Name: 不連続密度勾配を使用してカプセルの量による細菌の分離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 52 s
Description: 学ぶ不連続密度勾配遠心法による細菌のカプセル量に基づく分離法。Klebsiellaなどの病原菌のカプセル産生調節を研究し、物理的分離と迅速な比較を可能にする技術を習得できます。

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株と役に立つ議論のザ ・ パークヒル グループのメンバーを供給、仁町王とスザンナ ソルターに感謝します。ウェルカム ・ サンガー研究所 (ウェルカム グラント 206194)、サー ・ ヘンリー ・ ウェルカムの員 F.L.S. (グラント 106063/A/14/Z) に資金が供給されたこの作品。M.J.D. は、ウェルカム サンガー研究所博士課程学生の身分によってサポートされます。

注:養殖やサンプルを取り扱い、細菌の緊張に適用可能な任意のリスク評価を守ってとを確認します。一度にあまりにも多くのグラデーションを設定するは関与する低速ピペッティングから接合部の圧力のための筋骨格系障害につながることができます注意してください。作業を計画し、損傷を避けるために措置を講じる。
1. 細菌の緊張または変異ライブラリの準備
<ol><li>
適切な寒天版でテストする系統を連勝。これらは実験のためのストック プレートです。
	<ol>
<li>シングル コロニーを達成するために必要な温度で一晩版を孵化させなさい。この実験,のため文化k (NTUH K2044 と ATCC43816 株) 37 ° C で加湿キャンドル瓶に血液寒天培地で 37 ° C、および肺炎球菌感染(23F 野生型および 23F Δcps) でルリア スープ (LB) 寒天の</li>
	</ol>
</li>
	<li>
滅菌ループまたはカクテル棒を使用して適切なスープのストック プレート (ステップ 1.1) 10 mL を接種するから単一コロニーを拾います。ランダム変異ライブラリの検診は、ランダムな変異ライブラリー ストック (TraDIS ライブラリ) の 10 μ L でスープを接種します。
	<ol>
<li>揺れ、37 ° C で減塩 LB 媒体のk株と脳心注入 (BHI) メディア、37 ° C で静的に肺炎球菌感染株を孵化させなさい</li>
		<li>15 mL の管と 15 mL チューブ挿入とエアロゾル タイトな蓋のバケットをスイング 3,200 x g で 10 分間、ベンチトップ遠心分離の遠心分離機に一晩かけて培養を転送します。</li>
		<li>上澄みを廃棄し、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) x 1 の 2 mL にペレットを再懸濁します。 注:研究室では、適切な液体生物廃棄物ルートの上澄みで処分します。遠心分離の巻き上がり・ ステップ (1.2.2 と 1.2.3) の目的は、グラデーションで簡単に確認できる細菌を集中します。細菌文化は、好ましい場合グラデーションの上に直接読み込むことができます。大きくカプセル系統は可能性がありますタイトなペレットを形成しません。5 mL の最終巻に 1x PBS を追加この場合、任意の細菌細胞を削除せずできるだけ多く清に削除し、ペレットを再懸濁します。1.2.5 の手順とプロトコルを続行します。</li>
		<li>非ムコイド株のためには、手順 2 に進みます。</li>
		<li>1.2.2 の手順で説明するようにチューブを遠心分離機します。</li>
		<li>上澄みを廃棄し、2 mL の 1x PBS でペレットを再懸濁します。電池は、使用する準備が整いました。 注:細菌の細胞懸濁液の密度は重要ではありませんが、グラデーションの可視化のために十分にする必要があります。最小外径600 (600 の光学濃度 nm) 4 が示唆されました。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. グラデーション希釈とミニ グラデーション テストの準備
<ol><li>
グラデーションの希釈液を準備します。 注:密度勾配の良好な分離を達成するために必要な密度勾配媒体 (例えばパーコール) の正確な濃度は、使用される細菌の歪みと成長の条件によって異なります。ミニ グラデーション テストは最高の分離を与える濃度を識別するために最初に実行されます。これらは 500 μ L の 2 mL チューブに単一希釈を構成します。細菌がグラデーションから抽出し、下流用継された場合、は、無菌条件の下でこれらの手順を実行する必要があります。<ol>
<li>1x PBS 密度勾配希釈をすると密度勾配媒体を組み合わせます。20%、30%、40%、50%、60%、70%、80% の希釈液を作る (例, 2 mL 密度勾配媒体に加えて、8 mL の 1x PBS 20% 密度勾配媒体の 10 mL を =)。</li>
		<li>テストする各緊張に 2 mL チューブに 20% 勾配希釈液の分注 500 μ L (例, 4 系統 = 20% 勾配希釈液 500 μ L を含む 4 つの管)。</li>
