Name: 車 T 細胞スフェロイド殺害アッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-12-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 19 s
Description: 学ぶCAR T細胞の3D腫瘍スフェロイドに対する細胞傷害性評価法。リアルタイムイメージングと免疫アッセイを組み合わせた直感的な手法で、免疫療法の効果的な開発に貢献します。

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この作品が助成金 #244388、#254817 と #284983; 下のノルウェーの研究評議会によって支えられました。ノルウェーの癌協会 (#6829007);ノルウェーの健康の補助金 #17/00264-6 と #2016006 の下で南東地域。

1. 大腸癌細胞ラインから回転楕円体の生成
<ol><li>(クラスターの分化 19 (CD19) と緑色蛍光タンパク質 (GFP) を表現する安定導入) を洗う HCT 116 セル単分子膜リン酸バッファー生理食塩水 (PBS; 5 mL2 25 cm または 75 cm2フラスコ 10 mL) です。トリプシン (0.5 mL2 25 cm または 75 cm2フラスコ 1 mL) を追加し、37 ° C、5 分で細胞を孵化させなさい。</li>
	<li>顕微鏡下で細胞の剥離を確認し、完全なロズウェル パーク記念研究所 160 媒体 (RPMI 1640) 細胞解離酵素を中和 (RPMI 1640 + 10 %fcs + ゲンタマイシン; 10 mL 25 cm2または 75 cm2フラスコ 20 mL)。</li>
	<li>500 x gで 5 分間の遠心分離細胞懸濁液上清にピペットを使用して削除し、上下に数回完全 RPM1 1640 培地 5 mL をピペットで再懸濁します。</li>
	<li>トリパン ブルー色素排除を使用して互換性のあるセルのカウンターの上のセルをカウントします。</li>
	<li>500 x gで 5 分間の遠心分離細胞懸濁液上清にピペットを使用してを削除、5 x 103セル/mL を取得する RPMI 培地で再懸濁します。</li>
	<li>細胞懸濁液を滅菌タンクに転送し、マルチ チャンネル ピペットを使用して底板ラウンド 96 ウェルに 200 μ L/ウェルを分配します。</li>
	<li>プレートをインキュベータ (37 ° C、5% CO2、湿度 95%) 内自動化イメージング装置に転送します。</li>
	<li>集録ソフトウェアにログインしてスケジュールを取得する|船の追加を起動|スケジュール スキャン|容器を作成する: 新しい。</li>
	<li>
スキャンの種類を選択: 回転楕円体。興味のあるチャネルを選択: フェーズ + (回転楕円体成長に) し、明視野、緑 (腫瘍の信号に従う、集録時間 300 ms) と赤 (アポトーシスに従う、集録時間 400 ms)。
	<ol>
<li>目的の倍率を選択: 10 x。</li>
		<li>プレート モデルと引き出しの中にその位置を選択します。画像に井戸の位置を選択します。実験の説明を入力: 名前、細胞の種類、細胞の数。</li>
	</ol>
</li>
	<li>解析セットアップを延期解析まで後を選択します。タイムラインを右クリックして、選択スキャン グループ間隔の設定] オプションを選択し、設定スキャンを追加すべて4 h との合計は24 h (自動化イメージング装置で培養後、少なくとも 1 h) 目的の開始時間を設定します。</li>
	<li>
イメージング ソフトウェアにログインして回転楕円体の成長のため 2 日ごとにチェックします。
	<ol>
<li>ビュー最近スキャンオプションを選択し、目的の実験にダブルクリックします。画像チャンネル パネルで明視野観察を選択し、楕円の直径を測定する測定イメージ機能ツールを使用します。希望のサイズに到達する回転楕円体に 6 日ほどかかります: 直径の 0.5 mm。追加 50 μ L/ウェル完全 RPMI 培地の培地の蒸発の効果を制限する 4 日目。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. CD19 車 T 細胞の生成
<ol><li>
CD19 車 T 細胞の拡大 注:CD19 車 T 細胞を安定に発現は、前述の16として健康なドナー PBMCs の一括レトロ ウイルス伝達によって買収されました。CD19 車レトロ ウイルス構造符号化第二世代車は、fmc63 scFv チェーン、CD8 ヒンジと膜貫通ドメイン、4-1 bb 共刺激ドメインおよび最終的に CD3ζ ドメインで構成されています。<ol>
