Name: 退色により、シアノ バクテリアプロクロロコッカスFtsZ リングの超解像イメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-06T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 9 s
Description: 学ぶ退色法とSTORMを組み合わせたシアノバクテリアの超解像イメージング手法。ProchlorococcusのFtsZリングの詳細な可視化により、光合成生物におけるタンパク質動態の研究を推進します。

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著者は、彼女のテクニカル サポートと原稿のコメントありがとう Daiying 徐。本研究は、中国の国家自然科学基金 (プロジェクト番号 41476147) からの助成金、研究助成金の評議会は、香港特別行政区、中国 (プロジェクト番号 689813 および 16103414) でサポートされます。

1. 試料の調製及び固定
<ol><li>海水ベース Pro99 中12の 5 mL を無菌プロクロロコッカスMED4 1 mL を接種します。5 日後 35 µmol 光子/m2s の強度と光の下で 23 ° cプロクロロコッカス文化を育てる、1.5 mL チューブに文化の 1 mL を集めます。 注: 接種後 5 日間プロクロロコッカスMED4 がフェーズに到達、後半ログ約 108セル/ml、嵐イメージングのために適切であります。</li>
	<li>文化を修正する 1.5 mL チューブに作りたての 25% パラホルムアルデヒド (PFA) (w/v) からホルムアルデヒドの 100 μ L と 50% グルタールアルデヒド 2 μ L を追加します。20 分間室温で暗闇の中でサンプルをインキュベートします。 注: サンプルいた固定のため暗闇の中グルタルアルデヒドが軽いのため敏感です。</li>
	<li>スピン ・ ダウン 1 分; 13,500 x gでサンプル上澄みを除去し、Pro99 中12の 100 μ L に細胞を再懸濁します。免疫染色まで 4 ° C のサンプルを格納します。</li>
</ol>2. ポリスチレン ビーズ Coverslip プレコート
注: ポリスチレン ビーズはドリフトの補正のための画像マーカとして考慮されます。
<ol><li>渦元ポリスチレン ビーズのバイアルし、1:20,000 で希釈する作業スラリーとして 50% エタノールを準備します。</li>
	<li>ホット プレートをオンに、120 ° C に温度を設定し、ホット プレート coverslips を配置します。</li>
	<li>各 coverslip に作業スラリーの 100 μ L をロードします。10 分間ホット プレート上 coverslip のインキュベートし、その後、慎重に室温で保管用シャーレに、coverslips を転送します。 注: 上、それに接続されているビーズが付いている側面に向き、セルは同じ側に接続する必要があります。ビーズは、coverslips に固定化した、サンプルの漂流を修正するために使用される嵐イメージング中にリアルタイム。ビーズを固定後、coverslips が燃え上がることはできません。</li>
</ol>3. ビーズ コーティング Coverslip の上にポリ-L-リジンのコーティング
注: シアノ バクテリア細胞の固定化のためこれです。
<ol><li>ビーズ コーティング面を上に向けて、coverslip の中心にポリ-L-リジン (1 mg/mL) の 100 μ L を追加します。室温で 30 分間座ってみましょう。</li>
	<li>ピペットを使用して、慎重に未接続ポリ L リジンを熱望して 1.5 mL チューブにそれを転送します。再利用のための 4 ° C でポリ L リジンを保存します。</li>
	<li>60 mm のペトリ皿に 10 ml の超フィルター水 coverslip をすすいで coverslip ペーパー タオルの上に簡潔に乾かします。</li>
	<li>ペトリ皿 (100 mm) 後で使用のために、coverslip を格納します。皿に、カバーガラスの添付ファイルを防ぐため、パラフィルムの層でシャーレを行します。 注: ビーズとポリ-L-リジン、プレコート、coverslip は室温で少なくとも半年は、格納できます。したがって、事前に coverslips のバッチを準備する勧めします。</li>
</ol>4. 上の細胞の固定化
<ol><li>プレコート coverslip を今後染色皿と呼ばれる、下部パラフィルムで新しいペトリ皿に転送します。100 μ L の上、固定のサンプルを読み込むし、携帯添付できるように 30 分間座ってみましょう。</li>
	<li>今後洗濯料理と呼ばれる、12 ウェルのプレートのウェルに、coverslip を転送します。Coverslip を洗浄する井戸をリン酸緩衝生理食塩水 (PBS) (10 mM ナ2HPO4、1.8 mM KH2PO4、137 mM NaCl と KCl、2.7 mM の pH 7.4) の 1 つの mL を追加します。PBS バッファーを削除し、再度、coverslip を洗浄する新しい PBS バッファーを追加します。</li>
</ol>5. シアノ バクテリア細胞の透過
<ol><li>ピペットを使用して PBS バッファーを削除します。0.05% 非イオン性の洗剤-100 (v/v)、10 ミリメートルの EDTA、10 mM トリス (pH 8.0) と 0.2 mg/mL リゾチームを含む洗濯料理のほかに 1 mL の作りたて透過バッファーを追加します。</li>
	<li>37 ° C、20 分で洗濯料理を孵化させなさい。透過バッファーを削除します。</li>
	<li>PBS バッファーの 1 つの mL を追加し、5 分 PBS バッファーを削除するために洗濯料理を優しく振るシェーカーで洗濯皿を置きます。3 x、coverslip を洗浄するこの手順を繰り返します。</li>
</ol>6. クロロフィルの退色顔料ブロックの手順で
