Name: 生きたマウスにおける後部海馬CA1の縦方向2光子イメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-06-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: 学ぶ 生きたマウスの後部海馬CA1における縦方向2光子イメージング法。ミクロメートルレベルの解像度で神経細胞の構造的可塑性と活動誘発可塑性を数週間にわたり観察し、記憶形成と想起のメカニズムを解明する。

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U. A. F. はシュラム財団によって支援されています。C.W. T. P. と W. G. はマックス・プランク・ソサエティによって支援されています。L.Y.とR.Y.は、マックスプランク協会と国立衛生研究所(R01MH080047、1DP1NS096787)によってサポートされています。A. C. 欧州研究評議会、ERANETおよびI-COREプログラム、イスラエル保健省のチーフサイエンティストオフィス、連邦教育省、ロベルトとレナータ・ルーマン、ブルーノとシモーネ・リッチからのFP7助成金によってサポートされています。ネラとレオン・ベノジヨ神経疾患センター、ヘンリー・チャノック・クレンター生物医学イメージング・ゲノミクス研究所、イスラエル科学財団パールマン・ファミリー、アデリス、マーク・ベセン、プラット、アーヴィング・I・モスコウィッツ財団。A. A. マックス・プランク・ソサエティ、シュラム財団、ドイツ・フォルシュンゲミンシャフト(DFG)が支援しています。3P画像は、マックスプランクフロリダ神経科学研究所の神経イメージング技術の高度なコース中に取得されました.神経イメージング技術の高度なコースは、マックスプランク協会、フロリダ州マックスプランク科学フェローシッププログラムとマックスプランクフロリダ研究所株式会社パートナーシッププログラムによってサポートされています。コース中に2P/3Pイメージングシステムのサポートと機器を提供してくださったThorlabs、コヒーレント、スペクトル物理学に感謝します。また、ヘンリー・ヘーバールとメリッサ・エバールがコース中にシステムを支援してくれたことに感謝しています。

記載されているすべての方法は、アッパーバイエルン州政府(ライセンス2016_ROB-55.2Vet-2532.Vet_02-16-48)とスタンフォードとマックスプランクフロリダ研究所の実験室動物ケアに関する神経科学行政パネルによって承認されています。
1. イメージングカニューレの調製
<ol><li>可動定規テーブルに付属のドリルスタンドに精密ドリルを保持します。</li>
	<li>3.0 mm の直径のステンレス鋼チューブを可動定規テーブルにクランプします。</li>
	<li>チューブを長さ1.6mmの金属リングに切り取る。切断後にリングの端が鈍くない場合は、凹凸をファイルします。</li>
	<li>金属リングと円形の4mm径ガラスカバーを100%アセトンですすり、5分間乾燥させます。</li>
	<li>金属リングとガラスカバーをステレオスコープの下の滑らかで均一で清潔な作業場所に置きます。</li>
	<li>ペトリ皿などの滑らかな表面にUV硬化光学接着剤の滴を置きます。針またはへらを使用して接着剤を広げるのは、薄い(<0.5 mm)層を形成します。</li>
	<li>金属リングの片側を接着剤に浸すには鉗子を使用します。リングの内側を密封しないように特に注意してください。この場合は、針を使用してリングの光学接着剤を壊します。</li>
	<li>ステレオスコープを使用して、ガラスカバーの中央に金属リングを配置し、カバースリップに触れる接着剤で覆われたリングの側面にスリップします。接着剤の薄いリングは、金属リングとカバースリップの間の界面で形成する必要があります。カバースリップの中心に接着剤が広がらないようにしてください。</li>
	<li>UV硬化LEDドライバユニットの電源を入れ、光光(365nm)を1分間点灯します。 注意:紫外線は皮膚の火傷を引き起こし、変異型の薬剤である。紫外線を防ぐメガネを着用し、手袋とラボコートで手や腕を覆い、皮膚への露出を避けます。</li>
	<li>接着剤を均等に硬化させるには、光源の方向を変更してリングのすべての側面が均等に照らされていることを確認します。</li>
	<li>接着剤を少なくとも2時間、好ましくは一晩硬化させます。</li>
	<li>金属リングの開いた端からカニューレをヘモスタットでしっかりと保持します。回転ファイルを取り付け、ステレオスコープの下で作業する歯科用ドリルを使用して、リングの側面と同じになるまで余分なガラスカバースリップをオフにファイルします(図1A)。</li>
</ol>2. 後部海馬上のイメージングカニューレの移植
<ol><li>設備の準備とセットアップ
	<ol>
<li>すべての外科用器具が清潔で無菌であることを確認してください。殺菌にガラスビーズ殺菌器を使用する場合は、器具をきれいにし、使用前に10分間殺菌器(250°Cに設定)に入れます。または、使用前に機器をオートクレーブします。</li>
		<li>手術に必要なすべての材料と手術器具を準備し、容易に到達できるようにします。</li>