<li>展開して、文化導入された T は、10-11 日のビーズの比が 1:1 にセル抗 CD3/28 磁気ビーズの存在下で細胞します。拡大に伴い中のセルがある完全培地 (VIVO X 15, 5% 血清交換と 100 U/mL 組換えヒト IL-2)。 注:効率的な拡張のための理想的な密度は 1 に 2 × 106セル/mL です。初期の数に応じて (25 cm2フラスコ 20 ml、40 ml 容量の 75 cm2フラスコ) のフラスコ細胞文化のインキュベーター (37 ° C、5% CO2、湿度 95%) でセルを拡張できます。</li>
		<li>次の試金のための否定的な制御グループとして非導入 PBMCs (モックと呼ばれる) CD19 車 T 細胞に平行拡張プロトコルが含まれます。</li>
		<li>3 日目以降、毎日新鮮な媒体を追加し、必要に応じてより多くの培養フラスコにセルを分割します。</li>
		<li>日 10-11, 500 x gで 5 分間遠心分離細胞の上清を除去し、すべてのセルを結合して 1 つの 50 mL チューブに新鮮な完全なメディアの ~ 30 mL の細胞を再懸濁します。</li>
		<li>磁気ビーズを培地から分離する磁気スタンドに再懸濁細胞を含む 50 mL のチューブを配置します。</li>
		<li>チューブの側面に収集するビーズの 2-3 分待ちます。</li>
		<li>磁気ビーズ コレクション ゾーンに触れることがなく培養ピペットと新しい管への転送を削除します。</li>
		<li>最終培地のビーズの数を制限するもう一度ビード除去 (2.1.5–2.1.7) に関する手順を繰り返します。</li>
		<li>再懸濁しますとセルをカウント、2 x 106セル/mL の完全培地では、1 を密度を調整します。</li>
		<li>少なくとも 4 一晩まで h の細胞を休ませます。その後、直接-80 ° C でフリーズし、長期保存のため次の日にバイアルを液体窒素タンクに転送します。また、1 つを延ばすことが残りの部分まで一晩即座の使用のため。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
主な T 細胞の CD19 車式コントロール
	<ol>
<li>数字は若干異なるかもしれませんまたはフリーズ/フリーズ解除後適度に一晩かけて培養後、増殖させた T 細胞の数をカウントします。</li>
		<li>5 x 10 両方 CD19 車から5セルと流れ cytometry チューブを分離するモック主な T 細胞を転送します。</li>
		<li>洗浄フロー バッファーの 200 μ L のセル (2 %pbs で FBS) と遠心チューブ 500 x gで 5 分間で、培養培地によるアーティファクトの解消を取得する洗浄手順を繰り返します。</li>
		<li>(ビオチン ヤギ抗マウス igg 抗体, F(ab') ₂、おフラグメント特定) 一次抗体を準備するには、フロー バッファーで希釈 1: 200 を実行します。</li>
		<li>チューブあたり抗体ミックスの 100 μ l 細胞を再懸濁し、15 分二度余分な抗体を削除する前の洗浄のステップを繰り返すため氷の上を孵化させなさい。</li>
		<li>1: 400 フロー バッファーで希釈、二次抗体 (ストレプトアビジン-PE) を準備します。</li>
		<li>チューブあたり抗体ミックスの 100 μ l 細胞を再懸濁し、15 分余分な抗体を取り除くために、二度前の洗浄のステップを繰り返すため氷の上を孵化させなさい。</li>
		<li>チューブあたり 200 μ L フロー バッファーので細胞を再懸濁し、流れの cytometer で分析します。</li>
		<li>正および負のゲートを設定し分析 CD19 車使用モック T 細胞は、T 細胞をそれに応じて導入。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 3D 腫瘍回転楕円体殺害アッセイ
<ol><li>
希望のサイズに到達後 6 日または一度回転楕円体、インキュベーターからプレートを取り外します。マルチ チャンネル ピペットを使用して、優しく回転楕円体プレートから完全 RMPI 1640 培地の 100 μ L/ウェルを削除します。
	<ol>
<li>この手順では、内部の方のヒントを角度、回転楕円体の乱れを最小限にするために井戸の底との接触を避けること、96 ウェル プレートの壁。残りのボリュームは、約 100 μ L をする必要があります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>完全 RPMI 1640 培地の 9.95 ml アネキシン V 赤の 50 μ L を混合することによってアネキシン V 赤の 1: 200 ソリューションを準備します。</li>
