Name: コナガからのリアノジン受容体の N 末端ドメインの結晶構造 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-30T14:45:00.000+00:00
Duration: 11 min 31 s
Description: 学ぶコナガのリアノジン受容体N末端ドメインの結晶構造解析。X線結晶構造解析を用いてタンパク質機能と殺虫剤耐性の分子メカニズムを解明し、種特異的殺虫剤開発の基盤を提供します。

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この研究によって提供された資金: キー研究と開発中国プログラムの (2017YFD0201400、2017YFD0201403)、国家自然科学基金、中国の (31320103922、31230061) との国民基礎研究プロジェクト (973) プログラム中国 (2015CB856500、2015CB856504)。ビームライン BL17U1 上海シンクロトロン放射光施設 (SSRF) でスタッフに感謝しております。

1. 遺伝子クローニング、タンパク質の発現と精製
<ol><li>PCR の興味の蛋白質に対応する DNA を増幅 (DBM RyR、Genbank の残留 1 205 なし準拠。AFW97408) と結紮独立クローン (LIC)25ペット 28 a HMT ベクターにクローン。このベクトルには、ヒスチジンの札には、MBP タグには N 末端の TEV プロテアーゼ切断部位が含まれています15 。
	<ol>
<li>LIC LIC 互換 5' 拡張子を持つターゲット遺伝子の増幅用プライマーを設計します。 LIC プライマーを転送します。 5 ' 3' TACTTCCAATCCAATGCAATGGCGGAAGCGGAAGGGG 逆 LIC 入門: 5 ' 3' TTATCCACTTCCAATGTTATTATATGCCGGTCCCGTACGGC</li>
		<li>反応コンポーネント (50 μ L) を組み合わせて: テンプレート DNA (100 ng/μ L)、前方のプライマー (10 μ M)、逆プライマー (10 μ M)、0.5 μ L の DNA ポリメラーゼ (NEB) 10 倍反応の 5 μ L の 1 μ L の 1 μ L の 1 μ L バッファー、dNTP (25 mM) の 1 μ L、RNase の 40.5 μ L 無料 ddH2o.<ol>
<li>PCR マシンで反応混合物を置き、次のプログラムを実行します。</li>
			<li>95 の ° C、3 分間インキュベートし、30 サイクルを実行 (95 ° C、30 s、58 ° C、15 秒、1 分の 72 ° C)。72 ° c 5 分間インキュベートし、4 ° C で押し</li>
			<li>2% の agarose のゲルの全体反応混合物 (50 μ L) を実行し、ゲルの抽出キットを抽出します。製造元のプロトコルに従ってください。</li>
		</ol>
</li>
		<li>結紮独立クローン (LIC)<ol>
<li>SspI 消化 (60 μ L) を実行: ベクトル DNA の 20 μ L (50 ng/μ L)、6 μ L 反応バッファー、SspI の 4 μ L、ddH2o. 全体の反作用を実行 3 h の 37 ° C に加温の 30 μ L x 10 の 1% アガロースゲルのミックスし、ゲルの抽出キットを抽出します。製造元のプロトコルに従ってください。</li>
			<li>ベクターの処理を T4 DNA ポリメラーゼ、DNA を挿入します。次の結合: ベクトルまたは挿入 DNA の 5 μ L (50 ng/μ L)、10 x T4 DNA ポリメラーゼ バッファー、ベクター、挿入 DNA、地デジ (100 mM)、0.4 μ L (LIC 修飾) T4 DNA ポリメラーゼの 1 μ L の dCTP (25 mM) の 1 μ L dGTP (25 mM) の 1 μ L の 2 μ L、および 75 ° C、20 分、40 分の熱不活化酵素の常温 ddH2O. 加温反応の 9.6 μ L。 注: 別の反応に LIC ベクター、挿入 DNA を扱われなければなりません。</li>
			<li>アニーリング反応 LIC を実行します。次の結合: T4 扱われる挿入 DNA、T4 扱わ LIC の 2 μ L の 2 μ L のベクトル DNA。10 分間室温で反応を孵化させなさい。</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>BL21 を変換この組換えプラスミド (DE3)エシェリヒア属大腸菌のセル。<ol>
