Name: 心電図の同時記録と侵襲的血圧ラットにおける測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-31T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: 学ぶラットにおける心電図と侵襲的血圧の同時記録法。標準的な機器を用いて心血管系の機能評価を行い、薬理学的研究や病態生理学的メカニズムの解明に活用できる実用的な手法です。

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本研究は台湾省科学によって支えられたパワーオプティマイザーの技術は最も 104-2314-B-037-080-MY3 と最も 107-2314-B-037-110 HCL、台湾国家衛生研究院 NHRI EX107 10724SC を与えます。

記載されているすべての動物実験は、制度的動物のケアと使用高雄医科大学委員会によって承認されました。
1. 動物のケア
<ol><li>動脈のサイズが小さいため難しい穿刺を避けるためには、200 g 以上の体重を持つラットを使用します。</li>
	<li>ケージおよび高速ラットから一晩の食事を削除します。</li>
	<li>特別な実験的デザインがある場合を除き、水広告 libidum を提供します。</li>
</ol>2. 実験準備
<ol><li>次の資料の入手: 歯 (図 1 a)、外科はさみ (図 1 b)、罰金のヒント (図 1、1 D)、斜めのヒント (図 1E) 鉗子ピンセット鉗子ブルドッグ血管クランプ (図 1 階)、絹弦約 20 cm 長さ (図 1)、マイクロはさみ (図 1 H)、動脈カニューレ、滅菌ポリエチレン (PE) 管内径 0.5 mm、外径 0.9 mm、25-30 cm の長さ、接続26 x 1/2 インチ針 (図 1I)、動脈カニューレと圧力トランスデューサー (図 1 K) と 1 mL 注射器を接続するための 2 つの三方活栓 (図 1 j) とヘパリン生食液 (100 IU/mL) いっぱい。</li>
	<li>
動物の準備
	<ol>
<li>(25 cm × 25 cm × 14 cm 誘導室 3% イソフルランとノーズの使用に続いて 4% イソフルランと飽和状態でラットを置く) イソフルレンの吸入ラットを麻酔します。 注:動物の麻酔が十分にない場合は、イソフルランの流量を上げます。</li>
		<li>足の指をつまんで痛み反射をテストします。</li>
		<li>カット済みの発泡スチロール ボード (または厚いボール紙) に仰臥位にラットを配置します。体 (図 2 a) を固定するゴムバンドで 4 本の脚を固定します。 注:心電図記録中に潜在的なノイズを避けるため、配置サーフェスは導電性なりません。</li>
	</ol>
</li>
	<li>血圧・心電図記録機器を準備します。信号、互換性のあるハブと圧力トランスデューサー、3 本の針の先端のバイポーラの心電図リードと適切なソフトウェアのコンピューターを取得するアナログ入力ユニットが含まれます。</li>
</ol>3. 圧力トランスデューサーの校正
<ol><li>BP 録音の開始前に標準的な水銀血圧計 (図 1 L) で校正いたします。</li>
	<li>血圧計カフを削除し、インフレ チューブ三方活栓をデータ集録システムの圧力トランスデューサー (図 1 K) に接続します。</li>
	<li>エア抜きバルブは時計回りにねじ留める式します。ゲージに目を維持し、インフレ電球をポンプを維持します。ゲージが 100 mmHg を示す圧力トランスデューサーに接続する三方活栓を切り替えます。校正 100 mmHg の圧力を使用します。BP の計算に換算係数要素は自動的に決定されます。</li>
	<li>エア抜きバルブを反時計回りに、血圧計の圧力がゼロに戻るまでねじ込んで圧力を解放します。</li>
	<li>200 mmHg の圧力と 3.2 の手順を繰り返します。</li>
	<li>水銀血圧計から圧力トランスデューサーをデタッチします。</li>
	<li>圧力トランスデューサーを PE カテーテル (図 1I) の三方活栓に接続します。</li>
</ol>4. ミニ手術大腿動脈カニュレーション
<ol><li>
表面の画期的な同定と (図 2) 皮膚の切除
	<ol>
<li>鼠径部のしわ (腹部と太ももの接合部でインデント) の場所を識別する (図 2 aでの破線)。</li>
		<li>鼠径部のしわの中央に皮膚の全層をピンチします。毛皮は剃毛や電気バリカンまたは切開する前に脱毛クリームを使用して切開サイトから削除される場合があります。</li>
		<li>皮膚を持ち上げて、それをカット方向に手術用ハサミ、大腿 (図 2 b) にほぼ平行。大腿神経と血管は、(図 2) 露出した皮下組織の下にあります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
大腿動脈を公開する組織の郭清
	<ol>
<li>罰金のヒント、層鉗子を使用して組織を解剖します。大腿血管のレベルで郭清を停止します。郭清は下に血管を負傷していないことを確認します。</li>
