Name: 胚性パターンスケーリングの研究のためのゼブラフィッシュの外科的サイズ縮小 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-03T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 31 s
Description: 学ぶゼブラフィッシュの外科的サイズ縮小法による胚性パターンスケーリングのメカニズム。Danio rerioを用いて発生の頑健性を定量的に解析し、動的スケーリング過程の理解を深める。

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この研究は、日本科学技術振興機構 (JPMJPR11AA) と国立衛生研究所 (R01GM107733) の PRESTO 事業によって支援された。

すべての魚関連の手続きは、ハーバード大学医学部の制度的動物ケアと使用委員会 (IACUC) の承認を得て行われました。
1. ツールと試薬の準備
<ol><li>
胚を切り刻むためにワイヤーループを作る
	<ol>
<li>40μ m の直径の堅く、非腐食性であるステンレス鋼ワイヤーの 20 cm を取りなさい。ワイヤーをガラス毛細管 (1.0 mm 外径、0.5 mm 内径、フィラメントなし) にループさせ、上部に小さなループを作ります (ループ長は 1.0 mm)。</li>
		<li>ワイヤーループの間にガラス毛細管の先端に明確なマニキュアの小さな液滴を入れて所定の位置に保持する。乾かしてそれは胚を損傷する可能性がありますように、ループ部分の上に任意のマニキュアを取得しないようにしてください。</li>
		<li>実験用テープを使用したガラス毛細管を、木製の箸 (9 "半分に割れた竹の割り箸) の上に取り付けます。箸の先に伸びるガラス毛細管は約 2.5 cm ありますので、箸部分が水の中に入ることはありません。この長さを [優先] に調整します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
あるいは、胚をチョップするためにガラスの針を作る
	<ol>
<li>ガラスパスツールピペットの一方の端を鉗子で挟み、反対側を手で押さえます。ピペットの薄い部分をスピリットランプまたはブンゼンバーナーの上に加熱します。</li>
		<li>ガラスピペットを手で引っ張ります。約30μ m の直径と緩やかな曲線 (曲率半径 = 約 5mm) として理想的なピペット。適切な直径および湾曲は練習およびあるチャンスと得られる。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
メチルセルロースを準備する
	<ol>
<li>メチルセルロースは、チョッピングしながら胚を保持するために使用される。1/3x リンガー溶液 (116 mM NaCl、2.9 mM KCl、1.8 mM CaCl2、5 mm 4-(2-ヒドロキシエチル)-1-piperazineethanesulfonic 酸 (HEPES; pH 7.2) の 2% メチルセルロース溶液を作る。1/3x リンガー溶液中のメチルセルロース粉末を一晩4° c で振ります。</li>
		<li>必要に応じて、〜 1.5 mL フェノールレッド (DPBS 原液で 0.5%) を 10 mL 2% メチルセルロース溶液に、赤まで、溶液を可視にする。色が均一になるまで振ってください。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. ゼブラフィッシュ胚の外科的サイズ低減のための準備
<ol><li>
胚の収集
	<ol>
<li>多くの水で満たされた嵌合室に、男性 1 ~ 2 人の女性ゼブラフィッシュを配置します。プラスチック製の仕切りを使用して男性と女性を分離します。Somite イメージングのための AB ライン (セクション 4) と神経管パターン形成のトランスジェニックレポーターライン (nkx 2.2: mem − gfp、dbx1b: gfp、またはOlig2: dsred) を使用して神経管イメージングを行います。一晩室に放置してください。 注:大人の選択は、よく手術を生き残る卵を得るために重要です。典型的には、若い健康な女性は健康卵を生産します。</li>
		<li>翌朝には、チャンバを浅い水に移し、わずかな傾きでチャンバを配置します。魚が交尾できるように仕切りを取り外します。</li>