<li>氷の上の有能なセル (マイクロ遠心チューブに 50 μ L) を解凍します。</li>
		<li>約 1 μ L を追加 (50 ng) 管にプラスミッドの。優しくフリック チューブに 2-3 回移動し細胞および DNA をミックスします。20 分間氷の上管を配置します。</li>
		<li>40 s. 場所追加 1 mL のチューブに室温 LB 培地 2 分にもう一度氷の上管の 42 ° C で衝撃を熱します。</li>
		<li>45 分の 37 ° C で 250 rpm シェーカーに混合管の場所は広がる選択の版の上に混合物の 150-200 μ L です。プレートを反転し、37 ° C で一晩インキュベート</li>
	</ol>
</li>
	<li>単一コロニー文化一晩 37 ° C で 50 μ g/mL カナマイシンを含む 100 mL 2YT 培地で細胞をピックアップします。次の朝、一晩かけて培養 10 mL で 50 μ g/mL カナマイシンを含む 1 L 2YT 培地に接種、外径 φ600まで 0.6 〜 250 rpm で 37 ° C シェーカー インキュベーターで孵化させなさい。その後最終濃度 0.4 mM の IPTG と文化を誘導し、30 ° C で別の 5 h の成長</li>
	<li>4 ° C で 10 分間 8,000 × gで遠心分離によって細胞を収穫、細胞を収集し、40 mL の溶解バッファー (10 mM HEPES pH 7.4 では、250 mM KCl、10 mM β-メルカプトエタノール、25 μ g/mL リゾチーム、25 μ g/mL DNase すべて 10 g 細胞を再懸濁します、1 mM PMSF)。<ol>
<li>1 と 8 分のための 65% 振幅で sonication によって混乱させる s オフに 1 秒。4 ° C で 30 分間 40,000 × gで遠心分離によって細胞の残骸を削除します。0.22 μ m のフィルターを通過して上清をフィルターし、サンプル ループを読み込みます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>融合蛋白質を浄化する、タグの切断、再ターゲット蛋白質を浄化します。<ol>
<li>Ni NTA 列を使用して融合蛋白質を浄化する (結合バッファー: 10 mM HEPES pH 7.4 では、250 mM KCl; 溶出バッファー: 10 mM HEPES pH 7.4 では、250 mM KCl、500 mM のイミダゾール) 20-250 mM のイミダゾールの線形グラデーションでの浄化システムで浄化して。</li>
		<li>TEV プロテアーゼ溶出ターゲット蛋白質を切断 (1:50 比) 4 ° C でオーバー ナイト</li>
		<li>アミロース樹脂カラムを使用して胸の谷間の反応混合物を浄化する (結合バッファー: 10 mM HEPES pH 7.4 では、250 mM KCl; 溶出バッファー: 10 mM HEPES pH 7.4 では、250 mM 10 mM マルトース KCl) とタグを取り外して、TEV プロテアーゼに Ni NTA 列。ターゲット蛋白質はこれらの 2 つの列の通過割合になります。</li>
		<li>Dialyze 透析バッファー (10 mM トリス塩酸 pH 8.8, 50 mM KCl、塩濃度を削減する 10 mM β-メルカプトエタノールに対してサンプル。陰イオン交換カラムのサンプルを浄化 (結合バッファー: 10 mM トリス塩酸 pH 8.8, 10 mM β-メルカプトエタノール; 溶出バッファー: 10 mM トリス塩酸 pH 8.8, 1 M の KCl、10 mM β-メルカプトエタノール) 20-500 mM KCl 溶出バッファーの線形グラデーションで。</li>
		<li>精製プロセスの最後のステップとして遠心濃縮器 (MWCO 10 kDa) を使用して蛋白質を集中し、均一性を確認する Superdex 200 26/600 ゲルろ過カラムに注入します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>蛋白質の純度を調べるには、15 %sds のページで実行します。 注:すべての列をバインド 2 mL/min の流量と 1 mL/分でゲルろ過を除いて 4 mL/分の溶出流量タンパク質精製システムで実行しています。</li>
</ol>2. タンパク質合成と結晶化
<ol><li>10 mg/ml-80 ° C で保存する前に遠心濃縮器 (MWCO 10 kDa) と結晶化バッファーにバッファー交換を使用して浄化された蛋白質のサンプルを集中します。</li>
