Name: 誘導と近親交配アリ、 Vollenhovia Emeryiを使用しての評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-05T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 44 s
Description: 学ぶ、アリVollenhovia emeryiを用いた近親交配の誘導と評価方法。遺伝マッピングと性決定の分子研究に不可欠な実験系を構築し、ハチ目昆虫の遺伝機構解明に貢献します。

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Emeryi 対reproductives の彼の写真を提供してくれる、AntRoom、東京都代表の島田拓さんに感謝しますこのプロジェクトによって賄われていた日本学術振興会科学 (JSPS) 研究員若手 (16J00011) の奨学金の支援若手 (B)(16K18626)。

1. フィールド コレクションと研究室でV. Emeryi植民地のメンテナンス
注: emeryi v.の巣は腐敗のログと全国落ちた腐食木 branchesin 二次林で発見されます。この種は、植民地、すなわち、 (1) コロニーだけ女王の長い翼と (2) 植民地中心に長い翼クイーンズブレイド8,14の数が少ないだけでなく短翅女王を生産生産の 2 つのタイプを示しています。このプロトコルでは石川県におけるコロニーの後者のタイプを集めました。
<ol><li>年初夏emeryi 対植民地を収集します。 注: 繁殖の季節の間に性の個人の十分な数を取得、スタッフ 300 人以上を含む植民地が優先されます。</li>
	<li>吸引器 (図 2左) を使用してガラス カバーと、アリの標本を収集の枝から人工石膏巣に転送します。</li>
	<li>16:8 h 明暗周期下 25 ° C で人工巣の植民地を維持します。石膏をウェット洗浄ボトルに水道水を提供します。<ol>
<li>乾燥コオロギ パウダーに包まれたアルミ箔と茶色の砂糖水で満たされたヒント (20 μ L チップ) 新しい reproductives (F1翼女王と F1男性) が出てくるまで毎日約 100 mg を追加します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 実験交差
注: 新しい reproductives は、夏の終わりから秋 (図 3) に出現する開始します。長い翼を持つ女王が性的、作り出される、短翅クイーンズ クローン作り出されると母性のゲノム (図 1)。十字架を近親交配に長い翼を持つ女王と男性を使用します。
<ol><li>4 ° C で 15 分間の一定の環境ルームでコロニーの場所移動から個人を停止します。</li>
	<li>実体顕微鏡下で鉗子を使用して 30 の労働者の半ば足を削除し、新しい小さな石膏巣 (図 2右) 十字を近親交配のためにそれらを転送します。 注: 足はその後近親交配によって生成される労働者から現在の労働者を区別するために削除されます。</li>
	<li>労働者を含む石膏巣に 3-4 の幼虫や蛹を追加します。 注: 労働者は、F0クイーンズ少ない植民地で探索活動を表示します。幼虫や蛹に効果的にこれらの労働者と植民地の中心部に新しい reproductives 交差テスト中には、誘致することができます。その結果、通常のコロニーに近い実験的コロニーの条件を保ちます。</li>
	<li>十字架を近親交配の手順 2.3 で準備石膏巣に長い翼を持つ女王と男性を転送します。</li>
	<li>食料や水の女王が彼女の翼を失うし、卵を産むまで 1.3 で説明として提供 16:8 h 明暗周期下 25 ° C でコロニーを保ちます。 注: これは 1 ヶ月に 1 週間をかかります。</li>
	<li>実体顕微鏡下で実験的コロニー毎日チェックしてください。F1子孫間で交差する近親交配を実行後、実体顕微鏡下で卵を観察できます。</li>
	<li>1女王が産卵を始めます F 後、F1世代 (男女近親交配に使用) と F2世代 (子孫の混合を避けるために F1男性と幼虫や蛹の巣から 2.3 の手順で追加削除近親交配から生産)。 注: いくつかの男性は植民地は、同じ実験的コロニーの 1 人の男性と 1 に 3 の女王を使用して近親交配を誘導することが可能。</li>
	<li>F2の子孫が出てくるまでに 1.3 で説明した同じ動向の下でコロニーを保ちます。 注: 転送 F1女王と新しい大きな石膏巣 (図 2左) 長期の植民地維持のために F2の子孫。</li>
</ol>3. 近親交配成功の評価
<ol><li>DNA の抽出および親の世代 (F0) の遺伝子型解析<ol>