		<li>注意深く鉗子 (図 1または1 D) 大腿神経と血管に沿って軟部組織をオフに良い観測を取得するを使用します。神経は繊維のようなテクスチャ。静脈は動脈は拍動 (図 3 a)、濃い紫色です。</li>
		<li>大腿動脈および静脈 (図 3 b) の露出の長さを拡張するのに斜めのヒント (図 1E) 鉗子を使用します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
大腿動脈 (図 3) の穿刺
	<ol>
<li>鉗子を使用して、動脈から大腿静脈を分離し、(図 3) を可能な限り頭側大腿動脈でブルドッグ クランプを適用します。</li>
		<li>(図 3 D) 露出の大腿動脈の尾側の端末で 2 つの絹の糸、ブルドッグ クランプ等のすぐ下の 1 つの緩いネクタイをします。</li>
		<li>大腿動脈の腹側に小さな穴を作る(図 3E) マイクロはさみ (図 1 H) を使用しています。</li>
		<li>小さな穴を PE カテーテルの先端を挿入し、頭側カテーテルを進めます。 注:PE カテーテルを進めながらねじりは適用されません。ねじり力が大腿動脈をひねり、内腔狭窄が発生します。</li>
		<li>PE カテーテルは大腿動脈内腔に安全に高度な後ブルドッグ クランプを削除します。 注:大腿動脈からブルドッグ クランプを取り外しながら PE カテーテルに目を保ちます。パルスの観測に関連付けられている PE カテーテルに血液のバック フラッシュの観察は、血管内腔の配置を確認します。</li>
		<li>PE のカテーテルの位置を確保するため上部の絹弦を締めます。 注:不慮または PE カテーテルの転位は、大出血で起因できます。</li>
		<li>大腿動脈の尾側からの出血を防ぐためにより低い絹弦を締めます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
大腿動脈穿刺の成功の確認
	<ol>
<li>1 mL シリンジを使って、注入 0.1 – 0.2 mL を大腿動脈にヘパリン生理食塩水。注射に抵抗は些細なする必要があります。射出時に任意の明白な抵抗に気づいたが、もう一度全体のカニュレーションをチェックします。 注:三方活栓は負圧または生理食塩水注入大腿動脈カニューレを適用する前に適切に切り替えるかどうかを確認します。この時点で任意の注入圧力トランスデューサーは、再キャリブレーションを必要があります。</li>
		<li>任意のにじみ出る穿刺部位の周りがあるかどうかチェックしてください。されていない場合は、ウェット コットン ボールで手術部位をカバーします。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. 血圧の記録
<ol><li>PE カテーテルの滑らかなフラッシュ後、PE カテーテル三方活栓を圧力トランスデューサー (図 4) 上の 1 つに接続します。</li>
	<li>送システムに気泡がないことを確認してください。また、三方活栓の接続接合をチェックします。</li>
	<li>データを開始跪く動脈圧波になりますレコードに 1,000 Hz のサンプリング周波数の集録システムを示した (図 6)。</li>
	<li>少なくとも 3-5 分を安定させるために全体のセットアップを許可します。非定常信号の場合、安定時間は 15 分に拡張できます。</li>
	<li>出血がないことを確認するため定期的にカニュレーション サイトをチェックします。 メモ: 圧力センサーからデータを取得する際、動物の心のレベルに探触子を配置する重要です。</li>
</ol>6. 表面心電図
<ol><li>3 は正、負を確認する双極心電図のリードし、プラチナに参照電極がそのまま確認します。</li>
	<li>左前肢、右前肢と右後ろ足 (図 5) で皮下リード線を挿入します。</li>
	<li>特注心電図アンプに録音中のサンプリング周波数は 1,000 Hz とフィルター周波数 3-500 Hz。 続ける心電図リード定常電極ハブを接続します。心電図リードの動きは、非定常のベースラインと成果物を生成できます。</li>
</ol>7. 動物の安楽死実験の完了後
<ol><li>BP と心電図の完了すると、集録システムを停止します。電極を削除します。PE カテーテルの撤退直後後以前に配置した絹弦の引き締めによって大腿動脈を結紮します。</li>
	<li>場所に接続して表示されている安楽死室で個別にラットは圧縮二酸化炭素 (CO2) 高圧ガス容器です。上部をしっかりシールします。</li>
	<li>フィル レートの約 10% に 30% 毎分室容積の 100% CO2をご紹介します。</li>
	<li>あなたの目を離さないラット;呼吸と色あせた目の色の欠如は、2−3 分以内に表示されます。 注:3 分後呼吸運動の停止が発生しない場合は、商工会議所フィル レート、CO2の供給、またはリークのシステムを検討すべき。</li>
	<li>呼吸後 1 分でチャンバーへ維持 CO2流がしなくなります。</li>
	<li>心臓や呼吸器の逮捕を洗い出し、死を確認する固定および拡張の生徒に注意してください。 注:ネズミは死んでいない場合が、CO2麻酔で安楽死両側開胸などの二次的な方法を使用します。</li>
</ol>

