Name: 腎糸球体と腎糸球体細胞表面タンパク質の標識体内の分離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 12 s
Description: 学ぶマウス腎臓の生体内バイオチン灌流による糸球体細胞表面タンパク質の標識法。複数タンパク質を同時に解析でき、腎疾患におけるタンパク質輸送メカニズムの理解に貢献する。

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著者は、彼女の卓越したテクニカル サポートにブランカ Duvnjak をありがとうございます。この作品は、ドイツ研究振興協会 (www.dfg.de) WO1811/2-1 m. w. に、QU280/3-1 星に想いを支えられました。出資者には、研究デザイン、データ収集、データ分析、意思決定、公開する、原稿の準備の役割はなかった。

マウスは、ローカル動物のケア施設やフランスでジャンビエ ラボから社内品種として得られました。ケアと実験動物の使用 (米国国家機関の健康出版 85-23 号、1996 の改正のため、ガイドに記載されているガイドラインに従って、調査を行った。関連機関の承認に従ってすべての動物実験を行った (州政府 LANUV 参照番号 AZ:84-02.04。2016.A435)。
1. 商品、ソリューション、および装置の準備
<ol><li>(MgCl2) 塩化マグネシウム 1 mM と 0.1 mM 塩化カルシウム (CaCl2) 添加リン酸緩衝生理食塩水 1 L を準備 (PBSCM) および滅菌フィルターをフィルター処理します。</li>
	<li>灌流のマウスごと滅菌 PBSCM 5 mL を準備し、氷の上に置きます。</li>
	<li>各マウスの 0.5 mg/mL ビオチンを添加した滅菌 PBSCM 5 mL を準備します。</li>
	<li>各マウス滅菌 PBSCM 5 mL を準備し、108磁気ビーズ × 0.8 を追加 (e.g。、200 μ l 前処理なし、4 × 10 の8ビーズ/mL の溶液の) 糸球体の塞栓術の。オリジナル チューブ滅菌の磁気ビーズを保つためにセル文化ベンチの下このソリューションを準備します。氷の上には、このソリューションを配置します。</li>
	<li>100 mM グリシンを PBSCM (マウスあたり 5 mL) に追加することによって焼入ソリューションを準備し、氷の上にそれを維持します。</li>
	<li>コラゲナーゼの解決 (0.378 U/mL 中のコラゲナーゼ A 滅菌 PBSCM) を確認します。マウスあたり 2 mL チューブにコラゲナーゼ溶液 1 mL をピペット、氷の上に置きます。</li>
	<li>洗浄、滅菌 PBSCM を準備 (手順 1.1 参照) 50 mL のチューブし、氷の上に置きます。</li>
	<li>灌流、2.0 mL/min の流量とシリンジ ポンプを使用します。</li>
	<li>21 G 針、10 mL シリンジを準備します。針の先端が、20-30 cm の長いカテーテル (内径、ID = 0.58 mm)。カテーテルを接続 (ID 0.58 mm) 10 cm 短いカテーテル (0.28 mm ID) と小さいカテーテルの先端をマウス大動脈に簡単挿入するため斜めカットします。</li>
	<li>手術中に手順の合字、マウスごとに 3 つの 5-7 cm シルク スレッド (6 - 0 4-0) をカットします。</li>
	<li>手術のため 3 用クランプ、2 外科はさみ、ピンセット 2、2 高級ピンセット、1 高級シザー、綿棒を準備します。(例えば、腹腔内麻酔のケタミン 100 mg/kg 体重とキシラジン 5 mg/kg 体重) 麻酔を準備します。</li>
	<li>2 つの腎臓の糸球体の分離、100 μ m の細胞ストレーナー、2 つの 50 ml チューブ、マグネット キャッチャーを使用します。</li>
	<li>チャップスの換散バッファーの準備: 20 mM 3 [(3-cholamidopropyl) dimethylammonio]-1-propanesulfonate (チャップス);20 mM トリス (ヒドロキシメチル)-aminomethan (トリス) pH 7.5;50 mM sodiumchorlide (NaCl);50 mM sodiumfluoride (NaF);15 mM Na4P2O7;0.1 mM エチレンジアミン四酸 (EDTA) pH 8.0;2 mM の sodiumorthovanadate。2 mM adenosinetriphosphat (ATP)。</li>
