Name: CRISPR Cas を用いた哺乳類細胞におけるゲノム編集 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-04-11T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: 学ぼうCRISPR-Cas9を用いた哺乳類細胞のゲノム編集プロトコル。ノックアウト・ノックイン細胞株を効率的に作成し、遺伝子機能解析や疾患モデル構築に活用する方法を解説します。

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M.H.T. は、科学技術と研究の共同協議会事務所の助成金 (1431AFG103) のための代理店でサポートされて、国立医療研究評議会は、(OFIRG/0017/2016) を付与、国立研究財団補助金 (046-NRF2013-THE001 ・ NRF2013-THE001-093)、教育層 1 の省許可 (RG50/17 (S))、スタートアップは、ナンヤン工科大学、南洋工科大学から国際遺伝子工学機械 (iGEM) 競争のための資金から付与します。

<ol><li>Epinat, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+engineered+meganuclease+induces+homologous+recombination+in+yeast+and+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">A novel engineered meganuclease induces homologous recombination in yeast and mammalian cells.</a> Nucleic Acids Research. 31 (11), 2952-2962 (2003).</li>
<li>Arnould, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineered+I-CreI+derivatives+cleaving+sequences+from+the+human+XPC+gene+can+induce+highly+efficient+gene+correction+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Engineered I-CreI derivatives cleaving sequences from the human XPC gene can induce highly efficient gene correction in mammalian cells.</a> Journal of Molecular Biology. 371 (1), 49-65 (2007).</li>
<li>Chapdelaine, P., Pichavant, C., Rousseau, J., Paques, F., Tremblay, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meganucleases+can+restore+the+reading+frame+of+a+mutated+dystrophin%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Meganucleases can restore the reading frame of a mutated dystrophin.</a> Gene Therapy. 17 (7), 846-858 (2010).</li>
<li>Carroll, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+engineering+with+zinc-finger+nucleases%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Genome engineering with zinc-finger nucleases.</a> Genetics. 188 (4), 773-782 (2011).</li>
<li>Urnov, F. D., Rebar, E. J., Holmes, M. C., Zhang, H. S., Gregory, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+editing+with+engineered+zinc+finger+nucleases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Genetics%22%5BJournal%5D)">Genome editing with engineered zinc finger nucleases.</a> Nature Reviews Genetics. 11 (9), 636-646 (2010).</li>
<li>Miller, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+TALE+nuclease+architecture+for+efficient+genome+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">A TALE nuclease architecture for efficient genome editing.</a> Nature Biotechnology. 29 (2), 143-148 (2011).</li>
<li>Zhang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+construction+of+sequence-specific+TAL+effectors+for+modulating+mammalian+transcription%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Efficient construction of sequence-specific TAL effectors for modulating mammalian transcription.</a> Nature Biotechnology. 29 (2), 149-153 (2011).</li>
<li>Boch, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breaking+the+code+of+DNA+binding+specificity+of+TAL-type+III+effectors%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Breaking the code of DNA binding specificity of TAL-type III effectors.</a> Science. 326 (5959), 1509-1512 (2009).</li>
<li>Moscou, M. J., Bogdanove, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+cipher+governs+DNA+recognition+by+TAL+effectors%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A simple cipher governs DNA recognition by TAL effectors.</a> Science. 326 (5959), 1501(2009).</li>
<li>Hsu, P. D., Lander, E. S., Zhang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+applications+of+CRISPR-Cas9+for+genome+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Development and applications of CRISPR-Cas9 for genome engineering.</a> Cell. 157 (6), 1262-1278 (2014).</li>
<li>Sander, J. D., Joung, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR-Cas+systems+for+editing%2C+regulating+and+targeting+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">CRISPR-Cas systems for editing, regulating and targeting genomes.</a> Nature Biotechnology. 32 (4), 347-355 (2014).</li>
<li>Jinek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+programmable+dual-RNA-guided+DNA+endonuclease+in+adaptive+bacterial+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity.</a> Science. 337 (6096), 816-821 (2012).</li>
<li>Nishimasu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+structure+of+Cas9+in+complex+with+guide+RNA+and+target+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Crystal structure of Cas9 in complex with guide RNA and target DNA.</a> Cell. 156 (5), 935-949 (2014).</li>
<li>Yamano, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+Structure+of+Cpf1+in+Complex+with+Guide+RNA+and+Target+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Crystal Structure of Cpf1 in Complex with Guide RNA and Target DNA.</a> Cell. 165 (4), 949-962 (2016).</li>
<li>Swarts, D. C., Mosterd, C., van Passel, M. W., Brouns, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR+interference+directs+strand+specific+spacer+acquisition%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">CRISPR interference directs strand specific spacer acquisition.</a> PLoS One. 7 (4), e35888(2012).</li>