<ol><li>Shiou, Y. -L., Huang, I. C., Lin, H. -T., Lee, H. -C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+fat+diet+aggravates+atrial+and+ventricular+remodeling+of+hypertensive+heart+disease+in+aging+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Formosan+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">High fat diet aggravates atrial and ventricular remodeling of hypertensive heart disease in aging rats.</a> Journal of the Formosan Medical Association. , (2017).</li>
<li>Parasuraman, S., Raveendran, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+invasive+blood+pressure+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology%2C+Pharmacotherapeutics%22%5BJournal%5D)">Measurement of invasive blood pressure in rats.</a> Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 3 (2), 172-177 (2012).</li>
<li>Fink, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+Tail-Cuff+Plethysmography+Provide+a+Reliable+Estimate+of+Central+Blood+Pressure+in+Mice%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Heart+Association%3A+Cardiovascular+and+Cerebrovascular+Disease%22%5BJournal%5D)">Does Tail-Cuff Plethysmography Provide a Reliable Estimate of Central Blood Pressure in Mice?</a> Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), e006554(2017).</li>
<li>Wilde, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tail-Cuff+Technique+and+Its+Influence+on+Central+Blood+Pressure+in+the+Mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Heart+Association%3A+Cardiovascular+and+Cerebrovascular+Disease%22%5BJournal%5D)">Tail-Cuff Technique and Its Influence on Central Blood Pressure in the Mouse.</a> Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), (2017).</li>
<li>Braga, V. A., Prabhakar, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Refinement+of+Telemetry+for+Measuring+Blood+Pressure+in+Conscious+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science+%3A+JAALAS%22%5BJournal%5D)">Refinement of Telemetry for Measuring Blood Pressure in Conscious Rats.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. 48 (3), 268-271 (2009).</li>
<li>Kaese, S., Verheule, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+electrophysiology+in+mice%3A+a+matter+of+size%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Physiology%22%5BJournal%5D)">Cardiac electrophysiology in mice: a matter of size.</a> Frontiers in Physiology. 3 (345), (2012).</li>
<li>Okamoto, K., Aoki, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+strain+of+spontaneously+hypertensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Japanese+Circulation+Journal%22%5BJournal%5D)">Development of a strain of spontaneously hypertensive rats.</a> Japanese Circulation Journal. 27, 282-293 (1963).</li>
<li>Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Antic, V., Schnyder-Candrian, S., Montani, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+and+indirect+methods+used+to+study+arterial+blood+pressure%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacological+and+Toxicological+Methods%22%5BJournal%5D)">Direct and indirect methods used to study arterial blood pressure.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 44 (2), 361-373 (2000).</li>
<li>Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+Blood+Pressure+Measurement+in+Freely+Moving+Mice+Using+Telemetry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry.</a> Journal of Visualized Experiments. (111), e53991(2016).</li>
<li>Irvine, R. J., White, J., Chan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+restraint+on+blood+pressure+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacological+and+Toxicological+Methods%22%5BJournal%5D)">The influence of restraint on blood pressure in the rat.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 38 (3), 157-162 (1997).</li>
<li>Nvd Vosse, F., Stergiopulos, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulse+Wave+Propagation+in+the+Arterial+Tree%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Fluid+Mechanics%22%5BJournal%5D)">Pulse Wave Propagation in the Arterial Tree.</a> Annual Review of Fluid Mechanics. 43 (1), 467-499 (2011).</li>
<li>Cosson, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aortic+stiffness+and+pulse+pressure+amplification+in+Wistar-Kyoto+and+spontaneously+hypertensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Physiology%3A+Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Aortic stiffness and pulse pressure amplification in Wistar-Kyoto and spontaneously hypertensive rats.</a> The American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 292 (5), H2506-H2512 (2007).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

