Name: リアルタイム可視化と完全にそのままマウス軟骨外植片の機械的荷重により軟骨損傷の解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 42 s
Description: 学ぶ マウス軟骨外植片のリアルタイム可視化と機械的荷重による軟骨損傷解析手法。完全なそのままの状態で軟骨細胞傷害を評価し、変形性関節症のメカニズム解明と遺伝的要因の影響を研究する革新的プラットフォームです。

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著者は、pH メーター、osmometer の寛大な使用のため博士リチャード ・ ウォーとルイス Delgadillo を感謝したいです。さらに、著者はアンドレア ・李のメカニカル テスト システムの初期開発への貢献をありがとうたいと思います。この研究は、NIH P30 AR069655 によって賄われていた。

すべての動物の仕事は、ロチェスター大学動物資源委員会によって承認されました。
1. ソリューション
<ol><li>ハンクの平衡塩溶液を準備 (1 X HBSS) カルシウム、マグネシウムおよびないフェノールレッドを含みます。塩酸または水酸化ナトリウムの少量を追加することによって 7.4 に pH を調整します。</li>
	<li>塩化ナトリウムまたは脱イオン水を追加して 303 mOsm に浸透圧を調整します。解剖標本準備および機械試験中にバッファーを使用します。</li>
</ol>2. 大腿骨遠位部、上腕骨近位関節軟骨が完全にそのままでの解剖
<ol><li>頚部転位続いて CO2吸入チャンバーを用いた制度ガイドラインに従ってマウスを安楽死させます。全体の無菌技術に従ってください。 注: 8, 81 週の任意のひずみの古いとセックスの間マウスを使用することがあります。</li>
	<li>解剖の次の手術器具を使用: マイクロはさみ (切開を作るために使用)、標準的な解剖はさみ (骨を切削加工に使用)、# 11 メス メス刃 (切削軟部組織に使用)、眼科鑷子 (ソフトの除去に使用組織) と通常鉗子 (軟部組織と皮膚を剥離に使用)。</li>
	<li>大腿骨遠位部の解剖の以下の手順に従います。<ol>
<li>仰臥位にマウスを置きます。</li>
		<li>膝の前方部分の皮膚で (~ 5 mm) の小切開を行います。</li>
		<li>切開膝周りのすべての方法を拡張し、膝の関節と足の筋肉を公開する皮膚を引き戻します。</li>
		<li>大腿骨の近位端から始まって、遠位方向に沿ってカットするメスのブレード (#11) を使用します。大腿四頭筋腱ユニットと大腿骨の前方側のブレードを配置します。カットの方や過去の膝蓋骨を拡張し、それにより大腿四頭筋腱ユニットの取り外し、膝蓋腱の真ん中を通って切断によって終了します。</li>
		<li>大腿骨の近位端から始まって、遠位方向に沿ってカットするメスのブレード (#11) を使用します。ハムスト リング筋腱ユニットと大腿骨の後方側のブレードを配置します。カットに近づく膝継手と、メスと大腿骨の遠位顆関節面間の接触を回避する軟部組織を通って切断を開始します。過去の膝関節カットを終了します。</li>
		<li>大腿四頭筋、ハムスト リング筋、大腿骨を公開するを引き戻します。大腿骨の外側と内側の両側に余分な筋肉を切り取る。</li>
		<li>脛骨近位端の後方側にふくらはぎの筋肉を切り取って、大腿骨の後方を視覚化する脚を反転させます。</li>
		<li>膝関節周囲の余分な組織を削除することによって、大腿骨と脛骨の後面の遠位顆を公開します。</li>
		<li>大腿骨顆から切断、メスを使用して前部と後部の十字靱帯を切った。大腿骨から脛骨を引っ張るし、大腿骨から下の脚を分離するすべての靭帯をカットします。</li>
		<li>側方からの骨 (脛骨大腿関節の上 8 mm) の近位端に大腿骨を切って標準の解剖はさみを使用して。骨を切断した後拭きなさい任意の目に見える骨髄骨髄細胞から可能な汚染を避けるために骨の外側に。 注: 側面から切削骨き裂伝播のリスクが減ります。</li>
		<li>宝石商の鉗子を用いた大腿骨から周囲の軟部組織 (すなわち靭帯、余分な筋肉) を削除し、大腿骨の遠位端両方顆に軟骨を公開します。軟骨と鉗子の間の接触を避けます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>上腕骨の解剖の以下の手順に従います。<ol>