<li>Zetsche, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cpf1+is+a+single+RNA-guided+endonuclease+of+a+class+2+CRISPR-Cas+system%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cpf1 is a single RNA-guided endonuclease of a class 2 CRISPR-Cas system.</a> Cell. 163 (3), 759-771 (2015).</li>
<li>Sternberg, S. H., Redding, S., Jinek, M., Greene, E. C., Doudna, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+interrogation+by+the+CRISPR+RNA-guided+endonuclease+Cas9%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">DNA interrogation by the CRISPR RNA-guided endonuclease Cas9.</a> Nature. 507 (7490), 62-67 (2014).</li>
<li>Hu, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolved+Cas9+variants+with+broad+PAM+compatibility+and+high+DNA+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Evolved Cas9 variants with broad PAM compatibility and high DNA specificity.</a> Nature. 556 (7699), 57-63 (2018).</li>
<li>Kleinstiver, B. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Broadening+the+targeting+range+of+Staphylococcus+aureus+CRISPR-Cas9+by+modifying+PAM+recognition%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Broadening the targeting range of Staphylococcus aureus CRISPR-Cas9 by modifying PAM recognition.</a> Nature Biotechnology. 33 (12), 1293-1298 (2015).</li>
<li>Kleinstiver, B. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineered+CRISPR-Cas9+nucleases+with+altered+PAM+specificities%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Engineered CRISPR-Cas9 nucleases with altered PAM specificities.</a> Nature. 523 (7561), 481-485 (2015).</li>
<li>Cong, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+genome+engineering+using+CRISPR%2FCas+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems.</a> Science. 339 (6121), 819-823 (2013).</li>
<li>Mali, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-guided+human+genome+engineering+via+Cas9%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">RNA-guided human genome engineering via Cas9.</a> Science. 339 (6121), 823-826 (2013).</li>
<li>Jinek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-programmed+genome+editing+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">RNA-programmed genome editing in human cells.</a> Elife. 2, e00471(2013).</li>
<li>Cho, S. W., Kim, S., Kim, J. M., Kim, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+genome+engineering+in+human+cells+with+the+Cas9+RNA-guided+endonuclease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Targeted genome engineering in human cells with the Cas9 RNA-guided endonuclease.</a> Nature Biotechnology. 31 (3), 230-232 (2013).</li>
<li>Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+evaluation+of+CRISPR-Cas+systems+reveals+design+principles+for+genome+editing+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">Systematic evaluation of CRISPR-Cas systems reveals design principles for genome editing in human cells.</a> Genome Biology. 19 (1), 62(2018).</li>
<li>Ran, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+genome+editing+using+Staphylococcus+aureus+Cas9%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">In vivo genome editing using Staphylococcus aureus Cas9.</a> Nature. 520 (7546), 186-191 (2015).</li>
<li>Hou, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+genome+engineering+in+human+pluripotent+stem+cells+using+Cas9+from+Neisseria+meningitidis%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Efficient genome engineering in human pluripotent stem cells using Cas9 from Neisseria meningitidis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 110 (39), 15644-15649 (2013).</li>
<li>Kim, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+genome+editing+with+a+small+Cas9+orthologue+derived+from+Campylobacter+jejuni%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">In vivo genome editing with a small Cas9 orthologue derived from Campylobacter jejuni.</a> Nature Communications. 8, 14500(2017).</li>
<li>Edraki, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Compact%2C+High-Accuracy+Cas9+with+a+Dinucleotide+PAM+for+In+Vivo+Genome+Editing%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Cell%22%5BJournal%5D)">A Compact, High-Accuracy Cas9 with a Dinucleotide PAM for In Vivo Genome Editing.</a> Molecular Cell. , (2018).</li>
<li>Chatterjee, P., Jakimo, N., Jacobson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimal+PAM+specificity+of+a+highly+similar+SpCas9+ortholog%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Advances%22%5BJournal%5D)">Minimal PAM specificity of a highly similar SpCas9 ortholog.</a> Science Advances. 4 (10), (2018).</li>
<li>Muller, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Streptococcus+thermophilus+CRISPR-Cas9+Systems+Enable+Specific+Editing+of+the+Human+Genome%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Therapy%22%5BJournal%5D)">Streptococcus thermophilus CRISPR-Cas9 Systems Enable Specific Editing of the Human Genome.</a> Mol Therapy. 24 (3), 636-644 (2016).</li>
<li>Esvelt, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthogonal+Cas9+proteins+for+RNA-guided+gene+regulation+and+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Orthogonal Cas9 proteins for RNA-guided gene regulation and editing.</a> Nature Methods. 10 (11), 1116-1121 (2013).</li>