	<li>アネキシン V 赤ソリューション 1: 200 の 100 μ L/ウェルを追加します。</li>
	<li>プレートを 15 分間インキュベーター (37 ° C、5% CO2、湿度 95%) に転送します。</li>
	<li>15 mL チューブの遠心分離機 500 x gで 5 分間でそれらはピペットを使用して上澄みを除去し、上下完全 RPM1 1640 培地 2 mL で数回ピペッティングによる再懸濁します導入された車 CD19 T 細胞を収穫します。</li>
	<li>トリパン ブルー色素排除を使用して互換性のあるセルのカウンターの上のセルをカウントします。</li>
	<li>500 x gで 5 分間の遠心分離細胞懸濁液上清にピペットを使用してを削除、2 x 105セル/mL を取得する RPMI 培地で再懸濁します。</li>
	<li>細胞懸濁液を滅菌タンクに転送、マルチ チャンネル ピペットを使用して下部の回転楕円体プレート ラウンド 96 ウェルに 100 μ L/ウェルを調剤します。</li>
	<li>プレートをインキュベータ (37 ° C、5% CO2、湿度 95%) 内自動化イメージング装置に転送します。</li>
	<li>
集録ソフトウェアにログイン、取得するスケジュールを選択します。
	<ol>
<li>スキャン タイムラインを右クリックし、タイムラインの編集を選択します。スキャン グループを右クリックし、それを削除します。タイムラインを右クリックし、選択スキャン グループ間隔の設定] オプションを選択し、設定のスキャンを追加すべて1.5 h との合計は24 h。</li>
		<li>(自動化イメージング装置で培養後、少なくとも 1 h) 目的の開始時間を設定します。スキャンのスケジュールを保存を選択します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 自動画像解析
<ol><li>買収にログインし、表示最近のスキャンオプションを選択を起動の解析オプションを選択します。新しい解析の定義を作成するを選択 |解析タイプ: 回転楕円体。画像チャンネル (相 + 明視野、緑と赤) を分析するを選択します。</li>
	<li>少なくとも 10 の代表的な画像を選択: 通常、条件と少なくとも 3 時間のポイント (初め、中間、終了、獲得の) あたり 1。</li>
	<li>デフォルトのプレビューは、全体画像のスタック上のプロシージャを分析します。</li>
	<li>明視野マスクのパラメーターを変更します。代表的なパラメーターです: 感度 10、穴埋める 1,000 μ m2、最小面積 1,000 μ m2。全体画像のスタックをプレビューし、選択したパラメーターが、回転楕円体を正確に検出を確認します。</li>
	<li>緑のマスク (GFP) のパラメーターを変更します。代表的なパラメーターです: 半径 200 μ m としきい値 3 シルクハット セグメンテーション GCU、エッジは切り離し、穴を埋める 5,000 μ m2、調整サイズ-2 ピクセル エリア分 3,000 μ m2。全体画像のスタックをプレビューし、選択したパラメーターが、回転楕円体を正確に検出を確認します。</li>
	<li>赤のマスク (アネキシン V) のパラメーターを変更します。代表的なパラメーターです: 半径 150 μ m としきい値 2 シルクハット セグメンテーション GCU、エッジは切り離し、穴を埋める 5,000 μ m2調整のサイズを 0 ピクセル、エリア分 1,000 μ m2。全体画像のスタックをプレビューし、選択したパラメーターが、回転楕円体を正確に検出を確認します。</li>
	<li>
アナライザーを起動します。
	<ol>
<li>分析が完了すると、興味の測定を抽出します。解析ファイルをクリックし、グラフ メトリックスオプションを選択します。関心・ スキャン ・井戸のメトリックを選択します。通常、明視野の境界内の総赤と緑の強度は、明視野観察マスク (図 3) によって決定されます回転楕円体の境界に蛍光信号を制限することによって最も正確な測定を与えます。「データ エクスポートの」をクリックしてしていくつかのファイル形式で選択したメトリックを抽出します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>分析対象のファイルを選択して画像や動画の抽出に進むし、画像を書き出し、ムービーのオプションを選択します。2 つのオプションがあります、どちらか「として表示」取得画像と映画としてどちらか「として保存」サード パーティ ソフトウェアを介して外部解析用の生データを取得するためには、イメージング ソフトウェア (通常合成画像) に見られます。</li>
</ol>