	<li>結晶化スクリーニングを実行 (1:1 の比率、200 の蛋白質および 200 nL 貯留層バッファーの nL) 座ってリキッドハンド リング 96-well フォーマットにおけるロボット システムを使用していくつかの結晶化キットで 295 k の蒸気拡散法を破棄しています。 注:我々 は分子の大きさとハンプトンの研究からキットを使用し、グリフォン自動液体ハンドリング システム。</li>
	<li>蒸発を防止し、貯留層バッファーと蛋白質の低下の平衡 96 ウェルの結晶化プレートをシールします。18 ° C で結晶のインキュベーターでプレートを保つ</li>
	<li>結晶の形成と成長を監視するための光学顕微鏡を用いて定期的に 96 ウェルのプレートを確認します。</li>
	<li>塩の結晶からタンパク質結晶を区別するため、タンパク質染料を使用します。ターゲットのドロップに色素の 1 μ L を追加します。約 1 時間待って、顕微鏡下で観察します。タンパク質結晶が青くなります。</li>
	<li>肯定的な結晶化条件 (硫酸アンモニウム 1.5 M、0.1 M トリス pH 8.0) を使用して、ぶら下げを使用して結晶をさらに最適化ドロップ蒸気拡散法 24 ウェルのプレート。<ol>
<li>PH 7.0 8.5 0.5 pH 単位間隔にすべてのステップを最適化します。1.2 M から 1.7 m の硫酸アンモニウムの濃度 0.1 M 間隔ですべてのステップを最適化します。(ここで大きな板状結晶を製造する最高の条件だった 0.1 M HEPES pH 7.0 と 1.6 M 硫酸アンモニウム)</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 結晶のマウント、x 線データ コレクション、および構造決定
<ol><li>Cryoloop の結晶とフラッシュのクールな液体窒素の低温耐性 20% グリセロールを含む貯留層ソリューションを使用してマウントします。保管および輸送用の unipuck に結晶を配置します。</li>
	<li>中古リガク社内 x 線 diffractor を用いたタンパク質結晶を画面します。(私たちのデータセットは上海放射光施設で BL17U1 から収集された) 放射光施設データ収集のため、最高の解像度で最高のものを選択します。<ol>
<li>ビームライン制御ソフトウェア BluIce26を使用してマウントし、自動または手動のセンタリング機能で結晶の中心します。開始角度、露出時間、検出器距離、フレームの幅と番号を含むデータ収集戦略を決定するテストのエクスポー ジャーを実行します。</li>
		<li>データセットをそれに応じて収集 (露出時間 1 秒、1 ° フレーム幅 350 mm の検出器距離と 180 フレームを集めました)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>インデックス、統合 HKL2000 スイート27を使用してデータセットを拡張します。まず回折スポットを見つけるピーク検索機能を遂行しスポットをインデックスし、右側のスペース グループを選択します。ピーク統合後適切なエラー モデルを持つデータセットをスケールし、出力 .sca ファイルを保存します。</li>
	<li>フェニックス29フェイザー28を使用して分子の交換によって位相問題を解決します。<ol>
<li>Xtriage30非対称単位中のタンパク質分子の可能なコピー数を計算します。</li>
		<li>高いシーケンスの id と構造の類似性文学または Phyre231など構造予測サーバによって生成されたモデルから知られている構造を用いた標的タンパク質として適切な構造のテンプレートを検索 (RyR1 NTD のウサギを用いて、検索モデル、PDB ID 2XOA)。</li>
		<li>フェイザー回折データ ファイル、テンプレート構造体ファイルおよび蛋白質シーケンス ファイルを使用して、解決策を見つけるを実行します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>フェニックス29フェイザーから出力ファイルとターゲット蛋白質からシーケンス ファイルを使用して、初期モデルを生成するために毎晩32を実行します。</li>
	<li>手動でオオバン33を使用して変更された実験的電子密度に構造を構築し、反復的なサイクルで phenix.refine34を使用して絞り込みます。</li>
	<li>フェニックス18の検証ツールを使用して最終的なモデルを検証します。</li>
</ol>

