Name: 大小動物における狂犬病壊死技術 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 56 s
Description: 学ぶ狂犬病検査のための安全な壊死技術。大小動物から脳幹と小脳を採取し、エアロゾル発生を最小限に抑える方法を解説。現場での適用も可能なプロトコルで、技術者のリスクを低減します。

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このプロジェクトを支援してくださったニューヨーク州保健省のワズワース・センターに感謝しています。また、エイミー・ウィルシーとフランク・ブレイズデル保健省ワズワース・センター、およびニューヨーク州アルタモントのLLランチからの支援を認めしたいと思います。

記載されたすべての方法は、ワズワースセンター機関動物ケアおよび使用委員会(IACUC)によって承認されました。
1. 準備
<ol><li>ドンPPEは、少なくとも目の保護(眼鏡またはフェイスシールド)、外科またはN-95マスク、および非ラテックス手袋。</li>
	<li>作業領域、理想的にはバイオセーフティキャビネット(BSC)を、使い捨て作業面カバー(例えば、クラフト紙または吸収パッド)とクリーンな壊死器具で準備する(図1)。</li>
	<li>作業面に試料を配置し、分解の証拠、頭蓋骨の損傷、潜在的な危険(例えば、ポークパインクイル、メスブレード)、および切断の品質を含むサンプルの状態を評価するためにそれを操作するために器械を使用します。</li>
</ol>2. 通気法
注:試料が顎ラインで適切に切断されると、前頭部マグナムと後頭部のコンディクルが露出します。腹部法は、小脳および脳幹を取り出すための複雑さが少ない。
<ol><li>腹部側を上にして標本を位置付けし、鼻をBSCの背面に向けて遠回りに配置します。</li>
	<li>整形外科用ハンマー/マレットを右手に持ち(右利きの場合)、同時に議員のチゼルを左手に持つ。</li>
	<li>時骨の右側と後頭部の骨の間に向かうノミの角点を持つ45°の角度でノミを配置し、「V」の開口部を作る。</li>
	<li>2つの骨が別れるまでハンマーでノミの上部を打ちます。ベーシスフェノイド骨に隣接してカットを行います。</li>
	<li>側頭骨/後頭骨の左側で繰り返します(図2A)。</li>
	<li>頭蓋骨の「V」領域をノミで下方に曲げる。脳のロンブランセファロン領域全体(小脳および脳幹)を露出させる(図2B)。</li>
	<li>はさみと鉗子で脳幹と小脳をすくい取ります。脳幹と小脳が1個で出てこなかった場合は、頭蓋骨から残りの部分を取り除きます。</li>
</ol>3. ドーサル法
注:検体の切断が不十分で、壊死中に首を容易に取り除くことができない場合や、小脳への損傷が疑われる場合は、背中の方法を利用する必要があります。
<ol><li>試料をBSCの背面に向けて鼻で背面に配置します。</li>