		<li>ステップ 2.1.2 グラデーションの希釈液の残りの部分に対して繰り返します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
細菌をグラデーションに適用されます。
	<ol>
<li>以下の手順に従って各グラデーション希釈の先頭に手順 1.2.3 と 1.2.6 で作製した細菌細胞の 100 μ L を適用します。<ol>
<li>200 μ L ピペットを使用してセルの 100 μ L を取るし、ミニのグラデーションのメニスカスの下管の側面にピペット チップを配置します。</li>
			<li>彼らは、インターフェイスの任意の混合することがなくグラデーションの上に層を形成するようグラデーションに細菌の細胞を非常にゆっくりと吸引します。</li>
			<li>テストするすべての緊張のための手順 2.2.1.1–2.2.1.2 を繰り返します。</li>
		</ol>
</li>
		<li>エアロゾル タイトな蓋付き固定角ロータを使用して、遠心分離機の 8,000 の x gで 10 分間遠心機で準備されたチューブ。</li>
		<li>遠心分離の後次の遠心傾斜層のすぐ上のセルを保持するために必要な最小勾配希釈を視覚化するラックにチューブを転送します。</li>
		<li>結果が明白でない場合 5% 密度勾配中希釈上記の刻みミニ グラデーションのテストを繰り返し、2.1.1 のステップで定義された濃度以下 (例, 25%、35% の希釈テスト必要があります 30% で結果があいまいな場合)。 注:図 2は1 つの密度勾配の中希釈の典型的な結果を参照してください。</li>
		<li>手順 2.2.3–2.2.4 からの結果を使用し、大規模な不連続勾配のセルを区切るために使用するのに理想的なグラデーション希薄。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 主な実験用細胞の調製
<ol><li>
一晩の新しい文化を準備するには、1.2 の手順で説明されているように適切なスープの 10 mL を接種します。
	<ol>
<li>1.2.1 手順の説明に従って、適切な条件で一晩文化を孵化させなさい。</li>
		<li>1.2.2 の手順で説明されているように一晩文化をペレットします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>1.2.3 のステップで説明するようセルを洗浄してください。</li>
	<li>上澄みを廃棄し、1 mL の 1x PBS でペレットを再懸濁します。ひずみがさきは、簡単に餌がない場合は、最大 2 mL の PBS か残留にペレットを再懸濁します。電池は、使用する準備が整いました。</li>
</ol>4. 不連続密度勾配の準備
注:(少なくとも集中) ピペットを使用してトップへ (ほとんど集中している) 下からグラデーションの準備の代替方法は、ステップ 7 で説明されます。
<ol><li>
ピペット 1 mL 最も希薄 5 mL ポリプロピレンに密度勾配希釈の丸い底部チューブ トップ、最も希薄、グラデーションの層を形成します。 注:のレイヤーを妨害しないように、針を使用してレイヤー下より濃度の濃いグラデーション希釈のそれに続く層に追加されます。堅牢な分離と菌の簡単な可視化の 2 つの最小値と最大 1 mL の 3 つのグラデーションのレイヤーのお勧めします。<ol>
<li>1 mL のシリンジを使用すると、接続されている 1.5 インチ針、次最も濃縮された密度勾配中希釈の注射器に 1 mL を取る。泡はグラデーションのレイヤーを破壊できるよう、空気の服用を避けます。</li>
		<li>最初の層を含んでいる管の下部に針の端を置きます。インターフェイスの混合を避けるために非常にゆっくりと注射器の内容を吸引します。 注:2 つの希釈のインターフェイスより濃度の濃いグラデーション希釈が追加されると上昇します。光や外のウィンドウまで保持することによって、インターフェイスを観察します。明確なインターフェイスを認められなかった場合、グラデーションを破棄し、再実行します。<ol>
<li>異なるグラデーション希釈率間のインタ フェースの邪魔にならないので非常に軽くグラデーションから針を抜きます。それを直立した保つに適したラックにチューブを置きます。</li>
		</ol>
</li>
		<li>3 つの異なる希釈率を使用して、手順 4.1.1–4.1.2.1 を繰り返して、密集の希釈は下部に。グラデーションが正常に構築されたインターフェイスでミックスなしで 3 つの層があります。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. グラデーションや遠心分離によって分離する準備されたセルを追加
<ol><li>準備された細胞の 600 μ L から追加ステップ 3.3 管の勾配の上に非常にゆっくりと、インターフェイスを混合せず手順 2.2 で説明しました。</li>
	<li>
チューブ アダプターにチューブを置き、均衡を保っているように結合アダプターおよびチューブの重量を量る。
	<ol>
<li>ベンチトップ遠心分離機内の固定角ロータにチューブ アダプターを配置します。3,000 x gで 30 分間遠心します。</li>