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著者が明らかに何もありません。

本稿では recombinantly エクスプレス、浄化、結晶化、DBM RyR NTD の構造を決定する手順をについて説明します。結晶化の重要な要件は、高溶解性、純度、均一性タンパク質を得ることです。プロトコル、hexahistidine タグとより高い倍純度を取得する浄化に利用できるどちらの MBP タグが含まれているペット 28 a HMT ベクターを使用にしました。さらに、MBP タグがターゲット蛋白質の溶解度で補助されます。我々 は高純度、結晶化に適していたタンパク質が得られた 5 つの連続した手順によりタンパク質を精製しました。リキッドハンド リング システムを使用して結晶化スクリーニングを行った。手動ドロップ設定伝統的なスクリーニングに比較すると、自動化されたシステムは、サンプルの量が非常に少ないを使用して、時間とエネルギーを節約します。また、液体ハンドリングの精度の再現性を強化します。結晶された回折社内審査、データ収集のための放射光と、高い強度を持つ x 線と以下の発散降伏高品質データ。分子交換類似構造のテンプレート データベースで使用可能な最初の選択肢であった。MAD、悲しい、ミール等を含む実験的段階...

リアノジン受容体 (RyRs) は、特定のイオン チャンネルは、筋細胞の筋小胞体 (SR) 膜を渡る Ca2 +イオンの透過を仲介します。したがって、彼らはプロセスを結合励起収縮に重要な役割を果たします。その機能の形で RyR 分子質量とホモ四量体としてアセンブル > 2 MDa、各サブユニットから成る 〜 5000 アミノ酸残基と。哺乳類では、3 つのアイソ フォーム: RyR1 - 骨格筋型、RyR2-心筋型および RyR3-普遍的組織1で表されます。
昆虫は、筋肉や神経組織2で表現される RyR の 1 種類のみです。昆虫 RyR は約 47% のシーケンス id を持つ哺乳類 RyR2 に似て3。RyR 鱗翅目や鞘翅目のターゲット著者殺虫剤を開発し、バイエル (フルベンジアミド)、デュポン (chlorantraniliprole)、シンジェンタ (cyantraniliprole) のような主要な企業によって販売されています。比較的最近の発売以来、著者殺虫剤は殺虫剤の急成長しているクラスの一つなっています。現在、これらの 3 つの殺虫剤は年間の売り上げ高は、2009 年 (Agranova) 以来 50% 以上の成長率で 20 億米ドルを越えています。
最近の研究では、これら殺虫剤4,5,6,7,8の使用法の数世代後の昆虫の抵抗の開発を報告しています。抵抗膜貫通ドメインの変異 RyRs コナガ (DBM)、コナガ(G4946E、I4790M) およびトマト マメハモグリバエに対応する位置から、このトゥタ(G4903E、I4746M) 領域を表示します。この地域はチャネル4,8,9のゲートのために重要であること知られている著者の殺虫剤の結合に関与するかもしれない。この分野で広範な研究にもかかわらず著者殺虫剤の正確な分子メカニズムはとらえどころのないままです。また、耐性変異がジアミドとの相互作用に影響するかどうか、直接またはアロステリックはクリアです。
以前の研究は、哺乳類からいくつかの RyR ドメインの構造と x 線結晶構造解析と電子顕微鏡で、それぞれ10、11、フルレングスの哺乳類 RyR1 と RyR2 の構造を報告しています。 12,13,14,15,16,17,18,19,20,21.しかし、これまでのところ、昆虫 RyR の構造が報告されていない、受容体機能の分子の複雑さと同様、殺虫剤作用分子機序と殺虫剤抵抗性の発達を理解することから私たちを禁止します。
本稿では、コナガ、アブラナ科作物の世界22に感染する破壊的な害虫からリアノジン受容体の N 末端 β トレフォイル ドメインの構造特性の一般化されたプロトコルを提案する.公開されたウサギ RyR1 NTD 結晶構造23,24と低温電子顕微鏡構造モデル16,17,18,19,によると設計された構造20,21。 これは最初の高分解能構造昆虫 RyR チャネルの開閉機構を明らかにし、構造基づかせていた薬剤の設計を使用して特異的殺虫剤の開発の重要なテンプレートが提供するために報告します。構造解明のため近くの原子分解能での蛋白質の構造の決定の「ゴールド スタンダード」として考慮される x 線結晶解析を採用。結晶化プロセスは予測不可能な労働集約的なこのステップバイ ステップのプロトコルはエクスプレス、浄化し、一般的に昆虫 RyR または他の蛋白質の他のドメインを特徴づける研究者に役立ちます。