<li>仰臥位にマウスを置きます。</li>
		<li>マイクロはさみを使用して肘関節の後方には、皮膚に切開 (~ 5 mm) を行います、肘周り切開を拡張し、腕と肩の筋肉を公開する皮膚を引き戻します。</li>
		<li>上腕骨の近位端から始まって、遠位方向に沿ってカットするメスのブレード (#11) を使用します。上腕三頭筋腱ユニットと上腕骨の後方側のブレードを配置します。上腕骨の遠位端に向かってカットを拡張し、上腕三頭筋腱を介して切断して終了します。</li>
		<li>上腕骨の近位端に向かって上腕三頭筋を上腕骨頭が公開されるまで、引き戻します。</li>
		<li>関節の表面に触れることがなくメスのブレード (#11) を用いた上腕骨頭周囲結合織をカットし、体から四肢 (腕と肩) を削除します。定期的にハイドレイト HBSS と上腕骨頭の関節面。</li>
		<li>腕から解除して鉗子を使用し、上腕骨の遠位端の周りの結合組織を切断アームの後部側に尺骨の近位端に上腕骨を外します。上腕骨上の任意の余分な組織を削除します。</li>
		<li>標準的な解剖はさみを用いた上腕骨の後方に三角筋粗面を切った。</li>
	</ol>
</li>
	<li>HBSS バッファーを含む 1.5 mL 遠心チューブに切り裂かれた願書を配置します。</li>
</ol>3. ライブ (カルセイン AM)/死者 (Propidium ヨウ化) のプロトコルを汚す
<ol><li>次のようにカルセイン AM を使用して染色。<ol>
<li>カルセイン AM、4 mg/mL (4.02 mM) のストック濃度が濃くの 50 μ g のバイアルにジメチルスルホキシド (DMSO) の 12.5 μ L を追加することによってカルセイン AM の原液を作る。</li>
		<li>カルシウム分の 10 μ G/ml (:10.05 μ M) の濃度に到達する HBSS でストック カルセイン ソリューション 1: 400 を希釈 (HBSS の 500 μ L に原液の 1.25 の μ L を追加するなど)。</li>
		<li>5 希釈した染色溶液を遠心管の壁に固執する可能性があります時折、染料のすべてのバッファーとミックスを確保するため 2,000 x g で s。上清を削除しないでください。渦適切な混合を確実に解決します。</li>
		<li>解剖標本を含む 500 μ L の希釈した染色溶液 1.5 mL 遠心チューブに入れます。800 rpm で攪拌しながら、thermomixer で 30 分の 37 ° C で供試体を孵化させなさい。チューブは、光への暴露から保護するためにアルミ箔で覆われていることを確認します。</li>
		<li>試料をカルセイン AM 無料 HBSS バッファーに転送します。この時点で、供試体は機械試験の準備ができて。</li>
	</ol>
</li>
	<li>Propidium ヨウ化 (PI) を染色液を次のように準備します。<ol>
<li>PI、購入した原液 (1 mg/mL, 1.5 mM) 1:25 HBSS PI の 40 μ g/mL (60 μ M) に到達するために希釈することによって染色液を準備します。たとえば、HBSS の 1000 μ L に原液の 40 μ L を追加します。</li>
		<li>光への暴露から保護するために PI 染色液をアルミ箔でカバーをしてください。機械試験後即時染色液を使って負傷したセル (セクション 4 を参照) を検出します。 注: 1 つはより厳密、郭清の品質を評価するために、読み込み前に PI 染色を実行できます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 機械的テスト プロトコル
<ol><li>後部大腿顆、上腕骨頭の関節面はガラス (図 1) に座っているようなカスタム顕微鏡マウントの機械的テスト デバイスのスライド ガラスの上に試料 (大腿骨や上腕骨) を配置します。 注: 固定 10 mm 長い木製アプリケータ (直径 2 mm の =) 平らな面に供試体を安定させるためにデバイスにそれを配置する前にシアノアクリ レート系接着剤を使用して上腕骨の遠位側に。機械的テスト プラットフォームの詳細については補足のファイル 1を参照してください: セクション 1。</li>
	<li>検体 HBSS でメタンハイド レートし、蛍光顕微鏡に試料を使用してデバイスを配置します。</li>
