Name: 葉酸受容体ベータ マクロファージと巨細胞性動脈炎で微小血管免疫環境をプロファイリングする Immunohistopathologic 研究 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-02-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 35 s
Description: 学ぶ免疫組織化学と組織病理学的手法を用いて、巨細胞性動脈炎における葉酸受容体ベータ陽性マクロファージと微小血管免疫環境をプロファイリングする方法。長期保存された側頭動脈組織でも適用可能です。

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この作品はアン ・ アルバムのリウマチ部門医学と分子と病理コア研究所、ペンシルベニア州立大学医科大学、ペンシルバニア州ハーシー、マリアンヌ クリンガー博士ダグラス階段からの支援によって可能になった

記載されているすべてのメソッドは、ペンシルベニア州制度検討委員会によって承認されました。
1 病理組織学的の準備、および側頭動脈生検を取得した後の処理
注:側頭動脈生検 (タブ) は、認定外科医によって局所麻酔および生殖不能の条件の下で実行されます。供試体手術より影響を受ける側に 3 cm の動脈断面を取得後、24 h のすぐにホルマリンで固定、3 〜 4 mm のセクションに分かれて、後パラフィン包埋、ブロックの組織の適切なアライメントに細心の注意を払っています。室温では保存されます。標本選択が医療記録を確認した後実行されます。診断はリウマチ 1990 基準科目が 5 ドメインの 3 を満たすことを必要とするアメリカの大学基づいて: 年齢 > 50 年、新しい頭痛、側頭動脈の圧痛、赤血球沈降速度 > Westergren 法による 50 ミリメートル/時間と異常のタブ。安全のため、保護手袋を着用する必要がありますすべての標本、化学薬品および抗体処理時します。
<ol><li>埋め込みのブロックからミクロトームを使用して 4-5 μ m 厚いセクションをカットします。ヘマトキシリンとエオシン (H & E) で染色します。品質保証のため選択した正常組織の制御] セクションを使用します。</li>
	<li>温水浴のセクションをカットのフロートは、しわを除去し、コーティングされたガラス顕微鏡スライドでピックアップに 40 ° C まで加熱します。 乾燥とセクションのスライドへの付着を容易にする 60 分の 60 ° C のオーブンで温かみのあるプレートにスライド ガラスを配置します。</li>
	<li>乾燥とセクションのスライドへの付着を容易にする 60 分の 60 ° C のオーブンで温かみのあるプレートにスライド ガラスを配置します。</li>
	<li>顕微鏡のスライドには、3 つのセクションをマウントします。</li>
	<li>垂直ラックと 37 ° C で 24 時間の一晩乾燥にスライドを配置します。</li>
	<li>コンテナーと 4 ° C でストア内のスライドを配置します。</li>
</ol>2. 免疫組織化学的準備、脱脂、抗原検索や染色15,18,19,20
<ol><li>スライド ラックにスライドをロードします。料理を通じてラックを次のように実行: 穏やかな攪拌 10 秒撹拌で 70% エタノールに一度、10 秒間撹拌で 90% エタノールに一度、10 秒間撹拌で 100% エタノールに一度、30 秒ごとの 10 秒と 5 分間の 100% キシレンの 2 回、と 2 倍のダブルは 10 秒攪拌と H2O を蒸留します。 注: キシレン、アセトンの取り扱いは呼吸器毒性吸入を避けるために換気フードでされるべきであります。</li>
	<li>10 ミリ モル/L、pH 6.0 クエン酸バッファー 95 ° c. に prewarmed の 200 mL のガラス容器にラックを転送することによって抗原を取得します。風呂の水で 30 分のタイマーを設定し、20 分その後 5 分間流水ですすぎで部屋の温度を冷却します。</li>
	<li>内因性ペルオキシダーゼ活性を削除するには、3% 過酸化水素の 200 mL で 10 分間インキュベートします。トリス緩衝生理食塩水液 (TBSS) 200 μ L で 3 回スライドを洗います。</li>
	<li>スライドをラックから取り外して、優しく余分なバッファーを消去する各 1 つを軽く押えます。染色、次の一次抗体を 200 μ l 添加のスライド カバー スリップを追加し、湿気の多い室内の室温で 1 時間インキュベートを追加します。 反 FRB 抗体希釈 1:800 マウスのモノクローナル抗ひと CD68、希釈 1: 200 ウサギ ポリクローナル抗 CD3 1: 100 希釈 注: 胎盤のホルマリン固定パラフィン切片も手順 2.1 2.9 と反 FRB18 で説明されているように処理されますされ、肯定的な制御として使用します。染色結果最適な抗体濃度を見つけることによって得られた 2 倍希釈 (1:50、1: 100, 1: 200、1: 400、1:800、1:1600) で抗体を滴定を行った.</li>
	<li>インキュベーションと破棄後カバー スリップを削除します。TBSS と 2 分ごとに 3 回スライドをすすぎ、ドレインし、余分なバッファーを拭いてください。</li>
	<li>ビオチン標識抗うさぎ/マウス組織抗原にバインドされている非一次抗体と反応する二次抗体二次抗体溶液 200 μ L を追加します。スライド coverslips を置き、湿気の多い室内で常温で 45 分間インキュベートします。</li>
	<li>インキュベーションと破棄後カバー スリップを削除します。TBS で 2 分ごとに 3 回スライドをすすぎ、ドレインし、余分なバッファーを拭いてください。</li>
	<li>ジアミノベンジジン (軽打) + 基板バッファー (イミダゾール塩酸) を 200 μ l 添加-発色システムと, 染色パターンを視覚化する 10 分間インキュベートします。10 分間、水道の流水で、TBSS で洗浄します。</li>
	<li>3 分間対比ヘマトキシリンで染色</li>