<li>Boratyn, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BLAST%3A+a+more+efficient+report+with+usability+improvements%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">BLAST: a more efficient report with usability improvements.</a> Nucleic Acids Research. 41 (Web Server issue), W29-W33 (2013).</li>
<li>Hsu, P. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+targeting+specificity+of+RNA-guided+Cas9+nucleases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">DNA targeting specificity of RNA-guided Cas9 nucleases.</a> Nature Biotechnology. 31 (9), 827-832 (2013).</li>
<li>Montague, T. G., Cruz, J. M., Gagnon, J. A., Church, G. M., Valen, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CHOPCHOP%3A+a+CRISPR%2FCas9+and+TALEN+web+tool+for+genome+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">CHOPCHOP: a CRISPR/Cas9 and TALEN web tool for genome editing.</a> Nucleic Acids Research. 42 (Web Server issue), W401-W407 (2014).</li>
<li>Heigwer, F., Kerr, G., Boutros, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((E-CRISP%3A+fast+CRISPR+target+site+identification%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">E-CRISP: fast CRISPR target site identification.</a> Nature Methods. 11 (2), 122-123 (2014).</li>
<li>Haeussler, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+off-target+and+on-target+scoring+algorithms+and+integration+into+the+guide+RNA+selection+tool+CRISPOR%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">Evaluation of off-target and on-target scoring algorithms and integration into the guide RNA selection tool CRISPOR.</a> Genome Biology. 17 (1), 148(2016).</li>
<li>Bae, S., Park, J., Kim, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cas-OFFinder%3A+a+fast+and+versatile+algorithm+that+searches+for+potential+off-target+sites+of+Cas9+RNA-guided+endonucleases%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Cas-OFFinder: a fast and versatile algorithm that searches for potential off-target sites of Cas9 RNA-guided endonucleases.</a> Bioinformatics. 30 (10), 1473-1475 (2014).</li>
<li>Richardson, C. D., Ray, G. J., DeWitt, M. A., Curie, G. L., Corn, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhancing+homology-directed+genome+editing+by+catalytically+active+and+inactive+CRISPR-Cas9+using+asymmetric+donor+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Enhancing homology-directed genome editing by catalytically active and inactive CRISPR-Cas9 using asymmetric donor DNA.</a> Nature Biotechnology. 34 (3), 339-344 (2016).</li>
<li>Richardson, C. D., Ray, G. J., Bray, N. L., Corn, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-homologous+DNA+increases+gene+disruption+efficiency+by+altering+DNA+repair+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Non-homologous DNA increases gene disruption efficiency by altering DNA repair outcomes.</a> Nature Communications. 7, 12463(2016).</li>
<li>Gibson, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).</li>
<li>Zhang, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+precise+knockin+with+a+double+cut+HDR+donor+after+CRISPR%2FCas9-mediated+double-stranded+DNA+cleavage%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">Efficient precise knockin with a double cut HDR donor after CRISPR/Cas9-mediated double-stranded DNA cleavage.</a> Genome Biology. 18 (1), 35(2017).</li>
<li>Ran, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+engineering+using+the+CRISPR-Cas9+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system.</a> Nature Protocols. 8 (11), 2281-2308 (2013).</li>
<li>Shmakov, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diversity+and+evolution+of+class+2+CRISPR-Cas+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Diversity and evolution of class 2 CRISPR-Cas systems.</a> Nature Reviews Microbiology. 15 (3), 169-182 (2017).</li>
<li>Moreno-Mateos, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR-Cpf1+mediates+efficient+homology-directed+repair+and+temperature-controlled+genome+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">CRISPR-Cpf1 mediates efficient homology-directed repair and temperature-controlled genome editing.</a> Nature Communications. 8 (1), 2024(2017).</li>
<li>Lin, S., Staahl, B. T., Alla, R. K., Doudna, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+homology-directed+human+genome+engineering+by+controlled+timing+of+CRISPR%2FCas9+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Enhanced homology-directed human genome engineering by controlled timing of CRISPR/Cas9 delivery.</a> Elife. 3, e04766(2014).</li>
<li>Yang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+scarless+human+stem+cell+genome+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Optimization of scarless human stem cell genome editing.</a> Nucleic Acids Research. 41 (19), 9049-9061 (2013).</li>
<li>Watanabe, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+ROCK+inhibitor+permits+survival+of+dissociated+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells.</a> Nature Biotechnology. 25 (6), 681-686 (2007).</li>
</ol>