	<li>関節軟骨は、カルセイン AM で染色画像 (励起/蛍光波長 = 495/515 nm) (ベースライン) 4 X 蛍光顕微鏡下で負荷のアプリケーションは、レンズを乾燥する前に (NA = 0.13)。画像品質を最適化する取得設定を調整します。</li>
	<li>関節軟骨はカバー ガラスに対して圧縮するよう試料上に機械的ロードを適用します。<ol>
<li>静的載荷、所定の静的負荷 (例えば0.5 N) 供試体 (大腿骨や上腕骨) の上に適用されます。5 分の負荷を保持し、それを削除します。</li>
		<li>影響のため所定の高さ (例えば、1 cm) から知られている重量 (例えば0.1 N) の円筒インパクターをドロップすることによって試料の上に所定の衝撃エネルギー (例えば、1 mJ) を適用します。影響の後負荷 5 s をリリースします。 注: インパクター (mg) と所定の高さ (h) の重量は次の方程式を使用して衝突エネルギー (E) に変換できる: E = mgh です。</li>
	</ol>
</li>
	<li>PI 染色液室温で 5 分間で試験片を孵化させなさい。</li>
	<li>関節軟骨は、カルセイン AM で染色画像と PI (励起/蛍光波長 = 535/617 nm) 蛍光顕微鏡 (図 2)。</li>
</ol>5. データの解析
<ol><li>機械的荷重療法による負傷/死細胞の領域を定量化します。<ol>
<li>ImageJ18機械的負荷の前後を取得する関節面の顕微鏡写真を開きます。</li>
		<li>スタックに画像を組み合わせます。</li>
		<li>画像の解像度に基づく画像のスケールを設定します。</li>
		<li>セルがカルセイン負 (緑の蛍光性の損失) および PI 肯定的な (赤い蛍光性の利得) となった領域を定義するのに多角形ツールを使用します。これらの細胞は、怪我や死亡すると見なされます。</li>
		<li>測定ツールを使用して負傷/死細胞の領域を決定します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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<li>Adebayo, O. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinematics+of+meniscal-+and+ACL-transected+mouse+knees+during+controlled+tibial+compressive+loading+captured+using+roentgen+stereophotogrammetry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Kinematics of meniscal- and ACL-transected mouse knees during controlled tibial compressive loading captured using roentgen stereophotogrammetry.</a> Journal of Orthopaedic Research. 35 (2), 353-360 (2017).</li>
<li>Vahedipour, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uncovering+the+structure+of+the+mouse+gait+controller%3A+Mice+respond+to+substrate+perturbations+with+adaptations+in+gait+on+a+continuum+between+trot+and+bound%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Uncovering the structure of the mouse gait controller: Mice respond to substrate perturbations with adaptations in gait on a continuum between trot and bound.</a> Journal of Biomechanics. , (2018).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