		<li>お茶のストレーナーに注ぐことによって卵を収集します。卵をペトリ皿に移し、卵水 (20 倍の卵水、6 g のインスタント海塩、1.5 g CaSO4と 1 L H2O; 1x で使用)。より良いステージングのために、産卵後すぐに卵を収集します。28.5 ° c のインキュベーター内に胚を配置します。</li>
		<li>必要に応じて、一般的なプロトコル7、8に続く1〜4細胞段階でモルホリノ、mRNA などを注入する。神経管画像化のための蛍光膜標識 (mem − mCherry、mem − mBFP1、またはmem − MCitrine) の mRNA を注入する (第5項)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
プロナーゼを使用し Dechorionate
	<ol>
<li>128-セル ~ 256 細胞ステージの周囲で、正常な胚を卵水で満たされた 35 mm のガラス皿に移します。お皿からできるだけ多くの卵水を取り除いてください。</li>
		<li>20mg/mL のプロナーゼを1ml 加えます。プレートを移動させることによって、周囲の胚を静かに渦巻きし、ガラスピペットを使用して dechorionation を助けるために溶液を上下にやさしくピペットで移します。</li>
		<li>Chorions が弾力性を失い始めたとき (通常、プロナーゼの添加後に1-4 分、卵と水の量に応じて)、プロナーゼを希釈するためにできるだけ多くの卵の水を追加します。慎重に鉗子で絨毛膜に触れることによって弾力性の損失を評価します。絨毛膜はすぐにバウンスすることなくへこみを保持する必要があります。ガラスピペットを使用して卵水で別の皿に卵を移します (この時点では、chorions のほとんどは壊れていません)。<ol>
<li>別の方法として、卵水で満たされた大きな 400 mL のガラスビーカーに、胚を空気にさらすことなく穏やかに、ディッシュから胚を注ぎます。その後、胚を完全に沈降させます。ビーカーを傾けて、胚が片側に落ちるようにする。ガラスピペットを使用してこれらの胚を収集し、1/3x リンガー溶液で満たされた新しい 35 mm ガラス皿に移します。</li>
		</ol>
</li>
		<li>Chorions のほとんどが弾力性を完全に失うまで、数分間待機します。卵をそっとピペッティングすることによって、胚から残りの chorions を取り除きます。損傷した胚を除去し、28.5 ° c のインキュベーター内で胚をインキュベートします。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 外科サイズの減少および回復
<ol><li>1つのきれいな 35 mm のガラス皿を準備しなさい。約 0.5 mL の 2% のメチルセルロース (1/3x リンガー溶液で、フェノールレッドを使用して、プラスチック製のスパチュラを用いて、より大きな皿の底の中央付近を視覚化するのに役立つ) を広げます。メチルセルロースを薄く均一に約 0.5 mm の厚さに広げます。</li>
	<li>1/3x リンガー溶液の約 30 mL を皿の側面に注ぎ、メチルセルロースを覆う残りの皿の上に広げることを可能にする。</li>
	<li>256細胞-1k 細胞の段階で dechorionated 胚を 2% メチルセルロースに置きます。細胞と卵黄の両方を視覚化するために、側に胚の向きを調整します。(図 1)</li>
	<li>ワイヤーループ (またはガラス針) を使用して植物軸に垂直に切断することにより、動物の極近くの blastoderm から約 30%-40% の細胞を切ります (図 1、トップパネル)。細胞を取り除いた後、端を静かにタップして残りの細胞がくっつくようにします。胚が治癒し始めると、数分以内に死んだ細胞が脱落するはずです。</li>
	<li>卵黄を「チョッピング」する代わりに、植物の近くの卵黄に小さな傷をつけます (図 1中央パネル)。卵膜を取り付けられたワイヤーで施与ことによって卵黄を巻き付けた。創傷の後、数分間卵黄がにじみ出て、傷口が治る (図 1下部パネル)。</li>
	<li>卵黄がにじみ出て止まるとき、同じ皿にあるメチルセルロースの外にある pipet を使って胚を動かし、より良く回復できるようにします。</li>
	<li>すべての胚について、手順 3.4-3.6 を繰り返します。胚が回復する間、皿を30分間安定させておきなさい。</li>
	<li>
新鮮な 1/3x リンガー溶液で新しい皿に胚を転送し、それらが完全に回復することができるように28.5 ° c のインキュベーター内に入れます。
	<ol>