<table><tbody><tr><td>pET-28a-HMTベクター</td><td></td><td></td><td>この修飾されたpETベクターには、ヘキサヒスチジンタグ、MBP融合タンパク質、およびN末端のTEVプロテアーゼ切断部位が含まれています(Lobo and Van Petegem, 2009)</td></tr><tr><td>E. coli BL21 (DE3) strain</td><td>Novagen</td><td>69450-3CN</td><td></td></tr><tr><td>HisTrapHP column (5 mL)</td><td>GE Healthcare</td><td>45-000-325</td><td></td></tr><tr><td>Amylose resin column</td><td>New England Biolabs</td><td>E8021S</td><td></td></tr><tr><td>Q セファロース高性能コラム&nbsp;</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1154-01</td><td></td></tr><tr><td>Amicon 濃縮器 (10 kDa MWCO)</td><td>Millipore</td><td>UFC901008</td><td></td></tr><tr><td>Superdex 200 26/600 ゲルろ過カラム&nbsp;</td><td>GE Healthcare</td><td>28-9893-36</td><td></td></tr><tr><td>自動リキッドハンドリングロボットシステム&nbsp;</td><td>アートロビンスインスツルメンツ</td><td>グリフォン</td><td></td></tr><tr><td>96 ウェル クリスタルクイック</td><td>グライナー バイオワン</td><td>82050-494</td><td></td></tr><tr><td>ユニパック</td><td>分子寸法</td><td>MD7-601</td><td></td></tr><tr><td>マウント クライオループ - 20ミクロン</td><td>ハンプトンリサーチ</td><td>HR4-955</td><td></td></tr><tr><td>クライオワンド</td><td>分子寸法</td><td>MD7-411</td><td></td></tr><tr><td>パックデュワーローディングツール</td><td>分子寸法</td><td>MD7-607</td><td></td></tr><tr><td>ナノドロップ</td><td>Thermo Scientific</td><td>NanoDrop One</td><td></td></tr><tr><td>Crystal インキュベーター</td><td>分子寸法</td><td>MD5-605</td><td></td></tr><tr><td>X線回折装置</td><td>リガク</td><td>FRX</td><td></td></tr><tr><td>PCRマシン</td><td>エッペンドルフ</td><td>Nexus GX2</td><td></td></tr><tr><td>プラスミドミニプレップキット</td><td>Qiagen</td><td>27104</td><td></td></tr><tr><td>ゲル抽出キット</td><td>Qiagen</td><td>28704</td><td></td></tr><tr><td>SspI 制限エンドヌクレアーゼ</td><td>NEB</td><td>R0132S</td><td></td></tr><tr><td>T4 DNA ポリメラーゼ</td><td>ノバゲン</td><td>2868713</td><td></td></tr><tr><td>カナマイシン</td><td>サイエンティフィック ケミカル</td><td>25389940</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Genview</td><td>367931</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Genview</td><td>7365459</td><td></td></tr><tr><td>&β;-メルカプトエタノール</td><td>Genview</td><td>60242</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>Thermo Scientific</td><td>Sorvall LYNX 6000&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Sonnicator</td><td>Scientz</td><td>II-D</td><td></td></tr><tr><td>タンパク質精製システム</td><td>GE Healthcare</td><td>Akta Pure</td><td></td></tr><tr><td>Light 顕微鏡</td><td>Nikon</td><td>SMZ745</td><td></td></tr><tr><td>IzIt 結晶色素</td><td>Hampton Research</td><td>HR4-710</td><td></td></tr><tr><td>電気泳動ユニット</td><td>Bio-Rad</td><td>1658005EDU</td><td></td></tr><tr><td>シェーカーインキュベーター</td><td>Zhicheng</td><td>ZWYR-D2401</td><td></td></tr><tr><td>インデックスクリスタルスクリーン</td><td>ハンプトンリサーチ</td><td>HR2-144</td><td></td></tr><tr><td>構造クリスタルスクリーン</td><td>分子寸法</td><td>MD1-01ProPlex</td><td></td></tr><tr><td>クリスタルスクリーン</td><td>分子寸法</td><td>MD1-38</td><td></td></tr><tr><td>PACTプレミアクリスタルスクリーン</td><td>分子寸法</td><td>MD1-29</td><td></td></tr><tr><td>JCSGプラスクリスタルスクリーン</td><td>分子寸法</td><td>MD1-37</td><td></td></tr></tbody></table>