上記の方法は、機械的負荷や衝撃を規定すた後マウスの関節から関節軟骨現実的で負傷/デッドその場を可視化する正常に採用されました。特に、2 つの異なる関節から完全にそのまま軟骨内軟骨細胞の力学的脆弱性を分析することができました: 膝関節 (遠位大腿骨) と肩 (上腕骨)。当社の代表的な結果を示す細胞傷害関節面上の空間範囲が荷重の大きさと影響の強さ (図 3) に敏感に依存します。重要なは、このメソッドを使用して関連する生理学的条件下での機械的負荷に対する細胞の応答の調査が容易になります。つまり、それは、そのまま生理下関節に関節軟骨のテストを有効し、生理学的負荷 (補足のファイル 1を参照してください: セクション 2)。
その場で実行可能なベースライン、いくつかのプロトコルの変更で軟骨細胞を維持し、トラブルシューティングにマウスの滑膜関節と課題の解剖を実行する急な学習曲線を考える必要があります。解剖時に関節軟骨細胞損傷の最大...

関節軟骨 (AC) は、荷重をカバーし、滑らかな関節関節を提供する滑膜関節の骨を保護する組織です。組織恒常性は、AC に存在する唯一の細胞型軟骨細胞の生存率に依存しています。しかし、軟骨の外傷 (例えば滝、車両事故やスポーツ傷害) または外傷後関節不安定性による極端な力への暴露はジョイント (関節) の不可逆的な破壊につながる、軟骨細胞の死を引き起こすことができます。1。 さらに、骨軟骨損傷した軟骨の局所欠陥を修復を目指して手続きを移植、移植挿入関連機械外傷は軟骨細胞生存率を低減と手術成績2に有害な影響を及ぼします。
軟骨植モデルは、機械的に誘発される細胞死に関節軟骨細胞の感受性を研究に使用されます。これらのモデルは通常、荷重条件、環境条件、およびセルの脆弱性3,4,5,6,を他の要因の効果を研究する大型動物から植を使用7,8,9,10、11,12,13,14,15。ただし、ネイティブの接合部のサイズが大きいためこれらのモデル一般的にネイティブの境界条件を損なうことにより、そのまま関節の関節面からプラグの取り外しが必要です。また、一般的に細胞傷害を誘発する大きな機械的負荷のアプリケーションが必要です。また、マウスの軟骨植モデルはその場で軟骨の機械的脆弱性の勉強に大規模な動物モデルにいくつかの利点を提供します。特に、自分の小さな寸法のためこれらのモデルはネイティブの組織の整合性を変更することがなく完全にそのまま軟骨のテストを促進します。さらに、マウスの軟骨の読み込みが発生した小さな接触領域に小さな負荷で軟骨細胞死、傷害を誘起すること (< 1 N)。最後に、マウスのゲノムは、どのように特定の遺伝子の影響の場で軟骨の機械的損傷に対する感受性のテストを有効にする簡単に、操作されます。
本稿で紹介したメソッドの全体的な目標を定量化する、視覚化の原細胞死/完全にそのままマウスの軟骨を骨に機械的荷重による損傷のリアルタイム時間の空間範囲が体外を外植体します。このメソッドは、我々 が最近開発したテストプラット フォームに似て顕微鏡マウント デバイスを使用して極めてステンド グラス植の機械試験続いて軟骨細胞生存率を損なうことがなくマウス、関節滑膜を細かくを必要とマウス軟骨の力学特性の16を定量化します。機械試験中に切り裂かれた骨 (そのまま) 関節面の大部分は負荷を適用した後の細胞生存率の迅速分析を有効にする、単一の蛍光顕微鏡写真に表示されます。以前は、なくロード17の同時適用マウス軟骨外植片の表面細胞生存率の同様の分析を行った。本手法の潜在的なアプリケーションは、さまざまな制御環境と力学的条件、関節軟骨細胞の脆弱性だけでなく、スクリーニング感度を減らすことを目的とした治療法の比較研究機械的負荷に軟骨。

<table><tbody><tr><td>カルセイン、AM&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>C3100MP</td><td>による Invitrogen 20x50mg , オレゴン州ユージーン, 米国</td></tr><tr>Thermo Fisher Scientific <td>P3566</td> による<td>ヨウ化プロピジウム</td><td>Invitrogen 水</td><td>溶液, 10mL, オレゴン州ユージーン, 米国</td></tr><tr><td>ジメチルスルホキシド (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>276855</td><td>1L DMSO, 無水, &ge;99.9%, 米国ミズーリ州セントルイス</td></tr><tr><td>HBSS (カルシウム、マグネシウム、フェノール不使用)&nbsp;</td><td>Gibco by Thermo Fisher Scientific</td><td>14025-092</td><td>1X, 500mL, Grand Island, NY, USA</td></tr><tr><td>フェザー手術用ブレード (#11)</td><td>VWR</td><td>102097-822</td><td>Hatfield, PA, USA</td></tr><tr><td>蒸気圧浸透圧計, VAPRO</td><td>ELITechGroup</td><td>Model 5520</td><td>Puteaux, France</td></tr><tr><td>pH meter&nbsp;</td><td>ベックマン</td><td>モデルファイ32&nbsp;</td><td>ブレア、カリフォルニア州、米国</td></tr><tr><td>エッペンドルフのサーモミキサー&nbsp;</td><td>エッペンドルフAG&nbsp;</td><td>モデル 5350</td><td>ハンブルク、ドイツ</td></tr><tr><td>電動倒立研究用顕微鏡</td><td>Olypmus</td><td>モデル IX-81</td><td>ペンシルベニア州センターバレー、ペンシルベニア州</td></tr><tr><td>米国 木製アプリケーター</td><td>Puritan Medical Products Company, LLC</td><td>807</td><td>6"x100, Guilford, ME, USA</td></tr><tr><td>1.5 ガラスカバースリップ</td><td>Warner Instruments, LLC</td><td>64-1696</td><td>#1.5, 0.17mm thick, 40mm diameter, Hamden, CT, USA</td></tr></tbody></table>