<li>オプション対象となる段階が初期の somite 段階である場合、胚は、遮蔽段階まで28.5 ° c でインキュベートされた後に20° c でインキュベートすることができ、実験および画像化のためのタイミングを調整する。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. ゼブラフィッシュ Somitogenesis のライブイメージング
<ol><li>1 g のアガロースを 100 mL の卵水に添加し、アガロースが完全に溶けるまで加熱して、100 mL を調製します。5-10 分を62-72 ° c の温度に冷ましてください。</li>
	<li>
イメージング用のマウントを準備します。 注:このガイドは、反転した広視野顕微鏡での使用のために開発されました。<ol>
<li>〜 15 mL の 1% アガロースを 100 mm x 15 mm のプラスチックペトリ皿に注ぎます。</li>
		<li>背面マウント V1 鋳型テンプレート5をペトリ皿の底にそっと置きます。水で 15 mL チューブなどの重量を使用して、底部に金型を保管してください。 注:これは、逆に顕微鏡を使用する場合、胚が可能な限りペトリ皿の底に近いようにするためである。胚は somite イメージングのために横方向に取り付けられているが、ここでは somite の初期段階でより良好に胚を保持しているために背側マウント V15が使用される。</li>
		<li>アガロースが完全に固化するまで冷ましてください。〜 30 mL の卵水を 0.01% の tricaine で注ぎ、慎重に鉗子で外を詮索してカビを取り除いてください。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Somite イメージングのための胚のマウント
	<ol>
<li>1/3x リンガー溶液 (または卵水) に 1% の低融点アガロースを調製し、42° c で保管してください。温度が42° c に下がるまで待ちます。</li>
		<li>解剖顕微鏡下では、1つの胚をウェルごとに配置します。約1μ l の低融点アガロースをピペットで使用し、サイズが異なる個々の胚のサイズ、特にサイズの減少の有無にかかわらず、十分なサイズを微調整します。</li>
		<li>低融点アガロースが固化する前に速やかに胚を配向させることで、胚が皿に完全に横に向くようにする。胚を取り付けた後、アガロースマウントにカバースリップをそっと置き、胚を所定の位置に保持する。胚は完全に横方向に取り付けられ、すべての somite 境界が後の段階で鮮明に撮像される必要があるため、配向は長期 somite イメージングにとって特に重要です。</li>
		<li>取り付けエリアから離れて水没し、25 mm x 25 mm のカバーガラスを操作して、金型によって作成された正方形のインデントの方向から45度オフセットします。この方向の金型の上にカバースリップをスライドさせて、それぞれの角が金型の別の側を休ませるようにします。 注:このプロトコルは倒立顕微鏡用ですが、金型の上にカバーガラスを配置することは、胚が顕微鏡に移動しながら動かないようにするためには依然として重要です。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
イメージング somite 形成過程
	<ol>
<li>外は、foamcore ボードとキャビネットヒーターで構築されたインキュベーター内で、顕微鏡を28° c にします。</li>
		<li>取り付けられた胚を顕微鏡ステージ上に入れてペトリ皿を配置する。低倍率レンズでアガロースマウントの左上に取り付けた胚を見つけ、目標を10x に切り替えます。</li>
		<li>画像取得を設定します。 注:この命令は明るいフィールド用です。</li>
		<li>Somite 境界を明確に見ることができるように、光パワー、露光時間、およびコンデンサーの条件を検索します。Z スタック設定を使用して、必要なイメージングプレーンを最小および最高に設定します。合計時間と時間間隔を設定します。複数の胚が一度にタイムラプス撮影できるように取り付けられたすべての胚の xy 位置を見つけて登録します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>フィジー16を使用して PSM と体節の長さを測定します。</li>
</ol>5. 神経管パターニングのイメージング
<ol><li>1 g のアガロースを 100 mL の卵水に添加し、アガロースが完全に溶けるまで加熱して、100 mL を調製します。5-10 分 ~ 62-72 ° c まで冷ましてください。Tricaine を 0.01% に調整します。</li>