侵襲的な動脈カニュレーション BP の高精度測定が可能します。高価なカテーテルを必要とせず PE チューブで行うことができます。侵襲的な血圧の測定は、表面の心電図の記録を同時に実行できます。
このメソッドの主な学習曲線は、微小血管を cannulate ために必要な実験のスキルです。経験豊富な手で大腿動脈カテーテル留置の成功率は 100% に近づくことができます。実際の実験を実行する前にお勧めします。プロシージャの間にいくつかの注目すべきポイント: (1) 必ず動物が完全に、手術を開始する前に麻酔(2) ブルドッグ クランプ位置で使用高露出の動脈の動脈壁を切断する前に広範な出血を防ぐために(3) のみ、動脈の腹側の壁を切開し背壁の損傷を避ける(4) 送システムと心電図リードの安定配置記録中に動きの人工物を避けるために役立ちます。
このプロシージャの潜在的な合併症には、手術の郭清からの出血が含まれます。動脈の正常かつ円滑なカニュレーションの出血は非常に簡単です。主要な出血は、組織解剖時に大腿動脈または静脈または主要な枝に偶発的な...

血圧 (BP) と心電図 (ECG) は、心血管生理学および薬のための基本的なパラメーターです。実験動物モデルは高血圧性心不全1など様々 な心血管疾患の生物医学研究および心電図の記録のプロシージャで広く適用されているし、実験ラットの血圧の測定を実行できます。
ラットにおける血圧の測定の 3 つの方法があります: 動脈カニュレーション (侵襲)2、尻尾カフ脈 (非侵襲的)3、および無線テレメトリー (侵襲)。尾カフ脈によって血圧の測定の信頼性は記録中に処理の動物によって影響を受けます。たとえば、尾カフは拘束と測定フェーズ4の中に同時に発生するコア BP 変更を過小評価します。無線テレメトリ監視 BP と目を覚ましで心拍数および動物5が自由行動の「ゴールド スタンダード」の最良の手法であります。ただし、無線テレメトリー ハードウェアおよびソフトウェアは高価なので、動脈カニュレーションは経済的な代わりとしても広く使用します。
動脈カニュレーションかなり顕微鏡下のスキルが必要ですが、動脈圧の実際の波形が得られます。BP は、ラジアル、大腿、または上腕動脈に挿入された生理食塩水で満たされたカテーテルを記録できます。直接侵襲血圧の測定のこの方法は動物の術前準備、麻酔、実験動物の固定測定を取得する前に適切な校正と動脈カニュレーション組織郭清の手術スキルを必要とします。.
齧歯動物の表面心電図心電図の人間に似ています。ラット心電図には、P 波、qrs、T 波と QT 間隔6のシーケンスがあります。P 波、PR 間隔、QRS、T 波は、それぞれ、心房から房室結節、心室脱分極と再分極、インパルス伝導心房脱分極を反映します。QT 間隔は、エンドポイントに iso 電気基準1に T 波の Q 波の開始からの期間として定義されます。
心電図は、心臓の収縮期と拡張期の段階; ことを示します。したがって、表面心電図の同時記録は、侵襲的な血圧の測定と相関します。手法の組み合わせを使用して、疾患モデルまたは薬剤の薬理作用の病態生理学的変化や循環器内科療法を明らかにすることが可能です。
自然発症高血圧ラット (SHR) の歪み日本で高い BP を持つラットの近親交配によって得られました。BP は 10 週齢 5 から上昇し、30 から 35 週間年齢7の固定になります。京都 wistar 系ラット (WKY) は血圧 130 mmHg7について、通常存在集中コントロールとして使用されます。動注カテーテル留置の BP と心電図記録の結果を実証するラットを使いました。