<ol><li>染色の皿、coverslip に転送します。0.2% (v/v) 非イオン性洗剤 100 と、coverslip の上の 3% (v/v) ヤギ血清を含むブロック バッファーの 50 μ L を追加します。</li>
	<li>氷の上の皿を汚す全体を置き、1,800 µmol 光子/m2·s で光強度を少なくとも 60 分フォトブリーチング用キセノン光源の下に移動します。</li>
	<li>退色とブロックの後に、ペーパー タオルの端に吸着させることによりブロック バッファーを慎重に取り外します。 注: キセノン ライトの強度が高いので適切なサングラスが目の保護のため必要であります。一方、光源と目の損傷を引き起こす可能性があります、光の漏れを避けるためにアルミ箔を使用してプレートをラップします。Coverslip 15 分毎、coverslip しっとりしていることを確認するチェックしてください。Coverslip が乾燥している場合は、バッファーの妨害の 50 μ L を追加します。</li>
</ol>7. 抗体の結合
<ol><li>製造元の指示に従って水を 200 μ l 添加の反アナベナFtsZ 抗体を溶解します。</li>
	<li>1 μ L のブロック バッファーの 99 μ L にアンチ FtsZ 抗体を希釈します。上、希釈した一次抗体の 50 μ L を追加し、30 分間室温でインキュベートします。</li>
	<li>洗濯料理、coverslip に転送します。PBS バッファーの 1 つの mL を追加し、ふれ洗濯皿を置きます。軽くこの手順、coverslip を洗浄する 3 x 5 分繰り返し洗濯料理を振る。</li>
	<li>染色の皿、coverslip に転送します。500 μ L のブロック バッファーに二次抗体の 1 μ L を希釈します。Coverslip の上に希釈した二次抗体の 50 μ L を追加し、室温で暗闇の中で 30 分間インキュベートします。</li>
	<li>洗濯料理、coverslip に転送します。シェーカーで PBS バッファーの 1 つの mL で洗います。そっと振って 5 分ラップ洗浄皿アルミ紙に耐光性それを洗濯料理。3 x この手順を繰り返します。</li>
	<li>500 μ L のホルムアルデヒド 4% パラホルムアルデヒド (PFA) (w/v) から作りたてを井戸に追加します。Coverslip 室温で暗闇の中で 15 分間、インキュベートします。</li>
	<li>ホルムアルデヒドを削除し、洗浄のステップ 3 倍を繰り返します。</li>
	<li>暗闇の中で 4 ° C で PBS バッファーにイメージングまで、coverslip を格納します。</li>
</ol>8. バッファーをイメージング嵐の準備
<ol><li>嵐画像の直前にテーブル 1によるとバッファーをイメージングの 1 mL を準備します。 注: 画像バッファーの寿命は約 2 時間、準備の使用前に、新鮮です。グルコース酸化酵素、カタラーゼの付加の後のボルテックスを避けてください。 注意: メチルビオロゲンは有害な物質です。特に注意して処理してください。シクロオクタテトラエンは猫の発癌物質として分類されます。1 化学。吸入を避ける、皮膚化学フード シクロオクタテトラエン原液とイメージングのバッファーを作るしてください。</li>
</ol>9. 嵐データの取込み
<ol><li>チャンバー (図 1) の coverslip をロードします。シアノ バクテリア細胞を洗浄避けるために商工会議所に優しく新鮮画像バッファーを読み込みます。空気中の酸素との反応を防ぐために画像処理のバッファーの上部にある長方形の coverslip を配置します。トラップ、coverslip の下に気泡を避けるため。</li>
	<li>カメラ、LED ライトとレーザーを入れます。画像集録、重心位置の決定、漂流訂正13サンプル用オープン ・嵐ソフトウェア。</li>
	<li>レンズの上に液浸オイルの半分ドロップを追加します。商工会議所を読み込み、目的のレンズを確認、coverslip に接触します。</li>
	<li>750 nm レーザーで信号を確認します。 注: 常に、蛍光は減少することを確認する第 2 抗体染色マイナスのネガティブ コントロールを含めます。</li>
	<li>セルとマーカを含むサンプル領域を識別します。ドリフト補正サンプル ソフトウェアを起動します。 注: 一般に、理想的なサンプル エリアが 10-30 セルには含まれます。一方、任意の重複しているセルを避けるためにもセルを区切る必要があります。</li>
	<li>参照として 1 つの広視野画像を取得、カメラ電子乗算 (EM) と 300 で露出時間 30 ms (図 2 a) を得る。</li>
	<li>ハイパワー約 4.5 kW/cm2に 750 nm 励起レーザー強度を高めます。Fluorophores が付いているまばらな点滅パターンに移行して、一度は、10,000 フレーム 33 hz (図 2 b) を集めることによって 1 つの超解像画像を取得します。 注: フルオロ孤立した場合は、数分以上 fluorophores が付いて暗い状態に切り替わるし、隔離された単一分子の順番にちらつきまで待ちます。ここで説明したフレーム数は、我々 のサンプルに適しています、他の対象となる構造物の最適化が必要があります。</li>
</ol>10. 生データから超解像画像の再構成
<ol><li>ImageJ でQuickPALM (材料表)14と呼ばれるプラグインを使用すると、3-D の色超解像画像を再構築します。 注: 予備波長画像 (図 2) 色分けされたスケール バーと共に (図 2) が表示されます。色は、z 軸の深さを表します。</li>
	<li>3次元構造のビデオ、構造で超解像のスタックを示す z 軸画像断面ごとの 10 nm QuickPALM14を使用しています。スタックの明るさを調整し、1 つのターゲット セルのスタックを複製します。セルの 3 D イメージを生成するのに ImageJ で3D ビューアー (材料表)15と呼ばれるプラグインを使用します。デモ用 3次元構造の回転を記録します。</li>
</ol>