		<li>鎮痛剤や抗炎症薬などの十分な新しく調理された薬があることを確認してください。</li>
		<li>手術の全期間(手術につき約1時間)に十分なイソファランがあることを確認してください。</li>
		<li>加熱カーペットの電源を入れ、麻酔下で動物の温度を安定させるために37°Cに設定します。</li>
		<li>イソファランの清掃システムが機能していることを確認します。</li>
		<li>酸素の流れの弁を開く。</li>
	</ol></li>
	<li>麻酔誘導と動物固定
	<ol>
<li>マウスを麻酔誘導室に3%のイソファルランを1L/min O2に入れ、意識を失うまで待ちます。つま先ピンチ反射試験を用いて麻酔を評価する。</li>
		<li>動物の体重を量る。</li>
		<li>抗炎症剤(メロキシカム、1mg/Kg)および疼痛キラー(ベタルギン、200mg/kg)薬を皮下に塗布する。</li>
		<li>暖房カーペットの上にマウスを置きます。熱火傷を避けるために、動物が暖房カーペットと直接接触していないことを確認してください。</li>
		<li>頭部を立体装置に固定し、鼻を覆うノーズコーンを置きます。麻酔を維持するために、イソファルランを1.5-2%に減少させる。手術を通して、呼吸を視覚的に監視し、つま先のピンチ反射をテストすることによって、マウスの状態を監視します。必要に応じてイソファランのパーセンテージを調整します。</li>
		<li>脱水症状や潜在的な失明を防ぐために、眼科のチントを目に当ててください。 注:麻酔や動物の薬のために、代替方法と薬物が可能です。動物免許と相対文献をご参照ください。</li>
	</ol></li>
	<li>光学カニューレ注入
	<ol><li>光ファイバ光源をオンにします。</li>
		<li>毛を取り除き、マウスの頭の上に皮膚を消毒します。</li>
		<li>はさみと鉗子を使用して、マウスの頭皮を取り除きます。ラムダに近い位置に頭皮に小さなカットを行うことによって開始します。両側に頭皮を開いて続けます。まず耳の方向に横方向に移動し、次いで、眼窩の方向に、矢状軸上に三角形を形成し、約4mmのrostralをブレグマにする。耳や目に近づきすぎないように注意してくださいが、ブレグマとラムダ、頭蓋骨と前頭骨の後半分を露出します。</li>
		<li>頭蓋骨にリドカイン1滴(アルコール中28.9%v/v)を塗布する。</li>
		<li>骨膜を取り除き、綿棒を使って頭蓋骨を乾かします。</li>
		<li>イヤーバーを置き、マウスヘッドを固定します。</li>
		<li>0.5 mm 幅のバリを持つマイクロドリルを使用して、小さな開頭術を行います。画像化された海馬の反対側の前頭骨に穴を開け、矢状縫合糸から約1.5mm、冠状縫合糸から2mm離れた位置に配置します。</li>
		<li>幅 0.86 mm のステンレス鋼の骨ねじを頭蓋骨の穴にねじ込みます。</li>
		<li>必要に応じて、破片をきれいにし、頭蓋骨を乾燥させます。</li>
		<li>迅速な接着剤セメントの混合物の調製
		<ol>
<li>小さなスプーン(直径4.5mm)を使用して、L粉末の1-1.5レベルのスクープを混合によく分配します。</li>
			<li>クイックベースの3-4滴を井戸に分配します。</li>
			<li>ユニバーサル触媒を1滴の井戸に分配します。</li>
			<li>精密アプリケーターを使用して5-10sのミックスをかき混ぜます。 注:代替セメントが利用可能です。製造元の指示を参照してください。</li>
		</ol></li>
		<li>精密アプリケーターを使用して、頭蓋骨、ネジ、周囲の皮膚の上に迅速な接着剤セメントを適用します。30~1分間乾燥させます。</li>
		<li>直径3.0mmのトレフィンドリルを使用して、頭頂部骨に開頭術を施します。矢状縫合糸から約1.5mm離れた穴と、ラムドイド縫合糸から2mm離れた穴を配置します。</li>
		<li>骨のフラップを慎重に取り外します。</li>
		<li>カニューレを使用して開頭術のサイズを確認し、それが適合することを確認します。必要に応じて、0.5 mm または 0.9 mm 幅のマイクロドリルを使用して、頭蓋を拡大します。</li>
		<li>デュモン鉗子を使用して髄膜を取り除く。</li>
		<li>皮質物質をアブレートし、外部カプセルに到達する。真空ポンプに接続された直径0.9mm(19ゲージ)の鈍い針を使用します。露出した組織の脱水を避け、出血が解決した後に残留血液を洗い流すために生理食生理食を用いて灌漑する。皮質組織をゆっくりと吸引し、一度に≥50〜100μm、皮質がカプセルから切り離されるまで、皮質またはコーパスカロスムの繊維を露出させる。目詰まりを防ぐために、針を頻繁に交換してください。</li>
		<li>繊維は主に3方向に伸びる(図1B)。最も深い繊維(海馬の静脈)が露出するまで、背面繊維を慎重に剥離します。</li>
		<li>生理生理生理で組織をすすいで下す。薄い鉗子を使用して、底のカニューレを生理生理生理に浸し、頭蓋骨の穴の上に置きます。カニューレと組織は、カニューレと組織の間の気泡を捕捉しないように生理食生によって密封されなければならない。</li>
		<li>ガラスカバースリップが繊維に接触するまで、カニューレを頭蓋骨(図1C)に押し込みます。</li>