<li>1 本の鉗子を用いた F0女王の足を取り外し、キレート剤の 100 μ L を含む 1.5 mL マイクロ チューブに脚。</li>
		<li>実体顕微鏡下で鉗子を用いた超純水の 300 μ L で満たされたガラス皿の中の女性の腹部の解剖、嵌合の男性から精子を含んだ交尾を隔離します。</li>
		<li>交尾の組織をはがすし、昆虫ピンを使用して女性の組織から精子を分離します。 注: 交尾から精子抽出しやすく、100% 女性の標本を格納解剖前に 1 日以上のエタノール。</li>
		<li>マイクロ ピペットを使用してには、キレート剤の 100 μ L を含む 1.5 mL マイクロ チューブに精子を転送します。</li>
		<li>F0女王と 3.1.1 および 3.1.3 のステップでそれぞれ準備の精子のサンプルをインキュベート、95 ° c で 20 分間フラッシュ、マイクロ チューブを遠心し、4 ° C で保存</li>
		<li>遺伝子型のすべてのメソッドを使用してサンプル記載事項4をのすべて。</li>
	</ol>
</li>
	<li>近親交配 (F1) 用アリのペアからの DNA 抽出<ol>
<li>F1女王の合致、sib による卵の生産を確認した後は、彼女の小屋の翼または中間片足セクション 3.1 上記で説明した方法を使用して遺伝子型を使用して女王の DNA を抽出します。</li>
		<li>1 つの脚と遺伝子型を使用して同じを使用して DNA の F1男性を抽出セクション 3.1 上記記載の方法。 注: サンプルはキレート剤の DNA と DNA の抽出の前にエタノールは 4 ° C で 2 ヶ月保存ことができます 100% に格納できます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>十字架を近親交配から生成される男性の男性の生殖能力の評価 注: 近親交配から生産二倍体雄が滅菌多い。<ol>
<li>鉗子を使用して PBS 溶液 400 μ L でガラス皿の内部生殖器を解剖します。</li>
		<li>PBS を削除し、マイクロ ピペットを使用して 4% パラホルムアルデヒド (PFA) を追加します。</li>
		<li>PFA で部屋の温度 (15 ~ 25 ° C) で 30 分間インキュベートし、組織を修正します。</li>
		<li>5 回で 400 μ L の PBS マイクロ ピペットを使用して組織を洗浄します。</li>
		<li>4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) ソリューションを PBS で 1 μ g/mL を希釈します。</li>
		<li>PBS を削除し、この DAPI 染色溶液の約 300 μ L を組織に追加します。</li>
		<li>室温 (15-25 ° C) で暗い条件下での 15 分間、インキュベートします。</li>
		<li>5 回で 400 μ L の PBS、組織を洗浄し、鉗子を使用してスライド ガラスの中央にティッシュを転送します。</li>
		<li>組織をマウントします中含む Tetramethylrhodamine TRITC 共役ファロイジンをマウントします。</li>
		<li>共焦点レーザー顕微鏡 20 X または 63 倍の対物レンズを使用してサンプルを確認します。</li>
		<li>DAPI 検出 410 530 nm 405 nm 励起レーザーとハイブリッド検出器を使用します。</li>
		<li>565-650 nm 561 nm 励起レーザーとハイブリッド検出器を使用して、TRITC 検出のため。</li>
		<li>400 Hz のスキャン速度を使用 (400 ライン/秒) 解像度 1024 × 1024 ピクセルでに。</li>
		<li>ソフトウェア プラットフォームを使用してイメージをキャプチャします。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Mable, B. K., Otto, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+evolution+of+life+cycles+with+haploid+and+diploid+phases%5BTitle%5D)+AND+%22BioEssays%22%5BJournal%5D)">The evolution of life cycles with haploid and diploid phases.</a> BioEssays. 20 (6), 453-462 (1998).</li>
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</ol>

