Name: 近接リゲーションアッセイを利用したヒト膵臓ベータ細胞における内因性ミトファジー複合体の可視化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 40 s
Description: 学ぶ 近接リゲーションアッセイを用いてヒト膵臓ベータ細胞における内因性ミトファジー複合体を可視化する方法です。限られた試料でもミトファジー複合体を定量的に解析でき、糖尿病研究に貢献します。

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著者らは、JDRF(CDA-2016-189およびSRA-2018-539)、国立糖尿病・消化器・腎臓病研究所、国立衛生研究所(R01-DK-108921)、ブレム家、およびアンソニー家からの資金援助を認めている。S.A.S.へのJDRFキャリア開発賞は、ノボ・ノルディスク財団が支援するデンマーク糖尿病アカデミーの支援を受けています。

非同定ドナーヒト膵島の使用は、機関審査委員会(IRB)の免除を介して、ミシガン大学IRBポリシーに準拠しています。ヒト膵島は、NIH/NIDDK主催の統合島分布プログラム(IIDP)によって提供された。
1. ヒトのイレットサンプル調製
<ol><li>
単一細胞解離
	<ol>
<li>培養ヒト島試料(4000~6000個相当/10mL培地)膵島培地(PIM(S))で少なくとも1日、1mMグルタミン(PIM(G))、100単位/mL抗mycocoチック系抗生物質、1mMmM膜ピルビン酸、10%のヒトピクルビン酸菌を含む培養物である。血清(FBS)またはヒトAB血清。</li>
		<li>3倍の倍率で解剖光顕微鏡を使用して、個々のヒトの島を培養から数えます。対象の治療/状態(グルコリポ毒性など)ごとに40の島を、島媒体の1.5 mLチューブに選びます。</li>
		<li>遠心分離島は400 x gで、10°Cで1分間堆積物にする。</li>
		<li>洗浄サンプルは、室温でチューブの短い反転によって、50 μM PR619(デュビキチナーゼ阻害剤;ユビキチン依存性タンパク質相互作用を維持するために)を含む1mLリン酸緩衝生理食べ物(PBS)を2回、各洗浄の間の遠心分離を400で行う。10°Cで1分間x g。</li>
		<li>50 μM PR619を含む125μLの125μLを有する単一細胞に解離し、3分間、予備温めたトリプシン(37°C)をインキュベートして、島ペレットで分けた。この期間中に島を200 μLピペットを使用して定期的に穏やかなピペットで穏やかに分散させます。</li>
		<li>50 μM PR619を含む1mL(37°C)PIM(S)培温でトリプシンをクエンチし、次いで1分間400xgで遠心分離して堆積細胞を入れ子にする。</li>
		<li>遠心分離で細胞を1分間、2回、PBS + 50 μM PR619で洗浄します。 </li>
		<li>最後に、50 μM PR619を含む150 μL PBSで細胞を再中断する。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
単一細胞の付着と固定
	<ol>
<li>再懸濁後、細胞溶液をフロスト、帯電、顕微鏡スライドに回し、28 x gのサイトセントリファッジを10分間使用します。</li>
		<li>サイトセントリファゲーションに続いて、必要な抗体/PLA溶液量を最小限に抑えるために、疎水性ペン(材料の表を参照)で細胞領域の概要を説明します。室温で15分間PBSに4%パラホルムアルデヒドを含む細胞を固定します。 注意:PFAは危険であり、注意して取り扱う必要があります。</li>
		<li>最良の結果を得るには、直ちに、または24時間以内に染色/PLAを行います。必要に応じて、48時間を超える染色までPBSでサンプルを4°Cで保存してください。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 免疫組織化学
<ol><li>
ブロック
	<ol>
<li>室温で5分間1x PBSで細胞を2回洗います。</li>
		<li>ブロック細胞溶液は、バックグラウンド染色を排除し、0.3%の洗剤を含むPBS中の10%ロバ血清(材料の表を参照)を室温で1時間使用する。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
染色
	<ol>
<li>USP8(1:250)およびNRDP1(1:250)に対する一次マウスまたはウサギ抗体を用いて細胞をインキュベート(材料の表を参照)、リン酸緩衝生理食液で希釈(PBT、材料の表を参照)、一晩で4°Cで、PLAを介してミトファジー複合シグナリングを検出します。</li>
		<li>PLA信号を妨げないように、マウスまたはウサギで発生しなかったβ細胞同定に特異的なマーカーを用いて細胞を共インキュベートする。この場合、PBTで抗ヤギPDX1(1:500)で細胞をインキュベートする。すべての一次抗体を4°Cで一晩インキュベートし、溶液の上にプラスチックフィルムを使用して蒸発を防ぎます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 近接ライゲーションアッセイ