	<li>腫瘍テナキュラを使用して、歯手の歯で左側頭部筋をつかみ、ハンドルを絞ってロックします。</li>
	<li>鋭い彫刻ナイフで骨に時間的な筋肉をカットします。</li>
	<li>テナキュラとナイフ(手ではない)で標本180°を回転させ、反対側の側筋でプロセスを繰り返します。頭蓋骨を露出させる。</li>
	<li>頭蓋骨と腹膜骨の接合部に、頭蓋骨の中心にあるノミの角点を持つ45°の角度でノミを配置します。</li>
	<li>頭頂部骨の頭蓋骨の上半分に水平開口部が作られるまで、ハンマーでノミの上部を打ちます。</li>
	<li>試料を180°回転させ、反対側で繰り返します。</li>
	<li>切り取り値 1 (図 3A)の端と水平方向の開口部の 90° にノミの点を挿入します。開口部が後頭骨に達するまでハンマーで打つ(試料の大きさに応じて約10cm)。</li>
	<li>試料を転がし、カット2の終わりに反対側で繰り返します。 注:BSCの背面に向かって標本背面と鼻を配置すると、頭蓋骨の開口部は逆さまの「U」に似ています。</li>
	<li>「U」の底にある頭蓋骨にテナキュラの歯を挿入し、自分自身に向かって突き出します。大脳と小脳の縁方の端を露出させる(図3B)。</li>
	<li>スクープとしてはさみを使用し、空洞内から小脳全体を取り除く。</li>
	<li>組織鉗子を使用して、前頭から脳の幹をいじめる。</li>
</ol>4. 大型動物法
<ol><li>頭蓋骨の後部が頭蓋骨の側方の部分と、技術者に面した頭蓋骨の側部と壊死面に接触できるように標本を配置します。</li>
	<li>変更されたスティレットナイフを、脊髄と脊髄髄膜の間の前部マグナムに可能な限り挿入します。</li>
	<li>脊髄の周りのスコアは、小脳と脳の茎を脊髄髄から分離します。ナイフを前頭マグナムを通して挿入した後、ナイフをそっと角を向けて頭蓋骨に沿ってできるだけ後に続きます。</li>
	<li>神経組織と脊髄髄膜の間の空間に、化学のへらまたは薄い、長い取り扱いスプーンを挿入します。</li>
	<li>脊髄および小脳の周りの調査は脊髄髄膜との関係が切断されたことを確認する。</li>
	<li>鉗子で脳幹を保持します。一方、スプーンを大げさに進め、その後、小脳をすくい上げます。同時に鉗子で脳幹を引き戻し、スプーンを使用して小脳をすくい取ります。 注:狂犬病検査のために十分な小脳を回復するために複数の試みが必要な場合があります。</li>
</ol>5. ポスト壊死
<ol><li>すべての使い捨て材料(手袋、パッド、作業領域カバー)および未使用の組織を生体有害廃棄物に廃棄します。</li>
	<li>利用可能な方法(例えば、工業用食器洗い機、オートクレーブ、化学消毒剤、沸騰)ですべての機器をきれいにし、消毒します。</li>
	<li>20%の漂白剤および/または70%のエタノールが付いているすべての仕事の表面をきれいにし、消毒する。</li>
</ol>