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</ol>

著者が明らかに何もありません。

このプロトコルでは、ラン藻プロクロロコッカス(図 3) の蛍光を大幅に削減するための手順について説明しましたし、その後、immunostain 3-D FtsZ を勉強する嵐を利用することを可能にした細胞のタンパク質リング形態プロクロロコッカス(図 4)。このプロトコルは、他の光合成の有機体で超解像イメージングに採用される可能性があります。
光合成生物に関する過去の研究は、主に超解像イメージング SIM は、高強度のレーザーを必要としないので達成するために SIM を使用しました。ただし、SIM の空間分解能であるのみ ~ 100 nm の1、嵐よりもずっと低い。本研究では嵐画像の空間分解能は 9.6 を達することができる9z 軸の xy 平面と 41.6 nm nm。退色と嵐画像の改良された解像度では、前例のない詳細の光合成生物を研...

超解像顕微鏡は光の回折限界を打破し、サブ回折解像度 (< 200 nm) 内のイメージを提供できます。彼らは蛋白質のローカリゼーションおよび細胞レベル下の構造について研究する多くの生物において広く使用でされています。超解像顕微鏡検査方法は、構造化照明顕微鏡を用いて (SIM) の主要なセンサー ローカリゼーション顕微鏡 (ヤシ)、嵐、枯渇顕微鏡 (STED) を刺激します。メカニズムと顕微鏡がされているこれらの超解像度のアプリケーションの見直し他1,2。
嵐が 10 と高解像度を達成できる空間的な分離3,4nm。嵐、回折限界領域内で 1 つだけの分子は (「上」) 活性化と分子の残りの部分が ("off") 不活化されます。迅速なスイッチのと - 単一分子の蓄積、「回折無制限」画像生成された3できます。一方、有機染料、蛍光タンパク質の多くの種類は、嵐、通常蛍光顕微鏡から高分解能顕微鏡5,6への簡単なアップグレードを可能に適用されます。
嵐が藻類、シアノ バクテリアなどの光合成細胞に広く適用されていない植物細胞葉緑体7、8、その嵐であるという事実のためには、ドライブのスイッチングに高レーザー強度を必要とします。高強度レーザーは不利な光合成細胞の蛍光が強い背景を励起し、嵐イメージングにおける単一分子局在を妨げます。細胞レベル下の構造または光合成細胞の蛋白質の相互作用を調査する嵐を使用するためには、バック グラウンド蛍光信号9を癒やすため退色プロトコルを開発しました。ルーチン蛍光染色の手順で標本は嵐のための要件を満たすために光合成細胞の蛍光を下げる妨害のステップ中に高輝度の白色光にさらされます。したがって、このプロトコルの場合、嵐と色素の有機体を調査することは不可能になります。
ここでは、単細胞 picocyanobacteriumプロクロロコッカスで FtsZ リング組織を画像に嵐を使用するプロトコルについて述べる。FtsZ は非常に節約されたチューブリンのような細胞骨格タンパク質10セルの外周リング構造 (Z のリング) を形成する重合、細胞分裂11のために不可欠です。プロクロロコッカスは保持細胞が蛍光背景と主アンチ FtsZ 抗体 immunostained を削減する最初の photobleached と、fluorophore と二次抗うさぎ IgG (H + L) 抗体の共役し (など、Alexa Fluor 750)。最終的には、嵐を使用して、異なる細胞周期段階プロクロロコッカス詳細の FtsZ リング組織を観察します。

<table><tbody><tr><td>ポリスチレン粒子</td><td>Spherotech</td><td>PP-20-10</td><td>2.0-2.4 &micro;m</td></tr><tr><td>カバーガラス</td><td>マリエンフェルド</td><td>0111580</td><td>18 mm > 厚さ No. 1</td></tr><tr><td>エタノール</td><td>シャルラウ</td><td>ET00021000</td><td></td></tr><tr><td>ポリ-L-リジン臭化水素酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9155</td><td>mol wt 70,000-150,000</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>158127</td><td></td></tr><tr><td>グルタルアルデヒド溶液、50%</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>340855</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>シグマ</td><td>P3813</td><td></td></tr>トリ<tr><td>トンX-100</td>シ<td>グマ</td><td>T8787EDTA</td><td></td></tr><tr><td>二ナトリウム塩、2水和物</td><td>ゴールドバイオテクノロジーE-210-500</td><td></td><td></td></tr>トリ<tr><td>ズマベース</td><td>シグマ</td><td>T1503</td><td></td></tr>リ<tr><td>ゾチーム</td><td>シグマ</td><td>L6876</td><td></td></tr><tr><td>ヤギ血清</td><td>シグマ</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>アンチアナバエナ FtsZ抗体</td><td>アグリセラ</td><td>AS07217</td><td></td></tr><tr><td>ヤギ 抗ウサギ IgG (H+L) 交差吸着 二次抗体</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>A-21039</td><td>アレクサ フルーア 750</td></tr><tr><td>D-グルコース 無水</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>D16-1</td><td></td></tr><tr><td>L-アスコルビン酸</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>A5960</td><td></td></tr><tr><td>メチルビオローゲン</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td></td><td></td>856177</tr><tr><td>シクロオクタテトラエン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>138924</td><td></td></tr><tr><td>トリス(2-カルボキシエチル)ホスフィン (TCEP)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>646547</td><td></td></tr><tr><td>グルコースオキシダーゼ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G2133</td><td></td></tr><tr><td>カタラーゼ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C9322</td><td></td></tr><tr><td>XD-300 キセノン光源</td><td></td><td></td><td>250 W</td></tr><tr><td>STORM 顕微鏡</td><td>NBI</td><td>SRiS 顕微鏡</td><td></td></tr><tr><td>Rohdea</td><td>NBI</td><td>SRiS 3.0</td><td>画像取得用ソフトウェア</td></tr><tr><td>Luna</td><td>NBI</td><td>SRiS 3.0</td><td>ドリフト補正用ソフトウェア</td></tr><tr><td>QuickPALM</td><td></td><td></td><td>https://code.google.com/archive/p/quickpalm/wikis</td></tr><tr><td>3D Viewer</td><td></td><td></td><td>http://132.187.25.13/ij3d/?page=Home&category=Home</td></tr></tbody></table>