	<li>スライドの表面に取り付け中の 70 μ L を適用することによって、スライドをマウントします。ゆっくりとメディアをマウントに coverslip のヒントし、所定の位置に下げると泡を作成しないように。乾燥に 24 時間を待ちます。</li>
</ol>3. 病理組織学的および免疫組織化学 (IHC) 分析
H & E と GCA 正通常科目は、光学顕微鏡からのセクションを染色 IHC を調べます。
<ol><li>
H & E 染色のセクション。
	<ol>
<li>血管構築を評価し、, 中膜の線維芽細胞、平滑筋細胞、チュニカ adventitia21,22vasa vasorum チュニカ内膜の血管内皮細胞を識別します。</li>
		<li>リンパ球とマクロファージ ・組織球浸潤、細胞過形成、内弾性板の劣化など、GCA 機能を識別します。</li>
		<li>Lymphohistiocytic 潜入を分析するには、識別し、マクロファージ、リンパ球を基準にして数を定量化します。内弾性板の破壊と住民の細胞の過形成性変化の程度を評価し、コントロールと比較します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
IHC のセクションを染色しました。
	<ol>
<li>総免疫潜入、合計マクロファージ マーカー、抗 CD68、パンに細胞と血管の層との関係の中でその分布のタイプまたは特定のタイプによってその表現のメモを取って、FRB の染色パターンを調べるリンパ球のマーカー CD3 アンチ。</li>
		<li>10 上積極的にステンド グラスのセルをカウントすることによって複数のランダムに選択された高出力フィールド (hpf) FRB、CD68、CD3 細胞の発現を定量化し、手段を記録します。 注:これらの正常および病的細胞や構造の同定を行った認定心臓血管病理学者 (j. m.) とリウマチ専門医 (初級)、結果すべてのケースを記録しました。</li>
		<li>デジタル カメラを用いた代表的な画像をキャプチャします。 注:これらのステップの後残りの因数で保存されるかもしれない-80 ° C</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Klippel, J. H., Stone, J. H., White, P. H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKlippel%2C+JH+%22Primer+on+the+rheumatic+diseases%22">Primer on the rheumatic diseases</a>. , Springer Science & Business Media. (2008).</li>
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<li>vander Heijden, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Folate+receptor+beta+as+a+potential+delivery+route+for+novel+folate+antagonists+to+macrophages+in+the+synovial+tissue+of+rheumatoid+arthritis+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+%26+Rheumatology%22%5BJournal%5D)">Folate receptor beta as a potential delivery route for novel folate antagonists to macrophages in the synovial tissue of rheumatoid arthritis patients.</a> Arthritis & Rheumatology. 60 (1), 12-21 (2009).</li>
<li>Jansen, G., Peters, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+insights+in+folate+receptors+and+transporters%3A+implications+for+disease+and+treatment+of+immune+diseases+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Pteridines%22%5BJournal%5D)">Novel insights in folate receptors and transporters: implications for disease and treatment of immune diseases and cancer.</a> Pteridines. 26 (2), 41-53 (2015).</li>
<li>Albano-Aluquin, S., Malysz, J., Aluquin, V. R., Ratnam, M., Olsen, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+immunohistochemical+analysis+of+folate+receptor+beta+expression+and+distribution+in+giant+cell+arteritis+-+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Clinical+and+Experimental+Immunology%22%5BJournal%5D)">An immunohistochemical analysis of folate receptor beta expression and distribution in giant cell arteritis - a pilot study.</a> American Journal of Clinical and Experimental Immunology. 6 (6), 107-114 (2017).</li>