<ol><li>Centers for Disease Control and Prevention (CDC). <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((West+Nile+virus+activity+-+United+States%2C+2009%5BTitle%5D)+AND+%22MMWR+Morbidity+and+Mortality+Weekly+Report%22%5BJournal%5D)">West Nile virus activity - United States, 2009.</a> MMWR Morbidity and Mortality Weekly Report. 59 (25), 769-772 (2010).</li>
<li>McDaniel, C. J., Cardwell, D. M., Moeller, R. B. Jr, Gray, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Humans+and+cattle%3A+A+review+of+bovine+zoonoses%5BTitle%5D)+AND+%22Vector+Borne+and+Zoonotic+Diseases%22%5BJournal%5D)">Humans and cattle: A review of bovine zoonoses.</a> Vector Borne and Zoonotic Diseases. 14 (1), 1-19 (2014).</li>
<li>Spickler, A. R. Zoonotic diseases. Merck Veterinary Manual. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.merckvetmanual.com/public-health/zoonoses/zoonotic-diseases">https://www.merckvetmanual.com/public-health/zoonoses/zoonotic-diseases</a> (2019).</li>
<li>Wenner, L., Pauli, U., Summermatter, K., Gantenbein, H., Vidondo, B., Posthaus, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aerosol+generation+during+bone-sawing+procedures+in+veterinary+autopsies%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Pathology%22%5BJournal%5D)">Aerosol generation during bone-sawing procedures in veterinary autopsies.</a> Veterinary Pathology. 54 (3), 425-436 (2017).</li>
<li>Green, F. H. Y., Yoshida, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+aerosols+generated+during+autopsy+procedures+and+their+potential+role+as+carriers+of+infectious+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Occupational+and+Environmental+Hygiene%22%5BJournal%5D)">Characteristics of aerosols generated during autopsy procedures and their potential role as carriers of infectious agents.</a> Applied Occupational and Environmental Hygiene. 5 (12), 853-858 (1990).</li>
<li>Barrat, J. Simple technique for the collection and shipment of brain specimens for rabies diagnosis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBarrat%2C+J+%22Laboratory+techniques+in+Rabies+4th+Edition%22">Laboratory techniques in Rabies 4th Edition</a>. Meslin, F. X., Kaplan, M. M., Koprowski, H. , World Health Organization. 425-427 (1996).</li>
<li>Ness, S. L., Bain, F. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+to+perform+an+equine+field+necropsy%5BTitle%5D)+AND+%22American+Association+of+Equine+Practitioners%22%5BJournal%5D)">How to perform an equine field necropsy.</a> American Association of Equine Practitioners. 55, 313-316 (2009).</li>
<li>Animal & Plant Health Agency. Sample requirements for TSE testing and confirmation – EURL guidance. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://protect2.fireeye.com/url?k=09f00f8d-55d40ec4-09f2f6b8-0cc47aa8d394-3f805f032cc98df8&u=https://science.vla.gov.uk/tse-lab-net/documents/tse-oie-rl-samp.pdf">https://protect2.fireeye.com/url?k=09f00f8d-55d40ec4-09f2f6b8-0cc47aa8d394-3f805f032cc98df8&u=https://science.vla.gov.uk/tse-lab-net/documents/tse-oie-rl-samp.pdf</a> (2019).</li>
<li>New York State Department of Health, Wadsworth Center. Rabies reports. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.wadsworth.org/programs/id/rabies/reports">https://www.wadsworth.org/programs/id/rabies/reports</a> (2019).</li>
<li>CDC. Protocol for postmortem diagnosis of rabies in animals by direct fluorescent antibody testing: A minimum standard for rabies diagnosis in the United States. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf">https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf</a> (2019).</li>
<li>Miller, L. D., Davis, A. J., Jenny, A. L., Fekadu, M., Whitfield, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surveillance+for+lesions+of+bovine+spongiform+encephalopathy+in+U.S.+cattle%5BTitle%5D)+AND+%22Developments+in+Biological+Standardizations%22%5BJournal%5D)">Surveillance for lesions of bovine spongiform encephalopathy in U.S. cattle.</a> Developments in Biological Standardizations. 80, 119-121 (1993).</li>
<li>Andrews, C., Gerdin, J., Patterson, J., Buckles, E. L., Fitzgerald, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eastern+equine+encephalitis+in+puppies+in+Michigan+and+New+York+states%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Veterinary+Diagnostic+Investigation%22%5BJournal%5D)">Eastern equine encephalitis in puppies in Michigan and New York states.</a> Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 30 (4), 633-636 (2018).</li>
<li>Appler, K., Brunt, S., Jarvis, J. A., Davis, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clarifying+indeterminate+results+on+the+rabies+direct+fluorescent+antibody+test+using+real-time+reverse+transcriptase+polymerase+chain+reaction%5BTitle%5D)+AND+%22Public+Health+Reports%22%5BJournal%5D)">Clarifying indeterminate results on the rabies direct fluorescent antibody test using real-time reverse transcriptase polymerase chain reaction.</a> Public Health Reports. 134 (1), 57-62 (2019).</li>
<li>Chapter 7. Brain removal. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Laboratory+techniques+in+Rabies+5th+Edition%22">Laboratory techniques in Rabies 5th Edition</a>. Rupprecht, C. E., Fooks, A. R., Abela-Ridder, B. , World Health Organization. 67-72 (2018).</li>
</ol>