	<li>
イメージング用の背面マウントを準備します。 注:このガイドは直立した蛍光顕微鏡との使用のために開発される。倒立顕微鏡ではカバースリップボトムディッシュが必要であり、ステップ3での取り付け方向が反転されます。<ol>
<li>〜 15 mL の 1% アガロースを 100 mm x 15 mm のプラスチックペトリ皿に注ぎます。アガロースの表面にある背面取り付け V1 モールドをそっと浮かべて、気泡の混入を防ぎます。アガロースが完全に固化するまで冷ましてください。</li>
		<li>注意深く鉗子またはかみそりの刃が付いている型を取除きなさい。0.01% の tricaine と卵の水で料理を記入し、使用するまでカバーしています。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
神経管イメージングのための胚をマウントします。
	<ol>
<li>遺伝子組み換えまたは注入された蛍光サイズの減少および制御胚が 20-25 somite 段階 (受精後約 18-22 h) まで発達することを可能にする。蛍光膜標識を発現する胚 (mem − mCherry、 mem − mBFP1、又はmem − mCitrine) と神経管パターン形成のトランスジェニックレポーター (nkx 2.2: mem − gfp、 dbx1b: gfp、又はOlig2: dsred) を用いたイメージング用。</li>
		<li>0.01% tricaine の働く解決と準備された背部台紙の卵水媒体を取り替えなさい。徐々に背面のマウントのウェルに画像化されるように胚にピペット。</li>
		<li>頭がマウントで前方に向いているように正しい方向に胚を操作し、尾は水面に向かって直面している背側の部分と後部の方を指しています。</li>
		<li>尾が平らに横たわって、皿の底に向かって下方に向いていないように胚の向きを合わせる。尾が沈み込むのを防ぎ、不注意に後脳を撮像するのを防ぐために、取り付け井戸の側面の棚に尾の後部を休ませると便利なことがあります。各胚について繰り返します。画像化するために井戸に深く落ちないようにサイズを減少させた胚で特定してください。</li>
		<li>取り付けエリアから離れて水没し、25 mm x 25 mm のカバーガラスを操作して、金型によって作成された正方形のインデントの方向から45°のオフセットを行います。この方向の金型の上にカバースリップをスライドさせて、それぞれの角が金型の別の側を休ませるようにします。</li>
		<li>チェンバーを徐々に回転させて、取り付け領域にゆっくりと落下します。胚がまだ正しい位置と向きに取り付けられていることを確認してください。あまりにも多くの動きがチェンバーの落下によって引き起こされた場合、穏やかに除去し、ステップ C からの取り付けを繰り返します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
現像脊髄の3d における画像。
	<ol>
<li>取り付けた胚を含むディッシュを共焦点顕微鏡に優しく輸送する。長期のライブイメージングのためには、インキュベートされた顕微鏡を使用するようにしてください。それ以外の場合、低温は許容されます。</li>
		<li>明視野の照明の下で、望ましい前方後方の位置の視野をイメージし、中心に胚にナビゲートしなさい。胚間の詳細な比較を可能にするために、各胚におけるこの位置は一貫していなければならない。</li>
		<li>画像化されている蛍光タンパク質からのシグナルを励起して捕捉するように撮像パラメータを設定する。パラメータは、最初のサンプルに所望の画像を作成するために、目で調整することができます。測定の一貫性を有効にするには、データセット内のすべての胚にこれらの設定を適用します。多くの z スタックが必要な場合は、速度の設定を最適化します。</li>
		<li>Z スタック設定を使用して、最小および最高の目的のイメージングプレーンを設定します。Z スタックで最適な画質を設定するには、[z 解像度] を [開口部] の設定に最適な最大値にします。1μ m の z 間隔で良好な画像を生成できます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>任意の方法でイメージングデータを分析します。 注:この場合、画像の神経部分の単純なセグメンテーションと撮像信号の定量化を可能にする、カスタムの MATLAB スクリプトを使用して分析を行いました。</li>
</ol>