<li>Ross, J. F., Chaudhuri, P. K., Ratnam, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+regulation+of+folate+receptor+isoforms+in+normal+and+malignant+tissues+in+vivo+and+in+established+cell+lines.+Physiologic+and+clinical+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">Differential regulation of folate receptor isoforms in normal and malignant tissues in vivo and in established cell lines. Physiologic and clinical implications.</a> Cancer. 73 (9), 2432-2443 (1994).</li>
<li>Reiner, N. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+in+molecular+biology.+Macrophages+and+dendritic+cells.+Methods+and+protocols.+Preface%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Methods in molecular biology. Macrophages and dendritic cells. Methods and protocols. Preface.</a> Methods in Molecular Biology. 531, v-vi (2009).</li>
<li>Robertson, D., Savage, K., Reis-Filho, J. S., Isacke, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+immunofluorescence+labelling+of+formalin-fixed+paraffin-embedded+%28FFPE%29+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Multiple immunofluorescence labelling of formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) tissue.</a> BMC Cell Biology. 9, 13(2008).</li>
<li>Pawlina, W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPawlina%2C+W+%22Histology%3A+A+text+and+atlas+with+correlated+cell+and+molecular+biology%22">Histology: A text and atlas with correlated cell and molecular biology</a>. , Walters Kluwer. (2016).</li>
<li>Kumar, V., Abbas, A., Robbins Aster, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKumar%2C+V+%22Robbins+and+Cotran+pathologic+basis+of+disease%22">Robbins and Cotran pathologic basis of disease</a>. , Elsevier Saunders. (2015).</li>
<li>Dabbs, D. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDabbs%2C+DJ+%22Diagnostic+immunohistochemistry%22">Diagnostic immunohistochemistry</a>. , Elsevier, Inc. (2019).</li>
<li>Ross, J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Folate+receptor+type+beta+is+a+neutrophilic+lineage+marker+and+is+differentially+expressed+in+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">Folate receptor type beta is a neutrophilic lineage marker and is differentially expressed in myeloid leukemia.</a> Cancer. 85 (2), 348-357 (1999).</li>
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<li>Sultan, H., Smith, S. V., Lee, A. G., Chevez-Barrios, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathologic+Markers+Determining+Prognosis+in+Patients+with+Treated+or+Healing+Giant+Cell+Arteritis%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Pathologic Markers Determining Prognosis in Patients with Treated or Healing Giant Cell Arteritis.</a> American Journal of Ophthalmology. , (2018).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