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この記事では、近親交配を誘導し、 emeryi 対アリの近親交配の発生を評価するために使用できるプロトコルを示します。実験では, 交雑用個人の遺伝子型は近親交配が成功したことを確認する必要。しかし、これらの交差テストの有効性は明らか二倍体雄は半数の男性は、フィールドと実験室6で秋にだけ生産できる一方、年間を通して生産できます。兄妹交尾女王を横断後すぐに男性の子孫を生成する開始します。Emeryi V.6,7.の二倍体と半数の男性間の形態的な形質の違いは認められなかったただし、二倍体雄emeryi 対ほとんど必ず失敗する精巣を開発します。踏切のテスト用のペアの遺伝的類縁性をテストするための遺伝子マーカーがない場合は、近親交配が発生したかどうかを推測する男性の子孫の生殖能を使用できます。しかし、十字架を近親交配で生産された男性が常にその他ハチ種15,...

アリやハチなど社会性ハチのイチイが進化したが 1 つまたは複数の相補性決定でヘテロ個人を (CSD) 軌跡になる女性、ホモや hemizygous 中 haplodiploid 性決定システム男性 (図 1A)1になります。
遺伝学的および分子性決定カスケードに関連するコンポーネントは、ミツバチ、セイヨウミツバチ、ハチのモデル有機体の2,3,4においてよく研究されています。最近の比較ゲノミクスの調査は、アリやミツバチが初期の性決定の遺伝子、 csd5などの性決定経路の推定同族体多くを共有することをお勧めします。ただし、これらの同族体の機能の保全のための証拠はまだアリで欠けています。
この問題に対処するため近親交配行遺伝のマップおよび分子研究に不可欠な開発しなければなりません。ただし、進化しているライフ サイクルの複雑な性質のため研究室では、これらの生物間の実験十字を行い、維持することは困難です。
ここでは、我々 はアリ6、7の性決定システムの分子・遺伝的基盤を調査するのにモデルとしてのVollenhovia emeryiを使用します。この種の近親ラインは、以前アリ6で初めての性決定に関連する形質の量的形質遺伝子座 (QTL) のマッピングのため開発されました。さらに、分子性決定カスケードは調査7をされています。この種は gynogenesis と今回の両方 (図 1B)8,9を採用した異常な再生システムを進化しています。クローン母体と父方のゲノムからほとんどの新女王と男性がそれぞれ生成されます。さらに、労働者といくつかのクイーンは性的生産が8。この複製システムは、性的を使用して生成される近親交配はクイーンズブレイドを生産し、男性が古典的な交雑と遺伝的等価特に遺伝学的研究に適しています。性的に作り出されたクイーンズ異なる母体ゲノム10 (図 1B) から生成されるクイーンズから形態学的、ので実施し、近親交配の評価は大幅に簡略化このメソッドを使用しています。
交差テストの実験室コロニーの確立の方法この記事で近親交配のアプリケーションを越える完全 sib のペアを使用して、コロニーのメンバーのジェノタイピングおよび男性の子孫の解剖を使用してこれらの十字の成功を評価性器は、 emeryi v.のとおりです。
関係なく、再生システムを採用、十字架を近親交配のアプリケーションはしばしば、膜翅目の性決定システムの任意の調査で重要な第一歩。たとえばCardiocondyla obscurior全兄妹交配実験室での 10 世代後二倍体男性のほぼ完全な欠如は、CSD 遺伝子座11の不在を示しています。近親交配6,12,13で生産された男性の比から CSD 遺伝子座の数を予測することが可能です。

<table><tbody><tr><td>石膏パウダー</td><td>N/</td><td>A N/A</td><td>どのブランドでも使用可能</td></tr><tr><td>チャコール、アクイティフェクト、パウダー</td><td>和光</td><td>033-02117,037-02115</td><td></td></tr><tr><td>スライドガラス</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>任意のブランドが使用可能</td></tr><tr><td>ドライクリケットダイエット</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>任意のブランドが使用可能</td></tr><tr><td>ブラウンシューガー&nbsp;</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>どのブランドでも使用可能</td></tr><tr><td>スチロール 角型ケース</td><td>AS ONE</td> 任意の<td>サイズ</td><td>アリの数によりサイズが異なります</td></tr><tr><td>インバタール</td><td></td><td></td><td>どのブランドでも使用可能</td></tr><tr><td>アルミブロックバス ドライサーモユニット DTU-1B</td><td>TAITEC</td><td>0014035-000</td><td></td></tr><tr><td>1.5mL ハイパーマイクロチューブ、クリア、丸底</td><td>WATSON</td><td>131-715CS</td><td></td></tr><tr><td>エタノール (99.5)</td><td>和光</td><td>054-07225</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>N/</td><td>A N/A</td><td>どのブランドでも使用可能</td></tr><tr><td>Forseps</td><td>デュモン</td><td>0108-5-PO</td><td></td></tr><tr><td>キレックス 100 ナトリウム形態</td><td>シグマ</td><td>11139-85-8</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 錠剤、pH7.4</td><td>タカラ</td><td>T9181</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>和光</td><td>162-16065</td><td></td></tr><tr><td>-Cellstain- DAPIソリューション</td><td>同人堂分子技術</td><td>D523</td><td></td></tr><tr><td>ABI 3100xl ジェネティックアナライザー</td><td>応用バイオシステム</td><td></td><td>詳細については、コンストラクタに直接お問い合わせください。</td></tr><tr><td>共焦点レーザー走査型顕微鏡 ライカ TCS SP8</td><td>ライカ</td><td></td><td>詳細については、コンストラクタに直接お問い合わせください。</td></tr><tr><td>HC PL APO CS2 20x/0.75 IMM</td><td>Leica</td><td></td><td>詳細については、コンストラクターに直接お問い合わせください。</td></tr><tr><td>HC PL APO CS2 63x / 1.20 WATER</td><td>Leica</td><td></td><td>詳細については、コンストラクタに直接お問い合わせください。</td></tr><tr><td>Leica HyDTM</td><td>Leica</td><td></td><td>詳細については、コンストラクタに直接お問い合わせください。</td></tr><tr><td>Leica Application Suite X (LAS X)</td><td>Leica</td><td></td><td>詳細については、コンストラクタに直接お問い合わせください。</td></tr></tbody></table>