<table><tbody><tr><td>ポリエチレンチューブ</td><td>ベクトン・ディッキンソン</td><td>427401</td><td>内径 0.5 mm、外径 0.9 mm</td></tr><tr><td>26 G x 1/2 インチ 針</td><td>テルモ</td><td>160426D</td><td></td></tr><tr><td>アドソン鉗子</td><td>TOP ライン</td><td>12-540</td><td>12 cm (4.75 インチ) 長さ、ストレート、1 x 2 歯</td></tr><tr><td>ブルドッグ 血管クランプ</td><td>テレフレックス</td><td>357581</td><td>8 mm</td></tr><tr><td>コンピューター&nbsp;</td><td>AUSUS</td><td>X453M</td><td></td></tr><tr><td>Exernalアナログ信号記録装置</td><td>iWorx</td><td>T5141538</td><td>これにより、記録モジュール上の単一のiWire入力から、最大3チャンネルのECG、EMG、EEG、GSR(皮膚コンダクタンス)を記録することができます。</td></tr><tr><td>Graefe鉗子</td><td>AESCULAP手術器具</td><td>BD312R</td><td>マイクロドレッシング鉗子、湾曲、鋸歯状、105 mm、4 1/8&nbsp;</td></tr><tr><td>Mecury 血圧計</td><td>Spirit</td><td>CK-101</td><td></td></tr><tr><td>圧力トランスデューサ</td><td>iWorx</td><td>IworxBP100</td><td></td></tr><tr><td>Semken 鉗子</td><td>MEDE TECHNIK</td><td>10-104</td><td>100 mm</td></tr><tr><td>Software</td><td>LabScribe3</td><td></td><td></td></tr><tr><td>手術用ハサミ</td><td>HEBU</td><td>1714</td><td>14.5 cm 長</td></tr><tr><td>シリンジ (1mL)</td><td>テルモ</td><td>160426D</td><td></td></tr><tr><td>三方ストップコック</td><td>コールパーマー</td><td>EW-30600-23</td><td></td></tr><tr><td>先端鉗子</td><td>World Precision Instruments</td><td>504506</td><td>11 cm 長さ、0.1 x 0.06 mm チップ</td></tr><tr><td>Vannas はさみ</td><td>World Precision Instruments</td><td>500086</td><td>8.5 cm、ストレート、0.025 x 0.015 mm チップ、7mm 超微細ブレード</td></tr></tbody></table>