GCA は、成人では、最も一般的な血管炎および病理学的特徴例証するヘルパー リンパ球の強力な組み合わせとその他の肉芽腫性疾患またはサルコイドーシスのような vasculopathies で見つけることができるもマクロファージを活性化し、肉芽腫性多発血管炎2,3。GCA、側頭動脈には中型-大型サイズ動脈の良い表現が用意されていて、TA 生検診断新興国の役割を検討する機会を作成で年のために、パラフィン ブロックに格納できるかなりのサンプルを与えると治療上のターゲットでは、vasculitic の微小環境で FRB が好きです。アクセス可能な組織と、FRB は IHC を確実に分析できるかどうかを尋ねる方法で標準的な immunopathologic によって提示された利用しました。我々 の調査結果は、病理と IHC が診断と血管損傷の程度を確認するのみならず、GCA におけるマクロファージの異なるサブタイプの役割を検証する際にも貴重なツールとして使用できることを示します。
<p class="jove_content...

巨細胞性動脈炎 (GCA) は、中型-大型の動脈、大動脈とその枝を対象とし、高齢者に影響を与える炎症性疾患です。それは軽度の頭痛、顎の痛み、視力低下、脳卒中と組織の壊疽など重篤な虚血性合併症を呈する。赤血球沈降速度 (ESR) と側頭動脈生検 (タブ)1に明確な病理組織学的パターンのような高い炎症性マーカーによる診断は確定します。GCA は最も一般的な成人血管炎と診断の得られる側頭動脈のアクセシビリティ提示他の vasculopathies、従ってより容易にその病因を研究する 1 つを有効にするのにはない利点。タブ上の典型的な所見は、通常これらを分離する弾性板の破壊が同時内膜や外膜メディアのすべての血管層にわたって発見した T リンパ球とマクロファージ ・組織球の浸潤コンパートメント2。GCA は、血管の外膜に樹状細胞を活性化する未知の抗原を含む現在の証拠を示して、ヘルパーの募集が続きます T (Th) 細胞、特に Th1 と th17 細胞サブタイプ インターロイキン 17 を分泌してインターフェロン-γ (IFG) それぞれ。IFG は募集し、サイトカインおよびプロテアーゼを生産するマクロファージを活性化します。炎症性サイトカイン; が含まれますIL-12 相互従って肯定的なフィードバック ループを提供する Th1 細胞を活性化するを含む関節炎、発熱および分解酵素を引き起こす腫瘍壊死因子やインターロイキン 6、弾性板を損傷します。標準的な慢性的な治療ではありません、グルココルチコイド (GC) は、部分的に th17 細胞/IL-17 が免疫応答の3,4の Th1/IFG 腕ないを減衰させることによってサイトカイン経路を制御します。残念ながら、GC の停止結果病気再発。代替療法としてメトトレキサートは GCA 治療の用途が変更されてより敏感なバイオ マーカーが治療モニタリングの5,6 活用されていませんが、ない目的の臨床的エンドポイントは達成された一貫して.それは効果的に疾病とステロイド効果7、8をさかんに示すよう、2017 年でインターロイキン 6 ブロック、トシリツマブ、GCA の治療のため承認されました。
日には、GCA の良いバイオ マーカーがないです。その結果、疾患活動性を監視し、副作用を回避し、社会コストの負担を軽減する使用可能な薬品の投与量を滴定することは困難です。したがって、疾患活動性と相関が病態および治療方針の決定の援助に関する知見を提供する候補者のバイオ マーカーを探すことが不可欠です。
マクロファージ活性化の調節不全は、GCA の発症の重要な要因です。したがって、活性化マクロファージの選択的ターゲティング GCA の治療の効果的な手段があります。葉酸受容体 β (FRB) は糖ホスファチジルイノシトールの糖タンパク質が細胞膜に固定される通常骨髄単球性白血病細胞で表され、マクロファージを活性化します。リガンド、葉酸は細胞の DNA 合成、メチル化および修理9を有効にその減少のフォームで必須のビタミンです。自己免疫疾患で、中の発がん、FRB の式が誘導されます。その式は、単球やリウマチ性関節炎、炎症性 M1 マクロファージの表面または抗炎症 M2 マクロファージに制限されて固形臓器や骨髄性悪性疾患10、11,12,13活性化マクロファージのバイオ マーカーとして、その潜在的な役割のほか、FRB は、葉酸、antifolates またはセルで葉酸共役薬物受容体結合から始まるマルチ ステップ プロセスを介して選択的薬物輸送を有効にすることはできます。表面、内面化、リリースおよび内部の細胞機械12,14,15,16に必要な薬物の最終的に配信が続きます。対照的に FRB 癌細胞で発現し、マクロファージを活性化、正常造血細胞で発現した FRB はバインド葉酸 FRB/葉酸を介した薬物送達が FRB 陽性炎症や癌細胞に限定されることを確保することができます。
以前の研究では、FRB は、GCA マクロファージで表される初めてのデモンストレーションを行ったし、その発現相関 CD68 + とエンドセリン受容体ベータ マクロファージを GCA 病因17に貢献。本報告で述べるは、病理組織学的、免疫組織化学的方法 FRB マクロファージを評価するために使用分析総リンパ球およびマクロファージ カウントを GCA 血管風景で FRB の位置への洞察力を得るために。