誘導と近親交配アリ、 vollenhovia emeryiを使用しての評価

Induction and Evaluation of Inbreeding Crosses Using the Ant, Vollenhovia Emeryi

カスケードは性決定の遺伝学的および分子成分が盛んミツバチ、セイヨウミツバチ、ハチのモデル有機体の。しかし、少しは他非モデル分類群ハチ、アリなどに見られる性決定機構について知られています。ハチの種に進化しているライフ サイクルの複雑な性質のため、研究室では、これらの生物間の実験十字を行い、維持することは困難です。ここでは、我々 は近親交配を実施するため、ant Vollenhovia emeryiのそれらの交差の成功を評価するための方法を説明します。種のユニークな生物学のためemeryi 対を用いた実験で近親交配を誘導するは比較的簡単です。具体的には、この種を生成するアンドロゲン性男性と女性の reproductives 展示翅多型、遺伝子交雑における表現型の識別を簡素化します。さらに、男性はフィールドには、明確に定義された繁殖シーズン中にのみ表示されます通常男性間の交差を近親交配によって継続的に作り出すことができるよう、近親交配の成功の評価は簡単です。我々 のプロトコル モデルとしてemeryi (動)使用している遺伝学的および分子的蟻種の性決定システムを調査するを可能にします。

F0と F1世代によるマイクロ サテライト解析の結果は、近親交配が正常に生成されたことを示した (図 4)6。結果として十字架を近親交配の実験交差コロニーの確立の 1 ヶ月以内合致の女王が得られました。残りは女性 (労働者および女王)6近親交配からのすべての子孫 (2F) の四分の一 (27.1 ± 8.91 %sd) は男性だった十字架を近親交配から子孫を使用して QTL マッピング, 十字架を近親交配によって生成される男性が二倍体 2 つのホモ CSD 遺伝子座 (CSD1 および図 5に CSD2)、女性 (労働者) ながら十字架を近親交配から生産された二倍体とヘテロで少なくとも 1 つ CSD 遺伝子座6時。
<p class="j...

このプロトコルでは、ant Vollenhovia emeryiの近親交配を実施し、これらの十字の成功を評価するためのメソッドを説明します。これらのプロトコルは、膜翅目の性決定システムの遺伝的基盤を理解することを目的とした実験のため重要です。

誘導と近親交配アリ、 Vollenhovia Emeryiを使用しての評価

The genetic and molecular components of the sex-determination cascade have been extensively studied in the honeybee, Apis mellifera, a hymenopteran model ...