<ol><li>PLAプローブとカウンターステイン
	<ol>
<li>製造業者の指示に従ってPLAプローブ溶液を準備し、すなわち、PBTで抗マウスおよび抗ウサギプローブ溶液の最終濃度1:5溶液を調製し、部屋で20分間インキュベートすることにより、サンプルあたり20μLのプローブ溶液を作る温度。</li>
		<li>一晩インキュベーションした後、ロッカー上でそれぞれ5分間1x PBSで細胞を2回洗浄する。</li>
		<li>プローブ溶液を用いたインキュベーションの直前に、プローブ溶液に最終濃度1:600で抗ヤギCy5二次を加加える(内因性PDX1の検出用)。各細胞条件に20 μLプローブ溶液を加え、プラスチックフィルムで穏やかに覆い、37°Cで1時間インキュベートします。</li>
	</ol></li>
	<li>結紮
	<ol>
<li>室温で細胞を2回洗い、バッファーA(レシピの材料表を参照)をロッカー上でそれぞれ5分間洗います。</li>
		<li>ライゲーション溶液(検出試薬の一部、材料の表を参照)をメーカーの指示に従って準備します。このため、ジエチルパイロカーボネート(DEPC)処理水中の希釈ライゲーションストック(5x)1:5。インキュベーション直前に0.025 U/mLリゲスを追加します。細胞に20 μLライゲーション溶液を添加します。プラスチックフィルムで覆い、37°Cで30分間インキュベートします。</li>
	</ol></li>
	<li>増幅
	<ol>
<li>室温で細胞を2回バッファーAで2分間洗う。</li>
		<li>製造元の指示に従って増幅液(検出試薬の一部、材料の表を参照)を作成します。DEPC処理水中の希釈増幅バッファー(5x)1:5を使用するまで暗く保管します。ポリメラーゼの1:80希釈(検出試薬の一部、材料の表を参照)を細胞に溶液を追加する直前に溶液に追加します。</li>
		<li>細胞に20 μLの増幅液を加えます。プラスチックフィルムで覆い、最大信号のために1時間40分から2時間の間に37 °Cで暗闇の中に置きます。</li>
	</ol></li>
	<li>イメージングの準備
	<ol>
<li>ロッカーで室温で10分間、バッファーB(レシピの材料表を参照)で細胞を2回洗います。</li>
		<li>最後に、0.01xバッファBに1回、ロッカーの室温で2分間細胞を洗浄します。</li>
		<li>4',6-diamidino-2-フェニリンドール(DAPI)を含む取り付けメディアのドロップを追加し、メスブレードを使用してサンプルの上に慎重にカバースリップを配置して、形成された気泡を押し出すことによってサンプルをマウントします。シールは、エッジの周りに明確なマニキュアを使用してスリップをカバーします。</li>
		<li>レーザー走査共焦点顕微鏡や逆畳み込み機能を備えた反転蛍光顕微鏡など、複数の焦点面を捕捉できる顕微鏡上の画像サンプルは、少なくとも9種類の焦点面画像を撮影します。<ol>
<li>約0.45mm zスタック高さで、100倍の倍率で画像をキャプチャします。550 nm励起、570 nm放出でPLAをキャプチャします。650 nm励起、670 nm放出でのカウンターステイン;405 nm励起、450 nm放出でDAPI。</li>
		</ol>
</li>
		<li>PLA事象(特に広視野顕微鏡)の下流解析のために蛍光画像の背景信号と迷光を最小限に抑えるために、2次元の破壊(最も近い隣人)アルゴリズムを使用して画像を処理します。選択の標準的なイメージ処理ソフトウェア。 注:オリンパスはCellSensを使用し、ニコンはNIS-エレメントを使用し、ライカはLAS X、ツァイスを使用します – ZEN、メタモルフ、MATLAB、ホイヘンスソフトウェアだけでなく、Image-Jを介して利用可能ないくつかのプラグイン。解析では、すべてのZスタック上の相互作用の総数をImage-Jソフトウェアを使用して分析し、Pdx-1陽性細胞のみが分析されるようにする必要があります(セクション3.5)。</li>
	</ol></li>
	<li>PLA相互作用の定量化
	<ol>
<li>無料の Image-J ソフトウェア アプリケーションを開き、PLA イメージを開きます。最初のシャープに焦点を合わせ始める PLA イメージから開始します。</li>
		<li>[画像]タブをクリックし、[調整] を選択し、しきい値を選択します (図 1A)。 しきい値を調整して、すべての非特異的 PLA 信号を削除し、しきい値の調整をメモし、分析中に一貫性を保つようにします。</li>
		<li>プロセスタブをクリックし、バイナリを選択し、バイナリを作成します (図 1B)。バイナリ画像を使用して、[分析]タブをクリックし、パーティクルの分析を押し続けることで、パーティクルを測定します (図 1C)。</li>