		<li>遠心分離の後に、慎重にチューブを削除、適切なラックに置いて、結果を記録として写真します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
次のステップ 6 でウロン酸定量または DNA の抽出の細菌の分数を回復します。
	<ol>
<li>下流のアプリケーションは必要ない場合、実験室の適切な液体生物廃棄物ルート経由でサンプル/グラデーションの処分します。 注:細菌の新しい種・系統の分離を検証することが重要です。グラデーションから個々 の分数は、ウロン酸アッセイ (手順 8)、または各分画のカプセルの表現型を確認する別の適した定量法による顕微鏡観察検討すべき。目的は、別の集計やセル サイズに基づいて、独立した適切な試金が使わなければなりません。</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. サンプル分数と省略可能な副産物のステップを回復します。
<ol><li>
分数をグラデーションから削除と細菌の割合がそのレイヤー内に存在しない場合、トップの希釈から任意の液体を破棄によって回復します。
	<ol>
<li>上部の一部を削除するには、P200 ピペットを使用して優しく分数にグラデーションをピペット チップを渡すし、分数を取る。1.5 mL チューブに分数を置き、適切にラベル付けします。</li>
		<li>まだ P200 ピペットを使用して、さらに分数を回復するには、ヒント優しく分数にグラデーションを挿入し、新しい 1.5 mL チューブに分数を回復します。グラデーションの下の分数は、余分なグラデーションを削除します。</li>
		<li>場合は非常に低いセル番号を含む画分からの DNA の抽出より多くの細胞を取得するオプションの伸長に 6.2 のステップから次のプロトコル (例えば密度-TraDISort)、必要なサブカルチャー分数です。 注:分数が下に上から削除されると、上部下の分数にグラデーションの細胞からの持ち越しの低レベルがあります。慎重に作業してこれを最小限に抑える低分数を削除する針を使用して、持ち越しが結果に影響を与える可能性があります非常に低い豊富なサンプルの再精製を行いグラデーションをミックスしないように。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
5 mL の適切な液体培に手順 6.1.1–6.1.2 で回復低豊富な分数から転送細胞。インキュベーターに配置し、37 ° C で 2 h の成長
	<ol>
<li>成長またはサンプルが 1 の外径600に達したときの 2 時間後に、15 mL チューブに文化を転送します。バケットとエアロゾル タイトな蓋をスイングと遠心分離機で 3,200 x gで 10 分間のチューブを遠心します。上澄みを廃棄します。</li>
		<li>1 mL の 1x PBS で細胞ペレットを再懸濁します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
5 mL ポリプロピレン チューブに新鮮な単一濃度密度勾配を準備します。(例えば 15% 密度勾配媒体使用図 2D に示すように ΔslyAの突然変異体の浄化) 元のグラデーション内の分数の場所のすぐ上からグラデーションの濃度を使用します。 注:この再精製の手順は省略できます。<ol>
<li>グラデーションと手順 2.2 および 5.1 では遠心分離機の上にセルを適用します。</li>
		<li>遠心分離機からチューブを取り外し、適切なラックに置きます。グラデーションを写真および 6.1-6.1.2 に記載の DNA の抽出の一部をリカバリします。 注:サンプルは、DNA の抽出や他のダウン ストリーム アプリケーションの準備が整いました。</li>
	</ol>
</li>
</ol>7. (少なくとも集中) ピペットを使用して先頭に (ほとんど集中している) 下からグラデーションの準備のための方法
<ol><li>
2.2.3 ステップで決定したグラデーションの希薄を使用します。1,000 μ L ピペットで、密度勾配希釈の 1 mL を 5 mL チューブに追加します。
	<ol>
<li>200 μ L ピペットを使用すると、次の高密度勾配希釈 200 μ L はインタ フェースを混在させるように、チューブ内のレイヤーの上に非常にゆっくりと追加します。別の 200 μ L と、最終的な 600 μ L を与えるよりピペッティング速度制御し、インターフェイスの混合を防ぐ複数の小さいボリュームを追加するを追加します。インターフェイスをミックス、破棄し、再度開始。</li>
		<li>3 つの希釈液を使用している場合は、第三に、最も少なく密グラデーション濃度 7.1.1 手順を繰り返します。チューブには 2 mL またはステップ 2.2.3 から結果に応じて 3 mL のグラデーションができました。</li>
		<li>セルを追加する実験を続行してプロトコルの手順 5 に進みます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>8. ウロン酸法によるカプセルの量の測定
<ol><li>PBS で希釈して 4.0 に回復した各画分の外径600を調整します。以前に発行された1としてウロン酸の定量化を続行します。</li>
</ol>