コナガからのリアノジン受容体の n 末端ドメインの結晶構造

Crystal Structure of the N-terminal Domain of Ryanodine Receptor from Plutella xylostella

強力かつ効率的な農薬の昆虫リアノジン受容体 (RyRs) をターゲットとして開発されている農業害虫コントロールの領域に大きな関心。日付、著者殺虫 RyRs が製品化されている害虫を対象、20 億ドルの年間売り上げ高を生成します。RyR を対象とした殺虫剤の作用のモードの理解は昆虫 RyR に関する構造情報の不足によって制限されます。これは順番の害虫に殺虫剤抵抗性の発達の理解を制限します。コナガ (DBM) は、著者の殺虫剤に抵抗性を示すことも報告されている世界、アブラナ科作物を破壊する壊滅的な害虫です。したがって、それは DBM RyR、特に伝統的な著者の結合部位とは異なる地域をターゲットをターゲット新しい殺虫剤を開発する非常に実用的な重要なのです。構造的に特徴付ける DBM から RyR の N 末端ドメイン プロトコルを紹介します。X 線結晶構造の解像度で分子の交換によって解決された Å、2.84 のベータ トレフォイル折りたたみモチーフと並ぶ α ヘリックスを示しています。このプロトコルは一般的に式、浄化および他のドメインまたは蛋白質の構造解析の合わせることができます。

浄化
DBM RyR の N 末端ドメインは、hexahistidine タグ、MBP タグ TEV プロテアーゼ切断部位との融合蛋白質として表現されました。我々 は、結晶化の目的に適した高純度のタンパク質を得るために 5 つのステップ浄化戦略を追った。最初は、融合タンパク質は、Ni NTA 列 (HisTrap HP) によって細胞ライセートの可溶性画分から精製した.次に、融合タンパク質は TEV プロテアーゼ胸の谷間を受けたし、Ni NTA 列続いてアミロース樹脂カラムによる hexahistidine MBP 鋳型を除去しました。さらに、蛋白質は、陰イオン交換カラム (Q セファローズ HP) によって精製された、最終的にゲルろ過カラム (Superdex 200 26/600) によって。2YT メディアを使用して 1 L 細菌文化からの浄化された蛋白質の最終的な収量 〜 4 mg であった。浄化された蛋白質は SDS ページの ~ 21 kDa (...

この記事で私たちはコナガ (コナガ) からリアノジン受容体の N 末端ドメインの蛋白質の発現、精製、結晶化、構造決定のプロトコルを説明します。

コナガからのリアノジン受容体の N 末端ドメインの結晶構造

Development of potent and efficient insecticides targeting insect ryanodine receptors (RyRs) has been of great interest in the area of agricultural pest ...