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<li>Pickl, M., Ries, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+3D+and+2D+tumor+models+reveals+enhanced+HER2+activation+in+3D+associated+with+an+increased+response+to+trastuzumab%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Comparison of 3D and 2D tumor models reveals enhanced HER2 activation in 3D associated with an increased response to trastuzumab.</a> Oncogene. 28 (3), 461-468 (2009).</li>
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</ol>

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将来のがんの治療法を検証する革新的なツールとして回転楕円体の使用年の関心の高まりのフィールドとなっています。回転楕円体は、古典的な 2 D の in vitro 解析および生体内の評価間の中間ステップを表しています。さらには、遺伝子発現プロファイル7だけでなく、腫瘍微小環境の模倣の面でその効力についての約束の多くを保持しています。この文書で示されるプロトコルは Saheen から適応されたら11 Incucyte S3 にし、大腸の細胞から腫瘍の 3 D 回転楕円体を生産する手頃な価格と簡単なメソッドを表します。回転楕円体高速撮像素子世代を結合して、信頼性と高速幅広い抗腫瘍剤のスクリーニングを許可、腫瘍の構造を不安定にする前述のエージェントの能力を監視します。
このプロトコルについて考慮するいくつかの重要な手順があります。まず、腫瘍細胞の開始番号は、正確に調整する必要があります。セルが PLL を低下開始セル密度が高すぎる場合、急速にコーティング、付着性単分子膜を形成す...

養子のセル転送 (ACT) は、次世代のがん治療法を表します。それはエフェクター細胞 (T または NK 細胞) の患者への注入に依存します。これらの細胞は、彼らの目標は、腫瘍にそれらを導くし、それを破壊する受容体と遺伝子組み換えできます。最近このアプローチは B 細胞のマーカー CD19 に対するキメラ抗原受容体 (CAR) は彼/彼女の癌の1を殺すために患者 T 細胞に導入されたときに可能であること示した。人工レセプターである車の場合デザインは特異抗体フラグメントの抗原結合ドメイン エンティティ指定された単一鎖可変フラグメント (scFv) に減少 T 細胞シグナル伝達ドメインにリンクされます。いくつかのデザインがありますが、最も一般的に使用されるバージョンは TCR シグナリングのための CD3z と共刺激の 1 つのドメインから成っている第二世代の車のデザインとして呼ばれます (CD28、4-1 bb, OX40 など)。1,2。 免疫療法フィールド CD19 車 T 細胞が B 細胞悪性腫瘍3,4多くの患者を効果的扱われたとき法律のこの新しいフォームへの注意のほとんどの監督。この成功に続いて研究者は限られた成功と固形腫瘍に対する他のエピトープをターゲットに似たようなデザインを悪用しようとします。残念ながら、腫瘍特異抗原とレンダリング車 T 厳しい腫瘍微小の希少性細胞腫瘍5に向けて以下の効果的なの。
現在、最も一般的に使用される生体外で検証の戦略は、すでに述べたように固形腫瘍の課題の一部にしか対応二次元 (2 D) システムに依存します。古典的な 2次元培養システムは、機能とこれらのエフェクター細胞の特異性を評価する分子として車 T 細胞とターゲット癌細胞の混合物を含みます。これらの戦略の研究の重要かつ不可欠な部分ですが、とることはありません考慮複雑な形態と癌細胞6三次元 (3 D) 構造。回転楕円体と呼ばれる 3 D のシステムで培養された細胞は、遺伝子発現プロファイルで7、リダイレクトされたエフェクター細胞による認識に影響を与える可能性があります変更を介して新しい形質を取得します。Birgersdotter と同僚は、3次元培養モデルでのみ栽培におけるホジキン リンパ腫 (HL) セルラインが原発腫瘍サンプル8のような遺伝子発現プロファイルを取得を例示します。したがって、回転楕円体または似たような 3 D 培養モデル標準的な 2 D システムとは対照的に関連性の高い方法論提供の文化.このようなシステムは、特定の車の検証プロセスの最後のステップとして見られている生体内での研究に似ています。がんのクラスターの形態を模倣する 2 D システムが失敗することを考えると、回転楕円体を提供する前に車の T 細胞の機能を評価するために同じような形成体内モデル。1 つの調査、Picklらは、ひと上皮成長因子受容体 (HER2) 癌細胞を過剰発現の回転楕円体モデルがインビボ モデル9に同様の信号プロファイルを示した識別。これはさらに回転楕円体が車の T 細胞の生体内評価をより関連性の近くでを提供することをサポートします。さらに、回転楕円体に対する T 細胞車検証がもっと批判的にその有効性を評価して、途中で生体内での研究への移動を防ぐデザインの一部を助けるかもしれない10;したがって、少ない動物を犠牲にして倫理的関係の研究に貢献します。また、回転楕円体を使用してプロトコルはより高価な古典的な 2 D システムよりも、はるかに高速古典的な生体内での研究と比較しています。一緒に取られて、1 つは、回転楕円体研究の包含の場合、in vitro および in vivo の研究をリンクする標準的な方法すぐになる予測できます。
大腸癌細胞株 HCT 116 から回転楕円体の作製を紹介します。この細胞株は、CD19 車 T 細胞に敏感なそれをレンダリングし、臨床的に検証された車の構造を使用して殺害の明確な評価を提供する人間の CD19 分子を表現に変更されました。