退色により、シアノ バクテリアプロクロロコッカスftsz リングの超解像イメージング

Photobleaching Enables Super-resolution Imaging of the FtsZ Ring in the Cyanobacterium Prochlorococcus

超解像顕微鏡法は、蛋白質の相互作用および多くの生物で細胞内構造について研究に広く使用されています。光合成生物でただし、超解像イメージングの空間分解能はのみ ~ 100 nm。低解像度は、主に確率論的光再建顕微鏡 (嵐) などの超解像イメージングに必要な高強度レーザーによる光合成細胞の高い蛍光バック グラウンドによるものです。ここでは、述べるフォトブリーチングによる嵐開発された海洋 picocyanobacteriumプロクロロコッカスをイメージングの最近。その嵐は ~ 10 の水平解像度で実行できるので退色後、プロクロロコッカスの蛍光は減ります nm。このメソッドを使用して、我々 は FtsZ タンパク質の生体内三次元 (3 D) 組織を取得し、プロクロロコッカスの細胞周期の間に 4 つの異なる FtsZ リング形態の特徴します。我々 はここで説明するメソッドは、他の光合成生物の超解像イメージングに採用される可能性があります。

嵐は、確率的個々 スイッチング蛍光物質を活性化して超解像イメージングを実現します。すべての蛍光体の位置が記録され、これらの場所4に基づく超解像画像を構築します。したがって、fluorophore 位置の精度は超解像画像再構成のために重要です。プロクロロコッカス吸収スペクトル ピーク 447 nm および 680 nm、およびプロクロロコッカスは、波長 700 nm16上最小吸収。ただし、プロクロロコッカスMED4 細胞はまだ嵐イメージングに必要な (図 3 a)、750 nm レーザーの非常に高い強度に露出されたとき高い蛍光を放出しました。したがって、プロクロロコッカス細胞の高い蛍光バック グラウンドは超解像イメージングを大きく妨げます。
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ここで藍藻類の蛍光を抑えるフォトブリーチング法について述べる。退色後は、確率光再建顕微鏡 FtsZ リングがシアノ バクテリアの三次元超解像度画像を得るためです。

退色により、シアノ バクテリアプロクロロコッカスFtsZ リングの超解像イメージング

Super-resolution microscopy has been widely used to study protein interactions and subcellular structures in many organisms. In photosynthetic organisms, ...