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</ol>

著者は明らかに金銭的な利益があります。

カプセルk3、肺炎球菌9、アシネトバクター10、11種のナイセリアなど多くの菌種で病原性の重要な要因であります。細菌のカプセルの可視化と定量化に様々 な方法が存在するが現時点では無いカプセル化および非カプセル化細胞を物理的に分離する方法として広く。この記事では、上流または下流の異なるプロトコルと組み合わせて複数の潜在的なアプリケーションでの細菌集団のカプセル ベースの分離の手法を説明してきました。
表面のカプセルの存在は、密度勾配遠心法 (図 2D) によって分離を可能にする細菌の細胞密度を減らすことができます。K NTUH K204412と ATCC4381613同様に肺炎球菌23F14とその Δcps変異15このメソッドが検証されます。このメソッドはこれらの条件を満たす他の物質細菌 - 原則として、に向かって低粘度とない毒性を持つコーティングされたコロイド状シリカ粒子の懸濁液である密度勾配の主成分ができる Percoll16を使用してください。密度勾配を確立するために使用。
それは密度勾配を作成するときに別の密度の層が混ざらないように、分離法、きれいな結果が得られない混合が発生した場合ことを確認するために挑戦することができます。針やピペットを使用して、グラデーションを注ぐ 2 つの代替方法が含まれている我々-両方は有効であり、使用する方法は、単に好みの問題。ピペッティング グラデーションレイヤー上物質 (細菌懸濁液、または希薄なグラデーションの層) を含むすべてのステップ、小さいボリュームの複数の因数をピペッティングやすく鋭いインターフェイス レイヤーの任意の混合なしに達成するために。
このプロトコルの制限は他の菌種とその性能を保証することはできません。したがって、新種細菌または追加、独立したカプセルの定量化法を用いた密度ベースの分離を検証するひずみを調べるときに重要です。詳細なプロトコルが利用可能な17と、信頼性の高い方法は、適切なカプセルの汚れを顕微鏡による細菌の各分画での可視化します。また、1図 2Bに示すよう特定のアッセイによって (大腸菌, kなど) ウロン酸を含むカプセル、定量化することができます。この試金は細菌の細胞密度によっても異なりますので、遠心分離に基づく mucoviscosity テストは、独立した検証方法として適していません。
このメソッドのもう一つの制限は、カプセルの製造は培養条件、および成長培地、温度にも小さな変更に非常に敏感または曝気はこのアッセイの結果に影響を与えることです。できる研究者、この問題を最小限に抑える定義された成長媒体またはバッチ一貫性のある複雑なメディアを使用して、実験間で同じ他のすべての成長パラメーターを維持、適切なコントロール系統の予期しない結果の解釈を有効にするのには、.いくつかの細菌のカプセルは壊れやすい、文化を戻されるときセルからせん断することができます。カプセルの剪断を避けるため、文化は遠心分離し、グラデーションの読み込みのための準備中に 2 回以上再停止ください。文化の濃度の間にカプセルの損失が問題が残っている場合細菌文化に適用できる密度勾配、直接追加細菌懸濁液の量が多いと可視化のため必要な場合。
このメソッドの将来のアプリケーションは、異なる上流と下流の技術と共にこの分離を使用して他の細菌種に適用します。密度 TraDISort8、に加えてカプセル細菌の密度勾配分離がカプセル化細胞や混作や複雑なサンプルからの浄化のための変更されたカプセルの突然変異体の分離される可能性がありますをお勧めします。複数系統のカプセルの生産の急速なプロファイリングをします。最後に、この技術を使用して、集計など他の細菌の表現型を調べることができます。