<table><tbody><tr><td>ミクロトーム</td><td>Reichert-Jung</td><td></td><td></td></tr><tr><td>プレーンとつや消し顕微鏡スライドとカバースリップフィ</td><td>ッシャーサイエンティフィック&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>縦型ラック</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>光学顕微鏡</td><td>オリンパスBX60&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>蒸留水</td><td></td><td></td><td>濃度100%、90%、70%</td></tr>のキシレンアセトン中の顕微鏡トリ<tr><td>ス</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>緩衝生理食塩水(TBS)&nbsp;</td><td>Dako Wash BufferS3006</td><td></td><td></td></tr><tr>TBS<td></td><td></td><td></td>中の<td>3%過酸化水素</td></tr>ジ<tr><td>アミノベンジジン(DAB)</td><td>Sigma Fast Tablet set</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chemical Permount&nbsp;埋込媒体</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>SP-15-100</td><td></td></tr><tr><td>Harleco Gill's III Hematoxylin</td><td>Fiisher Scientific 23-750-019</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Harleco Eosin Y 1% アルコール ストック ソリューション</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>23-749-977</td><td></td></tr><tr><td>10 mMクエン酸一水和物(pH 6.0)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ポリクローナルウサギ抗葉酸受容体ベータ&nbsp;</td><td>Manohar Ratnam</td><td></td><td>1:800</td></tr><tr><td>モノクローナルマウス抗ヒト CD68</td><td>Dako&nbsp;</td><td>M071801</td><td>1:200</td></tr> ポリ<tr><td>クローナルウサギ抗CD3</td><td>Agilent Dako</td><td>A0452</td><td>1:100で最適化</td></tr><tr><td>ポリマーヤギ抗ウサギ/マウス二次抗体</td><td>Dako</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Placental tissue</td><td></td><td></td><td>&nbsp;FRBポジティブコントロール用</td></tr></tbody></table>

葉酸受容体ベータ マクロファージと巨細胞性動脈炎で微小血管免疫環境をプロファイリングする immunohistopathologic 研究

An Immunohistopathologic Study to Profile the Folate Receptor Beta Macrophage and Vascular Immune Microenvironment in Giant Cell Arteritis