<table><tbody><tr><td>ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>D8537-500ML</td><<td>strong>ロット番号: RNBG7037</td></tr><tr><td>75 cm&sup2; 成長エリアフラスコ</td><td>VWR</td><td></td> <td>430639ロット番号: 2218002</td></tr><tr><td>75 cm&sup2; 成長エリアフラスコ</td><td>VWR</td><td>734-2705</td><td>Lot Number: 3718006</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>SIGM-ALDRICH</td><td>T3924-100ml</td><td>ロット番号: SLBTO777</td></tr><tr><td>RPMI 1640 med L-glutamin, 10 x 500 mL</td><td>Life Technology (Gibco)</td><td>21875-091</td><td>ロット番号: 1926384</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Gibco</td><td>10500064</td><td>ロット番号: 08Q3066K</td></tr><tr><td>ゲンタマイシン</td><td>サーモフィッシャー</td><td>15750060</td><td>ロット番号: 1904924A</td></tr><tr><td>トリパン ブルー ソリューション、0.4%</td> <td>サーモ フィッシャー</td><td>15250061</td><td><ストロング>ロット番号:</ストロング> 1886513</td></tr><tr><td>96 ウェル プレート、丸底</td><td>VWR</td><td>734-1797</td><td><ストロング>ロット番号:</ストロング> 33117036</td></tr><tr><td>Dynabeads ヒト T-アクチベーター CD3/CD28</td><td>サーモフィッシャー</td><td>11132D-X-VIVO</td><td></td></tr> <tr><td>15 ゲンタマイシン L-GLN、フェノール レッド、1 L</td><td>BioNordika</td><td>BE02-060Q</td><td>ロット番号: 8MB036</td></tr><tr><td>CTS 免疫細胞血清補充</td><td>サーモフィッシャー</td><td></td> <td>A2596102ロット番号: 1939319</td></tr><tr><td>IL-2 Proleukin</td><td>Novartis</td><td></td><td>ロット番号: 505938M</td></tr><tr><td>IncuCyte Annexin V Red Reagent</td><td>Essen Bioscience</td><td>4641</td><td>Lot Number: 17A1025-122117</td></tr><tr><td>試薬リザー</td><td>バーVWR</td><td>89094-672</td><td>ロット番号: 89094-672</td></tr><tr><td>15mLチューブ</td><td>VWR</td><td>734-1867</td><td>ロット番号: 19317044</td></tr><tr><td>抗ヒトCD19-PE</td><td>BD Biosciences</td><td>555413</td><td>ロット番号: 4016990 RRID: AB_395813</td></tr><tr><td>ビオチン-SP(ロングスペーサー) AffiniPure F(ab')2フラグメントヤギ抗マウスIgG</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>115-066-072</td><td>ロット番号: 129474: RRID: AB_2338583</td></tr><tr><td>Streptavidin-PE</td><td>BD Biosciences</td><td>554061</td><td>Lot Number: 5191579: RRID: AB_10053328</td></tr><tr><td>HCT 116 結腸直腸癌ライン</td><td>ATCC</td><td>CCL-247-Incucyte</td><td></td></tr> <tr><td>S3</td><td>Essen Bioscience</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