多くの菌種は、免疫系によって認識および殺害から様々 な物理的なストレス、細菌の細胞を保護する多糖類のカプセルを生成します。カプセルの製造は、肺炎桿菌、感染1,2のための絶対条件です。Kカプセルは、抗菌ペプチドへの抵抗、耐補体を介した殺害、貪食能の防止、3生得の免疫反応の抑制を仲介します。過剰なカプセルの生産は、増加病原性と感染 (院内) ではなくコミュニティ取得4に関連付けられます。
カプセル生産を調査に量的・質的なテストの範囲があります。クレブシエラ属種の文字列テスト5、植民地に触れたつまようじは上向きに引っ張られ、生成される文字列の長さの測定、およびの低速遠心分離を含む、mucoviscosity のアッセイ6が含まれます上澄みの光学密度を測定することによって続いて文化。これらのメソッドは、シンプルで簡単なが欠けている古典的な桿菌で使用するときに感度はカプセルの高生産株ではなく系統します。カプセル定量化の別の方法は技術的に挑戦的な濃硫酸1の使用を要求するウロン酸アッセイ。最後に、カプセルは直接顕微鏡観察 (図 1 a) で表示です。これらのメソッドの顕微鏡のみ単一の人口内の異なるイーサ状態を観察することができます、これらのメソッドのどれもにより、カプセルとカプセル以外の細菌を物理的に分離。
勾配遠心法による密度ベースの分離は異なる真核細胞型7を浄化する細胞生物学が日常的に使用が、微生物学的研究で使用されることはほとんどありません。クレブシエラ属の mucoviscosity の試金は高いカプセル細菌、遠心分離によってペレットに時間がかかる、私たちはカプセル化細胞の減少の全体的な密度のために、これがあると考えた観測に基づいています。ここに示す方法は、密度勾配遠心法 (図 1) を使用して、カプセルの量によって物理的にk個体群を分離する開発されました。このメソッドは、肺炎連鎖球菌、他の細菌種に適用できることを示すに正常に適用されました。飽和トランスポゾン変異ライブラリーの密度勾配分離と相まってトランスポゾン挿入配列 (密度 TraDISort)8カプセル生産と規制に関与する遺伝子を識別するために使用されています。同様に、このメソッドは非カプセル化kを分離する個々 のコロニーのランダムな総理ポリメラーゼの連鎖反応 (PCR) と組み合わせて使用された突然変異体。このメソッドは、別の集団と条件、または複雑なサンプル (図 1 b) からカプセル化された細菌を浄化するカプセルの生産の急速な比較にも使用できます。最後に、セルのサイズや集計などの密度に影響を与える他の表現型を試金するオプションがあります。
本稿では新しい菌種やひずみの手順を最適化する方法を示し、建設してハイパー カプセル、カプセルとカプセル以外の細菌を分離する密度勾配の実行方法を示します。