<ol><li>Cooke, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scale+of+body+pattern+adjusts+to+available+cell+number+in+amphibian+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Scale of body pattern adjusts to available cell number in amphibian embryos.</a> Nature. 290, 775-778 (1981).</li>
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</ol>

著者は、競合または金銭的利益を宣言しません。

歴史的に、脊椎動物のうち、サイズの減少は、主に両生類の胚を使用して行われており、植物軸に沿って胚を胞胚段階12で bisecting することによっている。しかし、カエルとゼブラフィッシュの胚の間には、胚を二分すると2つの違いがある。まず、ゼブラフィッシュの胚が bisecting (胞胚ステージ) に寛容になった段階で、オーガナイザーは胞胚マージン18、19、20、21の制限区域に位置しています。オーガナイザーの位置を胚の形態から伝えることができないので、動物-植物軸に沿って胚をランダムに切断すると、dorsalized または ventralized 胚が生成される。第2は、カエルの胚とは異なり、ゼブラフィッシュの胚は epiboly と呼ばれるプロセスを通過し、細胞は細胞に...

科学者たちは、胚の大きさは、自然と実験的な条件1,2,3の下で大きく異なるが、一定の体の割合を形成する顕著な能力を持っていることを長い間知られています。数十年にわたる理論的および実験的研究にもかかわらず、このようなサイズ変動に対する頑健性は、スケーリングと呼ばれ、多くの組織や器官においてその根底にあるメカニズムは未知のままである。現像システムのダイナミクスを直接捕捉するために、ゼブラフィッシュ4において再現性がありかつ単純なサイズ低減技術を確立し、これは生体内ライブ撮像5において大きな利点を有する。
ゼブラフィッシュは、発生生物学を含む生物学の複数の学問分野を研究するためのモデル脊椎動物として役立ってきた。特に、ゼブラフィッシュは生体内ライブ撮像6にとって理想的であるので 1) 開発は母と卵殻の外で正常に進行でき、そして 2) 胚は透明である。さらに、胚は、それらが実験室条件で研究されることを可能にするいくつかの温度および環境変動に耐えることができる。また、モルホリノや mRNA 注入7,8による従来の遺伝子発現摂動に加え、近年の CRISPR/Cas9 技術の進歩により、ゼブラフィッシュにおける逆遺伝学が極めて効率的な9となっている。さらに、細胞移植または組織手術などの発生学における多くの古典的技術を、4、10、11に適用することができる。
サイズ低減技術は、両生類および他の非脊椎動物12で元々開発された。例えば、アフリカツメガエルガエルにおいて、他の一般的な脊椎動物モデルでは、胞胚段階で動物植物軸に沿って公知は、サイズ減少した胚12,13を作り出すことができる。しかし、私たちの手の中でこのワンステップのアプローチは、dorsalized または ventralized の胚が不均一に分布しており、胚の形態からの局在を知ることができないためであると考えられます。ここでは、通常発達しているがより小さな胚を生成するゼブラフィッシュのための代替の2段階のチョッピング技術を示す。この技術によって、細胞は最初に動物の極から、オーガナイザーの活動に欠けているナイーブな細胞の領域から取り除かれます。Epiboly とその後の形態形成に重要な卵黄と細胞の量のバランスをとるために、卵黄を除去する。ここでは、このプロトコルについて詳しく説明し、パターン形成におけるサイズ不変性の2つの例を示します。somite 形成と腹部神経管のパターニング。定量的イメージングと組み合わせることで、サイズ低減技術を利用して、体節と神経管のサイズが減少した胚のサイズにどのように影響するかを調べました。

<table><tbody><tr><td>60 mm PYREX ペトリ皿</td><td>CORNING&</td><td>nbsp;3160-60</td><td></td></tr><tr><td>アガロー</td>ス<td>affymetrix</td><td>75817</td><td>ライブイメージング用マウント作成用</td></tr><tr><td>アガロース、低ゲル化温度 タイプVII-A</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>A0701-25G</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>EMD</td><td>CX0130-1</td><td>1/3リンガー液用</td></tr><tr><td>CaSO4</td><td></td><td></td><td>卵水</td></tr><tr><td>用 カバースリップ (25 mm x 25 mm,厚さ1)</td><td>CORNING</td><td>2845-25</td><td></td></tr><tr><td>使い捨てヘラ</td><td>VWR&nbsp;</td><td>80081-188</td><td></td></tr><tr><td>フォームボード</td><td>ELMER'S</td><td>951300</td><td>顕微鏡インキュベーター用</td></tr><tr><td>Forcept (No 55)</td><td>FST</td><td>11255-20</td><td></td></tr><tr><td>ガラスピペット</td><td>VWR</td><td>14673-043</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>SIGMA ライフサイエンス</td><td>H4034</td><td>1/3 リンガーズソリューション用</td></tr><tr><td>INCUKIT XL キャビネットインキュベーター用 インキュベータ</td>ー <td>Warehouse.com</td><td></td><td>顕微鏡インキュベーター用</td></tr><tr><td>インスタント海塩</td><td>インスタントオーシャン</td><td>138510</td><td>卵水</td></tr><tr><td>用 KCl</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>P4504</td><td>1/3リンガー液用</td></tr><tr><td>メチルセルロース</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>M0387-100G</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>S7653</td><td>1/3リンガー液用</td></tr><tr><td>シャーレ</td><td>ファルコン</td><td>351029</td><td>ライブイメージング用マウントを作る</td></tr><tr><td>フェノールレッド</td><td>シグマライフサイエンス</td><td>P0290</td><td></td></tr><tr><td>ピペットポンプ</td><td>ベルアートプロダクツ</td><td>F37898</td><td></td></tr><tr><td>プロナス</td><td>EMD ミリポアコーポレーション</td><td>53702-250KU</td><td></td></tr><tr><td>トリカイン-S (MS222)</td><td>ウエスタンケミカル</td><td></td><td></td></tr> NC0135573 <tr><td>超薄型、明るい焼きなまし 316L φ0.035 mm ステンレス製 織物ワイヤー</td><td>サンドラ</td><td></td><td>私たちが使用したワイヤーは~20年前に入手したもので、まったく同じものを見つけることができませんでした。この製品は、使用しているものと同じ素材と直径を持っています。</td></tr></tbody></table>