著者は何も開示していない。

狂犬病壊死のために提出された標本は、しばしば神経疾患と互換性のある臨床徴候の歴史を有する。臨床疾患の存在は、人獣共通疾患を含む様々な疾患に関連し得る。これらのリスクを低減するために、試料の取り扱いや操作を減少させる技術が実装されています。
実証された方法は、単一の動物からのみ所望の組織を除去する壊死事象を表す。より一般的に複数の標本はシフトで処理され、サンプル間のクロス汚染を確実にするために注意が必要です。クリーンなワークサーフェス(使い捨てクラフト紙またはパッド)、清潔で消毒された器具の新しいセット、および手袋の変更は必須です。組織が得られると、顕微鏡検査やRNA抽出のためのスライドを作るなど、個々の実験室の処理プロトコルに従うことができます。
これらの技術を実験室や分野で正常に実装するための重要な前提条件がいくつかあります。以前の狂犬病ワクチン接種とPPEは、狂犬病の疑いのある動物を壊死させる人にとって重要です。狂犬病研究所で働く個人は、抗狂犬病抗体の適切なレベルが存在することを確認するために、6ヶ月ごとに血<sup cl...

狂犬病実験室の壊死床に取り組むことは本質的に危険です。時には、標本は埋め込まれたポークパインクイル、矢印/弾丸/ペレットまたは保護出荷ラップを貫通する可能性のある露出した骨の破片を含む異物で到着します。不適切な包装は漏出をもたらし、標本を解凍する個人を危険にさらす可能性があります。身体的損傷に加えて、壊死した技術者は、CNSおよび標本の体液から未知の動物性感染因子への暴露を危険にさらす。さらに、検体によって運ばれるエトパラサイトは、ノミやダニが提出された動物に一般的に見られるように、他の人獣病を伝染させる可能性があります。地理的な場所や種に応じて、暴露された疾患はさまざまです。東部ウマ脳炎ウイルス(EEEV)や西ナイルウイルス(WNV)などのアルボウイルス、ライム病や結核を含むダニ媒介性疾患、Q発熱や結核を引き起こす細菌、感染性プリオンなど、少数の危険が考えられる1,2,3.
これらの方法の目的は、電動工具や鋸4、5とは異なり、エアロゾル化の可能性を最小限に抑える器具を使用して、安全で効率的な壊死技術を実証することです。一般的に、狂犬病実験室の小動物の壊死は、頭蓋の筋肉を切り取り、ハンマーとノミを使用してカルバリウム6の後部を開く必要があります。カルバリウムのこの領域を削除すると、小脳全体と頭蓋脳幹を含む後頭脳が露出します。改変された壊死技術は、頭蓋骨の大きな頭蓋筋および頭蓋骨の厚い領域を避け、頭蓋骨の腹部部で行われる。しかし、これらの改変された壊死技術は、検体が頸椎を持たない場合にのみ可能である。
同様に、大型動物の脳組織は、頭蓋筋を分離し、頭蓋骨7の口腔後部を開くことによって除去することができる。大きな動物の頭蓋骨は一般的に厚いので、小脳と脳幹を露出させるには相当な努力が必要です。頭蓋骨の貫通を避けるために、大きな動物の頭部は、頭蓋骨のベントロカドーマル部分が技術者に直面するように配置されます。修飾された器具を使用して、小脳と脳幹は、前頭マグナムを介して除去されます。これは、透過性海綿状脳症(TSE)調査8のTSE欧州連合リファレンスラボが推奨するサンプル取得方法に類似しています。頭蓋椎は、前頭骨マグナムへのアクセスを提供するために、事前に除去する必要があります。
これらの技術の適用は狂犬病の実験室で適切に訓練された技術者に有益である。狂犬病の実験室は、若年性コウモリから成人ドラフト馬9まで、様々なサイズのサンプルを受け取るように、技術者は、個々の状況に基づいてから選択するいくつかの方法を持っています。大型動物に対して実証された方法は、狂犬病検査のために大型動物の頭部全体を出荷することは面倒で高価であるため、現場で壊死を行う獣医師にも適しています。これらの技術のいずれかを実装すると、エアロゾル生産の可能性を減少させることによって安全性を向上させ、試料の取り扱いを減らし、処理時間を節約します。しかし、狂犬病検査専用の実験室と同じ利点を持たないため、これらの手順に加え、特に個人用保護具(PPE)の使用に焦点を当てることは不可欠です。