<table><tbody><tr><td>Percoll</td><td>GE Healthcare</td><td>17-0891-01</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機 5810R ローター A-4-81 および 500 mL バケット付き</td><td>Eppendorf</td><td>5810 718.007</td><td></td></tr><tr><td>15 mL チューブ用アダプター</td><td>Eppendorf</td><td>5810 722.004</td><td></td></tr><tr><td>固定およびグルローター F-34-6-38</td><td>Eppendorf</td><td>5804 727.002</td><td></td></tr><tr><td>2.6 〜 7 mL チューブアダプター</td><td>Eppendorf</td><td>5804 739.000</td><td></td></tr><tr><td>ローターを含む遠心分離機5424 FA-45-24-11</td><td>エッペンドルフ</td><td>5424 000.460</td><td></td></tr><tr><td>2 mLチューブ</td><td>エッペンドルフ</td><td>0030 120.094</td><td></td></tr><tr><td>1.5 mLチューブ</td><td>エッペンドルフ</td><td>0030 120.086</td><td></td></tr><tr><td>5 mLポリプロピレン丸底チューブ</td><td>ファルコン</td><td>352063</td><td></td></tr><tr><td>1 mL使い捨てシリンジ ルアースリップ</td><td>ベクトンディキンソン</td><td>300013</td><td></td></tr><tr><td>AGANI ニードル 21G グリーン x 1.5"</td><td>テルモ</td><td>AN 2138R1</td><td></td></tr><tr><td>P1000 ピペットとチップ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>P200 ピペットとチップ</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

不連続密度勾配を使用してカプセルの量による細菌の分離

Separating Bacteria by Capsule Amount Using a Discontinuous Density Gradient

カプセルは免疫回避と様々 な物理的なストレスへの抵抗を仲介する多くの細菌種の主要病原因子です。細菌に基づく並べ替えに広く使用されている方法はありません多くのメソッドは、定量化し、異なる系統の突然変異体のカプセルの生産を比較可能ですが、どのくらいのカプセルを出します。我々 は不連続密度勾配を使用してカプセルの量によって細菌を分離する方法を開発しました。このメソッドを使用して、変更されたカプセル生産の突然変異体を分離して複雑なサンプルからカプセル化された細菌を浄化する文化間半定量的のカプセルの量を比較します。このメソッドは、カプセルの調節に関与する遺伝子を識別するトランスポゾン挿入配列と結合することができます。ここでは、メソッドは、新しい菌種や株の勾配の条件を最適化する方法、および構築し、密度勾配を実行する方法を含め、詳細で示されます。

代表的な結果は、図 2のとおりです。細菌の種、密度勾配の設定を期待する正確な結果によって異なりますと単一のひずみや変異体のプールにユーザーを検証するかどうか。図 2 aに示すように、ほとんどの系統がグラデーション内の単一の場所に移行して2 D.細菌変異ライブラリにメソッドを適用すると、グラデーション、グラデーション、および下部 (図 2B) マイナーな acapsular 率の最上部の層を介して分散密度の低いバンド上の主要なバンドに上昇を与えます。これらの画分は、ウロン酸 (図 2B) の試金によって示すように、カプセルの量で異なります。K ATCC43816 のカプセルの生合成遺伝子座のように、留分のトランスポゾン挿入配列によって異なるグラデーション分数内特定の変異体の像の明確、(図 2C)。図 2Dのk NTUH K2044肺炎球菌感染と異なるカプセル生合成や規制変異体の純粋培養の代表の結果のとおりです。
<img alt="密度勾配遠心分離による細菌カプセル精製。トランスポゾンシーケンシング法の図。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58679/58679fig1.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> 図 1: カプセルとその応用に基づく細菌を分離する密度遠心分離法の概略図。(A) カプセル化肺炎桿菌の電子顕微鏡画像のセルです。カプセルは細胞の外側に密なレイヤーとして表示されます。(B) アプリケーションのカプセル化された細菌の研究に密度遠心分離。(Bi)密度分離はトランスポゾン変異ライブラリーの高、低 - およびないカプセルの成分を生成するために使用され、カプセルの生産に影響を与える遺伝子を定義するトランスポゾン挿入シーケンスが続きます。(Bii)複雑なサンプルからカプセル化された細菌の浄化。(Biii)サンプル間のカプセルの量の迅速な比較のための密度ベースの分離の使用。(Biii) に示すように、この方法は細菌の集団で異種カプセル生産の可視化もできます。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58679/58679fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="パーコール勾配遠心分離;堆積物分率分析;ゲノムデータの視覚化;クレブシエラ属" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58679/58679fig2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> 図 2: 代表結果。ミニ グラデーションのテストからの出力の例を (A)。2 つの異なるk系統 15% 密度勾配媒体の 1 mL の遠心分離しました。層の下に ATCC43816 (小さいカプセルになる) を移行しながら、密度勾配媒体層上 hypermucoviscous NTUH K2044 ひずみが保持されます。(Bi)トランスポゾン変異ライブラリーを 3 分画に分離する密度勾配を使用します。最終留分変異体の低い割合が含まれています、この写真に表示されていないことに注意してください。(Bii)上部、中間、および下部分数アッセイを用いたウロン酸のカプセル量の検証。分数が分離・ 4、外径 φ600に PBS で再停止される上、中間、および小さくなった下から細胞、カプセル抽出多糖とウロン酸測定1.(C) 密度 TraDISort の結果の例です。検出された変異の場所は、上の染色体図の青い線で示されます。カプセルに欠けている突然変異体は、入力ライブラリ内に存在しますが、カプセルの生合成の軌跡8のとおり下部分画に濃縮されている中トップの割合に尽きているとして識別できます。(D) 野生型とk NTUH K2044 と肺炎球菌感染23F の突然変異系統のカプセルの量を比較する密度勾配遠心法の使用例。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58679/58679fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