胚性パターンスケーリングの研究のためのゼブラフィッシュの外科的サイズ縮小

Surgical Size Reduction of Zebrafish for the Study of Embryonic Pattern Scaling

発達過程において、胚は体のサイズに自分の体のパターンを一致させる顕著な能力を示す。それらの体の割合は、特定の限界内で、より大きいか、またはより小さい胚においてさえ維持される。このスケーリングの現象は1世紀以上にわたって注目されてきたが、様々なサイズの胚における発達力学の量的記述不足のために、根底にあるメカニズムを理解することは限定的であった。このような制約を克服するため、ゼブラフィッシュの胚のサイズを外科的に減少させる新しい手法を開発し、生体内ライブイメージングに大きな利点を持っています。我々は、別のステップで胞胚段階で細胞および卵黄を平衡除去した後、胚が適切な条件下で迅速に回復し、より小さいがそれ以外の場合は正常な胚に成長することを実証する。この技術は特別な装置を必要としないので、それは容易に適応可能であり、morphogen によって媒介されるパターン化の強さを含むスケールの問題の広い範囲を研究するのに使用することができる。

卵黄体積減少は、通常の形態にとって重要である 最近述べたように Almuedo-カスティージョ et al.17において、胚のサイズ減少は卵黄体積を減少させることなく達成することができる。卵黄体積減少と比較するために、我々は2段階のチョッピング (胞胚と卵黄の両方) と胞胚のみのチョッピング (図 2と補足ムービー 1) の両方を行いました。2段階の細断された胚は、発達段階全体にわたって、サイズ差以外のコントロール (dechorionation のみ) 胚に比べて一見正常な全体的形態を示した (図 2の上部および中央パネルを参照)。一方、胞胚のみの細断胚は、特に初期の段階で特異な形態を示した。Epiboly の間、胚は狭窄し、インデントされた外観を有していた (図2の epiboly% 70 の下側パネルを参照)。次の somite 段階では、中線構造が平坦であることが見出された (すなわち DV...

ここでは、通常の発達過程を妨げずにゼブラフィッシュの胚のサイズを小さくする方法について述べる。この手法により、サイズ変更に対するパターンのスケーリングと開発の堅牢性の検討が可能になります。

In the developmental process, embryos exhibit a remarkable ability to match their body pattern to their body size; their body proportion is maintained ...