著者は競争を持っていない金銭的な利益。

CRISPR Cas システムは、エンジニアのゲノムおよびトランスクリプトームの植物や動物に強力な革新的な技術です。CRISPR Cas システムでは、ゲノム、トランスクリプトーム解析目的44をエンジニア リングの適応が可能性があるを含む多くの菌種が見つかっています。化膿連鎖球菌(SpCas9) から Cas9 エンドヌクレアーゼが他の細菌由来の酵素細胞21,22,23,24日に正常に展開するのに最初の酵素表 1に示すように、種は、人間16,26,27,<sup class="x...

すべての生きている有機体のゲノムをエンジニア リングすることで、病原の補正など、多くの医学・ バイオ テクノロジー アプリケーションの突然変異、病気の研究、正確な細胞モデルの構築や農業の生成望ましい特徴を持つ作物。世紀の変わり目以来は、哺乳類セルの meganucleases1,2,3を含むゲノム工学の様々 な技術が開発されて、亜鉛指の核酸の4、5、または転写活性化因子のようなエフェクター核酸分解酵素 (TALENs)6,7,8,9。ただし、これらの以前のテクノロジは、プログラムすることは困難または組み立て、退屈な研究と業界での普及を阻害します。
近年では、クラスター化された定期的に空間短い回文繰り返し (CRISPR) - CRISPR 関連 (Cas) システムは、強力な新しいゲノム工学技術10,11として浮上しています。もともと細菌の適応免疫系、それ正常にされている人間を含む動植物のゲノム育種のために展開します。なぜ CRISPR Cas は、このような短い時間でそんなに人気を得ている主な理由 Cas9 や Cas12a (Cpf1 とも呼ばれます) など、キー Cas エンドヌクレアーゼをもたらす要素は、ゲノム内の正しい場所は単にキメラ シングル ガイド RN の短い作品(SgRNA) を設計するは簡単で合成する安価であります。ターゲット サイトに採用されて後、Cas 酵素分子はさみのペアとして機能し、その RuvC、アレイ、または Nuc ドメイン12,13,14バインドされた DNA を切断します。結果として得られる二重鎖休憩 (DSB) 後で非相同末端結合 (NHEJ) または相同監督修理 (HDR) 経路を介して細胞によって修理されています。修理のテンプレートがない場合は、DSB のヌクレオチド (オクターリピート) カットのサイトでの擬似ランダム挿入または削除に上昇を与えることができます、エラーを起こしやすい NHEJ 経路による蛋白質のコーディングの遺伝子のフレーム シフト変異を引き起こす可能性があります修理です。ただし、目的の DNA の変更を含むドナー テンプレートの存在下で、DSB は忠実度の高い HDR 経路によって修復します。ドナー テンプレートの一般的な種類には、一本鎖オリゴヌクレオチド (ssODNs) とプラスミドがあります。前者は、後者は通常使用されますが比較的長いシーケンスを挿入を希望する場合は、目的の DNA の変化が (たとえば、単一の基礎ペアの変化)、小さい場合に使われる (例えば、緑色蛍光蛋白質のコーディング シーケンスまたはGFP) ターゲット遺伝子座に。
Cas タンパク質の酵素活性には、ターゲット サイト15protospacer の隣接するモチーフ (PAM) の存在が必要です。Cas9 PAM、protospacer の 3' 端に (Cpf1 とも呼ばれる) Cas12a PAM 5' 端に代わりに16。Ca ガイド複雑な RNA は PAM17欠席がある場合、DSB を導入することができます。したがって、PAM は、特定の Ca ヌクレアーゼは切断することができるゲノムの位置に制約を配置します。幸いなことに、Cas 細菌種の核酸分解酵素は通常さまざまな PAM 要件を展示します。したがって、様々 な CRISPR Cas システムを当社のエンジニア リングのツールボックスに統合することで、ゲノムの対象にできるサイトの範囲を展開できます。さらに、自然な Ca 酵素を設計またはさらにゲノムのターゲット操作18,,1920にアクセスできる範囲を拡大、PAM のオルタナティブ シーケンスを認識するように進化できます。
複数 CRISPR Cas システムはゲノム エンジニア リング目的で利用できるが、技術のほとんどのユーザーは、複数の理由主に化膿連鎖球菌(SpCas9) から Cas9 ヌクレアーゼに頼ってきました。まず、比較的単に NGG PAM、複雑 PAMs の存在下でのみ切断することができます他の多くの Ca のタンパク質とは異なりが必要です。第二に、ひと細胞21,22,23,24で展開することに最初の Ca エンドヌクレアーゼです。第三に、SpCas9 は日付に最高の特徴酵素を抜いて。研究者別の Ca ヌクレアーゼを使用する場合、彼または彼女しばしば不明瞭でしょう実験や SpCas9 と比較して異なる生物学的文脈で他の酵素がどのように実行される設計する最善の方法について。
異なる CRISPR Cas システムの相対的なパフォーマンスに明快さを提供するために我々 は最近 5 Ca 酵素-SpCas9、黄色ブドウ球菌(SaCas9)、から Cas9 の酵素 Cas9 酵素の体系的な比較を実行しました。髄膜炎菌(NmCas9)、(AsCas12a)、 Acidaminococcus sp BV3L6 から Cas12a 酵素と菌Lachnospiraceae ND2006 から Cas12a 酵素 (LbCas12a)25。公正な比較のためのターゲット ・ サイトと他の実験条件の同じセットを使用してさまざまな Cas 核酸を評価されます。技術のユーザーのための有用な参照として役立つであろう CRISPR Cas システムごとにも線引き研究設計パラメーター。ここより良い CRISPR Cas の活用研究を有効にするシステム、我々 は別の Cas9 と Cas12a の酵素 (図 1参照) で最適なゲノム工学のステップバイ ステップのプロトコルを提供します。プロトコルにはだけでなく哺乳類細胞で成功したゲノム エンジニア リング結果の可能性を最大限にまた重要な設計上の考慮事項が、実験の詳細が含まれます。
<img alt="CRISPR遺伝子編集プロセス図。sgRNAデザイン、プラスミドクローニング、細胞形質導入、クローンスクリーニング" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59086/59086fig1.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> 図 1: ゲノムを生成するためのワークフローの概要がひと細胞ラインを編集します。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59086/59086fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