<table><tbody><tr><td>化学スプーン</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>任意の湾曲した、鋭く鈍いマヨネーズはさみ</td><td>Sklar</td><td>14-2055</td><td>Sklar 手術用はさみ 5-1/2 インチ プレミアム OR グレード ステンレス鋼 指輪ハンドル 湾曲したシャープ/ブラント</td></tr><tr><td>大きくて鋭いレストラン品質のカービング ナイフ</td><td>デクスター</td><td>P94848</td><td>8 インチ スカラップ ユーティリティ ナイフ、白いハンドル</td></tr><tr><td>腫瘍テナキュラ</td><td>ダイヤモンド サイエンティフィック外科</td><td>N/A</td><td>ツェルニー テナキュラム フォーセプ</td></tr><tr><td>モディファイド スティレット ナイフ (6.5 インチ ロング ブレード カービング ナイフ 0.5 インチ幅に研磨)</td> <td>デクスター</td><td>P94848</td><td>モディファイド 8 インチ スカラップ ユーティリティ ナイフ、ホワイト ハンドル</td></tr><tr><td>整形外科用マレット ハンマー</td><td>Mortech</td><td>N/A</td><td>フック付き</td></tr><tr><td>シャープ 市会議員 整形外科用骨ノミ</td><td>シャンドン</td><td>60-5</td><td>市会議員のノミ刃:2インチx 2.25インチ標準7インチ</td></tr>シャープ<tr><td>な大さじまたはその他の長い柄のスプーン</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>歯のない滑らかな先端のティッシュドレッシング鉗子</td><td>シャンドン</td><td>63-03</td>シャン<td>ドンブロードポイントドレッシング親指鉗子</td></tr><tr><td>パウダーフリーの非ラテックス手袋</td><td>安全</td><td></td><td></td></tr><tr><td>メガネ、ゴーグル、フェイスシールド</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>手術またはN-95マスク</td><td>任意の</td><td></td><td></td></tr><tr><td>クラフト紙、ブッチャーペーパー、吸収パッドなど</td><td>任意の</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

大小動物における狂犬病壊死技術

Rabies Necropsy Techniques in Large and Small Animals

ニューヨーク州保健省(NYSDOH)狂犬病研究所は、毎年6,000~9,000検体を受け取り、ニューヨーク市を除き、州全体で狂犬病検査を行っています。狂犬病の実験室は、コウモリからボビッドに至るまで、様々な動物を壊作します。これらの標本のほとんどは神経学的徴候を示す動物ですが、狂犬病の陽性を実際にテストする10%未満です。これらの症状の原因として外傷、病変または他の感染因子を暗示する。診断されていない感染剤をエアロゾル化するリスクがあるため、狂犬病研究所は電動工具や鋸を使用していません。頭蓋骨がはさみで不可解な動物のために3つの壊死の技術が提示されます。実験室は、感染剤への潜在的な暴露を減らし、標本の不必要な操作を排除し、処理時間を短縮するためにこれらの技術を実装しています。他とは対照的に好ましい技術の利点は、試料を処理する訓練を受けた個々の処理に従う。

2019年1月31日から2019年2月28日の間に頭蓋骨で提出されたすべての地上サンプルには、首の存在と壊死の方法に関する情報が含まれていました。その間、170頭が18種を表して壊死させた。52%(89/170)が適切に切断された。残りの骨は、3つの全身標本を含む少なくとも1つの椎骨を取り付けていた。腹部法は、当時の75%(128/170)を用いたもので、そのうち、首は49に存在していた。首で提出された標本は、可能な限り腹部法を可能にするために壊死中に除去されます。3匹の大型動物(牛、鹿、豚)が提出され、2例で大型動物プロトコルが使用された。余分な脳組織サンプルが追加のテストのために必要とされたので、大規模な動物プロトコルは豚に使用されませんでした。リスは砕いた頭蓋骨で提出され、単に皮膚露出した脳組織を切り取っただけで、上記の方法はいずれも使用されなかった(表1)。
新鮮な無傷の提出では、すべての3つの方法は、信頼性の...

このプロトコルの目的は、狂犬病検査のための満足のいく組織サンプルを得るために、小動物および大型動物における安全な壊死技術を実証することである。

The New York State Department of Health (NYSDOH) Rabies Laboratory receives between 6,000 to 9,000 specimens annually and performs rabies testing for the ...