	<li>クールなの遠心分離機 4 ° C</li>
</ol>2. 顕微鏡下での手術
<ol><li>マウスの麻酔 (例えばケタミン ・ キシラジンと腹腔内、手順 1.11 参照)。適切な麻酔を確認するつま先ピンチ テストを実行します。</li>
	<li>70% イソプロピル アルコール液をマウスの腹部の側面を消毒します。</li>
	<li>胸骨に骨盤から皮膚を通してメディアン カットを実行し、ピンセットを使用して腹部の筋膜から皮膚を削除します。腹部の真ん中、両側手術ハサミで皮膚をカットします。</li>
	<li>手術器具を変更します。剣から腹部の筋肉層を通して膀胱にメディアン カットを適用、ピンセット、手術用のはさみを使用して 4 つの象限に分けてください。上の 2 つの脇のマウスの首の方向に 2 つ用クランプとクランプ付します。 注: 腹部が今開かれます。</li>
	<li>滅菌綿棒で取って内臓を入れて、高級ハサミ肝横隔膜靭帯をカットします。</li>
	<li>2 つの高級ピンセットで副腎の高さに腎動脈の近位大動脈の周り (6 - 0 絹糸 4-0) で結紮を準備します。ピンセットで血流を廃止する近位大動脈結紮を締めます。</li>
	<li>無料の筋膜、脂肪、および他の組織から遠位の大動脈、微細手術用ピンセットを用いた腎動脈の頭蓋の肝/上腸間膜動脈周囲の結紮を準備します。</li>
	<li>腎動脈の遠位腹部大動脈周囲 (6 - 0 絹糸 4-0) で結紮を準備し、クランプ下大静脈と大動脈分岐部の高さで。</li>
	<li>小さな穴にカット大動脈遠位腎動脈大動脈の直径の半分穴があるので。大動脈にカテーテルを入れ、合字の準備でそれを修正します。 注意: は、空気塞栓を防ぐために灌流システムの泡を避けるため。</li>
	<li>灌流を 2 mL/min の流速で冷えた PBSCM に始まります。</li>
	<li>微細手術用はさみで腎動脈のレベルで腎静脈に穴をカットし、肝および腸間膜動脈を結紮を締めます。 注: 腎臓は灌流を開始した後淡いに向ける必要があります。</li>
</ol>3生体内でビオチン化。
<ol><li>変更バブル無料の冷たい PBSCM を注射器は、ラベリング、表面のビオチンは 0.5 mg/mL を添加した、2 mL/min の流量で 5 mL と腎臓の灌流します。 注: ミックス (例えば、 50 mL のチューブを回して) PBSCM ソリューション ソリューション内の泡の形成を避けるために優しく。シリンジ内溶液の吸引後、シリンジから空気や泡を避難します。カテーテル システムに接続されているカニューレのスペースを埋めるための注射器で余分なカニューレ (21 G) を使用します。最後に、泡なしカテーテル、カニューレに注射器を付けなさい。</li>
	<li>無気泡シリンジを糸球体を消すし、2 mL/min の流量で 5 ml を灌流する 100 mM グリシンを添加した氷の PBSCM に変更します。</li>
	<li>変更バブル無料の冷たい PBSCM をシリンジ 200 μ L 磁気ビーズ/mL を添加した、2 mL/分で腎臓の灌流します。 注: 腎臓表面に茶色の磁気ビーズと糸球体の塞栓術、表示されます。</li>
</ol>4. 糸球体 2 つの腎臓からの分離
<ol><li>門で腎臓、カプセルを取り外します。10 cm の細胞培養皿の PBSCM の 15 mL の氷に腎臓を配置します。腎臓を収穫後麻酔下頚部転位とマウスを安楽死させます。手術および灌流の手順の最後約 20-22 分。</li>
	<li>粉々 にカット腎臓、最小可能な新しいダブル エッジ刃を持つ。コラゲナーゼ A の 1 ml 2 mL チューブに組織を移動 (ステップ 1.6 参照) と 37 ° C, 30 分のダイジェスト。前に、消化後に、軽く 1000 μ L ピペットをカット ミックスします。</li>
	<li>冷たい PBSCM を使用して 100 μ m 携帯こし器を通って消化組織をすすいでください。優しく細胞スクレーパーを使用して、残り組織トラフ セル ストレーナーをミンチし、50 mL の容量にその後冷えた PBSCM でそれをすすいでください。</li>
	<li>4 ° C 500 x グラムの懸濁液を遠心分離機 5 分、上清を除去し、ボルテックス ペレット中の冷たい PBSCM 1.5 mL 弱でペレットを再懸濁します。その後、糸球体の懸濁液を新しい 2 mL チューブに入れます。</li>