		<li>吸収三角形、綿棒および/または真空ポンプを使用して頭蓋骨をよく乾燥させます。</li>
		<li>迅速な接着剤セメントの混合物の調製(手順 2.3.10 を参照してください)。</li>
		<li>頭蓋骨の上に迅速な接着剤セメントを適用するために精密アプリケータを使用してください。カニューレの縁にも接着剤を塗布します。接着剤がカニューレに流れ込まないよう注意してください。30~1分間乾燥させます。</li>
		<li>ステレオタックスアームを使用して、頭蓋骨に接触してカニューレの上にヘッドホルダープレートを配置します。</li>
		<li>歯科アクリルの混合物の調製
		<ol>
<li>スプーン(直径9mm)を使用して、粉末の1レベルスクープ(1部)をよく混合します。</li>
			<li>同じ井戸に液体の2-3部分を分配します。粉末全体を液体で覆います。</li>
			<li>へらを使って1分間かき混ぜる。 注:代替アクリルが利用可能です。製造元の指示を参照してください。</li>
		</ol></li>
		<li>頭蓋骨全体にアクリルを適用するには、へらや精密アプリケーターを使用してください。露出した頭蓋骨、ネジ、開いている皮膚全体を歯科用アクリルで覆います。これにより、準備が安定します。アクリルは、首、耳、目を実行させないようにしてください。</li>
		<li>アクリルを乾燥させ、約15分間硬化させます。</li>
		<li>取り外し可能な粘着フィルムをヘッドホルダープレートに貼り付け、破片がカニューレに入るのを防ぎます。フィルムサイズはプレートのサイズと一致することをお勧めします。</li>
		<li>イソフランの流れをオフにし、定位装置から動物を取り除き、麻酔から目を覚ます間、生理体温を維持するために加熱板の上に置きます。</li>
		<li>それは胸骨の回復を維持するために十分な意識を取り戻すまで、動物を監視します。</li>
		<li>完全に回復した場合にのみ、他の動物の会社に手術を受けた動物を返却してください。</li>
	</ol></li>
</ol>3. 術後ケア
<ol><li>体重と一般的な行動を監視することにより、手術後2日間のマウスの状態を確認します。</li>
	<li>抗炎症剤(メロキシカム、1mg/Kg)および疼痛キラー(Vetalgin、200mg/kg)を手術後2日間皮下に塗布する 注:代替モニタリング手順、薬物および投与量は術後ケアのために可能である。動物免許と相対文献をご参照ください。</li>
</ol>4. イメージングセッションの準備
<ol><li>事前にイメージング設定をオンにし、必要に応じてレーザーをウォームアップして安定させましょう。</li>
	<li>マウスを麻酔する(ステップ2.2.1を参照)。</li>
	<li>鉗子を使用して、ヘッドホルダープレートから粘着フィルムを慎重に取り外します。マウスを手に持ち、ヘッドホルダープレートを指で持ちます。フィルムを穏やかに取り外し、調製を損なうことを避ける。</li>
	<li>顕微鏡の下にマウスを置き、加熱カーペットの上に置き、ヘッドプレートをホルダー(図1D)に固定します。</li>
	<li>鼻を覆う鼻を覆うノーズコーンを置き、イソファランを1.5-2%に減らす。</li>
	<li>マウスの目に眼科のチントを適用します。</li>
	<li>脱イオン水で洗い流してイメージングカニューレをきれいにします。注射器と細い針を使用してカニューレと真空ポンプに水を落とし、それを取り除きます。</li>
</ol>5. イメージングセッション
<ol><li>低倍率、長時間の作業距離の目標を使用して、カニューレの残留水、汚れ、完全性、蛍光の有無を視覚的に確認します。</li>
	<li>ヘッドホルダーアームの角度を調整して、カニューレを視視軸に合わせます。</li>
	<li>25X 1.0 NA、4 mm WD または 40X 0.8 NA、3 mm WD、水浸しの目的に切り替えます。カニューレを満たし、カニューレの上に余分な水を維持するのに十分な脱イオン水を追加します。気泡の形成を避けてください。</li>
	<li>2P励起信号と画像蛍光信号を使用します。 注: イメージング プロトコルは、イメージ化する時間と空間スケールに大きく依存します。この記事に示すイメージの作成に使用したイメージング設定の詳細については、代表的な結果と説明を参照してください。</li>
</ol>

著者は何も開示していない。

ここで、生きているマウスにおける後部CA1の2P撮像を繰り返す手順について説明する。手術後、マウスは通常2日以内に回復する。手順は、最小限のアストログリオシス26、43を誘発する。手術後に起こる出血および上皮は、通常10〜14日以内に再吸着される。一般に、移植後14日目以降の調製物は、インビタルイメージングを行うのに十分に明らかである。外科の成功は無菌の環境で働くにかかっている。しかし、手術に関連する感染症による合併症を避けるためには、高い衛生状態を維持することが重要です。これは、手術の前後に手術器具を細心の注意を払って洗浄し、各使用の直前に熱殺菌することによって得られます(ステップ2.1.1)。光学カニューレはきれいな、殺菌された容器に保たれ、注入の直前に無菌生理生理ですすいですすいだ。手の消毒と外科ステーションのクリーニングの一般的な外科的慣行を行うことも非常に重要です。調製は安定したままで、数週間26、35の細胞および細胞内分解能イメージングを可能にする。