		<li>解析では、設定が次のようになります:サイズ= 0 - 無限大、円形= 0 ~1.0、[アウトラインの表示]、[結果の表示] チェック ボックス、および[結果のクリア] (図 1D)を確認します。[OK]をクリックします。サンプルを示すスプレッドシートで分析されたパーティクルの数と Z スタックの位置をメモします。</li>
		<li>サンプルのすべてのインフォーカス Z スタックが分析されるまで、手順 3.5.2 ~ 3.5.4 を繰り返します。スプレッドシート内のサンプルのパーティクルの合計数を合計して、インタラクションの総数を定量化します。</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Pearson, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clec16a%2C+Nrdp1%2C+and+USP8+Form+a+Ubiquitin-Dependent+Tripartite+Complex+That+Regulates+beta-Cell+Mitophagy%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Clec16a, Nrdp1, and USP8 Form a Ubiquitin-Dependent Tripartite Complex That Regulates beta-Cell Mitophagy.</a> Diabetes. 67 (2), 265-277 (2018).</li>
<li>Soleimanpour, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+diabetes+susceptibility+gene+Clec16a+regulates+mitophagy%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The diabetes susceptibility gene Clec16a regulates mitophagy.</a> Cell. 157 (7), 1577-1590 (2014).</li>
<li>Kaufman, B. A., Li, C., Soleimanpour, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+regulation+of+%CE%B2-cell+function%3A+Maintaining+the+momentum+for+insulin+release%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Aspects+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial regulation of β-cell function: Maintaining the momentum for insulin release.</a> Molecular Aspects of Medicine. (0), (2015).</li>
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<li>Dorrell, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+islets+contain+four+distinct+subtypes+of+%CE%B2+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Human islets contain four distinct subtypes of β cells.</a> Nature Communications. 7, 11756(2016).</li>
<li>Dorrell, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+major+pancreatic+cell+types+and+long-term+culture-initiating+cells+using+novel+human+surface+markers%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Isolation of major pancreatic cell types and long-term culture-initiating cells using novel human surface markers.</a> Stem Cell Research. 1 (3), 183-194 (2008).</li>
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</ol>