</ol>5. 洗浄
<ol><li>マグネット キャッチャーを使用して、1 つの側面に糸球体を抽出します。糸球体の磁石に向かって移動している前に 1 分間待ちます。</li>
	<li>マグネット キャッチャーに 2 mL 管したまま 1000 μ L ピペットで上澄みを削除します。最初と 2 番目の洗濯中にステップは糸球体の損失を避けるために管のままに清の 250 μ L を (ステップ 5.3 を参照)。この手順では、すぐにチューブの底に沈む管状構造をさせることを避けるため。 注: 洗濯手順長く持続するそれ以外の場合。</li>
	<li>マグネット キャッチャーから 2 mL チューブを外し、PBSCM、(非常に重要)、その後上下のピペット 1 mL を加える渦。</li>
	<li>マグネット キャッチャーにチューブを戻すし、5.2 でやり直します。</li>
	<li>糸球体の純度が 90% に達するまでは、洗浄のステップを繰り返します。これは、顕微鏡 (40 〜 100 倍) で清の代表的な因数を調べてください。 注: 糸球体は、茶色の磁気ビーズを含むラウンド構造として表示されます。細長い構造は鋼管のフラグメントあり無料磁気ビーズは、茶色の丸い点として表示されます。かさばる構造体として細胞の残骸があります。</li>
	<li>純度に達した場合は、1 ml PBSCM の球体を溶解することにより糸球体の数を見積もります。混合した後、10 μ L の因数を取り出して顕微鏡下で糸球体をカウントします。次の式により糸球体の数を計算する: 最終的な糸球体数 = 10 μ L 分注 x 100 で糸球体の数。</li>
	<li>糸球体の分離を成功させるは、10,000-40,000 の球体の範囲に します。</li>
</ol>6 蛋白質の抽出と免役沈降法 (IP)
<ol><li>6800 x g で 5 分間で 4 ° C で遠心分離によって収集糸球体マグネット キャッチャーを使用しながら上澄みを除去し、冷たい換散バッファーでペレットを再懸濁します (e.g、300 μ l; 30,000 糸球体。チャップスを 1.11 の手順を参照)。30 の最高速度で組織ホモジナイザーを用いたサンプルを均質化 s させ、30 分間氷の上にそれらを分離します。</li>
	<li>4 ° C で 30 分間 15,000 × g で遠心分離によっての不溶性物質を削除します。ピペットの上清を新しい 1.5 mL チューブに lysate のセルが含まれます。ペレットを破棄します。</li>
	<li>ビシンコニン (BCA) を使用して、上清のタンパク質濃度の測定-製造元の指示に従って手法します。700-1,000 μ g/mL の糸球体蛋白量に 30,000 糸球体の成功溶解をもたらします。換散バッファーと同じ蛋白質量を調整します。</li>
	<li>糸球体の総体積の 10% の因数を取るライセート、95 ° C で塩化物イオン + 5 分間インキュベーションする前に dithiothreithol (DTT) x 2 を追加</li>
	<li>IP、頭上式シェーカーで 4 ° C で一晩ストレプトアビジン アガロース ビーズ ライセートの残りの部分を孵化させなさい。</li>
	<li>アガロース ビーズ 4 ° C で 3 分間 1000 × g で遠心、上清を削除し、非特異的タンパク質結合のビーズを洗浄する換散バッファーの 800 μ L を追加します。</li>
	<li>3 回、洗浄を繰り返し、上清を完全に削除します。</li>
	<li>塩化物イオン + DTT × 2 の 30 μ L を追加し、95 ° C、5 分で孵化させなさい。</li>
	<li>ライセートを読み込むと IP プローブ 10 %sds のゲルし 70 V、30 分間で 20 で SDS のゲルを実行 1.5 h. のためのゲルあたり mA はその後、200 で 2 h のためのゲルをしみニトロセルロース膜に mA。</li>
	<li>洗浄液に一晩 5% ウシ血清アルブミン (BSA) で 4 ° C で硝酸セルロースの膜をブロックします。</li>
	<li>4 ° C で一晩興味の抗体を持つ膜をインキュベートします。シェーカー上で 5 分間 3 回バッファーを洗浄洗浄し、室温で 1 h の HRP 標識二次抗体と膜を孵化させなさい。洗浄手順を繰り返します。</li>
	<li>ライセートを視覚化し、CCD カメラで超解像化学発光剤を用いて、膜プローブを免疫沈降.</li>
</ol>