この方法は、タンパク質の局在化と光合成生物のダイナミクスに関する重要な質問に答えるのに役立ちます。超解像顕微鏡とフォトブラチ法を組み合わせることで、光合成生物のタンパク質ダイナミクスを極力詳細に検出することができます。この方法は、プロクロロコッカスのタンパク質ダイナミクスに関する洞察を提供するだけでなく、また、ラジオ再ドップ歌とバクテロクロロフィルを含む他の多くの生物にも適用することができます。この手順を実証することは、私の研究室の大学院生であるYanxin Liuです。まず、5ミリリットルの海水ベースのPro99培地を培養フラスコに加え、プロクロロコッカスMED4の1ミリリットルで接種します。1平方メートルあたり35マイクロモル光子の強度を持つ光の下で摂氏23度でプロクロロコッカスを成長させます。5日後、培養液を1.5ミリリットルのチューブに1ミリリットル回収する。培養液を固定するために、作りたてのホルムアルデヒドを100マイクロリットル加えます。室温で暗闇の中で20分間インキュベートします。その後、13、500回Gで1分間サンプルをスピンダウンする。上清を取り除き、Pro99培地の100マイクロリットルで細胞を再懸濁します。サンプルは、免疫染色を行う準備ができるまで暗闇の中で摂氏4度で保存します。まず、ポリスチレンビーズのバイアルを渦に入れる。50%エタノールを使用し、働くスラリーとして1対20,000希釈を調製する。ホットプレートをオンにし、温度を摂氏120度に設定します。次に、ホットプレートにカバースリップを置きます。作業スラリー100マイクロリットルを各カバースリップに積み込み、ホットプレートのカバーリップを10分間インキュベートします。その後、慎重に室温で保存するためにペトリ皿ビーズサイドにカバースリップを転送します。カバースリップをコーティングする準備ができたら、1つを取り出し、ビーズサイドアップであることを確認します。カバースリップの中央に1ミリグラム1ミリグラムの1ミリグラムの1ミリリットルをカバースリップの中心に加え、30分間室温に座らせます。この後、ピペットを使用して、取り付けられていないポリL-リジンを慎重に吸引し、1.5ミリリットルのチューブに移します。後で使用するために摂氏4度でこのポリL-リジンを保存します。60ミリメートルのペトリ皿に10ミリリットルの超ろ過水でカバースリップを洗い流し、ペーパータオルで簡単に乾かします。コーティングされたカバースリップを下部にパラフィルムを持つ新しいペトリ皿に移し、染色皿として使用します。固定サンプル100マイクロリットルをカバースリップに積み込み、30分間座らせてセルを取り付けます。次に、ペーパータオルを使用して残りの溶液を吸収し、カバースリップを12ウェルプレートのウェルに移して洗浄します。PBSバッファーを1ミリリットルのウェルに加えてカバースリップを洗います。その後、PBSを取り出し、新鮮なPBSを1ミリリットル加え、カバースリップを2回洗います。ピペットを使用してPBSを取り除き、作りたてのパーメアビライゼーションバッファーの1ミリリットルに置き換えます。37°Cで20分間、洗浄皿をインキュベートします。次に、パーメアビライズバッファーを除去します。新鮮なPBSバッファーを1ミリリットル加えて洗浄プロセスを開始します。シェーカーの上に洗い物皿を置き、皿を5分間軽く混ぜます。この後、PBSを取り除き、洗浄工程を3回繰り返します。洗ったカバースリップを染色皿に移します。カバースリップの上部に50マイクロリットルのブロッキングバッファを追加します。氷の上に全体の染色皿を置き、少なくとも60分間光漂白のためにキセノン光源の下に移動します。フォトブリーチとブロッキングの後、ペーパータオルの端を使用してブロッキングバッファを取り外します。