重要な手順、変更、トラブルシューティング。
最も深い繊維が露出するまで、外部カプセルを剥離することが重要です。3-または4mm WDで商用目的を使用する場合、PNのソマに焦点を当てることができない場合や、解像度の低下画像樹状脊椎に焦点を当てることができない可能性があります。この目的のために、0.9 mmの直径の針を使用してネオコルテックスを非常にゆっくりとアブレートし、最も後部繊維を取り除くとき吸引のより細かい制御のための0.3-0.5 mmの直径(24-29ゲージ)の針に切り替えると有用である。あるいは、微細鉗子は、繊維曝露36後に残りの皮質を除去するために使用されてもよい。
手術中の出血は、血液が視界を妨げるので、問題を引き起こす可能性があります。血栓が形成され、残りの血液を洗い流すために生理生理生ですすいでお勧めします。必要に応じて繰り返します。
カニューレと開頭術の間にぴったりフィットは、特にカニューレの外縁が頭蓋骨と同じである場合は、セメントの塗布前にカニューレを所定の位置に保つことによって、調製の安定性を高めるのに役立ちます。トレフィンドリルとカニューレのサイズが一致しているため、カニューレの側面の凹凸(ステップ2.3.14を参照)または不規則な開頭術を必要とするカニューレの側面の凹凸のために緩いフィット感が生じる可能性があります。カニューレの不規則性は(ステップ1.3および1.12)オフに提出しなければならず、トレフィンは頭蓋切開が完了するまで頭蓋骨に垂直に保持されなければならない(ステップ2.3.12)。頭蓋切開術が完了する前に頭蓋骨からトレフィンを取り除くと、不規則な頭蓋切開が起こり得る。
制限事項 -調製の侵襲性および安定性。
皮質切除の効果を評価することは困難であり、直接的および間接的に影響を受ける領域を正確に定義することは困難です。一般に、手術は頭頂皮質の一部および視覚および後肢感覚皮質21の一部を取り除く。海馬に直接突出する皮質と海馬組織は触れられず、負傷もしない。重要なことに、イメージングカニューレの移植は海馬機能を大きく変えないことが示されており、特に海馬依存型学習21、36、37、38、 39.それでも、カニューレとインプラントの外部(ヘッドホルダープレートと歯科アクリルキャップ)の両方がコルチコステロン血中濃度と副腎体重を評価することによって慢性的なストレッサーであるかを定量化することが重要です。未移植マウス。
準備は一般的に週から数ヶ月26まで安定したままです.長期的には、皮膚および骨の成長は、アクリルキャップを置き換え、イメージング製剤の不安定性を増加させる傾向がある。
光学的な制限。
従来の2P顕微鏡検査は、新生物組織40、41に深さ約1mmまでのイメージングを可能にする。これと一致して、SR(図2D-F)またはSLM36に位置する樹状脊椎および樹状脊椎を画像化することができる。しかし、カニューレを介したイメージングは、有効なNAに制限をもたらす。最大解像度を達成するためには、イメージングカニューレの直径と深さは、より小さな直径と長い深さが高いNA目的の光をクリップするように、イメージングNAと一致する必要があります。例えば、1.6mmの長さのカニューレを通して1.0 NAの水浸しの目的でイメージを撮影する場合、完全なNAを維持するために3.65 mmの内径が必要です。しかし、この直径のカニューレを使用すると海馬の圧縮が増加し、組織の健康に影響を与える可能性があり、このため、我々は、より小さな直径を持つカニューレを使用します。長さ1.6mmのカニューレを通して0.8 NAの水浸漬目的でイメージングする場合、内径は2.5mmで完全なNAを維持するのに十分です。しかし、0.8 NAの水浸しの目的は、SPでの焦点を合わせるのを防ぐことができる短いWD(私たちの場合は3ミリメートル)を持っています。
これらの計算は、カニューレの下部にある視野の中心に適用されます。しかし、画像化視野をカニューレの縁に近づけるか、組織に深く焦点を合わせると、カニューレのガラス表面から遠く離れた場所に移動すると、焦点面での有効なNAがさらに低下し、解像度が低下します。これは、画像化された組織の異なる容積にわたって非均質な分解能につながり、特に2P-STED顕微鏡検査42などの超分解能技術を使用する場合、細胞内分解能での定量イメージングの懸念となりうる。これらの問題は、細胞分解能でイメージングする場合にはそれほど重要ではありません。
ティッシュモーション。
麻酔動物の呼吸と心拍に起因する組織内の運動は、イメージングカニューレからの距離が増加すると、より重篤になる傾向がある。これは、イメージングカニューレが脳に機械的圧力を加え、カニューレ付近の運動の一部を打ち消す(新生児製剤と同様に)ためである。したがって、SRおよびSLMでは樹状脊椎のイメージングが可能であるが、我々の手の中では、カニューレの表面から最大200μmまでのSOに対して最も堅牢な背部である。動きを補正するために、共振スキャナとオフライン平均を使用します。Z スタックのイメージ プレーンごとに、使用可能な最大速度 (30 フレーム/秒) で複数の画像 (4 ~ 6 回の繰り返し) が取得されます。各Z平面のすべての繰り返しは、(商用ソフトウェア、AutoQuantを使用して)デコンボルブされ、登録(ImageJを使用)、単一の画像26に平均化される。ソマタのイメージングでは、麻酔35では運動が無視されることが多く、2つの平均値が運動アーティファクトを補正するのに十分であることがよくあります。