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</ol>

著者が明らかに何もありません。

提案手法により糸球体糸球体 RNA か蛋白質を調査するための分離を成功させる。さらに、プライマリの腎糸球体細胞文化は分離の腎糸球体から実行できます。ビオチンは、糸球体の分離の前に適用されます、腎糸球体細胞表面蛋白質の分類が実行できます。この方法では、体内の腎糸球体細胞表面タンパク質輸送を学ぶことができると蛋白質量の半定量が可能です。腎糸球体細胞の表面の蛋白質の量を正しくテストするための最も重要な手順は、1) マウス外科特に大動脈カニュレーションの手動専門知識の開発、2) 無気泡注射器の接続の空気塞栓を避けるために、腎糸球体に、3) PBSCM による血液灌流が開始したら冷たい条件の下で働きます。
この手法は、マウス外科マニュアル専門知識が不可欠です。大動脈カニュレーションは、容器の郭清は腎臓の灌流を防ぐために特に重要です。大動脈のカットは十分な大きさにする必要があります (血管径の約 50%) カテーテルを導入する十分なスペースを作成します。カテーテルは斜めにカットされて、大動脈にカテーテルの導入が容易になります。郭清に加え導入カテーテル置かれるべき大動脈内高い腎...

蛋白尿は糸球体傷害の特徴で、通常糸球体のフィルター1の破壊を伴います。糸球体のフィルターは、穴あきの内皮細胞、糸球体基底膜と足細胞で構成されます。デリケートな糸球体のフィルターの分子構造は非常に動的かつセル表面蛋白質両方健康と病気の腎臓2,3,4,5,6 で人身売買の対象.セル表面蛋白質のエンドサイトーシスは、足7の生存のために不可欠であると示されています。ネフリンとポドカリキシン足細胞に発現する膜貫通タンパク質であります。ネフリンはスリット糸球体ダイヤフラムのバックボーン ポドカリキシンはコーティング足8,9,10の二次足プロセス シアロ糖タンパク質。エンドサイトーシスの人身売買は、ネフリンとポドカリキシン3,11,12,13,14以前示されています。
我々 の知る限り、セル表面蛋白質のエンドサイトーシスまだ記載されていない文献で糸球体の内皮細胞。ところが、血管内皮細胞は、一般にエンドサイトーシス (すなわち、クラスリン依存、いかだ依存エンドサイトーシス)15,16のさまざまな種類のすべての必要な蛋白質を表現します。したがって、血管内皮 (VE) を使用してこのメソッドを学ぶことができる血管内皮細胞表面の人身売買-カドヘリンおよび細胞の細胞接着分子 (ICAM-2)17糸球体内皮細胞のマーカー蛋白質の表面.
残念ながら、繊細な糸球体 3 層のフィルター表面蛋白質の売買を検討する、セルの正確な体外モデルはありません。このメソッドの目的は、人身売買生体腎糸球体蛋白を勉強します。さらに、このプロトコルには、糸球体、さらに糸球体の RNA、蛋白質、または細胞の解析を有効にするを分離する方法に関する情報が含まれています。18,19のテクニックは別によって記述されていると同様の糸球体分離グループの。
以前は、私たちと他の人の使用している前のヴィヴォビオチン化2,3,4,20,21腎糸球体細胞表面蛋白質の分類します。ただし、この前のヴィヴォメソッドで孤立した糸球体は、エンドサイトーシス人身売買に影響を与える可能性があります機械的ストレスにさらされました。また、腎糸球体細胞表面タンパク質の蛍光標識は広範囲で使用されて文学2,20,22。この方法では、しかし、少数の蛋白質だけを 1 つのスライド内で分析できる、蛍光画像の定量は困難です。
この新しい体内法腎糸球体細胞表面蛋白質豊かさと人身売買で正確に健康と病気、腎臓を勉強する信頼性の高いツールを提供しています、蛍光抗体テストへの追加として使用できます。