<table><tbody><tr><td>T4ポリヌクレオチドキナーゼ(PNK)</td><td>NEB</td><td>M0201</td><td></td></tr>エ<tr><td>ビアルカリホスファターゼ(rSAP)</td><td>NEB</td><td>M0371</td><td></td></tr><tr><td>トリス-アセテート-EDTA(TAE)バッファー、50X</td><td>1st Base</td><td>BUF-3000-50X4L</td><td>使用前に1倍に希釈してください。1X 溶液には、40 mM Tris、20 mM 酢酸、および 1 mM EDTA が含まれています。</td></tr><tr><td>Tris-EDTA(TE)バッファー、10X</td><td>1st Base</td><td>BUF-3020-10X4L</td><td>使用前に1倍に希釈してください。1X 溶液には、10 mM Tris(pH 8.0)と 1 mM EDTAが含まれています。</td></tr><tr><td>BbsI</td><td>NEB</td><td>R0539</td><td></td></tr><tr><td>BsmBI</td><td>NEB</td><td>R0580</td><td></td></tr><tr><td>T4 DNAリガーゼ</td><td>NEB</td><td>M0202</td><td>400,000ユニット/ml</td></tr><tr><td>クイックライゲーションキット</td><td>NEB</td><td>M2200</td><td>T4 DNAリガーゼの代替品です。</td></tr><tr><td>Rapid DNA Ligation Kit</td><td>Thermo Scientific</td><td>K1423</td><td>T4 DNAリガーゼの代替品です。</td></tr><tr><td>Zero Blunt TOPO PCRクローニングキット</td><td>Thermo Scientific</td><td>451245</td><td>この塩溶液は、キットにTOPOベクターが付属しています。</td></tr><tr><td>NEBuilder HiFi DNAアセンブリマスターミックスNEB</td><td></td><td>E2621L</td><td>ギブソンアセンブリ用キット。</td></tr><tr><td>ワンショットSTBL3化学的に有能な大腸菌</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td>C737303</td><td></td></tr><tr><td>LBブロス(レノックス)、粉末</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>L3022</td>を<td>ddH20で再構成し、オートクレーブ使用前に</td></tr><tr><td>LBブロスと寒天(レノックス)、粉末</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>L2897</td>を<td>ddH20で再構成し、使用前にオートクレーブ</td></tr>で<tr><td>SOC培地</td><td>-</td><td>-</td><td>2.5 mM KCl、10 mM MgCl2、20 mM グルコース、1 L の LB ブロス</td></tr><tr><td>アンピシリン (ナトリウム)、USP グレード</td><td>ゴールド バイオテクノロジー</td><td>A-301</td><td></td></tr><tr><td>REDiant 2X PCR Mastermix</td><td>1st Base</td><td>BIO-5185</td><td></td></tr><tr><td>アガロース</td><td>1st Base</td><td>BIO-1000</td><td></td></tr><tr><td>T7 エンドヌクレアーゼ I</td><td>NEB</td><td>M0302</td><td></td></tr><tr><td>プラスミド DNA 抽出 Miniprep Kit</td><td>Favorgen</td><td>FAPDE 300</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ修正イーグルミディアム (DMEM)、高グルコース</td><td>Hyclone</td><td>SH30081.01</td><td>4.5 g/L グルコース、L-グルタミンなし、HEPES およびピルビン酸ナトリウム</td></tr><tr><td>L-グルタミン、200mM</td><td>Gibco</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン - ストレプトマイシン、10、000U/mL</td><td>Gibco</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>0.25% トリプシン EDTA、1X</td><td>Gibco</td><td>25200</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Hyclone</td><td>SV30160</td><td>FBS は、56 oC で 30 分間</td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水、1X</td><td>Gibco</td><td>20012</td><td></td></tr><tr><td>jetPRIME トランスフェクション試薬</td><td>Polyplus Transfection</td><td>114-75</td><td></td></tr><tr><td>QuickExtract DNA 抽出液、1.0</td><td>Epicenter</td><td>LUCG-QE09050</td><td></td></tr><tr><td>ISOLATE II ゲノム DNA キット</td><td>バイオラインで使用前に熱不活性化されます。</td><td>BIO-52067</td><td>QuickExtract</td></tr><tr><td>Q5 High-Fidelity DNA ポリメラーゼ</td>の代替品 <td>NEB</td><td>M0491</td><td></td></tr><tr><td>デオキシヌクレオチド (dNTP) 溶液ミックス</td><td>NEB</td><td>N0447</td><td></td></tr><tr><td>6X DNA ローディング色素</td><td>Thermo Scientific</td><td>R0611</td><td>10 mM Tris-HCl (pH 7.6) 0.03% ブロモフェノールブルー、0.03% キシレンシアノール FF、60% グリセロール、60 mM EDTA</td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル、Set3</td><td>Merck</td><td></td><td></td>539134</tr><tr><td>ニトロセルロースメンブレン、0.2&micro;m</td><td>バイオ・ラッド</td><td>1620112</td><td></td></tr><tr><td>Tris-glycine-SDS バッファー、10X</td><td>Bio-Rad</td><td>1610772</td><td>使用前に 1X に希釈してください。1x溶液には、25 mMトリス、192 mMグリシン、および0.1%SDSが含まれています。</td></tr><tr><td>トリスグリシン緩衝液、10X</td><td>1st base</td><td>BUF-2020</td><td>使用前に1倍に希釈してください。1x溶液には、25 mMトリスと192 mMグリシンが含まれています。</td></tr><tr><td>Ponceau S solution</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P7170</td><td></td></tr><tr><td>TBS, 20X</td><td>1st base</td><td>BUF-3030</td><td>使用前に 1X に希釈してください。1x溶液には、25 mM Tris-HCl(pH 7.5)と150 mM NaClが含まれています。</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P9416</td><td></td></tr><tr><td>Skim Milk for immunoassay</td><td>Nacalai Tesque</td><td>31149-75</td><td></td></tr><tr><td>WesternBright Sirius-femtogram HRP</td><td>Advansta</td><td>K12043</td><td></td></tr><tr><td>抗体 &beta;-actin (C4)</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-47778</td><td>ロット番号: C0916</td></tr><tr><td>MiSeq system</td><td>Illumina</td><td>SY-410-1003</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop分光光度計</td><td>Thermo Scientific</td><td>ND-2000</td><td></td></tr><tr><td>Qubit蛍光光度計</td><td>Thermo Scientific</td><td>Q33226</td><td></td></tr><tr><td>EVOS FL Cell Imaging System</td><td>Thermo Scientific</td><td>AMF4300</td><td></td></tr><tr><td>CRISPRプラスミド:pSpCas9(BB)-2A-GFP (PX458)</td><td>Addgene</td><td>48138</td><td>シングルベクターシステム:gRNAは同じプラスミドから発現します。</td></tr><tr><td>CRISPRプラスミド:pX601-AAV-CMV::NLS-SaCas9-NLS-3xHA-bGHpA</td><td>Addgene</td><td>61591</td><td>シングルベクターシステム:gRNAは同じプラスミドから発現します。</td></tr><tr><td>CRISPRプラスミド:xCas9 3.7 Addgene 108379</td><td></td><td></td><td>デュアルベクターシステム:gRNAは異なるプラスミドから発現します。</td></tr><tr><td>CRISPRプラスミド:pX330-U6-Chimeric_BB-CBh-hSpCas9</td><td>Addgene</td><td>42230</td><td>シングルベクターシステム:gRNAは同じプラスミドから発現します。</td></tr><tr><td>CRISPRプラスミド:hCas9</td><td>Addgene</td><td>41815</td><td>デュアルベクターシステム:gRNAは異なるプラスミドから発現されます。</td></tr><tr><td>CRISPRプラスミド:eSpCas9(1.1)</td><td>Addgene</td><td>71814</td><td>シングルベクターシステム:gRNAは同じプラスミドから発現します。</td></tr><tr><td>CRISPRプラスミド:VP12(SpCas9-HF1)</td><td>Addgene</td><td>72247</td><td>デュアルベクターシステム:gRNAは異なるプラスミドから発現します。</td></tr></tbody></table>