巨細胞性動脈炎 (GCA) は高齢者に影響を与える慢性免疫介在する病気中型-大型サイズ動脈です。GCA マニフェスト関節炎と頭痛の閉塞症状、脳卒中または視野の損失。マクロファージと T ヘルパー リンパ球、血管壁に潜入し、血管損傷や虚血につながるプロ炎症性応答を生成します。日には、疾患活動とガイド治療反応を監視することができます GCA バイオ マーカーはありません。
葉酸受容体 β (FRB) は細胞膜に固定され、通常骨髄単球性系統および腫瘍や関節リウマチの滑膜マクロファージのように同様に骨髄性白血病細胞の大半でを表す一種のタンパク質どこその表現は疾患重症度と相関。葉酸化合物、葉酸酸抱合体、antifolate 薬をバインドする FRB の機能は、がんや炎症性疾患の研究で druggable ターゲットをしました。このレポートでは、GCAimmunopathology に関連して FRB の分布と発現を評価するために使用される病理組織学的および免疫組織化学的方法について説明します。
GCA と健常者からホルマリン固定、パラフィン包埋側頭動脈生検はティッシュの組織学を復習して特徴的機能を識別するには、ヘマトキシリンとエオシンで染色しました。免疫組織化学は、FRB、CD68、CD3 の表現を検出する使用されました。選択した高電力フィールド セクション 10 および動脈壁のそれぞれの場所に積極的にステンド グラスのセルの数を定量化する顕微解析を行った。
Lymphohistiocytic (LH) 炎症を伴う内膜肥厚と乱れた弾性板はどれもコントロールは、GCA で見られました。LH 潜入は、約 60% 40% リンパ球とマクロファージの作曲されました。FRB の式は、マクロファージ、CD68 + マクロファージの総人口の 31% を構成して、メディアと外膜にローカライズされたに制限されました。コントロールで FRB は認められなかった。
このプロトコルは、GCA の血管免疫微小環境を基準にして FRB マクロファージの明確な数値的および空間的パターンを示した。

病理組織学的所見
H &amp; E は、チュニカ内膜、チュニカ メディアで平滑筋細胞の内皮細胞と正常標本実証正常動脈解剖学の汚れや線維芽細胞およびフィーダー船を含む異種コラーゲン マトリックス呼ばれる栄養血管で外膜。識別される炎症性浸潤はありません。GCA の肯定的な側頭動脈は、マクロファージ ・組織球、リンパ球、プラズマ細胞、巨細胞の集合体で重度の炎症への穏健派を示した。内腔狭窄に注意、内弾性板 (図 1) の内膜の肥厚と 90% 混乱を伴います。
免疫組織化学的所見
CD3 陽性リ...

プロトコルは、病理組織学的検査および免疫組織化学葉酸受容体ベータ マクロファージと総免疫細胞との関係は、巨細胞性動脈炎、側頭動脈生検に潜入のプロファイルの使用方法を示します。

葉酸受容体ベータ マクロファージと巨細胞性動脈炎で微小血管免疫環境をプロファイリングする Immunohistopathologic 研究

Giant cell arteritis (GCA) is a chronic immune-mediated disease of medium-to-large sized arteries that affects older adults. GCA manifests with arthritis ...