<table><tbody><tr><td>Motic SMZ168 BL</td><td>マウス手術用</td><td>Motic</td><td>SMZ168BL</td>顕微鏡</tr><tr><td>KL1500LCD</td><td>Pulch and Lorenz顕微鏡</td> マウス<td>手術用</td><td>150500</td>ライト</tr><tr><td>ロンプン(キシラジン) 2%</td><td>バイエル</td><td>PZN:01320422</td><td>麻酔</td></tr><tr><td>Microfederschere</td><td>ブラウン、Aesculap</td><td>FD100R</td><td>ファインハサミ、大動脈</td></tr><tr><td>Durotip Feine Scheren</td>にカットブラウン、<td>腹部カット用</td><td>Aesculap</td><td>BC210R</td></tr><tr><td>Anatomische Pinzette</td> Braun、<td>腹部が開くまでの手術用</td><td>Aesculap</td><td>BD215R</td></tr><tr><td>。parierklemme</td><td>Aesculap</td><td>BJ008R</td><td>手術用&nbsp;</td></tr><tr><td>セラフレックス</td><td>セラグ ウィスナー</td><td>IC108000</td><td>絹糸</td></tr><tr><td>ケタミン 10%</td><td>メディスター</td><td></td><td>麻酔</td></tr><tr><td>ロンプン (キシラジン) 2%</td><td>バイエル</td><td></td><td>麻酔</td></tr><tr><td>ファインボア ポリエチレン チューブ ID 0.28mm OD 0.61mm</td><td>Portex</td><td>800/100/100</td><td>カテーテル</td></tr><tr><td>ファインボア ポリエチレン チューブ ID 0.58mm OD 0.96mm</td><td>Portex</td><td>800/100/200</td><td>カテーテル</td></tr><tr><td>ハーバードの装置11 Plus</td><td>ハーバードの装置</td><td>70-2209</td><td>シリンジ ポンプ</td></tr><tr><td>EZ-link Sulfo-NHC-LC-Biotin</td><td>Thermo Scientific</td><td>21335</td><td>ビオチン</td></tr><tr><td>Dynabeads 手つかずのマウスT細胞</td><td>Invitrogen</td><td>11413D</td><td>糸球体を塞栓する</td></tr><tr><td>Collagenase A</td><td>Roche</td><td>10103578001</td><td>腎臓組織を消化する</td></tr><tr><td>DynaMag-2</td><td>Invitrogen</td><td>123.21D</td><td>マグネットキャッチ</td></tr><tr><td>ャー100&micro;糸</td><td>球体単離用</td>m細胞ステイナー <td>Greiner-bio</td><td>542000</td></tr> 糸球体純度<tr>を確認するために<td>Axiovert 40 CFL</td><td>Zeiss</td><td>は利用できません</td> 糸<td>球体純度を確認するために</td>利用可能ではありません</tr><tr><td>TissueRuptor</td><td>Quiagen 9002755</td><td></td><td>組織ホモジナイザー</td></tr><tr><td>CHAPS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C3023</td><td>溶解バッファー用</td></tr><tr><td>Tris-HCL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T5941</td> 