著者は何も開示していない。

ここでは、上流のミトファジー複合体の形成を定量化するために目的の組織/細胞でNRDP1:USP8 PLAを使用するための簡単で効率的なアプローチについて説明する。我々は以前に、共免疫沈殿実験、無細胞相互作用研究、インビトロおよび細胞ベースを含むいくつかの方法論によって、膵臓ベータ細胞におけるCLEC16A-NRDP1-USP8ミトファジー複合体の形成を確認した。ユビキチン化アッセイは、この複合体ドライブがミトファギックフラックス1、15を調節する方法を実証した。ここで報告および説明するPLA研究は、一次ヒトベータ細胞に対して適応性の高いミトファジー経路の迅速、定量的、および細胞特異的な見解を可能にする。さらに、NRDP1:USP8 PLAはSH-SY5Y神経芽細胞腫細胞のβ細胞生物学以外の使用に適応できることを示し、神経系のミトファギー複合体を監視するこの技術の潜在的な実現可能性を強調した。
PLA は簡単なアプローチです。ただし、プロトコル内の特定の手順は、明確で...

膵臓ベータ細胞は、正常なグルコース恒常性を維持するために必要なインスリンを産生し、その失敗は糖尿病のすべての形態の発症をもたらす。ベータ細胞は、グルコース代謝とインスリン放出を結合するために必要なエネルギーを生成するために堅牢なミトコンドリア容量を保持します。近年,ミトコンドリア質量の維持が最適なβ細胞機能1,2,3にとって極めて重要であることが明らかになった。機能的なミトコンドリア質量を維持するために、ベータ細胞は、機能不全、損傷、または老化ミトコンドリア4を除去するために品質管理メカニズムに依存しています。私たちや他の人は、ベータ細胞がげっ歯類とヒトの島の両方でミトコンドリア品質管理を維持するために、ミトコンドリアオートファジー(またはミトファジー)と呼ばれるミトコンドリアターンオーバーの特殊な形態に依存していることを以前に実証しました。2,5.しかし、残念ながら、ヒト膵臓ベータ細胞では、ミトファジー、または内因性発現ミトファジー成分を検出する簡単な方法はありませんでした。
我々は最近、ベータ細胞におけるミトファジーの上流調節が、E3リガスCLEC16AおよびNRDP1およびデュビキチナーゼUSP81を含むタンパク質複合体の形成に依存することを示した。NRDP1およびUSP8は、主要なミトファジーイニシエーターPARKIN6,7に対する作用を通じてミトファジーに影響を与えるために独立して示されている。NRDP1は、ミトファジー6をオフに切り替えるためにユビキチン化と劣化のためのPARKINをターゲットとし、USP8は特にミトコンドリア7への転座を促進するためにK6リンクされたPARKINをデュビキチンテートします。近接ライゲーションアッセイ(PLA)技術は、タンパク質相互作用生物学8の分野における最近の進歩であり、単一細胞における内因性タンパク質相互作用の可視化を可能にし、かつ希少なサンプル材料によって制限されない。この方法論は、特にヒトの膵物/β細胞生物学にとって魅力的であり、サンプルの入手可能性が非常に小さいため、異種細胞型内の生理学的に関連するタンパク質複合体を理解する必要性と相まって、
PLAアプローチを用いて、原発性ヒト膵臓ベータ細胞および神経細胞株における主要な内因性ミトファジー複合体を観察し、ミトファジー経路1に対する糖尿病性環境の影響を実証することができる。要約すると、このプロトコルの包括的な目標は、豊富な材料を欠いている組織における特定のミトファジータンパク質複合体を分析すること、または従来のタンパク質相互作用研究が不可能な場合です。