狂犬病検査のための組織コレクションは、明らかな危険性と明らかな危険性の両方を持っています。技術者は、利用可能な最も安全な方法を使用し、適切な個人用保護具を着用する必要があります。これらのプロトコルは、電動工具やのこぎりを使用せずに安全な壊死技術を提供し、エアロゾルの生産を最小限に抑えます。大きな動物のプロトコルはまた、フィールドで行うことができます。大きな動物のサンプルの検索方法を使用して、実験室に45キロ以上の重量を量る動物の頭部を輸送する挑戦を排除する。大きな動物法は、透過性海綿状脳症サンプル検索のためのヨーロッパのプロトコルに似ており、脳幹および小脳を使用して任意の調査に使用することができます。腹側法によって小脳と脳幹を取り出すために、検体腹側を、バイオセーフティキャビネットの背面に向かって鼻を遠く向けて上に置く。支配的な手に整形外科のマレットを持ち、一方で議員のノミを持ち、側頭骨と後頭部の右側と後頭部の間のV字型開口部のノミに角を合わせ、45度の角度でノミを配置する。2つの骨が分離するまで、マレットでノミの上部を打ちます。そして、基礎フェノイド骨に隣接してカットを行います。ちょうど実証したように、標本の左側の側頭骨と後頭部骨を分離する。そして、頭蓋のV領域を下に曲げ、脳の菱形領域全体を露出させるためにチゼルを使用します。その後、はさみと鉗子を使用して脳幹と小脳をすくい取り、必要に応じて頭蓋骨から残りの組織片を取り除きます。検体が腹側の検索を許可しない場合は、鼻がバイオセーフティキャビネットの背面に向かって遠位に向けられたサンプルを背側に取り出す。そして、腫瘍テナキュラを使用して、テナキュラの歯で左側頭筋を把握する。ハンドルを絞って組織の周りの歯をロックし、鋭利な彫刻ナイフを使用して側頭筋を骨まで切り下ろします。テナキュラとナイフで標本を180度回転させ、反対側の側頭筋の切開を繰り返して頭蓋骨を露出させる。頭を元の方向に戻し、頭頂骨と直腸骨の分岐点で頭蓋骨の中心にあるノミを角をポイントした45度の角度でノミを配置します。そして、頭頂骨の頭蓋骨の上半分に水平開口部が作られるまで、マレットでノミの上部を打ちます。標本を180度回転させ、ちょうど示したように頭蓋骨の反対側に開口部を作ります。必要に応じて頭を位置に、最初のカットの端に90度の角度でノミを挿入し、開口部が後頭部の骨に到達するまで、チゼルを打ちます。同じように、試料を転がして反対側の後頭骨に開口部を作ります。頭蓋骨の開口部は逆さまのU.逆さまに似ているはずです。テナキュラの歯をあなたの底の頭蓋骨に挿入し、骨を後ろ向きに引っ張って大脳と小脳の尾端を露出させます。その後、空洞内から小脳全体を詮索するためにスクープとしてはさみを使用してください。そして、組織鉗子を使用して、前衛から脳幹をいじめます。大きな動物小脳および脳幹の検索のために、頭蓋骨の後ろ側部分が壊死表面に接触するように標本を配置する。頭蓋骨と前門マグナムの尾部は、バイオセーフティキャビネットの前面に面しています。鉗子で脳幹をつかみます。脊髄と脊髄の間の奥頭に修正されたスティレットナイフを挿入し、脊髄の周りを精査して小脳と脳幹を脊髄髄から分離する。次に、鉗子で前衛から茎を引き出します。ナイフが孔マグナムを通して挿入されたら、可能な限り頭蓋骨に沿って従うように刃を穏やかに角度付けし、神経組織と脊髄の髄の間の空間に脳の下に到達するのに十分な長いハンドルを持つ金属へらを挿入します。小脳の周りをプローブし、脊髄髄との接続が切断されていることを確認します。髄が完全に切断されると、小脳をすくい上げるために、ヘラ・ロストリーとドールを進める。その後、へらで小脳をすくい取ります。2019年1月31日から2月28日の間に頭蓋骨で提出されたすべての陸上サンプルは、首の存在と壊死の方法に関する情報を収集しました。その間、170頭が18種を代表して壊死した。52%が適切に首を切られた。残りは、3つの全身標本を含む少なくとも1つの椎骨が付着していた。腹側法は75%の時間を用いた。そのうち、首は49に存在していた。3つの大きな動物が提出され、2つのケースでは、大きな動物のプロトコルが使用されました。1匹のリスが破砕された頭蓋骨で提出され、単に皮膚を切り取って脳組織を露出させたので、実証された方法はいずれも使用されませんでした。顕微鏡スライドを作るために使用される組織や、複数の動物を処理する際に分子法から抽出された組織は、新しい手袋器具とクリーンな作業領域を使用して交差汚染を回避します。これらのプロトコルを実施する際には、狂犬病ウイルスや他の人獣共通感染症に感染する場合があるため、注意が必要です。また、試料内に鋭利な物体が存在する場合があることに注意してください。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