メソッドの将来のアプリケーションまたは方向. 
調製物は、マイクロ内視鏡26、43と組み合わせることができる。マイクロ内視鏡は、深部組織18との間で光を導くために勾配屈折率(GRIN)マイクロレンズを使用する剛性光学プローブです。マイクロ内視鏡の使用はより小さい直径のカニューレ、あるいは全くカニューレを可能にする。しかし、市販のマイクロ内視鏡は、光学収差に対してあまりよく補正され、商業的な目的よりもNAが低い。現在のプローブは、横および軸の解像度に達します ≥0.6-1 μm, ≥10-12 μm, それぞれ17,18,44.マイクロ内視鏡の使用はまた頭部取付けされた統合された広視野顕微鏡45、46、47とのこの準備の組合せを可能にする。
この方法は、非麻酔マウスにおいても使用するように自ら貸し出し、および覚醒ヘッド固定マウス21、37、48、49におけるCa2+センサを用いて細胞活動を調製するために使用されている。これらの場合、蛍光変化の速い時間スケールのために、ライン登録50を実施することをお勧めします。また、歯状ジャイル(DG)39、51、52などの他の海馬サブ領域の撮像のための調製物を適応させることも可能である。この調製物を3P励起53、54、1MHz周波パルスレーザーで1400nmに調整し、分子層、顆粒細胞層及び造粒細胞層及び及び1400nmに到達する海馬形成をより深く画像化することができた。オーバーレイ CA1 を取り外すことなく DG (図4) の hilus。
結論として,後部海馬への光学的アクセスを提供し,海馬の構造と活動のダイナミクスの縦方向および相関的研究を可能にする方法を提示する.この技術は、生理的および病理学的条件下での海馬機能の分析の可能性を拡張する。

哺乳類では、海馬はエピソード記憶の符号化とリコール、ならびに空間ナビゲーション1、2、3、4のための主要な脳領域である。このため、海馬は、脳が記憶5、6、7をエンコードして記憶を呼び出したり、環境8をナビゲートすることを可能にする基本的なメカニズムを研究するための非常に重要なモデルです。 、9報酬を収集し、危険を回避します。さらに、海馬形成は、げっ歯類10、11、およびおそらくヒト12、13の生涯を通じて新しいニューロンが生成される脳領域の一つである。最後に、海馬形成の変性または障害は、アルツハイマー病14を含む神経学的および精神疾患に関連している。
マウスでは、海馬は脳表面15の約1mm下に位置する。その位置は、無傷の脳内の光学アクセスを妨げ、その結果、海馬ダイナミクスの縦方向の研究は、主に磁気共鳴(MR)イメージング、電気生理学、およびex vivoイメージング分析に依存してきました。MRイメージング法は、同じ動物における生物学的プロセス(例えば、遺伝子発現変化16)を複数日にわたって追跡することを可能にするが、単一ニューロンを判別する空間分解能を欠いている。生体内電気生理学的技術の古典的なは、膜電位の変化に非常に高い時間分解能と絶妙な感度を提供します。しかし、空間分解能は限られており、長期間にわたって同じセルを確実に追跡する能力がありません。光学イメージングは、その高い時間的および空間的分解能のおかげで、より多様なプロセスを研究することができます。しかし、ex vivoイメージングは進行中のプロセスのスナップショットのみを提供するため、動物が情報を学習してリコールする縦方向の研究には適していません。
インビボ光学イメージングは、MRイメージングと電気生理学のいくつかの利点と光学イメージングの利点を兼ね備えています。したがって、マウスの脳のダイナミクスと行動の縦方向および相関解析に非常に適しています。これは、非常に速い(ミリ秒から秒)または非常に遅い(数日から数週間)時間スケールを持つ生物学的プロセスの研究に関連しています。神経科学に関連するそのようなプロセスの例は、膜電圧ダイナミクス、Ca2+過渡、細胞可塑性および構造変化であり、これらはすべて記憶形成およびリコールにとって非常に重要であると考えられている。異なる方法は、後部海馬18、19、20、21、22に生体内イメージングで拡張されています。急性製剤は、ピラミッド型ニューロン(PN)活性ならびにその樹状突起および樹状脊椎の追跡を数時間20、22時間可能にした。しかし、この時間的な時間枠では、段階的な学習の根本にある長期的な構造変化を研究することはできません。慢性的な製剤 - マイクロ内視鏡23、24または長い作業距離(WD)標準顕微鏡目標21との組み合わせで- いくつかの上の後部海馬の繰り返しイメージングを可能にしました週間。
ここでは、永久に挿入されたイメージングカニューレを用いて生きているマウスの後部海馬のCA1サブフィールドへの再発光学アクセスを提供する慢性的な製剤について説明する。この準備は機能的妨害なしでCA1への繰り返しアクセスを可能にし、生命体の2光子(2P)または広視野のエピ蛍光イメージングのために適している。生きたマウスの背部CA1における2P深部脳慢性イメージングの2つの例は、樹状構造の縦方向イメージングと樹状脊椎ダイナミクスおよび活性誘発可塑性の縦方向イメージングである。この手法の顕著な利点と制限について説明します。