スケーリングは発達システムの普遍的かつ基本的な属性の1つですが、基礎となるメカニズムは多くの臓器や組織では理解されていません。このビデオで紹介するゼブラフィッシュのサイズ縮小技術は、動的スケーリングプロセスの基礎となるメカニズムの理解を深めます。ゼブラフィッシュを操作する利点は、ライブイメージング、遺伝学、および定量分析を行うことが容易です。当社の技術は、特殊な機器や集中的なトレーニングなしで適用することは非常に簡単です。胚の健康は、この技術の成功の鍵です。若い魚を親として使用し、コリューションを取り除くことによって損傷を最小限に抑えるように注意してください。また、黄身の創傷の大きさで遊び、何個の細胞が取り除かれるかも分かります。私たちが使用する胚は非常に若く壊れやすいので、転送と切り刻み時には非常に慎重に取り扱う必要があります。同時に、開発の適切な時間枠で手順を実行できるように、高速である必要があります。視覚的なデモンストレーションは、より小さな胚を効果的に生成する方法の良い感覚を与えることができます。胚の切り刻みのためのワイヤーループを作るために、ガラス毛細血管を通して長さ20センチメートルの硬く、非腐食性のステンレス鋼線を供給し、上部に小さな1ミリメートルの長さのループを作ります。明確なマニキュアの小さな液滴をクラス毛細血管の先端に置き、毛細管とワイヤーループの間に所定の位置に保持し、胚に損傷を与える可能性があるため、ループ部分にマニキュアを取得しないようにします。そして、それを乾燥させます。ラボテープを使用して、ガラスの毛細管を木の箸にループに取り付け、工具の箸部分が後で水に浸かないように、約2.5センチメートルのガラスキャピラリーを箸の向こうに伸ばします。プラスチック製のヘラを使用した100ミリメートルガラスペトリ皿では、底部の中心付近に2%メチルセルロースの約0.5ミリリットルを薄く均等に約0.5ミリメートルの厚さに広げます。約30ミリリットルのリンジャー溶液を皿の側面に注ぎ、残りの皿に広げ、メチルセルロースを覆います。以前に脱絨毛化した胚を256細胞の2%メチルセルロースの1つのK細胞ステージに置き、胚が側に向かっていることを確認する。ブラスラを切り刻むには、ワイヤーループを使用して動物の棒の近くで動物の植物軸に垂直に切断し、ブラストドラム細胞の約30〜40%を切り落とします。その後、そっと一緒に端をタップして、残りのセルが戻ってくるのを助けます。黄身の場合は、取り付けられたワイヤーを使用して卵膜をニッキングして植生ポールの近くで小さな傷を作り、卵黄が数分間にじみ出し、治癒します。黄身がにじみ出なくなったら、ピペットを使って同じ皿の中で胚をメチルセルロースの外に移動させ、回復します。すべての胚に対してブラスラと黄身のチョッピングを繰り返し、胚が回復する間、皿を30分間邪魔しません。次に、ガラスピペットを使用して、新鮮な3分の1のRingerの溶液を含む以前に調製された35ミリメートルのガラス皿に胚を移し、イメージングを続行する前に完全な回復を可能にするために28.5°Cインキュベーターに入れます。ブラスラと黄身で2段階の切り刻みを行った後、胚はサイズ差以外の対照胚と比較して、発達段階全体で一見正常な全体的形態を示した。一方、ブラストラのみの切り刻まれた胚は、特に初期段階で独特の形態を示した。エピボリーの間に、胚は収縮し、インデントされた外観を有していた。以下のスマイト段階では、正中構造が多くの軸レベルで平坦化していることが判明した。後の段階では、中脳や後脳などの黄身に隣接する体構造は、比較的大きな黄身からの緊張の増加に起因して、比較的平坦な形状を示した。スマイト形成のタイムラプスイメージングは、コントロールおよびチョップド胚の両方において、後の段階で形成されたスマイトのサイズが初期段階のものと比較して小さかることを示した。また、スマイト形成段階を通じて、切り刻まれた胚は対照的な胚のものよりも小さいスマイトを有していた。2段階の切り刻み技術を膜mCherry注入胚に対して行った場合、受精後20時間での脊髄の画像化は、サイズ低下による神経管高の減少を示した。2ステップの切り刻みは、より小さいが、それ以外の場合は高効率で正常な胚を得るために非常に重要です。ブラストラから細胞を切り落としながら黄身をみじん切りにしないことを覚えておくことが重要です。黄身の場合は、内容がにじみ出るように小さな傷を作ります。そして、黄身膜は適切な緩衝液で自然に治癒します。刻んだ胚は迅速に回収できるため、任意の方法または分析を正常胚に適用することができ、サイズ縮小方法に従って行うことができる。この技術のシンプルさと汎用性は、誰もがゼブラフィッシュの任意の組織や臓器のスケーリングの問題を研究するためにこの技術を導入することができるように非常に強力です。私たちは、この技術を使用すると、研究者は以前に手つかずだった様々なシステムのスケーリングの問題に取り組むことができると信じています。我々はすでに、スマイトのスケーリングと神経管のパターニングにおいて重要な発見を行っています。

surgical-size-reduction-zebrafish-for-study-embryonic-pattern

Research

JoVE Journal

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