我々 はカプセルの生産に基づいて細菌の集団を分離する不連続密度勾配の使用を示します。文化間のカプセルの量を比較して、特定のカプセルの表現型の突然変異体を分離する、またはカプセルのレギュレータを識別するためにこのメソッドを使用します。ここで説明した、最適化と分析の実行です。

Capsule is a key virulence factor in many bacterial species, mediating immune evasion and resistance to various physical stresses. While many methods are ...

この方法は、どの遺伝子がカプセルおよび関連する毒性を調節するために使用されるかなど、クレブシエラ分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、カプセル化株と非カプセル株を物理的に分離する手段を提供し、カプセル産生の株間の迅速な比較にも使用できることである。この方法は、クレブシエラのカプセル規制を研究するために開発されましたが、それはまた、異なる細菌種に適用することができます。一般に、この方法に新しい人は、勾配を注ぎ、グラデーションに細胞を追加することは非常に困難であるため、苦労します。この方法の視覚的なデモンストレーションは、習得が困難な手法を示し、ユーザーに役立つヒントを提供するため、非常に重要です。まず、滅菌ループを有するストックプレートから1コロニーを選択し、適切なスープを10ミリリットルに接種する。培養を一晩インキュベートする。その後、培養液を15ミリリットルチューブ、および遠心分離機に移す。次に上清を捨て、2ミリリットルのPBS中でペレットを再懸濁する。遠心分離を繰り返し、得られた上清を捨てます。その後、PBSの2ミリリットルでペレットを再中断します。密度勾配希釈を作成するには、密度勾配媒体とPBSを組み合わせます。次に、各勾配希釈液のアリコート600マイクロリットルを個々の2ミリリットルチューブにする。200マイクロリットルピペットで100マイクロリットルの細胞を取り、多くの勾配の1つの半月板のすぐ下のチューブの側面にピペットチップを置きます。細菌細胞を非常にゆっくりと勾配に吸引し、界面を混ぜないように注意する。8,000 gで10分間、予め処理したチューブを遠心します。この後、チューブをラックに移して、勾配層のすぐ上のセルを保持するために必要な最小の勾配希釈を視覚化します。まず、最も希薄な密度勾配希釈液の1ミリリットルを5ミリリットルのラウンドボトムチューブに移します。1.5インチの針を持つ注射器を使用して、次の最も濃縮された密度勾配の1ミリリットルを取ります。針をチューブの底に置き、注射器の内容物を非常にゆっくりと注入します。密度勾配の各ステップには、明確なインタフェースが必要です。層が混ざると、細菌のきれいな分離はできません。勾配希釈間の界面を乱さないように、グラデーションから針を緩やかに取り除きます。その後、チューブをラックに入れ、慎重にチューブ内の勾配の上部に調製された細胞の600マイクロリットルを追加します。チューブアダプターにチューブを置き、バランスを確保するためにアダプターでチューブの重量を量ります。その後、ベンチトップ遠心分離機内の固定角度ローターにチューブアダプターを置き、3,000 gで30分間チューブを遠心します。最後に、遠心分離後、チューブを慎重に取り出し、ラックに入れ、結果を撮影します。このプロトコルでは、密度勾配遠心分離は、それらが生成するカプセルの量に基づいて細菌株を分離するために使用された。正確な結果は細菌種に依存しますが、ほとんどの株は勾配内の単一の場所に移動します。この方法を細菌変異ライブラリーに適用すると、勾配の上方の主要バンド、勾配の最上層を通る密度の低いバンド、下部に小さなアキャップスフラ画が生成される。この手順を試みる際には、グラデーションインターフェイスを混在させてはならないことに注意してください。手順に従って、ウロン酸アッセイや顕微鏡検査などの検証方法を実施して、カプセル量を調べる必要があります。これは、新しい株のためにこの技術を使用する場合に特に重要です。ハザードグループ2病原体との作業は危険な場合があることを忘れないでください。この手順を実行する際には、常に、是正保護具、リスクアセスメントへの遵守、文化の適切な廃棄などの予防措置を講じてください。