<table><tbody><tr><td>0.25% トリプシン-EDTA 1X</td><td>Life Technologies</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>抗生物質-抗真菌</td><td>性 Life Technologies</td><td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>ブロック溶液</td><td>自家製</td><td></td><td>1X PBS を使用し、10% のロバ血清と 0.3% の Triton X-100 洗剤を追加します。</td></tr><tr><td>緩衝液A</td><td>自家製</td><td></td><td>1Lを作るには: 8.8g NaCl、1.2g Tris base、500ul Tween-20、750mL ddH20を混ぜます。pH 7.5 に HCl を混ぜ、1L まで満たします。溶液をろ過し、4C で保存します。実験前に RT に持参</td></tr><tr><td>してください Buffer B</td><td>Homemade</td><td></td><td>1L を作るには: 5.84g NaCl、4.24g Tris base、26g Tris-HCl を 500mL ddH20 と混合します。pH 7.5、 1Lまで充填します。溶液をろ過し、4Cを保存します。</td></tr><tr><td>Cy5-conjugated AffiniPure donkey anti-goat</td><td>Jackson Labs</td><td>705-175-147</td><td></td></tr><tr><td>検出試薬 Red</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>DU092008-100RXN</td><td>キットに含まれるもの:ライゲーション溶液ストック(5X)、リガーゼ、増幅溶液ストック(5X)、ポリメラーゼ</td></tr>。<tr><td>DuoLink PLAプローブ 抗マウス MINUS</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>DU092004-100RXN</td><td></td></tr><tr><td>DuoLink PLAプローブ 抗ウサギ PLUS</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>DU092002-100RXN</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ヤギ ポリクローナル抗PDX1 (クローンA17)</td><td>サンタクルス</td><td>SC-14664</td><td>RRID: AB_2162373</td></tr><tr><td>HEPES (1M)</td><td>Life Technologies</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>MIN6膵臓細胞株</td><td>D.ストッファー</td><td></td>ズ<td>からのギフト 細胞ベースのアッセイに利用されるマウスインスリノーマ細胞株。</td></tr><tr><td>マウスモノクローナル抗USP8抗体(クローンUS872)</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>SAB200527</td><td></td></tr><tr><td>Pap-pen</td><td>Research Products International</td><td>195505</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td></td><td></td><td>少量の溶液を使用する際に、抗体とプローブ溶液を細胞に密封し、蒸発を防ぐために使用します。</td></tr><tr><td>PBT(リン酸緩衝生理食塩水とトリトン)</td><td>自家製</td><td></td><td>50mLを作るには:43.5mLddH2O、5mL 10X PBS、0.5mL 10X BSA(100mg / mL溶液)、1mL 10%トリトンX-100溶液(ddH20)</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン (100X)</td><td>Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水、10X</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP399-20</td><td></td></tr><tr><td>PIM(ABS) ヒトAB血清</td><td>Prodo Labs</td><td>PIM-ABS001GMP</td><td></td></tr><tr><td>PIM(G) (グルタミン)</td><td>Prodo Labs</td><td>PIM-G001GMP</td><td></td></tr><tr><td>PIM(S) media</td><td>Prodo Labs PIM-S001GMP</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PR619</td><td>Apex Bio</td><td>A812</td><td></td></tr><tr><td>Prolong Gold antifade reagent with DAPI</td><td>Life Technologies (Molecular Probes)</td><td>P36935</td><td></td></tr><tr><td>Rabbit polyclonal anti-FLRF/RNF41 (Nrdp1)</td><td>Bethyl Laboratories</td><td>A300-049A</td><td>RRID: AB_2181251</td></tr><tr><td>SH-SY5Y cells</td><td>L. Satin</td><td></td><td>Human neuroblastoma cell lineからのギフトで、細胞ベースのアッセイに利用されています。</td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム (100X)</td><td>Life Technologies</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP151-100</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP337-100</td><td></td></tr><tr><td>RNAワーク用水 (DEPC水)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP361-1L</td><td></td></tr></tbody></table>

近接リゲーションアッセイを利用したヒト膵臓ベータ細胞における内因性ミトファジー複合体の可視化

Visualization of Endogenous Mitophagy Complexes In Situ in Human Pancreatic Beta Cells Utilizing Proximity Ligation Assay

ミトファジーは、膵島のβ細胞バイオエネルギッシュがグルコース刺激インスリン放出を燃料にする上で重要なミトコンドリア品質管理経路である。ミトファジーの評価は困難であり、多くの場合、一次ヒト膵島などの組織サンプルでは容易に利用できない遺伝的レポーターまたは複数の相補的な技術を必要とする。ここでは、一次ヒト膵島における主要な内因性ミトファジー複合体の形成を可視化し、定量化するための堅牢なアプローチを示す。ミトファジーレギュレータNRDP1とUSP8の相互作用を検出する敏感な近接ライゲーションアッセイ技術を利用して、その中で不可欠なミトファジー複合体の形成を具体的に定量することができる。転写因子PDX1のアンチステインに対するこのアプローチを結合することにより、ミトファジー複合体と、特にベータ細胞内でミトファジーを損なう可能性のある因子を定量化することができます。我々が説明する方法論は、免疫沈殿(IP)または質量分析のような他のタンパク質相互作用研究に必要な大量の細胞抽出物の必要性を克服し、一般的に貴重なヒトのイストリーサンプルにとって理想的ではないこれらのアプローチのために十分な量で利用できる。さらに、この方法論は、下流タンパク質アプリケーションのための不均一なイストリール集団からベータ細胞を精製するためのフローソート技術の必要性を妨げる。したがって、異種および限られた細胞集団での使用に対して高い互換性を持つミトファジーの可視化のための貴重なプロトコルを説明する。