リアルタイム可視化と完全にそのままマウス軟骨外植片の機械的荷重により軟骨損傷の解析

Real-time Visualization and Analysis of Chondrocyte Injury Due to Mechanical Loading in Fully Intact Murine Cartilage Explants

関節軟骨の恒常性は、細胞 (軟骨) の生存率に依存します。残念ながら、機械的外傷関節の不可逆的な破壊と変形性関節症の発症につながる可能性のある広範な軟骨細胞死を引き起こすことができます。さらに、軟骨細胞生存率の維持は、最適な手術成績骨軟骨移植の手順で重要です。アプリケーション制御の機械的負荷や衝撃の後そのままマウス滑膜関節の関節面の細胞傷害/死の空間範囲を評価する方法を提案します。このメソッドは、異なる機械的負荷のレジメン、異なる環境条件や遺伝子操作の効果だけでなく、短期および長期の軟骨変性のさまざまな段階を調査する比較研究で使用できます。その場で関節軟骨の脆弱性。原稿で導入されたプロトコルの目的は、マウス、関節滑膜関節の表面に細胞傷害/死の空間範囲を評価するためです。重要なは、このメソッドは、ネイティブの境界条件を損なうことがなく完全にそのまま軟骨をテストできます。さらに、極めてステンド グラス関節軟骨細胞のリアルタイムの可視化と制御静的および衝撃療法の応用による細胞傷害の単一イメージ ベース解析が可能です。当社の代表的な結果は、健康な軟骨分化の細胞損傷の空間的な範囲に依存する敏感に負荷の大きさと影響の強度を示しています。手法は異なる機械的負荷のレジメン、異なる環境条件やその場で関節軟骨の機械的脆弱性の異なる遺伝的操作の効果を調査するために容易に適応することができます。

六つの異なる適用荷重プロトコル (静的載荷: 0.1 N、0.5 N、5 分; および衝撃荷重の 1 N: 1 mJ、2 mJ と 4 mJ) 8 10 週齢 BALB/c マウス (から得られる大腿骨と上腕骨の軟骨細胞損傷の定量化可能なローカライズされた領域を再現性をもって誘導図 2)。重要なは、関節表面の軟骨損傷の空間的な範囲は ImageJ で迅速かつ容易に測定しました。代表的な結果は、関節軟骨の力学的脆弱性が荷重の大きさと影響の強さの影響を受けたことを示しています。特に、高荷重の大きさと高い衝撃強度大幅悪化細胞傷害大腿骨及び上腕骨 (図 3) の空間的な範囲。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58487/58487fig1.jpg"> ...

アプリケーション制御の機械的負荷や衝撃の後そのままマウス関節の関節面の細胞傷害/死の空間範囲を評価する方法を提案します。このメソッドは、どのように変形性関節症、遺伝的要因や異なる負荷療法上皮内軟骨細胞の脆弱性に影響を調査するため使用できます。

Homeostasis of articular cartilage depends on the viability of resident cells (chondrocytes). Unfortunately, mechanical trauma can induce widespread ...