まず、抗FtsZ抗体の1マイクロリットルを99マイクロリットルのブロッキングバッファーに希釈します。希釈した一次抗体の50マイクロリットルをカバースリップに置き、室温で30分間インキュベートします。カバースリップを洗濯皿の井戸に移します。洗浄を開始するには、PBSを1ミリリットル加えます。その後、洗う皿をシェーカーに移し、5分間軽く振ります。PBSを取り出し、洗浄プロセス全体を3回繰り返します。次に、カバースリップを染色皿に移します。希釈した二次抗体の50マイクロリットルをカバースリップに置き、暗闇と室温で30分間インキュベートします。カバースリップを洗濯皿に戻します。洗浄を開始するには、PBSを1ミリリットル加えます。洗浄皿をアルミニウム箔で包み、光から守ります。プレートをシェーカーに移し、5分間軽く振ります。PBSを取り出し、洗浄プロセス全体を3回繰り返します。STORMイメージングの直前に、テキストプロトコルで概説されているように、イメージングバッファを1ミリリットル用意します。カバースリップをローディングチャンバーに積み込みます。作りたてのイメージングバッファーを追加し、シアノバクテリア細胞を洗い流さないように穏やかです。この後、画像バッファーの上に長方形のカバースリップを置き、空気中の酸素と反応するのを防ぎます。カメラ、LEDライト、レーザーの電源を入れ、STORMソフトウェアを開きます。レンズの上に浸漬油の半分の滴を追加します。チャンバーをロードし、対物レンズがカバースリップに接触していることを確認します。そして、750ナノメートルのレーザーで信号を調べます。細胞と受託マーカーの両方を含むサンプル領域を特定します。次に、サンプルドリフト補正用のソフトウェアを起動します。カメラの電子乗算ゲインが300、露光時間が30ミリ秒の画像を基準として、1つのワイドファイル画像を取得します。750ナノメートルの励起レーザー強度を平方センチメートルあたり約4.5キロワットに増加させます。蛍光ホルがまばらな点滅パターンに移行したら、33ヘルツで10,000フレームを収集して1つの超解像度画像を取得します。次に、テキスト プロトコルで説明されているように、生データから超解像度イメージを再構築します。本研究では、STORMを用いて、個々のフォトスイッチ可能蛍光体をストカストに活性化させることで、超解像イメージングを達成する。すべての蛍光素の位置が記録され、これらの場所に基づいて超解像度の画像が構築されます。プロクロロコッカスの吸収スペクトルは447ナノメートルと680ナノメートルでピークを迎え、700ナノメートル以上の最小吸収を有するが、Prochlococcus MED4細胞は、STORMイメージングに必要な750ナノメートルレーザーの極めて高い強度にさらされたときに依然として高い自己蛍光を発する。ここで説明した光漂白法を30分間使用した後、自己蛍光を有する細胞は数個も検出されているが、細胞の自己蛍光は減少することが分かる。60分に光漂白を伸長させると、大部分の細胞が自家蛍光を失う。これらの結果は、開発された光漂白法が光合成生物の自己蛍光を大幅に低減できることを示している。フォトブリーチングの後、STORMは細胞内の細胞分裂タンパク質FtsZを視覚化するために使用されます。STORMを用いて、FtsZリングの詳細な形態が明らかになる。3D STORM 画像を回転させることにより、4 種類の形態、クラスタ、不完全なリング、完全なリング、およびダブル リングが特定されました。光の強度とフォトブリーチの持続時間は、異なる生物によって異なる可能性があることを覚えておくことが重要です。その開発後、この方法は、タンパク質組織と光合成細胞の潜在的な機能を詳細に研究したい研究者のための道を開きます。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