心電図の同時記録と侵襲的血圧ラットにおける測定

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

関連心血管生理学、病態学、血圧 (BP) と心電図は、基本的な観測パラメーターです。心血管疾患モデル、心血管治療標的または医薬品に焦点を当てて研究には、全身の動脈圧と心臓のリズム変化の評価が必要です。大腿動脈穿刺の技術は、無線テレメトリー システムが利用可能なまたは手頃な場合、動脈圧波形の記録と全身の血圧測定を取得する代替方法です。この手法は経済的であるし、動物施設における標準的な装備が可能します。ただし、侵襲的な動脈圧記録挑戦的な手術のスキルをすることができます小さな動脈の穿刺が必要です。ここでは、大腿動脈の順を追ってプロトコル穿刺手順を提案します。主要な手順には、データ集録システム、組織郭清と大腿動脈穿刺、動脈カニュレーション圧記録システムのセットアップの校正が含まれます。表面心電図記録のプロシージャが含まれています。我々 はまた血圧および高血圧自然発症ラットから BP 録音の例を提示します。このプロトコルは、同時心電図全身 BP の信頼できる直接録音をできます。

SHR と国立研究所動物センター (台北) から正常血圧の Wistar 京都 WKY ラット購入いたしました。すべての動物は、12 時間の明暗サイクルの水と標準的な食事への無料アクセスと温度制御設備 (20−22 ° C) で収容されました。
6 47 週齢のラットを用いて、血圧・心電図測定の前に秤量した彼ら。代表の痕跡は心電図とラットの BP の同時記録からは、図 6のとおりです。表 1は、血圧と心拍数のパラメーターを示します。統計 (t) テストで明らかに有意に高い血圧と SHR (124.5 mmHg ± 15.1 mmHg と 84.3 mmHg ± 5.0 mmHg) で平均 BP より WKY (90.0 mmHg ± 7.5 mmHg と 67.5 mmHg ± 5.0 mmHg) (P 0.05 &lt;)...

ここでは、動物施設で標準的な装置で行うことができますし、生理学的または薬理学的に適用することができます実験のラットの心電図検査と動脈内の血圧 (BP) の同時記録のセットアップについて述べる循環器内科病原性または治療上のメカニズムを調査する研究。

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...