MIN6膵β細胞株とSH-SY5Y神経芽細胞腫細胞株SH-SY5Yで初期実験を行い、抗体の特異性と可視化されたタンパク質相互作用の両方を最適化・確認しました。MIN6細胞を30,000細胞/mLでカバースリップにめっきし、48時間、SH-SY5Y細胞を15,000細胞/mLでカバースリップ上にめっきし、24時間付着させた。PLA プロトコルは、ステップ 1.2.3 から始まり、上記のように続きました。PLAシグナルの特異性を確保するために、まず(i)一次抗体なし(図2A、図3A)、(ii)NRDP1抗体単独(図2B、図3B)、(iii)USP8抗体単独(iii)図2C、図3C、および(iv)両方のNRDP1およびUSP...

このプロトコルは、一次ヒト化物試料からベータ細胞に特異的にミトファジータンパク質複合体形成の定量分析のための方法を概説する。この技術により、貴重なヒト膵臓ベータ細胞サンプルにおいて重要な限られた生物材料からのミトファジーの分析が可能になります。

Mitophagy is an essential mitochondrial quality control pathway, which is crucial for pancreatic islet beta cell bioenergetics to fuel glucose-stimulated ...

このプロトコルは、ベータ細胞などのヒト組織における内因性ミトファジー複合体を監視することを可能にし、極めて重要な翻訳関連組織におけるマイトファジー研究を促進する。この技術の1つの利点は、まれな可用性または少数のサンプル数で組織中の生体内の重要なマイトファジー複合体を視覚化する能力である。標準的なプロトコルに従って分離した後、培養は、完全な膵島培地の10ミリリットルで4〜6回10〜3番目のヒト膵島当量を摂氏37度で少なくとも1日培養する。翌日、解剖用光顕微鏡を3倍の倍率で使用し、培養中の個々のヒト島を数える。1.5ミリリットルの小島培地のチューブに治療または関心のある条件ごとに40個の島を選びます。遠心分離によって小島を沈め、50マイクロモルPR619を補充したPBSの1ミリリットルでペレットを再懸濁する。チューブを反転し、新鮮なPBSプラスデュビキチナーゼ阻害剤で2回目の洗浄のための遠心分離によって島を収集します。第2遠心分離後、0.25%トリプシンと阻害剤の125マイクロリットルの125マイクロリットルを周期的に穏やかなピペッティングで摂氏37度で3分間、単一細胞に解約する。インキュベーションの終わりに、PR619を添加した37°Cの温かい膵島培地の1ミリリットルで反応を逮捕する。新鮮なPBSと洗浄ごとに阻害剤で2回の洗浄のための遠心分離によって島を収集します。2回目の洗浄後、解約された小島を150マイクロリットルの新鮮なPBSプラスインヒビターで再懸濁する。個々の島の付着および固定のために、細胞溶液をフロストチャージされた顕微鏡スライドに、疎水性ペンで細胞領域の輪郭を描く。その後、4%パラホルムアルデヒドとPBSで囲まれた細胞を室温で15分間固定します。この小水サンプルの免疫物質化学的分析では、PBSで5分間の洗浄を2回PBSで洗浄し、続いて10%ロバ血清とPBSに0.3%の洗剤を加えた非特異的結合遮断を室温で1時間洗浄します。ブロッキングインキュベーションの最後に、ユビキチン特異的ペプチダーゼ8に対する一次マウス抗体で細胞をコインキュベートし、ニューレグリン受容体分解タンパク質-1に対する一次ウサギ抗体、およびマウスまたはウサギで生じたβ細胞同定に特異的なマーカーを4°Cで一晩近接ライゲーションアッセイシグナルを妨げないようにする。翌朝、ロッカーのPBSで2回の5分間の洗浄でサンプルを洗います。作製したばかりの近接ライゲーションアッセイ溶液に抗ヤギCy5二次抗体を加えます。2回目の洗浄後、各小藻サンプルに20マイクロリットルのプローブ溶液をラベル付けし、37°Cで1時間のインキュベーションのためにプラスチックフィルムでスライドを回収します。インキュベーションの最後に、ロッカーのバッファAに5分間の洗浄を2回行い、続いて20マイクロリットルの準備されたライゲーション溶液をインキュベーションして、スライド当たり0.25単位のリガーゼあたり30分のインキュベーションを37°Cで洗浄します。