車 t 細胞スフェロイド殺害アッセイ

A Spheroid Killing Assay by CAR T Cells

免疫療法場合治療不可能な癌との闘いの関心の高まりのフィールドとなっています。免疫療法のすべてのメソッドの間では、キメラ抗原受容体 (車) は、B 急性リンパ性白血病小児 (B オール) で特に最も壮観な結果を得られた T 細胞をリダイレクトされます。車 T 細胞の古典的な検証方法は、特異性の利用と標的細胞懸濁液および異種移植モデルに対して車の T 細胞の機能アッセイに依存しています。残念ながら、体外の観察はしばしば生体内で得られた結果から分離され、多くの努力および動物は別のステップを追加することによって倹約できる: 3次元培養を使用。彼らは動物モデルにしみ込んでいるときに腫瘍細胞の 3次元構造を模倣する潜在的な標的細胞のスフェロイドの生産は、理想的な選択肢を表します。(ここでは CD19 車 T 細胞による例示) 養子細胞療法の検証ツールとして導入された大腸細胞ラインから回転楕円体を生成する、信頼性の高い手頃な価格と簡単な方法を報告する.このメソッドは、回転楕円体の成長が続くことができる高度のライブ イメージング システムと相まって、エフェクター細胞の細胞毒性および腫瘍細胞のアポトーシス。

図 1に見られる、フローサイトメトリーによる T 細胞 (図 1 a) 上 CD19 車の表現と HCT116 腫瘍細胞株 (図 1 b) に CD19 のレベルのレベルをチェックすることが重要です。図 2は、典型的な回転楕円体実験の結果を示すものです。自動化イメージング装置は 4 つの異なるチャンネルで写真を撮る: 明視野、位相、緑、赤の蛍光。回転楕円体 (楕円体形成のサインである) の近くの非常に対照的な境界を表示することによりスフェロイドの形成を主張するフェーズ、使います。明るいフィールドは、回転楕円体のサイズを検出し、前述の境界へ緑信号 (腫瘍) と赤い信号 (アポトーシス) を制限する分析プロセスで使用されます。それは回転楕円体 (たとえば分離腫瘍細胞とのアポトーシス) に直接関係のないイベントを考慮することができます。緑と赤...

このプロトコルは、リアルタイムで 3 D 構造化癌細胞 (スフェロイド) に対する免疫療法のリダイレクトされた T 細胞 (T 細胞車) の細胞毒性を評価するために設計されています。

車 T 細胞スフェロイド殺害アッセイ

Immunotherapy has become a field of growing interest in the fight against cancer otherwise untreatable. Among all immunotherapeutic methods, chimeric ...