<table><tbody><tr><td>プロ仕様のドリル/グラインダー IBS/E</td><td>Proxxon GmbH</td><td>28481</td><td>Pecisionドリル</td></tr><tr><td>MICROMOTドリルスタンド MB 200</td><td>Proxxon GmbH</td><td>28600</td><td>可動定規テーブル</td></tr><tr><td>MICROコンパウンドテーブル KT 70</td><td>Proxxon GmbH</td><td>27100</td><td>可動定規テーブル</td></tr><tr><td>マシンバイス MS 4</td><td>Proxxon GmbH</td><td>28132</td><td>可動定規テーブル</td></tr><tr><td>ステンレス鋼管&Oslash;3,0 x 0,25 mm (インナー & Oslash; 2,5 mm ) L = 500 mm</td><td>サワデ</td><td>R00303</td><td>カニューレ金属リング用ステンレス鋼管</td></tr><tr><td>顕微鏡カバーガラス (4 mm 丸型)</td><td>Engelbrecht Medizin and Labortechnik</td><td></td><td>カニューレガラス用ガラスカバースリップ</td></tr><tr><td>Schlusselfeilensatz 6-tgl.Im Blechetui</td><td>Hoffmann Group</td><td>713750 160</td><td>マニュアルファイル</td></tr><tr><td>Pr&auml;zisions-Nadelfeile Gesamtl&auml;nge 140 mm 4</td><td>Hoffmann Group</td><td>527230 4</td><td>マニュアルファイル</td></tr><tr><td>UV硬化型光学接着剤</td><td>Thorlabs</td><td>NOA81</td><td>UV硬化型接着剤</td></tr><tr><td>UV硬化型LEDシステム、365 nm</td><td>Thorlabs</td><td>CS2010</td><td>UV硬化型LEDドライバーユニット</td></tr><tr><td>Stemi 305</td><td>ツァイス</td><td></td><td>ステレオスコープ</td></tr><tr><td>プレストII</td><td>NSK-Nakanishi ドイツ</td><td>Z307015</td><td>デンタルドリル</td></tr><tr><td>Diamantbohrer FG (5 St.), Zylinder flach, 837-014 fein</td><td>MF Dental</td><td>F837.014.FG</td><td>歯科用ドリル</td></tr><tr><td>用ファイル Diamantbohrer FG (5 St.), Zylinder flach, 837-014 grob</td><td>MF Dental</td><td>G837.014.FG</td><td>歯科用ドリル</td></tr><tr><td>Graefe 鉗子用ファイル - ストレート/鋸歯状</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>11050-10</td><td>手術用鉗子</td></tr><tr><td>マイクロ ドリル</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>19008-05</td><td>マイクロドリル用0.5mm幅のバリ</td></tr><tr><td>マイクロドリル</td><td>用バリ ファインサイエンスツール</td><td>19008-09</td><td>0.9 mm幅のマイクロ</td></tr><tr><td>ドリル用バリ MicroMotor mit Handst&uuml;ck</td><td>DentaTec</td><td>MM11</td><td>開頭術用マイクロドリル</td></tr><tr><td>デュモン #3 鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11231-30</td><td>デュモン手術用鉗子</td></tr><tr><td>ファインハサミ - ToughCut</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>14058-09</td><td>手術用ハサミ</td></tr><tr><td>トレフィン</td><td>MWデンタル</td><td>229-020</td><td>トレフィンドリル - 直径3.0 mm、マイクロドリル用</td></tr><tr><td>ステンレス製セルフタッピングボーンネジ</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>19010-10</td><td>0.86 mm幅 骨ネジ</td></tr><tr><td>定位固定装置</td><td>Kopf</td><td></td><td>定位固定装置</td></tr><tr><td>3-D-Gelenkarm</td><td>ホフマン