この免疫組織化学的および組織病理学的プロトコルは、巨大細胞動脈炎における血管微小環境に潜在的な予後および治療的価値を有する候補タンパク質である葉酸受容体ベータを調べるために使用することができる。このプロトコルは、時間試験され、広く採用されており、長期保存後でも側頭動脈組織における葉酸受容体ベータ属性を探索するために使用することができる。組織切片を得るためには、ミクロトームを使用して、パラフィン埋め込まれた側頭動脈の厚さ4~5マイクロメートルの部分をスライスし、各セクションを得られる40°Cの水浴に浮かべ、しわを取り除きます。ガラス顕微鏡スライドを使用してスライドあたり3つのセクションをキャプチャし、60°Cのオーブンで60°Cのオーブンで、暖かいプレート上のスライドを温めます。セクションがスライドに付着したら、スライドを垂直ラックに入れ、37°Cで24時間乾燥します。翌日、スライドをスライドコンテナに移し、摂氏4度で少なくとも12時間保管します。次に、スライドをスライドラックに積み込み、2つの5分、100%キシレン浸漬、および濃度エタノール浸漬シリーズあたり5分の降下で組織を水和し、30秒ごとに10秒間の攪拌を行います。70%エタノール浸漬後、スライドを2回二重蒸留水で5分間リンスし、30秒ごとに10秒間撹拌します。抗原の検索のために、ラックを95°Cの200マイクロリットル、1リットルクエン酸バッファーあたり10ミリモルのガラス容器に30分間移動させます。インキュベーションの終わりに、スライドを室温まで20分間冷却してから、流水で5分間すすいます。内因性ペルオキシダーゼ活性を除去するには、まず疎水性マーカーを使用して各組織サンプルの周りに円を描き、200マイクロリットルの過酸化水素3%を10分間インキュベートし、続いて200ミコリ酸トリスバッファー状の生理食塩水(TBS)で3回洗浄します。最後の洗浄の後、各スライドを軽く手を出して余分なバッファーを取り除き、目的の一次抗体カクテルの200マイクロリットルを追加し、各スライドにカバースリップを加え、室温で湿度の高いチャンバーで1時間インキュベーションします。インキュベーションの最後に、カバースリップを捨て、新鮮なTBSSで3回の2分間のスケでスライドをすすきます。余分な緩衝液を取り除いた後、適切なビオチン化二次抗体溶液の200マイクロリットルを加え、カバースリップを各スライドに加え、室温で湿度の高いチャンバーに45分間インキュベーションします。カバースリップを破棄した後、実演したようにTBSSでスライドをすすきます。余分なバッファを削除します。そして、200マイクロリットルのDAB基板バッファーを室温で10分間ラベル付けします。インキュベーションの最後に、スライドをTBSSで洗浄し、水道水を10分間流し、ヘマトキシリンで3分間対抗します。次に、各スライドに適切な取り付け媒体の70マイクロリットルを加え、カバースリップが所定の位置に下げられると泡が発生するのを避けるために、ゆっくりとガラスカバーストリップを取り付け媒体にチップします。組織病理学的分析のために、スライドを光学顕微鏡のステージに置き、最初の組織セクションの血管アーキテクチャを評価します。次に、セクションあたりのリンパ球数に対するマクロファージの数を定量化する。免疫組織化学分析のために、各組織セクションの葉酸受容体ベータ染色パターンを調べ、1セクション当たり無作為に選択された10個の高出力フィールドにおける葉酸受容体β陽性、CD68陽性、およびCD3陽性細胞の数を定量化する。正常な標本におけるヘマトキシリンおよびエオシン染色は、チュニカ内皮内の内皮細胞、チュニカ培地中の平滑筋細胞、およびチュニカ・アドベンティティアの血管血管の血管を含む異種コラーゲンマトリックスを有する正常な動脈解剖学的解剖を明らかにする。巨大な細胞動脈炎陽性側頭動脈は、凝集体およびマクロファージ、またはヒステオサイト、リンパ球、時折形質細胞、および多核巨大細胞を有する中等度から重度の炎症を示す。ルミナル狭量も注目され、内弾性薄層の内増粘および90%の破壊を伴う。CD3陽性リンパ球およびCD68陽性マクロファージは、すべての巨大細胞性動脈炎陽性検体にも存在し、同様の染色パターンが全ての生検で観察される。葉酸受容体ベータの染色は、マクロファージおよび多核巨細胞に限定され、アドベンチアおよび培地に優先的に局在する。特に、葉酸受容体ベータは、マクロファージ全体の約30%を占めた。側頭動脈生検処理、切断、および脱蝋は、その後のステップを実行するために慎重なデキステリアを必要とする。スライドの解釈は経験豊富な心血管病理学者の専門知識を必要とします。検体や試薬を扱う際には、手袋や換気フードなどの接触や呼吸の注意を使用するように視聴者に知らせる。

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葉酸受容体ベータマクロファージと巨細胞性動脈炎で微小血管免疫環境をプロファイリングする Immunohistopathologic 研究

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