシートにプレートを移します。5分後、第2プレートの各ウェルから1番目の冷却プレートの適切な対応ウェルに100マイクロリットルを移し、毒素の適切な分配のために混合することなく体積を排出する前に、各ウェルに溶液の半月板の下にピペットチップを挿入する。毒素を宿主細胞に1分間結合させ、分光フルオロメーターモードを用いて第1プレートをプレートリーダーに直ちに移して、後動態アッセイに移します。キネティックアッセイの終わりに、プレキネティックイメージングのために示されるように、プレート画像のポストキネティックイメージングを直ちに取得する。核蛍光に基づいて細胞数を決定するには、設定下のマイクロプレート細胞列挙体ソフトウェアで再分析を選択し、画像解析設定で、オブジェクトを見つけるための波長として541を使用して離散オブジェクト分析を選択します。[オブジェクトの検索] オプションで、[画像の描画] 検索方法を使用し、[核] を選択して [適用] をクリックし、[OK] をクリックして読み取り、セルカウント アルゴリズムを開始します。GFP発現は、リステリアリシンO処理の有無においてヨウ化プロピジウム強度測定を妨げない。ヨウ化プロピジウムの発現は、運動前分析と比較して、ヒラ・H2B-GFP細胞におけるヒラ・H2B-GFP細胞におけるGFP蛍光強度の増加によって証明されるように、GFP蛍光を通して出血することができる。しかし重要なのは、このクロスオーバーは、核の列挙に関与するセグメンテーションプロセスがGFP蛍光の増加の影響を受けないため、細胞数に影響を与えない。リステリアライシンOがない場合、細胞外カルシウムの存在下または存在しない限り、原形質膜の完全性は一定であり、カルシウム補充培地の存在下でのリステリアリシンO治療はヨウ化プロピジウム蛍光強度の着実な増加をもたらす。しかし、細胞外カルシウムがない場合、膜再密封の欠如を反映して、ヨウ化プロピジウム蛍光の有意に急激な増加がある。あるいは、遠赤色の蛍光を有するカルボシアニン核酸結合色素を、ヨウ化プロピジウムに置換して、GFPとのスペクトル重複を最小限に抑えることができる。さらに、遠赤色色素の励起係数が大きいほど、信号対雑音比が高くなり、修復の許容条件と修復制限条件の間の解像度が向上します。この手順を試みている間、実験の日にすべての試薬の準備をするので、実験の1日前にすべてのチューブにラベルを付けることをお勧めします。この手順に従うと、画像サイトメトリーのような他の方法は、すべての細胞を均一に損傷する細孔形成毒素を行う、または他のものよりも一部の細胞が感受性であるなどの追加の質問に答えるために行うことができる。その開発後、この技術は、感染症や原形質膜修復の分野の研究者が、異なる細胞タイプの修復効率に及ぼす孔径の影響を探求する道を開いた。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

規制エンドサイトーシスは、膜タンパク質の大部分の細胞表面発現レベルを制御します。ここでは、ドーパミントランスポーター（DAT）、ポリトープ膜​​タンパク質のエンドサイトーシス率を測定するために還元、膜非透過性ビオチン化試薬を利用する。メソッドは、ほとんどの細胞膜タンパク質のエンドサイトーシス率を測定するための直接的なアプローチを促進する。...

リバーシブルビオチン化によって原形質膜タンパク質エンドサイトーシス率を測定

このビデオは、哺乳類細胞における原形質膜の再封鎖効率を研究するためのアッセイを示しています。細胞は細菌の細孔形成毒素にさらされ、細胞膜に細孔を形成します。細胞外カルシウムイオンの存在下では、細孔がカルシウムの流入を引き起こし、膜の再封入イベントを誘発します。再封止効率は、DNA結合性ヨウ化プロピジウム色素を用いて評価されますが、これは再密封された膜がない細胞にのみ入ります。...