グループ</td><td>442114</td><td>脳定位固定装置アームとプレートホルダー</td></tr><tr><td>Aufnahme 2SM</td><td>ホフマングループ</td><td>442100 2SM</td><td>脳定位固定装置とプレートホルダー</td></tr><tr><td>ホットビーズ滅菌器</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>18000-45</td><td>ガラスビーズ滅菌器</td></tr><tr><td>イソフルラン CP、Flasche 250 ml</td><td>ヘンリー・シャイン VET GmbH</td><td>798932</td><td>麻酔用液体イソフルラン</td></tr><tr><td>ハーバード装置 イソフルラン漏斗充填気化器</td><td>ハーバード・イシューティング GmbH</td><td>34-1040</td><td>イソフルラン気化器</td></tr><tr><td>ラボ・アクティブ・スカベンジャー</td>・<td>グロッパー Medizintechnik</td><td>UV17014</td><td>イソフルラン・スカベンジャー・システム</td></tr><tr><td>メタカム0,5%Injektionslsg。(フント/カッツェ)、Flasche 20 ml</td><td>Henry Schein VET GmbH</td><td>798566</td><td>Meloxicam、抗炎症性</td></tr><tr><td>Vetalgin 500 mg / ml</td><td>MSD Tiergesundheit</td><td></td><td>Vetalgin、鎮痛剤</td></tr><tr><td>CMA 450温度コントローラー</td><td>Hugo Sachs Elektronik - Harvard Apparatus GmbH</td><td>8003770</td><td>Heating blanket</td></tr><tr><td>Bepanthen Augen- und Nasensalbe</td><td>Bayer AG</td><td></td><td>Ophtalmic軟膏</td></tr>KL <tr><td>1500 LCD</td><td>Schott</td><td></td><td>光ファイバー</td></tr>光源<tr><td>キシロケインポンプスプレー</td><td>アストラゼネカGmbH</td><td></td>リ<td>ドカイン、局所麻酔薬</td></tr><tr><td>吸収三角形-マウントされていない</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>18105-03</td>手術パー<td></td></tr><tr><td>ケルC&のための吸収三角形B メタボンド クリアパウダー L</td><td>ホフミースター デンタル</td><td>013622</td><td>クイック接着セメント</td></tr><tr><td>パーケル C&B メタボンド クイックベース B</td><td>ホフミースター デンタル</td><td>013621</td><td>クイック接着セメント</td></tr><tr><td>パーケル C&B メタボンド ユニバーサル触媒 C</td><td>ホフミースターデンタル</td><td>013620</td><td>クイック接着セメント</td></tr><tr><td>調整可能な精密アプリケーターブラシ</td><td>パーケル</td><td>S379</td><td>手術用精密アプリケーター</td></tr><tr><td>鈍い針 0.9x23 mm</td><td>象牙質0441324</td><td></td><td>鈍</td></tr><tr><td>い針 0.5x42 mm</td><td>象牙質0452155</td><td></td><td>鈍い</td></tr><tr><td>針 鈍い針 0.3x23 mm</td><td>象牙質</td><td>0553532</td><td>鈍い針</td></tr><tr><td>Kallocryl A/C</td><td>Speiko</td><td>1615</td><td>アクリル液体成分</td></tr><tr><td>Kallocryl</td><td>Speiko</td><td>1609</td><td>アクリルパウダー</td></tr><tr><td>ハイドロフィルム 透明ロール</td><td>ハルトマン</td><td></td><td>粘着フィルム</td></tr><tr><td>ヘッドプレート</td><td>カスタムメイド</td><td></td><td>30 mm x 10 mm サイズ、直径 8 mm