crispr cas を用いた哺乳類細胞におけるゲノム編集

Genome Editing in Mammalian Cell Lines using CRISPR-Cas

クラスター化された定期的に空間の短い回文繰り返し (CRISPR) システムは細菌の適応免疫の自然機能が、用途が正常に変更されて多くの異なる生物のゲノム工学のため。最も一般的に、または CRISPR 関連 9 (Cas9) または非相同末端結合 (NHEJ) 経路や相同性監督の修理 (を介して修理する DNA 二本鎖切断後、ゲノムの特定のサイトを切断するために使用 Cas12a エンドヌクレアーゼドナーのテンプレートがあるかによって HDR) 経路は、不在またはそれぞれ現在です。日には、哺乳類細胞でゲノムの編集を実行できるように細菌の異なる種から CRISPR システムを示されています。ただし、技術の見かけのシンプルさにもかかわらず複数の設計パラメーター必要があります考慮する頻繁のゲノム実験を編集を行う最高について当惑のユーザーを残して。ここでは、ゲノムを実験哺乳類セルラインでの編集が正常に実行を容易にする目的で、必要な DNA の変更を運ぶ細胞クローンの同定実験の設計から完全なワークフローを記述します。CRISPR システム、スペーサーの長さ、および単一座礁させた分野 (ssODN) ドナー テンプレートのデザインの選択など、メモを取るユーザーの重要な考慮事項を強調表示します。このワークフローは、遺伝子ノックアウト研究、疾患モデルの作業、役に立つでしょうか、記者の生成細胞を思い描いてください。

ゲノムの実験では、クローンを作成する必要があります興味の軌跡 sgRNA ターゲットを表現する CRISPR プラスミドを編集を実行します。最初に、プラスミッドはそれをリニア化する (通常型酵素) 制限の酵素と消化されます。完全および部分的な消化を区別する未消化プラスミドと一緒に 1% の agarose のゲルの消化の製品を解決することをお勧めします。未消化のプラスミドはスーパー、線形化された対応する (図 7を参照) よりも速く走る傾向があります。第二に、sgRNA の 2 つのオリゴヌクレオチドがアニールしカットのプラスミッドに。オリゴヌクレオチドが正常に CRISPR プラスミドのバックボーンにクローニングされているかどうかを確認するのには、(図 7b参照) コロニー PCR が実行されます。肯定的なクローンがプラスミッドが抽出され、サンガーの送信前に接種し、シーケンス。
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CRISPR Cas は植物や動物の複雑なゲノムをエンジニア リングする強力な技術です。ここでは、我々 は異なる Ca 酵素を使用して人間のゲノムを効率的に編集するためのプロトコルを詳しく説明します。我々 は、重要な考慮事項と編集の効率を最適化する設計パラメーターを強調表示します。

CRISPR Cas を用いた哺乳類細胞におけるゲノム編集

The clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) system functions naturally in bacterial adaptive immunity, but has been ...