リアノジン受容体ドメインの構造を解くと、タンパク質機能の分子機構、殺虫剤作用、および殺虫剤耐性の開発の理解に役立ちます。この尺度は、ほぼ原子分解能でタンパク質構造決定のためのゴールドスタンダードと考えられている構造イラストのためのX線結晶学の使用を意味する。この高解像構造の昆虫リノジン受容体ドメインは、チャネル・ゲージのメカニズムを明らかにし、構造ベースの薬物設計アプローチを用いた種特異的殺虫剤の開発に重要なテンプレートを提供する。一般的に、この方法に新しい個人は、将来のタンパク質結晶学者が生化学、生物物理学、コンピュータサイエンス、数学に堪能でなければならないので、苦労します。まず、ポリメラーゼ連鎖反応により目的のタンパク質に対応するDNAを増幅する。反応の最後に、2%アガロースゲル上で50マイクロリットルの反応ミックス全体を実行し、標準的なプロトコルに従ってゲル抽出キットでDNAを抽出します。次に、20マイクロリットルの20マイクロリットルのベクターDNAを、10X反応バッファーの6マイクロリットルとSspI制限酵素の4マイクロリットルを30マイクロリットルの二重蒸留水に混合して、LICベクターDNAを直線化する。この反応混合物を摂氏37度で3時間インキュベートする。インキュベーションの最後に、反応ミックス全体を1%アガロースゲルで実行し、続いて、メーカーの指示に従ってゲル抽出キットを使用して線形化ベクターDNAを抽出します。次に、標準的なプロトコルに従って、5マイクロリットルの線形化ベクターDNAとPCR増幅インサートDNAに対して、別々のT4 DNAポリメラーゼ処理を行う。室温で40分間インキュベートし、続いて摂氏75度で酵素熱不活性化を20分間行う。T4処理した2マイクロリットルのT4処理した挿入DNAを2マイクロリットルのT4処理LICベクターDNAと室温で10分間インキュベーションして結合することにより、ライゲーション非依存性クローニングアニーリング反応を行う。BL21(DE3)E.大腸菌細胞を組換えプラスミドで変換し、氷上で50マイクロリットルのコンピテントセルを解凍し、約1マイクロリットルのアニールプラスミドをチューブに加えます。チューブを2~3回軽くフリックして細胞とDNAを混合し、チューブを氷の上に20分間戻します。インキュベーションの終わりに、42°Cで細胞を熱ショックを与え、続いて氷の上に2分間戻ります。次に、室温LB培地を1ミリリットル加え、セルを摂氏37度で45分間250RPMシェーカーに置きます。揺れのインキュベーションの終わりに、この混合物の150〜200マイクロリットルを選択プレートにプレートし、37°Cで一晩プレートを反転させる。翌日、カナマイシンを添加した2-YT培地の100ミリリットルの単一コロニーを、摂氏37度のシェーカーインキュベーターで一晩培養する。翌朝、1リットルの2-YT培地を接種し、カナマイシンを添加し、10ミリリットルの一晩培養を行い、OD600の読み取り値が約0.6に達するまで振盪して摂氏37度でインキュベートする。次いで、IPTGで培養した培養を0.4ミリモルの最終濃度に誘導し、30°Cで5時間細胞を増殖させる。インキュベーションの終了時に、遠心分離により細胞を収穫し、そして、リシス緩衝液濃度の40ミリリットルあたり10グラムの細菌にペレットを再懸濁する。65%の振幅で超音波処理によって細胞壁を破壊し、1秒間オフに1秒間、8分間破壊する。遠心分離によって細胞の破片を取り除きます。次に、22マイクロメートルのフィルターで上澄みをフィルターし、溶液をサンプルループにロードします。融合タンパク質を精製するには、サンプルループからろ過した上清を5ミリリットルのニッケルニトロロトリアセティックカラムに注入し、20~250ミリモルイミダゾールの線形勾配を有する精製システム上で行います。溶出した標的タンパク質をタバコエッチウイルスプロテアーゼで切断し、1〜50比で、摂氏4度で一晩、アミロース樹脂カラム上に切断反応混合物を精製し、ニッケル-ニトロロトリアセティックカラムとし、タグとタバコエッチングウイルスプロテアーゼを除去する。塩濃度を下げるために、ニッケルニトロロトリアセクチカラムからの透析液を透析液バッファーに対して透析し、溶出バッファー内の20〜500ミリモル塩化カリウムの線形勾配によって陰イオン交換カラム上のサンプルを精製します。次に、遠心濃縮器にタンパク質を濃縮する。濃縮タンパク質をSuperdex 200 26/600ゲル濾過カラムに注入して均質性を確認し、タンパク質の純度を15%SDS-PAGEで評価します。結晶化のためにタンパク質を調製するには、精製したタンパク質サンプルを遠心濃縮器に1ミリリットル当たり10ミリグラムに濃縮し、80°Cの貯蔵前に結晶化緩衝液にバッファー交換する。