溶解<td>バッファー用</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>VWR 溶解</td><td>バッファー用</td><td>27810295</td></tr><tr><td>NaF</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>溶解バッファー用</td><td>201154</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E5134</td><td>溶解バッファー用</td></tr><tr><td>ATP</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34369-07-8</td><td>溶解バッファー用</td></tr><tr><td>Pierce BCA Protein Assay Kit</td><td>Thermo Scientific</td><td>23225</td><td>製造元の指示に従ってください</td></tr><tr><td>ネフリン抗体</td><td>Progen</td><td>GP-N2</td><td>ウェスタンブロット用</td></tr><tr><td>ポリクローナルヤギ抗ポドカリキシン抗体</td><td>R&D Systems</td><td>AF15556-SP</td><td>ウェスタンブロット用</td></tr><tr><td>ストレプトアビジン アガロース樹脂</td><td>Thermo Scientific</td><td>20347</td><td>免疫沈降用</td></tr><tr><td>プロテイン A セファロース CL-4B</td><td>GE</td><td>免疫沈降用</td>ヘルスケア<td>17096303</td></tr><tr><td>ポリクローナルウサギ抗p57抗体</td><td>SCBT</td><td>sc-8298</td><td>免疫組織化学</td></tr><tr><td>マウスモノクローナル抗βアクチン抗体、クローン AC-74</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2228</td><td>ウェスタンブロットローディング制御</td></tr><tr><td>ウサギ抗p44/42</td><td>細胞シグナル伝達</td><td>4695</td><td>ウェスタンブロット</td></tr>用 <tr><td>Pierce 高感度ストレプトアビジン-HRP</td><td>Thermo Scientific</td><td>21130</td><td>ウェスタンブロット</td></tr><tr><td>ポリクローナルマウス用 ICAM-2抗体</td><td>R&D Systems</td><td>AF774</td><td>ウェスタンブロット</td></tr><tr><td>ポリクローナルマウス抗VE-カドヘリン</td><td>R&Dシステム</td><td>ズAF1002</td><td>ウェスタンブロット用</td></tr></tbody></table>

腎糸球体と腎糸球体細胞表面タンパク質の標識体内の分離

Isolation of Glomeruli and In Vivo Labeling of Glomerular Cell Surface Proteins

蛋白尿は糸球体のフィルター窓内皮細胞、糸球体基底膜とスリットにダイアフラムの足で構成されているの中断に起因します。デリケートな糸球体のフィルター、特にスリット ダイヤフラムの構造は、さまざまな細胞表面蛋白質の相互作用に依存しています。これらの細胞の表面蛋白質を勉強ところの in vitro研究や組織学的分析にとどまってきた。標識法は、生理学的および病態生理学的条件下での腎糸球体細胞表面タンパク質の研究を可能にするマウス体内の講演を紹介します。このプロトコルは、マウス腎臓の灌流、腎糸球体に分離および興味の蛋白質の内因性の免疫沈降を実行する方法について説明します。腎糸球体細胞表面豊かな半定量はこの手法とビオチン血流にアクセス可能なすべての蛋白質ですぐに利用できる、免疫沈降法を学ぶことができます。さらに、ビオチン化の有無は糸球体を分離できますさらに主糸球体細胞培養 (つまり、プライマリ ポドサイト細胞培養) と同様、糸球体の RNA とタンパク質の解析であります。