出典: Weber、N. ら、 糸状シアノバクテリウム Phormidium lacunaの自然形質転換、タンパク質発現、および凍結保存。 J. Vis. 経験。...

集束光照明を用いた糸状シアノバクテリアの走光性アッセイ

出典: Zhan, Y., 他光漂白により、 シアノバクテリア属プロクロロコッカスのFtsZ環の超分解能イメージングが可能になります。J . Vis. Exp.

成長調節タンパク質のイメージング用シアノバクテリア色素の光漂白

我々は、細菌のFtsZ-リングの構造、組織、細胞分裂に不可欠な装置を検査する、超解像イメージング法を説明します。この方法は、光活​​性化ローカライゼーション顕微鏡（PALM）画像の定量分析に基づいており、他の細菌の細胞骨格タンパク質に適用することができます。...

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高速3D-構造化照明顕微鏡（F3D-SIM）を使用したライブ細菌における細胞質分裂のZリングの超解像イメージング

生体内の生体分子の研究は、生物学的な文脈における分子機能を理解するために非常に重要です。ここでは、DNAやタンパク質などの蛍光生体分子を生きた微生物に取り込むことができる新しい方法について説明します。蛍光顕微鏡で記録されたin...

エレクトロポ生きた微生物で内在化および蛍光生体分子の観測

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本プロトコルは、スペクトル分析に基づく紅藻におけるフィコビリタンパク質変化の段階的な自己蛍光イメージングおよび評価を記載する。これは、希少な材料しか利用できず、実験室条件下で細胞がゆっくりと成長するか、まったく成長しない場合に、極端な生息地への細胞の適応を評価するためのラベルフリーで非破壊的な方法です。...

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この記事では、 Proteus mirabilis...

膨張顕微鏡による Proteus mirabilis バイオフィルムの超解像イメージング

ライブホストのトランスジェニックリーシュマニア原虫のin vivoイメージング

学ぶ退色法とSTORMを組み合わせたシアノバクテリアの超解像イメージング手法。ProchlorococcusのFtsZリングの詳細な可視化により、光合成生物におけるタンパク質動態の研究を推進します。

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