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狂犬病ウイルス抗原検出のための免疫組織化学染色

このプロトコルは、大型動物の同定と家畜、野生動物、アプローチをサンプリングからリンパ節の切除の手順を含むリンパ節組織のトランスクリプトームのプロファイルの RNA の隔離のための手順の概要を提供します回収後保存と RNA...

コレクションと RNA 解析のための大型動物からリンパ節の処理: リンパ節トランスクリプトーム研究大型動物種のための準備

溶媒除去された器官の究極の3Dイメージングのような新しい、免疫染色互換組織クリアリング技術は、狂犬病ウイルス脳感染症とその複雑な細胞環境の3D可視化を可能にします。厚い、抗体標識された脳組織スライスは、画像深さを高め、共焦点レーザー走査顕微鏡による3D解析を可能にするために光学的に透明に作られています。...

溶媒クリア脳組織における狂犬病ウイルス感染の高解像度3Dイメージング

直接急速免疫組織化学検査(DRIT)は、狂犬病診断のための直接蛍光抗体(DFA)検査に代わる世界動物衛生・世界保健機関(OIE/WHO)に代わる方法を提供しています。このテストは軽い顕微鏡を使用して脳の印象に約1時間で行うことができる分野ベースの適用を可能にする。...

直接急速な免疫組織化学試験を用いた狂犬病サーベイランスの強化

このプロトコルは、台湾のコウモリにおけるリッサウイルス抗原の診断試験のための標準的な実験室操作手順を導入する。...

台湾におけるコウモリ集団のリッサウイルスサーベイランスに関する標準的な手術手順

汎オーストラリアコウモリリッサウイルス入れ子逆転写ポリメラーゼ連鎖反応は、すべての既知の lyssaviruses...

Lyssaviruses の検出のための普遍的な入れ子逆転写ポリメラーゼ連鎖反応の評価

脳生検サンプリングから最終解釈まで、迅速な免疫クロマトグラフィー診断検査(RIDT)を用いて、現場条件下での動物狂犬病の死後診断のための完全なプロトコルを提示する。また、分子解析やウイルス遺伝子作成用の装置を用いたさらなる応用についても説明する。...

フィールド死後狂犬病は、さらなる分子用途を用いた資源限定設定のための迅速な免疫クロマトグラフィー診断試験

各種牛脳構造における狂犬病ウイルスの定量

このプロトコルは、一部の非狂犬病リッサウイルスおよびラゴモルフのアッセイ性能を改善するためのプライマー配列および製剤の更新を含む、組織収集から結果の解釈までの汎リッサウイルスLN34リアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)アッセイを実証しています。また、シングルウェルLN34マルチプレックス(LN34M)フォーマットのアッセイセットアップのデモも行います。...

更新されたマルチプレックスLN34リアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応アッセイによる動物の狂犬病の死後診断

学ぶ狂犬病検査のための安全な壊死技術。大小動物から脳幹と小脳を採取し、エアロゾル発生を最小限に抑える方法を解説。現場での適用も可能なプロトコルで、技術者のリスクを低減します。

大小動物における狂犬病壊死技術

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