この方法は、性決定システムなどのハイメノプテラの分子生物学および遺伝的領域における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、遺伝的マッピングと分子状態に不可欠なアリボレンホビアエメリーの上に近親交配ラインを容易に誘導できることです。したがって、このミッションは、特定のアリの性決定システムに関する洞察を提供することができ、スズメバチなどの他のアリや他のヒメノプテラ種にも適用することができます。プロトコルを開始するには、初夏の間にV.エメリのコロニーを収集します。収集した枝から、吸引器を使用して、ガラスカバー付きの人工石膏巣にアリの標本を移します。人工巣のコロニーを25°C、16〜8時間の明暗サイクルの下で維持する。洗面ボトルを水道水に入れ、石膏を一日おきに一日おきに湿らせた状態に保ちます。次に、新しい生殖アリが出現するまで、1日おきに20マイクロリットルのチップを使用して、アルミニウム箔で包まれた乾燥したクリケットパウダーの約100マイクログラムと黒砂糖の水で満たされた先端をコロニーに追加します。畑からマイクロコロニーを収集し、新しい女王と男性を得るのに十分な食料を提供することが重要です。まず、摂氏4度に設定された環境が15分間の部屋にコロニーを置くことによって、個人が移動するのを止めます。ステレオスコープの下で鉗子を使用して30個の作業アリの中足を取り除き、その後の近親交配十字架で生産された労働者からFゼロ世代を区別する。その後、交配十字架のための新しい小さな石膏の巣にアリを転送します。次に、3~4匹の幼虫またはプーブを、作業員を含む石膏の巣に加えます。長い翼を持つ女王とオスを、交配十字架のために以前に準備された石膏の巣に移します。このステップでは、実験交差コロニーを通常のコロニーと同じ状態に維持することが重要である。男性とメスを一緒に配置するだけで近親交配を誘導することは困難です。女王が翼を失い、卵を産むまで、食料と水を提供する16〜8時間の明るい暗いサイクルの下で25度のコロニーを保ちます。実験コロニーをステレオ顕微鏡で毎日確認してください。F-1の子孫の間に近親交配の十字架を設定した後、卵はステレオスコープの下で観察することができる。F-oneクイーンが卵を産み始めた後、F-One世代とF-2世代が混合するのを防ぐために、巣からF-oneオスと幼虫またはプーブを取り除きます。F-2の子孫が出現するまで、コロニーを同じ条件で保ちます。鉗子を使用してFゼロクイーンの片足を取り除きます。100マイクロリットルのチル剤を含む1.5ミリリットルマイクロチューブに脚を移します。ステレオスコープの下で鉗子を使用して超純水の300マイクロリットルで満たされたガラス皿の女性の腹部を解剖する。交尾した男性の精子を含むスペルマティカを崩壊させる。スペルマティカの組織を剥がし、昆虫ピンを使用して女性の組織から精子を分離する。マイクロパイパッドを使用して、100マイクロリットルのチル剤を含む1.5ミリリットルマイクロチューブに精子を移す。Fゼロクイーンと精子のサンプルを摂氏95度で20分間インキュベートします。フラッシュセントロはマイクロチューブを融合し、サンプルを摂氏4度で保存します。siv-mateF-oneクイーンによる卵の生産を確認した後、小屋の翼または1つの中足と遺伝子型を使用して女王のDNAを抽出する。次に、片足をジェノタイピングしてF-One雄のDNAを抽出する。近親交配クロスからのオスアリの生殖能力を評価するために、鉗子を使用して400マイクロリットルのPBS溶液を含むガラス皿の内生殖器官を解剖する。その後、PBSを取り出し、マイクロパイパッドを使用して4%パラホルムアルジドに交換します。PFAでサンプルを室温で40分間インキュベートして組織を固定します。固定後、マイクロパイパッドを使用して400マイクロリットルのPBSで組織を5回洗浄します。PBSで1ミリリットル当たり1ミリグラムにDAPI溶液を希釈.PBSを取り除き、希釈したDAPI染色液を約300マイクロリットルを組織に加えます。暗い条件下で室温で15分間組織をインキュベートする。インキュベーションに続いて、400マイクロリットルのPBSで組織を5回洗浄し、鉗子を使用してガラススライドの中央に組織を移す。次に、TRITCテトラメチルrhodaアミンを含む実装媒体に組織を取り付けます。最後に、20または60の3倍の対物レンズを使用して、共焦点レーザー走査顕微鏡でサンプルを観察します。ハプロイド男性対エメリの精巣の顕微鏡画像は、健康な線維組織を示さなかったディプロイド男性対エメリに存在しない健康な線維組織または精子を示す。ディプロイド男性対エメリの男性生殖器官は精子を産生せず、精巣は発達せず、近親交配十字架で産生される男性は無菌であることを示唆している。その開発後、この技術は、私たちが速いタイミングアリ種のためにボレンホビアエメリで一定のセックスミカトニーを探求するための道を開きました。

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Research

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Genetics

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学ぶ、アリVollenhovia emeryiを用いた近親交配の誘導と評価方法。遺伝マッピングと性決定の分子研究に不可欠な実験系を構築し、ハチ目昆虫の遺伝機構解明に貢献します。

誘導と近親交配アリ、 Vollenhovia Emeryiを使用しての評価

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