この方法は、腫瘍細胞の3D構造に対する免疫細胞毒性の評価に関する免疫療法分野における重要な質問に答える助けとなる。この方法の主な利点は、それが簡単であり、高度なイメージング技術と敏感な免疫学的アッセイを組み合わせることです。PBSの5ミリリットルで関心のある大腸癌細胞株を洗浄し、37°Cで5分間0.5ミリリットルのトリプシンでフラスコ底から細胞を取り除くことから始めます。顕微鏡で剥離を確認した後、完全な培地の10ミリリットルで細胞解離酵素を中和し、遠心分離によって細胞を収集する。ペレットをカウント用の新鮮な完全な培地の5ミリリットルに再懸濁し、ミリリットル濃度あたり3番目の細胞に1.5倍の10で細胞を再懸濁する。その後、200マイクロリットルの細胞を96ウェル丸底板の各ウェルに種分し、5%CO2と湿度95%の37°Cインキュベーター内の自動イメージング装置にプレートを入れる。装置の取得ソフトウェアにログインし、取得するスケジュールを選択し、船舶の追加を開始し、スケジュールに従ってスキャンし、船舶を新規に作成します。次に、スキャンタイプのスフェロイドを選択し、目的の適切な明視野チャネルと蛍光チャネルを選択します。倍率を10倍に設定し、撮像装置の引き出し内のプレートモデルとその位置を選択します。画像を作成するウェルの位置を選択し、名前、セルの種類、セル数などの実験の説明を入力します。分析の設定では、[後で分析を延期] を選択し、タイムラインを右クリックして[選択したスキャン グループ間隔を設定]を選択し、[スキャンの追加間隔] を [4 時間ごとに追加] と [合計 24 時間] に設定します。次に、自動撮像装置でインキュベーション後少なくとも1時間の開始時間を設定する。回転楕円体の成長の進行状況を確認するには、2 日ごとにイメージング ソフトウェアにログインし、[最近のスキャンを表示] を選択します。目的の実験をダブルクリックし、画像チャンネルパネルで「ブライトフィールド」を選択します。次に、イメージフィーチャの測定ツールを使用して、スフェロイドの直径を測定し、4日目に井戸あたり50マイクロリットルの完全な媒体を追加して、媒体の蒸発効果を制限します。回転楕円体が適切な実験サイズに達したら、プレートを慎重に角度を付け、マルチチャンネルピペットを使用して、スフェロイドを邪魔することなく、各ウェルから完全な媒体の150マイクロリットルを穏やかに除去します。次に、廃棄した培地を、アネキシンVレッドの1~200溶液の50マイクロリットルに交換し、15分間細胞培養インキュベーターにプレートを入れる。遠心分離機はCAR CD19 T細胞を15ミリリットル円錐形チューブにトランステーンし、完全な培地の2ミリリットルでペレットを再懸濁した。計数後、完全な培地濃度のミリリットル当たり5番目の細胞に2倍10〜5番目の細胞に細胞を希釈する。次に、各スフェロイド含有ウェルにCAR CD19 T細胞100マイクロリットルを加え、プレートを自動画像化装置に戻します。取得ソフトウェアで、[取得するスケジュール] を選択し、スキャンタイムラインを右クリックします。[タイムラインを編集]を選択し、スキャングループを右クリックして削除します。タイムラインをもう一度右クリックし、[選択したスキャングループ間隔を設定]を選択し、[スキャンを1時間半ごとに追加]と[合計24時間]に設定します。次に、自動イメージング装置でインキュベーション開始後少なくとも1時間経過してから、イメージング開始時刻を設定し、[スケジュールスキャンを保存]を選択します。自動画像解析の場合、スキャン ソフトウェアで、[最近のスキャンを表示して分析を起動] を選択します。[新しい解析定義を作成]を選択し、解析するイメージ チャネルを設定します。10 以上の代表的な画像を選択し、イメージ スタック全体で既定の分析手順をプレビューします。明視野マスクのパラメータを変更し、イメージスタックをプレビューして、選択したパラメータが回転楕円体を正確に検出することを確認します。緑色のマスクのパラメータを変更し、イメージ スタックをプレビューして、選択したパラメータが回転楕円体を正確に検出することを確認します。赤いマスクのパラメータを変更し、イメージ スタックをプレビューして、選択したパラメータが回転楕円体を正確に検出することを確認します。ノイズと感度に対するノイズと感度に対する最高の信号を、各時点ですべてのイベントをキャプチャできるパラメータのセットを見つけることができないことを念頭に置いて、注意してください。次に、アナライザを起動します。分析が完了したら、対象の測定値を抽出し、分析されたファイルとグラフメトリックオプションを選択します。対象のメトリック、スキャン、およびウェルを選択します。[データのエクスポート] をクリックして、選択したメトリックを複数のファイル形式で抽出します。次に、画像を抽出するには、解析対象のファイルを選択し、[イメージとムービーのエクスポート] を選択します。トランスデューセドT細胞に対するCD19 CAR発現およびトランスデューセ型大腸癌細胞に対するCD19発現は、フローサイトメトリーにより確認できる。ここで、典型的なスフェロイド実験の結果が観察できる。模擬T細胞とは異なり、CD19 CAR T細胞は、結腸直腸癌細胞由来のスフェロイドを特異的に殺すことができるので、生きた腫瘍細胞の数を大幅に減少させる。時間の経過に応じてスフェロイド境界内の合計緑と赤の信号の進化の追跡は、CD19 CAR T細胞注入の直後に、アポトーシス信号が急速に増加するにつれて、スフェロイドのサイズが急速に縮小することを明らかにします。この手順に従って、毒性アッセイ、細胞移動アッセイ、またはスフェロイド構造測定のような他の方法は、それぞれ薬物スクリーニング、T細胞運動性、またはスフェロイド形成に関する追加の質問に答えるために行うことができる。

Research

JoVE Journal

Cancer Research

がん研究

スフェロイドは、2D細胞培養単層モデルと比較して、細胞の環境をより正確に表現するために使用される3D細胞培養モデルの一種です。このプロトコル例では、科学者が結腸直腸がん細胞株からスフェロイドを作製し、生細胞イメージングを適用してスフェロイドの成長を追跡します。...