ライゲーションの終了時に、細胞を1回の洗浄につき2分間、緩衝Aで2回洗浄する。各サンプルに20マイクロリットルの増幅液を取り付け、ポリメラーゼを補い、摂氏37度で100~120分のインキュベーションを行います。細胞をイメージング用に準備するには、サンプルを新鮮なバッファAで1回、ロッカーで1回10分間洗浄し、その後0.1xバッファBで1回洗浄します。最後の洗浄後、DAPIを含む取り付け媒体の一滴でスライドを取り付け、慎重に任意の気泡を押し出すためにメスを使用して、各サンプルの上にカバースリップを置きます。その後、エッジの周りに明確なマニキュアでカバーリップを密封します。サンプルを画像化するには、複数の焦点面をキャプチャできる顕微鏡のステージにスライドを置き、100倍の倍率を選択します。Zスタックの高さを約0.45マイクロメートルに設定し、適切な染色、カウンターステイン、および生細胞信号励起および発光パラメータを設定します。少なくとも9つの異なる焦点面画像を取得します。蛍光画像の背景信号と浮遊光を最小限に抑えるために、選択した標準画像処理ソフトウェアを使用して、2次元デコンボリューションニアネイバーアルゴリズムを利用して画像を処理します。近接ライゲーションアッセイ相互作用を定量化するために、ImageJを開き、近接ライゲーションアッセイ画像を開く。最初の急激にフォーカスが合った画像から開始し、[イメージ] をクリックして[調整としきい値]を選択します。しきい値を調整して非特異的近接ライゲーションアッセイシグナルをすべて除去し、解析中に信号の一貫性を保つためにしきい値調整をメモします。[処理] をクリックし、[バイナリ] と [バイナリを作成] を選択します。[サイズ] が 0 に設定されて無限大に、循環が 0 に設定されて 1 に設定され、[表示] が [アウトライン] に設定され、[結果の表示] および [結果のクリア] ボックスをオンにします。サンプルと Z スタックの位置を示すスプレッドシートで分析されたパーティクルの数に注意してください。次に、[パーティクルの解析と解析] をクリックして、パーティクルを測定します。サンプルのすべてのフォーカス中 Z スタックを分析したら、サンプルの合計パーティクル数をスプレッドシートに送信して、相互作用の合計数を定量化します。近接アッセイで使用される抗体はリガンドに特異的であり、重複を示すものではありません。観察されるように、分散プロトコルは下流分析のための顕微鏡視野で単一細胞を得る上で非常に効率的であり、β細胞染色は、一次ヒト小島における近接ライゲーションアッセイ染色後に保持される。実証された技術を用いて、ノイレグリン受容体分解タンパク質-1とユビキチン特異的ペプチダーゼ8の相互作用がパルミチントへの48時間の暴露後に減少し、糖尿病性刺激に続く主要な内因性個所因子を評価するためのこのアッセイの実現可能性を強調することができると判断することができる。人間の小島の効率的で穏やかな分散は、下流の正しい細胞集団の定量化を確実にするために不可欠です。PLAは、ヒトの小地サンプル中の重要なマイトファジー複合体の評価を可能にし、糖尿病研究の分野を前進させるマイトファジーおよび生物学的に重要なヒト患者サンプルの分析を可能にする。

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Research

JoVE Journal

Medicine

医学

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学ぶ 近接リゲーションアッセイを用いてヒト膵臓ベータ細胞における内因性ミトファジー複合体を可視化する方法です。限られた試料でもミトファジー複合体を定量的に解析でき、糖尿病研究に貢献します。

近接リゲーションアッセイを利用したヒト膵臓ベータ細胞における内因性ミトファジー複合体の可視化

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