このプロトコルは、CRISPR-Cas9 を使用して、ノックアウトまたはノックインラインを作成します。この技術の主な利点は、特に初心者の研究者のために従うことは簡単で効率的です。細胞通過の場合、1皿当たり0.25%トリプシンEDTAの2ミリリットルの一晩培養細胞を摂氏37度で2分間治療する。細胞がプレート底面から持ち上がったら、2ミリリットルの細胞培養培地で酵素反応を中和し、細胞懸濁液を円錐チューブに移す。遠心分離によって細胞を収集し、カウント用の新鮮な細胞培養培地の5ミリリットルでペレットを再懸濁する。その後、摂氏37度と5%の二酸化炭素で一晩培養するための24ウェル組織培養プレートの1つの井戸に1.8倍の5番目の細胞に種をまきます。細胞のトランスフェクションについては、実験計画および製造業者の指示に従って、CRISPRプラスミドの適切な濃度を含む適切な量のトランスフェクション試薬を適切な量のトランスフェクション試薬に加える。推奨期間室温でトランスフェクションミックスをインキュベーションした後、液をドロップワイズで細胞に加えます。その後、プレートをそっと渦巻いて混合し、5%の二酸化炭素を加湿した37°Cインキュベーターにプレートを入れ、トランスフェクションの終了時に、150マイクロリットルのトリプシン-EDTAを加えて細胞を解離し、遠心分離によって脱離した細胞を回収します。PBSで2%のウシ胎児血清中のペレットを再懸濁し、30マイクロメートルメッシュストレーナーを介して5ミリリットル蛍光活性化細胞選別、またはFACSチューブに細胞を濾過します。次に、非トランスフェクトされた細胞を使用して、フローサイトメーターに陰性制御ゲートを設定し、細胞培養液の100マイクロリットルを含むチューブにトランスフェクションに使用されるCRISPRプラスミド上の蛍光マーカーに従ってトランスフェクトされた細胞を選別します。全てのトランスフェクト細胞が採取されると、ペレットは最大速度で遠心分離して細胞をペレット化し、300マイクロリットルの細胞培養培地中でペレットを再懸濁した。24ウェル組織培養プレートの1つの井戸に200マイクロリットルの細胞をシードし、細胞が37°Cインキュベーターで数日間回復することを可能にする。残りの100マイクロリットルの細胞を最高速度で5分間ペレットし、標準的なDNA抽出プロトコルに従って得られたペレットからゲノムDNAを抽出した。次に、10マイクロリットルのポリメラーゼ連鎖反応バッファー、デオキシヌクレオチドミックス1マイクロリットル、ユーザー定義リバースプライマー2.5マイクロリットル、0.5マイクロリットルのDNAポリメラーゼ、抽出されたゲノムDNAテンプレートの2〜5マイクロリットル、および50マイクロリットルの最終体積に反応をもたらすのに十分な二重蒸留水を加える。サーマルサイクラーで混合物を実行し、標準プロトコルに従って1X TAEバッファーを使用して2%アガロースゲル上の反応を解決します。清潔でシャープなメスを使用してポリメラーゼ連鎖反応物を切除し、メーカーの指示に従ってゲル抽出キットを使用してDNAを精製します。260ナノメートルの吸光度で分光光度計を使用して製品の濃度を測定します。200ナノグラムの単離されたDNA、T7エンドヌクレアーゼI反応バッファーの2マイクロリットル、および混合物の最終体積を19マイクロリットルにする十分な二重蒸留水を含むアッセイミックスを準備する。ポリメラーゼ連鎖反応生成物を示されたパラメータでサーマルサイクラーで再膜し、T7エンドヌクレアーゼIの5単位をReanneareled生成物と混合し、摂氏37度で50分間インキュベーションします。インキュベーションの終了時に、1X TAEバッファーを使用して2.5%アガロースゲル上で消化されたDNAを解決し、適切なゲルイメージングシステム上でゲルを画像化します。ImageJ でゲルイメージを開き、バンドの周囲をできるだけ境界に近い長方形のボックスに描画します。[解析]をクリックし、[測定を設定]をクリックして、面積、平均グレー値、および統合密度オプションがチェックされていることを確認します。[OK] をクリックし、[分析] を選択して[測定] をクリックします。平均値、または生の強度密度値は、バンド強度を示す値です。培養トランスフェクションされた細胞がコンフルエントになり始めたら、示されているようにトリプシンEDTAで取り外し、細胞を100ミリメートルの組織培養皿にまばらに播種して、細胞を細胞培養器に戻す前に個々のコロニーが成長するのに十分なスペースを確保する。コロニーが形成し始めると、4つのX倍率の顕微鏡を使用して、ウェルあたり500マイクロリットルの細胞培養培地を含む24ウェルプレートの個々の井戸に移管するために個々のコロニーを選ぶ。あなたの先端は、個々の井戸内のコロニーの混合を防ぐために周囲のコロニーに触れていないか、まばらなコロニーの成長の領域から選ぶように注意してください。すべてのクローンが摘み取られたら、培養物がコンフルエントになるまで細胞培養インキュベーターにプレートを置く。未消化のプラスミドは超コイル状であるため、線形化されたプラスミドよりも速く走る傾向があります。オリゴヌクレオチドがCRISPRプラスミド骨格に正常にクローン化されたかどうかを判断するために、コロニーPCRが行われ、プラスミドが抽出されてサンガーシーケンシングのために送られる前に陽性クローンが接種されます。この蛍光シグナルは、プラスミドの送達に成功すると顕微鏡下で容易に可視化することができ、トランスフェクトされた細胞をフローサイトメトリーで選別することができます。T7エンドヌクレアーゼIアッセイは、アガロースゲル上に観察されたバンドの強度から計算されるように、ゲノムDNAの切断効率をチェックするために行われる。さらに、相同性指向の修復ベースの実験が標的遺伝子座に制限部位を組み込むように設計されている場合、制限フラグメント長多型アッセイは、対応する制限酵素を用いて行うことができる。タンパク質コード遺伝子が正常に不活性化されたことをさらに検証するために、ウェスタンブロットを実行して、標的タンパク質が存在しないようにすることができます。トランスフェクション後に細胞を選別すると、プラスミドを組み込まずに細胞を排除し、ノックアウトまたはノックイン遺伝子を有する細胞として後の段階でスクリーニングされる細胞の割合を増加させる。この技術の開発により、ノックアウト細胞株を作製して遺伝子機能を研究し、細胞株をノックアウトして特定の疾患をモデル化し、そのメカニズムを理解できるようになりました。