この方法は、異なる機械的負荷レジメン、環境条件、または軟骨変性の段階が、関節軟骨細胞の脆弱性に及ぼす影響の調査を可能にする。物理的な力。他の技術とは異なり、これらの測定は、ネイティブ境界条件を損なうことなく、リアルタイムで完全に無傷の軟骨で行われます。この技術のもう一つの利点は、マウスモデルを使用して、特定の遺伝子が機械的損傷におけるその部位軟骨細胞の感受性にどの程度影響するかをテストできるようにすることです。遠位大腿骨の解剖のために、マウスを膝の位置に置き、膝の前部に5ミリメートルの皮膚切開を行う。膝の周りまで切開を伸ばします。そして、膝関節と脚の筋肉を露出させるために皮膚を引き戻します。大腿骨の近位端から始めて、数11のメスの刃を使用して骨に沿って遠位方向に切断する。四頭筋腱部と大腿骨シャフトの前側との間に刃を配置する。膝蓋骨を越えて切開を延長する。膝蓋腱の真ん中を切断して四頭筋腱部を取り除く。次に、大腿骨の近位端から始まり、ハムストリング筋腱部と大腿シャフトの後側との間にメスの刃を配置し、骨に沿って遠位方向に切断する。切開が膝関節に近づくと、軟部組織を切り抜き、膝関節を越えて切り終える。四頭筋とハムストリングの筋肉を引き戻して大腿骨を露出させます。そして、骨の側側および内側の側面に余分な筋肉を切り取る。近位脛辺の後部側のふくらはぎの筋肉を切る。そして、大腿骨の後部側を視覚化するために脚を反転させます。膝関節の周りの余分な組織を取り除き、大腿骨の遠位顆と近位脛骨の後面を露出させる。前房と後十字靭帯を大腿骨顆から切り離します。そして脛骨を大腿骨から引き離し、すべての靭帯を切断して下肢を大腿骨から分離する。標準的な解剖はさみを使用して、側側から脛骨関節の約8ミリメートル上の骨の近位端で大腿骨を切断する。そして、大腿骨から周囲の柔らかい組織を除去するために宝石商の鉗子を使用してください。次に、大腿骨の遠位端で両方の顆に軟骨を露出させる。関節表面をHBSSで定期的に水和する。上腕骨の解剖のために、マウスを上方位置に置きます。そして、肘の後部側に5ミリメートルの切開を行うためにマイクロハサミを使用してください。肘の周りの切開を伸ばし、腕と肩の筋肉を露出させるために皮膚を引き戻す。上腕骨の近位端から始まり、上腕骨の後部側と三頭筋腱部との間に数11個のメスの刃を配置する。そして、遠位方向に骨に沿ってカットします。上腕骨の遠位端に向かって切開を伸ばし、三頭筋腱を通り、上腕頭が露出するまで上腕骨の近位端に向かって三頭筋を引き戻す。関節面に触れることなく、上腕頭の周りの結合組織を切断します。そして、体から手足を取り除きます。HBSSで上腕頭の関節面を水和します。腕から上腕骨を切断するには、腕の後部側の尺骨の近位端を断ち切るために鉗子を使用します。そして、骨の余分な組織を取り除き、上腕骨の遠位端の周りの結合組織を切断します。その後、標準的な解剖はさみを使用して、上腕骨の後部側の三角結節性を除去する。そして、HBSSを含む1.5ミリリットルマイクロ遠心分離管に解剖標本を置きます。サンプルのカルセインAM染色の場合、骨をHBSSで10.05マイクロモルカルセインの500マイクロリットルを含む1.5ミリリットルマイクロ遠心分離チューブに移します。そして、光から保護された800 rpmで摂氏37度のサーモミキサーにチューブを置きます。30分後、新鮮なHBSSで10分間洗浄します。そして、後大腿骨顆または上腕頭の関節面がガラスの上に座っているような、カスタム顕微鏡取り付け式機械検査装置のガラススライドに標本を移す。HBSSで検体を水和し、試料と一緒に装置を蛍光顕微鏡のステージに置きます。4倍の倍率で負荷アプリケーションの前にカルセインAMで染色された関節軟骨細胞を画像化する。取得の設定を調整して、画質を最適化します。静的機械的荷重を適用するには、関節軟骨がカバーガラスに対して5分間圧縮されてから、負荷を取り除くように、所定の静的負荷を試料の上に保持します。衝撃機械的荷重を適用するには、所定の高さから既知の重量の円筒型インコンパクタを試料にドロップし、衝撃の5秒後に荷重を解放します。いずれかの負荷が除去された直後に、HBSSの1ミリリットルで調製した60マイクロモルヨウ化物で試料をインキュベートする。室温で5分間、ちょうど実証したように蛍光顕微鏡による関節軟骨細胞を再画像化する。機械的荷重の適用による傷ついた細胞と死んだ細胞の面積を定量化するために、まず、ImageJで機械的負荷の適用前後に取得した関節面の顕微鏡写真を開く。画像をスタックに結合します。イメージの解像度に基づいて、イメージのスケールを設定します。次に、細胞がカルセイン陰性とPI陽性になった領域を定義します。これらの細胞は、負傷または死んでいると考えられています。次に、測定ツールを使用して、負傷死細胞の面積を決定します。試験された少なくとも6個の負荷プロトコルは、8〜10週齢のバルブCマウスから得られた大腿骨および上腕軟骨軟骨における細胞損傷の定量可能な局所領域を再現的に誘発した。テストされたすべての負荷プロトコルにおいて、大腿骨および上皮両方における細胞損傷の空間的な範囲を、より高い負荷の大きさおよびより高い衝撃強度が著しく悪化させた。この切片を行う間、これは標本の能力によってベースラインを損なう可能性があるため、手術用具で関節軟骨に接触しないことを覚えておくことが重要である。このミラーリングモデルの使用は、疾患が遺伝的、食事的、または外科的操作を通じてマウスで容易に誘発されるように、変形性関節症の研究を容易にすることができる。また、基礎科学の質問を調査し、軟骨細胞の機械的脆弱性を標的とした治療介入をスクリーニングするためのツールも提供しています。