separating-bacteria-capsule-amount-using-discontinuous-density

Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

出典:Cian、MB et al.、アシネトバクターバウマンニの技術的調整によるグラム陰性菌の細胞エンベロープの内膜画分と外膜画分の分離。J. Vis.

グラム陰性菌の内膜画分と外膜画分の分離

出典: Feltwell, T., et.al.不連続密度勾配を用いたカプセル量による細菌の分離J. Vis.

カプセル形成病原性細菌株の培養と単離

出典: ワトソン、DC 他。大腸菌と他の細菌からの細胞外小胞のスケーラブルな単離と精製 J. Vis. 経験。...

サイズ排除クロマトグラフィーを用いた細菌の細胞外小胞の単離 

Source: Rustad, M., et.al. Synthesis of Infectious Bacteriophages in an E. coli-based Cell-free Expression System. J. Vis. Exp. (2017)This video demonstrates the purification of bacteriophages from a suspension containing host bacterial debris using a sucrose density gradient. It shows how the density gradient separates phages by buoyant density, enabling recovery of a visible band for resuspension and further analysis.

Purification of Bacteriophages Using a Sucrose Density Gradient

このビデオでは、外膜小胞または細菌由来のOMVの不均一な集団を分離する技術(サイズ排除クロマトグラフィー)を実演します。これらの小胞はナノサイズの球状構造であり、サイズ排除クロマトグラフィーによってそのサイズに基づいて大小の亜集団に分離されます。...

サイズ排除クロマトグラフィーに基づく細菌細胞外小胞の分離:グラム陰性細菌外膜小胞の不均一集団をそのサイズに基づいて分離する技術

本稿では、密度勾配遠心法と精子の生理学的研究への応用のパフォーマンスについて説明を目指します。...

密度勾配遠心法を用いた差動品質の精液採取

グラム陰性細菌は、2つの空間的に分離された膜を生成する。外膜は、内膜から、ペリプラズムとペプチドグリカン層によって分割される。これらの微生物の二重二重層を単離する能力は、その生理学と病因を理解するために重要であった。...

アシネトバクターバウマンニの技術的調整によるグラム陰性細菌の細胞エンベロープの内膜および外膜分画への分離

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本研究では、密度勾配遠心分離(DGC) により...

密度勾配遠心分離法を用いたヒト糞便からの細菌細胞外小胞の単離と精製(英語)

私たちはミリ流体連続培養装置(MCCD)のプロトコルを提示します。これは、一定の低栄養素条件(数百ナノモル濃度まで)または時間的な栄養素変動を極短の時間スケールで培養することを可能にします。...

低栄養素および変動する栄養条件下での 大腸菌 研究のための連続培養ミリ流体装置

学ぶ不連続密度勾配遠心法による細菌のカプセル量に基づく分離法。Klebsiellaなどの病原菌のカプセル産生調節を研究し、物理的分離と迅速な比較を可能にする技術を習得できます。

不連続密度勾配を使用してカプセルの量による細菌の分離

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