糸球体を正確に分離するには、最初 PBSCM とマウスの腎臓を灌流する必要は。PBSCM による血液灌流腎淡 (図 1A) になります。磁気ビーズと糸球体の塞栓術、腎臓の表面 (図 1B) に茶色のドットとして表示されます。マグネット キャッチャーで糸球体の分離は、(図 1C) 腎隣接で汚染を表示ことがあります。糸球体における前に、腎糸球体の純度 &gt; 95% は、糸球体をより徹底的に洗浄することにより成し遂げられる必要が (図 1D)。
生体内でビオチン化はビ...

ここでマウスの体内でビオチンと腎糸球体細胞表面タンパク質のラベリングのためのプロトコルを提案する.このプロトコルは、マウス腎臓の灌流、腎糸球体に分離および興味の蛋白質の内因性の免疫沈降を実行する方法について説明します。

Proteinuria results from the disruption of the glomerular filter that is composed of the fenestrated endothelium, glomerular basement membrane, and ...

この方法は、タンパク尿性腎臓病ではなくタンパク尿性における細胞表面タンパク質の人身売買の役割に関する腎臓学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、生体内での細胞表面タンパク質の密売の研究を容易にし、実験ごとに複数のタンパク質を分析できることです。この方法は糸球体細胞表面の人身売買に関する洞察を提供することができるが、また、浸透し、分離技術によってアクセス可能である他の器官系に適用することができる。つまみつまみへの応答の欠如を確認し、麻酔マウスの腹側を70%イソプロピルで消毒することから始めます。骨盤から胸骨まで皮膚を切り抜け、ピンセットを使って腹部筋膜から皮膚を取り除きます。腹部の中線の両側の皮膚を切断し、膀胱からxiphoidに腹筋層を通して媒体を作る。はさみと鉗子を使用して筋肉を4つの象限に分割し、2つの外科用クランプを使用して動物の首に向かって上の2つの象限を固定します。動物を解剖顕微鏡の下に置き、無菌スワップを使用して内臓を脇に移動します。細かいはさみを使用して、肝腎靭帯を切断します。細かい外科用ピンセットを使用して、腎動脈の肝性腸間膜動脈発膜の周りに1つの縫合を置く。そして大動脈の周り, 腎動脈に近位, 副腎で.鼻隠しから遠位大オルタを解放します, 脂肪や他の組織.次に、分岐の高さで大動脈と大動脈を包み込み、腎動脈の大動脈遠位の周りに別の縫合を配置する。ピンセットを使用して近位大動脈縫合を引き締め、血流を減衰させ、大動脈の直径の半分を大動脈に小さな穴を切断し、腎動脈に遠位する。5ミリリットルの氷冷PBSとカルシウムとマグネシウムを含む10ミリリットルのシリンジに取り付けられた10センチメートルのカテーテルを大間に挿入します。そして、準備された合字でカテーテルを固定します。その後、毎分流量2ミリリットルで腎臓を浸透させ始める。細かいはさみを使って腎動脈の腎静脈に穴を開け、肝および腸間膜動脈の周りの縫合を引き締める。PBSの全容が配信された後、パーフューズを5ミリリットルの氷冷PBSに加え、表面標識用のミリリットルビオチンあたり0.5ミリグラムを補ったカルシウムとマグネシウムに置き換えます。毎分流速2ミリリットルで腎臓を浸透させ続ける。全容が送達されたら、5ミリリットルの氷冷PBSに加えて、100ミリモルグリシンを添加したカルシウムとマグネシウムをカテーテルに含む注射器をカテーテルに取り付けます。グリシン溶液の5ミリリットルすべてを毎分流量2ミリでグリメルリをクエンチする。その後、5ミリリットルの氷冷PBSに加えて、カルシウムとマグネシウムを1ミリリットル当たり200マイクロリットルの磁気ビーズで1分2ミリリットルの流量で腎臓に浸透させます。褐色の磁気ビーズによる糸球体の塞栓は腎臓表面に見える。