genome-editing-in-mammalian-cell-lines-using-crispr-cas

Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

CRISPR/Cas9は、遺伝子と遺伝的要素の破壊を生み出す堅牢なシステムです。ここでは、CRISPR/Cas9を使用して哺乳類細胞株のゲノム欠失を効率的に作成するためのプロトコルについて説明します。...

CRISPR / Cas9経由哺乳動物細胞株におけるゲノム欠失の生成

体細胞株を遺伝子操作する能力の最近の進歩は、基礎研究および応用研究の大きな可能性を秘めている。ここでは、選択マーカーを使用した場合と使用しない場合の、哺乳類細胞株におけるCRISP / Cas9生成ノックアウト産生およびスクリーニングのための2つのアプローチを提示する。...

哺乳類細胞におけるCRISPR / Cas9媒介遺伝子ノックアウトの選択依存性および独立した世代

このプロトコルは哺乳類細胞における点突然変異の修復システムを編集 CRISPR/Cas9 ベースの遺伝子のワークフローについて説明します。ここで、ターゲット ・ サイトで塩基形成測定の詳細な後続実験的戦略と遺伝子編集へのコンビナトリアル...

点突然変異修復 CRISPR/Cas9 とひと細胞での SsODN によって触媒の機能として敷地内変異原性を調べるための標準方法論

組立 Cas9 を利用した複雑なリボ核タンパク質 (RNP)...

強化されたゲノム細胞や生物の多様な Cas9 リボ核蛋白質と編集

ここに提示される、チューブエレクトロポレーションを用いて哺乳動物細胞における効率的なCRISPR/Cas9リボヌクレオタンパク質媒介遺伝子編集のためのプロトコルである。...

CRISPR/Cas9リボヌクレオタンパク質媒介精密遺伝子編集チューブエレクトロポレーション

このプロトコルは、ヒト多能性幹細胞におけるCRISPR-CAS9を用いて定義されたヘテロ接合性またはホモ接合ヌクレオチド変化の生成を容易にする方法を提供する。...

ヒト多能性幹細胞におけるCRISPR-CAS9を用いて定義されたゲノム修飾の生成

シームレスなゲノム編集によるヒト多能性幹細胞への点突然変異の導入

接合子のCRISPRエレクトロポレーションによるマウスの効率的なゲノム編集

このプロトコールは、プラスミドDNAトランスフェクションおよびmRNAヌクレオフェクションを使用したヒト細胞株におけるClustered Regularly Interspaced Short Palindromic...

プラスミドDNAトランスフェクションとmRNAヌクレオフェクションデリバリーを用いたヒト細胞におけるCRISPRエピゲノム編集

RNAとしてゲノム編集者を送達することは、一次哺乳類の細胞や細胞株のゲノム改変において特に強力な手段です。このプロトコルの目的は、ゲノム編集者をmRNAとして一次哺乳類の細胞および細胞株に届け、その後、Illuminaの標的シーケンスと解析を行って編集結果を定量化することです。...

一次哺乳類細胞におけるエディタRNAのエレクトロポレーションによるゲノム編集

学ぼうCRISPR-Cas9を用いた哺乳類細胞のゲノム編集プロトコル。ノックアウト・ノックイン細胞株を効率的に作成し、遺伝子機能解析や疾患モデル構築に活用する方法を解説します。

CRISPR Cas を用いた哺乳類細胞におけるゲノム編集

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