細胞株からのスフェロイド作製:三次元(3D)細胞培養法

このビデオでは、腫瘍細胞負荷が高い場合のCAR-T細胞の反復腫瘍死滅の可能性を評価するための反復腫瘍チャレンジアッセイを実演します。さらに、CAR-T細胞をフローサイトメトリーを使用して分析し、サンプル中のCAR-T細胞のさまざまな亜集団を決定することができます。...

Repetitive Tumor Challenge Assay:キメラ抗原受容体(CAR)T細胞の反復腫瘍死傷能を評価するためのIn vitro培養アッセイ

このビデオでは、リアルタイムの電気インピーダンス測定を通じて、がん細胞に対するCAR-T細胞の活性を監視する方法を示します。インピーダンスの変化を追跡することで、CAR-T細胞ががん細胞の細胞溶解を誘導する効果を評価し、その細胞毒性能力に関する知見を得ることができます。...

CAR-T細胞の効力を評価するためのリアルタイムIn vitro細胞溶解アッセイ

このビデオは、蛍光タンパク質を発現する3D腫瘍スフェロイドに対するCAR-T細胞の細胞毒性効果を評価するin...

腫瘍スフェロイドに対するCAR-T細胞の細胞毒性を評価するためのin vitroアッセイ

このビデオは、キメラ抗原受容体(CAR)T細胞の活性を検証するためのin vitroアッセイを示しています。CD19抗原を発現するB細胞リンパ腫細胞および細胞質ルシフェラーゼをCD19特異的CAR-T細胞と共培養します。CARが腫瘍上のCD19に結合すると、CAR...

腫瘍特異的CAR-T細胞の抗腫瘍活性を評価するためのin vitroアッセイ

我々は、腫瘍標的細胞とインキュベートした場合、T細胞の細胞傷害活性を測定するための単一セルハイスループットアッセイが記載されている。この方法では、空間的に定義された比率で、T細胞と標的細胞を閉じ込めるために、サブナノリットルウェル（〜100,000ウェル/配列）の高密度、エラストマー配列を採用しており、エフェクター -...

T細胞の定量的なハイスループットシングルセル細胞毒性アッセイ

療法の評価を目指して私たち頭頸部扁平上皮癌細胞株に対する実験的治療レジメンの現在の規格をテストすることができる回転楕円体に基づく、三次元の in...

治療の頭頸部扁平上皮癌に対する回転楕円体に基づく 3 D 細胞培養モデルのテスト

液体および固形腫瘍細胞を標的とするキメラ抗原受容体T細胞の効力を評価する定量的なインビトロ細胞質アッセイシステムを説明する。このプロトコルは、他の免疫エフェクター細胞、ならびに組み合わせ治療を評価するために拡張することができる。...

固体および造形癌細胞を標的とするキメラ抗原受容体T細胞のリアルタイム効力アッセイ

本稿では、抗腫瘍抗体の重要ながん細胞死滅機構であるADCC機構を調節する化合物を同定する方法について紹介する。NK細胞の細胞毒性効果は、トラスツズマブの存在下で乳がん細胞スフェロイドで測定されます。画像解析により、スフェロイドの生細胞と死細胞、および標的細胞が同定されます。...

腫瘍スフェロイドモデルにおける抗体依存性細胞傷害性の定量化:創薬への応用

ここでは、1つのT細胞とがん標的細胞を内包したダブルエマルジョン液滴を作製し、細胞死を1細胞レベルで調べる方法について述べる。この方法により、大規模なT細胞集団内の細胞傷害性分子と標的細胞のアポトーシスの両方を二重に定量できます。...

キメラ抗原受容体T細胞を単一細胞レベルで評価するための液滴ベースの細胞毒性アッセイ

学ぶCAR T細胞の3D腫瘍スフェロイドに対する細胞傷害性評価法。リアルタイムイメージングと免疫アッセイを組み合わせた直感的な手法で、免疫療法の効果的な開発に貢献します。

車 T 細胞スフェロイド殺害アッセイ

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