原形質膜の再封止効率を測定するためのin vitro蛍光ベースのアッセイ

親油性色素FM1-43に曝露された細胞のライブイメージングは​​、孔形成毒素は原形質膜から除去されることにより、反応速度の正確な決定を可能にする。これは、Ca 2 +、スフィンゴミエリナーゼおよび原形質膜の修復に関する他の要因のための要件を評価するために使用できる高感度のアッセイである。...

カルシウムの役割を評価するためのイメージングアッセイを生きる<sup&gt; 2 +</sup孔形成毒素の傷の修復&gt;とスフィンゴミエリナーゼ

プロテオリポソームは、明確に定義された生化学的環境で再構成された精製チャネルとトランスポーターを研究するために使用されます。これらのタンパク質によって媒介される排出を測定するための実験的手順が示されています。プロテオリポソームを調製し、記録を行い、再構成されたタンパク質の機能特性を定量的に決定するためのデータを分析するための手順について説明します。...

プロテオリポソー​​ムベースの流出アッセイのClの単一分子特性を決定する<sup&gt; -</sup&gt;チャネルとトランスポーター

ここでは、生細胞内の内在性膜タンパク質の配向とトポロジーを決定するためのプロトコルを提示します。このシンプルなプロトコールは、目的タンパク質とGFPとの間のキメラの選択的プロテアーゼ感受性に依存しています。...

蛍光プロテアーゼ保護を使用して膜タンパク質のトポロジの決定（FPP）

提示されたプロトコルは、細孔スパンの溶媒を含まない脂質二重層を使用した単一トランスポーターレベルでの膜タンパク質媒介輸送の分析を説明しています。これは、大量生産されたナノポアアレイチップの作成と、高度に並列化されたデータ取得および分析を組み合わせることで達成され、膜タンパク質エフェクタースクリーニングの将来の確立が可能になります。...

単一のタンパク質解像度で高並列ナノ細孔チップシステムにより分析膜輸送プロセス

2 光子レーザーを介して細胞膜が負傷した膜を再シール能力評価に広く使われている方法で、複数の細胞のタイプに適用できます。ここでは、体外でライブ イメージング dysferlinopathy 2 光子レーザー アブレーション患者細胞の膜を再シールするためのプロトコルについて述べる.

2 光子レーザー顕微鏡を用いた細胞膜修復法

ここでは、末梢関連タンパク質の蛍光タグ付きのプラズマ膜協会のレベルの定量的分析を実行するためのプロトコルを提案する.メソッドは、膜の計算の分解、細胞膜蛍光マーカーの付いた信号の細胞質成分に基づいています。...

細胞膜の末梢関連タンパク質の分割の決定

このプロトコルは、細胞環境において受容体に結合するアデニンヌクレオチドをリアルタイムで測定する方法を提示する。結合は、トリニトロフェニルヌクレオチド誘導体と非標準的な蛍光アミノ酸で標識されたタンパク質との間のフェルスター共鳴エネルギー移動(FRET)として測定されます。...

インタクトな機能的な膜タンパク質へのヌクレオチド結合をリアルタイムで測定

ここでは、蛍光脂質センサーおよびリポソームを用いて、タンパク質抽出物を用いてホスファチジルセリンまたはホスファチジルイノシトール4-リン酸...

ホスファチジルセリン/ホスファチジルイノシトール4-膜間のリン酸交換の蛍光ベースの測定

このプロトコルは、膜電位の変化を測定することによって電気発生膜タンパク質を研究するための方法を記載しています。このアッセイは、上皮細胞株で内因的に発現する複数のイオンチャネルの機能的読み出しのためのプラットフォームを提供します。...

2つの上皮細胞株における2つの内因性イオンチャネルのハイスループット機能研究のための膜電位の蛍光ベースのアッセイ(英語)

学ぶ高スループット蛍光アッセイによる哺乳類細胞の細胞膜再封止効率測定法。HeLa細胞を用いて損傷細胞の生存に不可欠な膜修復メカニズムを定量化し、創薬スクリーニングや治療標的発見に貢献します。

哺乳類細胞における効率を再封止膜の高スループット測定

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