心血管疾患モデル、心血管治療標的、または薬剤に焦点を当てた研究では、全身動脈圧および心臓リズム変化の評価が必要である。大腿動脈のカヌレーションは、動物施設で標準的な装置で行うことができる動脈内圧波形を記録するための経済的方法である。手順を実証することは、私の研究室の技術者であるHsin-Ting Linです。実験を開始する前に、麻酔付きラットを外科用ボードの上の位置に置き、つま先ピンチに対する応答の欠如を確認する。脚をゴムバンドで固定して身体を固定し、信号を取得するアナログ入力ユニット、互換性のあるハブを備えた圧力トランスデューサ、3つのバイポーラ針先端心電図リード線、および適切なソフトウェアを備えたコンピュータを含む、記録用の血圧および心電計計を設置します。血圧記録を開始する前に、標準的な血圧計から圧力カフを取り外し、インフレ管の三方向栓子をデータ取得システムの圧力トランスデューサに接続します。空気解放バルブを時計回りにねじ込み、インフレバルブをポンピングしながらゲージを監視します。ゲージに100ミリメートルの水銀が表示されたら、3方向の栓を開けて圧力トランスデューサに接続します。血圧を計算するための変換係数は自動的に決定されます。圧力を解放するには、血圧計の圧力がゼロに戻るまで、空気解放弁を反時計回りにねじ込みます。200ミリメートルの水銀圧力でキャリブレーションを繰り返し、水銀の血圧計から圧力トランスデューサを取り外します。圧力トランスデューサをPEカテーテルの三方向ストップコックに接続し、三方ストップコックの接続接合部を確認します。表面ランドマークを識別するには、腹部と太ももの間の接合部で頭蓋折り目を見つけ、折り目の中心にある皮膚の完全な層を持ち上げます。はさみを使用して、周辺の太ももとほぼ平行な方向で持ち上げた皮膚を切断します。大腿神経および血管は、露出した皮下組織の下に位置する。細かい先端の鉗子を使用して、組織層を層ごとに解剖し、大腿骨血管のレベルで解剖を止める。大腿神経および血管に沿って軟部組織を慎重に取り除き、繊維状神経の良好な視差を得る。静脈は濃い紫色で、動脈は脈動性である。組織解剖が大腿骨血管に達したら、切り替えて鉗子を変えて損傷した血管を防ぐ。次に、角度付きの先端を持つ鉗子を使用して、大腿動脈と静脈の露出した長さを延長します。大腿動脈を補助するには、鉗子を使用して大腿静脈を動脈から分離し、大腿動脈にブルドッグクランプをできるだけぎくりと適用する。2つのシルクの弦の緩いネクタイを作ります, 1つはブルドッグクランプのすぐ下に、もう一つは、露出した大腿動脈の尾末端で.マイクロシザーを使用して、大腿動脈の腹側に小さな穴を開け、小さな穴を通してポリエチレンまたはPEカテーテルの先端を挿入します。カテーテルをクラニに進める。クランプを取り外した後のカテーテルへの血液の背部フラッシュは、カテーテル先端が大腿動脈内腔に達したことを示す。上の絹を締めてカテーテルの位置を固定し、下の絹を締めて大腿動脈の尾側からの出血を防ぎます。カヌリンの成功を確認するには、1ミリリットルの注射器を使用して、0.1〜0.2ミリリットルのヘパリン化生理食塩水を大腿動脈に注入する。その後、缶め場の周りににじみ出て、濡れた綿のボールでサイトをカバーしてください。血圧記録を行うために、PEカテーテルと三方ストップコックを圧力トランスデューサの停止コックに取り付け、カニューレシステムに気泡がないことを確認します。次に、三方向ストップコックの接続ジャンクションを確認します。装置の準備ができたら、サンプリング周波数1000ヘルツでデータ収集システムを開始します。動脈圧波が表示されます。セットアップ全体が少なくとも3〜5分間安定し、定期的にカヌレーションサイトをチェックして出血がないことを確認します。表面心電図を実行するには、まず双極性心電図の3つのリードをチェックして、正、負、および参照白金電極が完全であることを確認し、左前脚、右前脚、および右後ろ脚に皮下にリードを挿入します。次に、1000ヘルツのサンプリング周波数と3〜500ヘルツのフィルタ周波数を持つカスタムメイドのECGアンプに電極ハブを取り付けます。47週齢のノルモテンシおよび高血圧ラット6匹の同時血圧およびECG記録は、正常ラットと比較して、自然高血圧動物における有意に高い収縮期および平均血圧を明らかにした。P波、PR間隔、QRS幅、およびECG記録から測定されたQT間隔パラメータは、2つのグループ間の差を示さなかった。あなたは、動物を麻酔する前に、圧力システムのキャリブレーションを実行し、圧力トランスデューサとデータ取得システムを設定することができます。取得した生動脈圧波形と心電図データをソフトウェア上で解析できます。放射テレメトリはBPと心拍数を監視するためのゴールドスタンダード技術と考えられていますが、この技術はコストがかかります。同時ECGを伴う動脈内カヌル化は経済的な代替手段である。イオブルラン吸入による麻酔は容易に行えますが、実質的な漏れが発生した場合は危険な場合があります。そのため、使用前に必ず機器やチューブを確認してください。

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ボリューム圧力記録、テールカフ法を用いたマウスにおける測定血圧

麻酔下のマウスを表わす非生理的全身血圧血圧と自律神経の密接な関係を与え自律神経の調子の意味のある評価を排除します。したがって、同時に腎交感神経活動と意識下マウスにおける静脈内投与による血圧の新しい手法を説明します。...