結晶化スクリーニングを行うために、295ケルビンのシッティングドロップ蒸気拡散法を使用し、いくつかの結晶化キットと、96ウェル形式の自動液体ハンドリングシステムを使用します。ドロップ設定の最後に、96ウェル結晶化プレートを密封して蒸発を防ぎ、そしてリザーババッファー内のタンパク質の滴下の平衡を可能にする。プレートを18°Cの水晶インキュベーターに入れ。結晶の形成と成長を監視するために、定期的に光顕微鏡の下でプレートをチェックしてください。タンパク質結晶を塩結晶から分化するには、1マイクロリットルのタンパク質結晶色素をターゲットドロップに加え、1時間後に顕微鏡下で結晶を観察します。タンパク質結晶が青色に表示されます。結晶をさらに最適化するには、24ウェルプレートで正の結晶化条件と吊り下げ液拡散法を使用し、続いて水晶インキュベーターで摂氏18度でインキュベートします。タンパク質の構造を決定するには、液体窒素でフラッシュ冷却するために光顕微鏡の下でクライオループに結晶を取り付け、貯蔵および輸送のためにユニバックに結晶を置きます。手動センタリング機能を使用して、結晶をマウントし、中央に配置する、社内X線ディプラクタで結晶を事前にスクリーニングします。次に、X線回折ソフトウェアを使用してデータを収集します。HKL-2000 スイートを使用して、データ・セットの索引付け、統合、およびスケーリングを行う場合は、まず、ディテクタを選択し、データ・セットをロードします。そして、ピーク探索機能を行い、回折スポットを見つける。スポットをインデックス化し、適切なスペース グループを選択し、ピーク統合を実行します。次に、データセットをスケールします。エラーモデルを調整し、再度スケールします。出力 sca ファイルを保存します。Phenix ソフトウェア・スイートを使用して構造を判別するには、新しいプロジェクトを作成します。まず、scaファイルでExtriageを実行して、非対称単位内のタンパク質分子の可能なコピー数を計算します。次に、分子置換によって位相問題を解決し、Phaserを実行し、回折データファイルを用いて、標的タンパク質として高配列同一性および構造類似性を有するテンプレート構造ファイル、およびタンパク質配列ファイルを、溶液を見つける。Phenixで自動構築を実行し、Phaserの出力ファイルとターゲットタンパク質のシーケンスファイルを使用して初期モデルを生成します。手動で、COOTを使用して改変実験電子密度に構造を構築し、反復サイクルでのPhenix精製を使用して精製します。Phenix の検証ツールを使用して、最終的なモデルを検証します。本代表的実験では、ダイヤモンドバックガ・リアノジン受容体タンパク質の末端ドメインの精製が実証されるように、STS-PAGE分析により約21キロダルトンで単一バンドを生じた。ゲル濾過カラムからの溶出体積は、精製されたリヨジン受容体末端ドメインがモノマーであることを確認した。結晶化のために、高品質の板状結晶が形成された最も最適な条件は、pHの1モルHEPESが7、および1.6モル硫酸アンモニウムの存在下にあった。実証されたソフトウェアを利用した回折データセットからのタンパク質構造の決定は、残基1〜205をカバーするダイヤモンドバックガ・リアノジン受容体末端ドメインを明らかにした。大きな障害、柔軟な領域、または弱い親和性を有するタンパク質は、結晶化に挑戦しています。これらのシナリオでは、表面エントロピーの減少、ループ切り捨て、架橋などのタンパク質工学戦略は、より良いタンパク質結晶を得る可能性を高める可能性があります。高解像度のタンパク質構造を明らかにすることに加えて、X線結晶学は、構造ベースの農薬設計に役立つタンパク質と農薬の相互作用を研究するためにも使用される可能性があります。

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

この論文は、高分子のほぼネイティブな状態の高品質な顕微鏡画像を取得するために使用されるクライオ電子顕微鏡法について説明しています。この方法は、高分子の3D再構成を生成するために考案された単一粒子アプローチを使用したさらなるコンピュータ化された処理に適した画像を生成します。...

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学ぶコナガのリアノジン受容体N末端ドメインの結晶構造解析。X線結晶構造解析を用いてタンパク質機能と殺虫剤耐性の分子メカニズムを解明し、種特異的殺虫剤開発の基盤を提供します。

コナガからのリアノジン受容体の N 末端ドメインの結晶構造

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