すべてのビーズが配信されたら、腎臓のカプセルを取り除き、ヒラムで腎臓を収穫します。15ミリリットルのPBSとカルシウムとマグネシウムを含む10センチメートルの細胞培養皿に腎臓を入れます。新しい両刃の刃を使用して、腎臓を可能な限り小さな部分に切ります。コラゲターゼA1ミリリットルを含む2ミリリットルのチューブに30分間摂氏37度で組織を移し、消化前後の組織溶液を修正された1000マイクロリットルピペットチップと穏やかに混合する。インキュベーションの終わりに、100ミクロンの細胞ストレーナーを通して消化された組織をフィルター処理する。細胞スクレーパーと氷冷PBSに加えて、カルシウムとマグネシウムを使用して、残りの組織を細胞ストレーナーを通してつぶします。新鮮な氷冷PBSプラスカルシウムとマグネシウムで腎臓単細胞懸濁液の最終量を最大50ミリリットルにし、遠心分離によって腎臓細胞を収集します。上澄み液を取り除き、1.5ミリリットル未満の氷冷PBSとカルシウムとマグネシウムでペレットを再中断し、糸球体懸濁液を新しい2ミリリットルチューブに移します。糸球体を洗うために、チューブを磁石に入れ、糸球体を凝集します。1分後、上清を取り除くために1000マイクロリットルのピペットを使用してください。そして、磁石からチューブを取り外します。組織にPBSとカルシウムとマグネシウムの1ミリリットルを追加します。糸球体を1回上下にピペットし、細胞を渦巻く。マグネットにチューブを戻し、ちょうど実証したように、グロメルリをもう一度洗います。試料純度が40〜100倍倍での光顕微鏡分析により少なくとも90%に達するまで。次いで、遠心分離により精製糸球体を精製した磁気ビーズを回収する。95%以上の純度を達成するためには、糸球体は実証したように十分に洗浄する必要がありました。ビオチン灌流は、ビオチンの毛細管ループの標識を容易にするが、制御された浸透マウス腎臓を促進しない。糸球体抽出物のビオチン分画の免疫沈殿は、糸球体膜貫通タンパク質ネフリンおよびポドカリキシンがビオチンで免疫沈降するが、対照画分ではないことを明らかにする。ストレプトアビジンによる免疫沈降分の染色は、浸透したビオチン中のビオチンの沈殿したネフリンの存在をさらに確認するが、浸透した動物を制御しない。血管内皮内膜内皮内膜内接着分子2と内皮内タンパク質もビオチン画分内で免疫沈降する。腎毒性腎炎の初期段階では、細胞表面の減少した発現は、コントロールと比較して腎毒性腎炎動物で観察される。確かに密度分析は、コントローラーと比較して腎毒性腎炎動物におけるビオチンのラッドネフリンの有意な減少を示す。全腎リンとアクチン比の定量分析は、マウスのコントロールと腎毒性性腎炎との間に有意な差がないことを明らかにしている。さらに、同量のポドサイトが腎毒性腎炎および対照動物において観察される。後期腎毒性腎炎では、腎毒性のネフリティック動物は、コントロールマウスとネフロー毒性ネフリティックマウスとネフロー中毒性ネフリンマウスの間で測定した細胞表面ネフリンに有意な差がなく、ネフリン発現の回復を示し、ネフロー毒性ネフリティック動物の全体的な全ネフリン減少を示す。また、制御動物に比べてポドサイト数が減少する。この手順を試みる間、糸球体の空気塞栓症を避け、腎臓灌流が始まったら氷冷状態で働くために、接続中に注射器の泡を自由に保つことを忘れないでください。この手順に従って、糸球体RNAおよびタンパク質の単離のような他の方法は、健康で病気の腎臓におけるタンパク質発現または相互作用に関する追加の質問に答えるために行うことができる。

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JoVE Journal

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生物化学

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