腎交感神経活動と意識、持続静脈内投与による血圧の同時記録への新しいアプローチ気ままなマウス。

このプロトコルは、麻酔をかけたラットにおける網膜電図と視覚誘発電位の同時測定を説明しています。...

麻酔ラットにおける電図および視覚誘発電位の同時記録

本研究では、脳、心電図、筋電図、局所電界電位の同時計測と自由行動ラットの信号を呼吸するためのメソッドを紹介します。この技術は、実験のコストを削減し、データの分析を簡素化は、脳と末梢器官との間の相互作用の理解に貢献します。...

皮質局所電界電位、心電図、筋電図、呼吸リズム自由行動ラットからの同時録音

我々は、技術的に容易で、安価で、速く、かつ、手ごろな価格の小型マウスで、高感度で実行できるECGプロトコルを提示する。この方法は、マウスの薬理学的薬剤、遺伝子改変、疾患モデルを研究するためのスクリーニングアプローチとして提案する。...

リードIIを用いた麻酔マウスの心電図記録

圧反射は、血圧の変化に応答する自律神経系による心拍数調節機構です。マウスの心電図と血圧を連続的かつ同時に測定するためのテレメトリ送信機を埋め込む外科的手法について説明します。これは、心血管疾患の重要な予後マーカーである自発的圧反射感受性を決定することができる。...

意識のあるマウスにおける自発的な圧反射感受性を決定するための遠隔ECGと血圧伝達器の組み合わせの埋め込み

継続的な動脈血圧記録により、さまざまな血行動態パラメータの影響を調査できます。このレポートは、脳卒中の病態生理学、さまざまな血行動態因子の影響、および新しい治療アプローチの評価を決定するための虚血性脳卒中の大型動物モデルにおける継続的な動脈血圧モニタリングの適用を示しています。...

虚血性脳卒中のウサギモデルにおける血圧のリアルタイムモニタリングと調節

このプロトコルは圧力容積のコンダクタンス技術を使用して左心室の圧力および容積を測定する方法を記述する。この方法により、薬物が心臓に及ぼす影響を継続的にリアルタイムでモニタリングすることができます。...

圧力-体積導電率カテーテルを用いたラット左心室に対するフェルラ酸の影響のリアルタイム検出

右心不全(RHF)は、右側の心臓の拡張と肥大を特徴とし、心室および心房の機能不全を引き起こします。RHFに関連する心肺疾患は、心不整脈のリスクの増加を伴います。この記事では、心室および心房性不整脈形成の亢進に関連する肺動脈バンディング誘発性RHFの標準化されたモデルについて説明します。...

肺動脈バンディングを用いた右側心臓リモデリングと不整脈のラットモデル

頭蓋骨内の圧力を記録するための新たな手法が記載されています。低侵襲の方法では、正確に重要な脳外傷を引き起こすことなく、麻酔ラットの頭蓋内圧（ICP）を測定する光ファイバ圧力検出システムを使用しています。技術は、実験モデルの広い範囲で使用することができます。...

光ファイバ圧力トランスデューサを使用したラットの硬膜外頭蓋内圧測定

学ぶラットにおける心電図と侵襲的血圧の同時記録法。標準的な機器を用いて心血管系の機能評価を行い、薬理学的研究や病態生理学的メカニズムの解明に活用できる実用的な手法です。

心電図の同時記録と侵襲的血圧ラットにおける測定

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