real-time-visualization-analysis-chondrocyte-injury-due-to-mechanical

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

軟骨細胞による軟骨細胞外基質の生合成は、機械的刺激を印加することによって影響を受けることができます。このメソッドは、3Dコンストラクトおよび軟骨代謝の誘導された変化の評価にカプセル化された軟骨細胞への動的圧縮歪みを適用する方法について説明します。...

軟骨アガロースゲルの機械的刺激

私たちは、関節軟骨欠損部に移植前に軟骨バイオ複合に一軸又は二軸の機械的ひずみを適用できる新規な機械的負荷バイオリアクターを設計しました。...

組織工学のための二軸メカニカルローディングバイオリアクターの設計

頭蓋顔面骨の細胞組織が長いと仮定されず、直接可視化はありませんでした。マルチスペクトル細胞標識および in vivoライブで  イメージングは​​、ゼブラフィッシュ下顎における動的な細胞の挙動の可視化を可能にします。ここでは、詳細プロトコルはZebrabowトランスジェニック魚を操作し、直接細胞のインターカレーションとメッケル軟骨における軟骨細胞の形態学的変化を観察します。...

胚性メッケル軟骨でZebrabowクローン細胞分析によって軟骨細胞のインターカレーションと方向性増殖の可視化

このプロトコルでは、大腿骨の骨折は、癒しのマウスにおける軟骨内骨を分析するための標準化された安定化髄内ねじを用いた低侵襲骨接合法について説明します。...

癒しの標準化された生体力学的条件下でマウスの軟骨破壊を分析する低侵襲モデル

ここでは、ウシの膝からの軟骨の切除と培養を記述するプロトコルを提示する。この方法は、関節を標的とする生物学的刺激または新規治療に応答して組織の変化を記述するための容易でアクセス可能なツールを提供する。...

牛膝剥離植物における軟骨改造のEx Vivo組織培養モデル

本稿では,ラットの大腿骨顆軟骨損傷を20N以上60回周期的に圧迫することにより生じたラット膝の周期的荷重誘発関節内軟骨病変モデルを提示する.

ラット膝の周期的負荷誘発関節内軟骨病変モデルを生成するための非侵襲的方法

本プロトコルは、内側ミニスコティビアル靭帯を切断することによってマウス膝を不安定化させた後の関節軟骨の表面における制御されたマイクロブレードの引っかき傷を記載する。この動物モデルは、骨棘形成、骨硬化症、および初期段階の痛みの研究に適した変形性関節症(OA)の加速型を提示します。...

加速変形性関節症の内側半月板および軟骨スクラッチマウスモデルの不安定化

このプロトコルは、青年期の骨成長板損傷のための改良されたマウスモデルを記述します。成長プレートの3つの異なる基層に関連する一次マトリックスであるI型、II型、およびX型のコラーゲンの三系統蛍光レポーターを備えたトランスジェニックマウスを使用して、損傷の配置は顕微鏡下でのネイティブ蛍光によってガイドされます。...

成長板損傷を研究するためのトリコロールトランスジェニックマウスモデル

機械的軟骨過負荷に対する軟骨細胞損傷の反応をよりよく理解するために、プロトコルでは、24時間亜致死的であった ex vivo...

インビトロ ウシ軟骨外植片における亜致死性軟骨細胞損傷を生じさせる衝撃モデル

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全層骨軟骨欠損の羊モデルの確立と評価

学ぶ マウス軟骨外植片のリアルタイム可視化と機械的荷重による軟骨損傷解析手法。完全なそのままの状態で軟骨細胞傷害を評価し、変形性関節症のメカニズム解明と遺伝的要因の影響を研究する革新的プラットフォームです。

リアルタイム可視化と完全にそのままマウス軟骨外植片の機械的荷重により軟骨損傷の解析

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