の穴、チタン</td></tr><tr><td>ヘッドプレートクランプ</td><td>カスタムmade</td><td></td><td>ヘッドプレートホルダー</td></tr><tr><td>台座ポストホルダー</td><td>Thorlabs</td><td>PH20E/M</td><td>ヘッドプレートホルダー</td></tr><tr><td>ステンレス製ポスト</td><td>Thorlabs</td><td>TR30/M</td><td>ヘッドプレートホルダー</td></tr><tr><td>ステンレス製ポスト</td><td>Thorlabs</td><td>TR75/M</td><td>ヘッドプレートホルダー</td></tr><tr><td>ステンレス製ポスト</td><td>Thorlabs</td><td>TR150/M</td><td>ヘッドプレートホルダー</td></tr><tr><td>ポストコネクタークランプ</td><td>カスタムメイド</td><td></td><td>ヘッドプレートホルダー</td></tr><tr><td>アルミブレッドボード、300 mm x 450 mm x 12.7 mm、M6 タップ</td><td>Thorlabs</td><td>MB3045/M</td><td>顕微鏡ステージ</td></tr><tr><td>7インチ x 4インチ ラボジャック</td><td>Thorlabs</td><td>L490/M</td><td>顕微鏡ステージ</td></tr><tr><td>ロープロファイルフェイスマスク 小型マウス</td><td>Emka Technologies</td><td>VetFlo-0801</td><td>麻酔フェイスマスクホルダー</td></tr><tr><td>RS4000 チューニング ダンピング トップパフォーマンス 光学テーブル</td><td>ニューポート</td><td></td><td>フローティングテーブル</td></tr><tr><td>S-2000A 最高性能空気圧式振動アイソレーター 自動再レベリング</td><td>ニューポート</td><td></td><td>フローティングテーブル</td></tr><tr><td>パワーメーター モデル 1918-R</td><td>ニューポート</td><td></td><td>パワーメーター</td></tr><tr><td>X-Cite 120Q</td><td>エクセリタステクノロジー</td><td></td><td>ズ 蛍光ランプ</td></tr><tr><td>二光子顕微鏡</td><td>ブルカー</td><td>ウルティマIV</td><td>二光子顕微鏡</td></tr><tr><td>2光子顕微鏡</td><td>Thorlabs</td><td>Bergamo</td><td>2光子顕微鏡</td></tr><tr><td>Plan N 4x/0.10 &infin;/-/FN22</td><td>Olympus</td><td></td><td>Objectives</td></tr><tr><td>Plan N 10x/0.25 &infin;/-/FN22</td><td>Olympus</td><td></td><td>Objectives</td></tr><tr><td>LMPlan FLN 20x/0.40 &infin;/-/FN26.5</td><td>Olympus</td><td></td><td>Objectives</td></tr><tr><td>XLPlan N 25x/1.00 SVMP &infin;/0-0.23 / FN18</td>オ<td>リンパス</td><td></td><td>対物レンズ</td></tr><tr><td>2P励起用Ultafastチューナブルレーザ</td><td>Spectraphysics</td><td>Mai Tai Deep See</td><td>Excitaitonレーザ</td></tr><tr><td>2P励起用Ultafastチューナブルレーザ</td><td>Spectraphysics</td><td>InSight DS+デュアルビーム</td><td>励起レーザ</td></tr><tr><td>3P励起用Ultafastチューナブルレーザ</td><td>Coherent</td><td>Monaco</td><td>Excitaitonレーザ</td></tr></tbody></table>

生きたマウスにおける後部海馬ca1の縦方向2光子イメージング

Longitudinal Two-Photon Imaging of Dorsal Hippocampal CA1 in Live Mice

2光子顕微鏡は、細胞下からネットワークレベルに至るまでの空間スケールで生きた動物の脳の調査を可能にし、ミリ秒から数週間の時間的スケールで生きている動物の脳の調査を可能にする神経科学の基本的なツールです。さらに、2光子イメージングは、脳機能と行動の因果関係を探索するために、様々な行動タスクと組み合わせることができます。しかし、哺乳類では、光の浸透と散乱が限られているため、主に表面的な脳領域に対する2光子のインビタルイメージングが制限され、海馬などの深脳領域の縦方向の調査が妨げられています。海馬は、空間ナビゲーションとエピソード記憶に関与し、健康と病気の両方で、学習とリコールのために重要な細胞だけでなく、認知プロセスを研究するために使用される長年のモデルです。ここで、生きているマウスにおける後部海馬への慢性的な光学アクセスを可能にする調製方法について詳しく説明する。この調製は、頭部固定における細胞および細胞内分解能における2光子光学イメージングと組み合わせることができ、数週間にわたって生きたマウスを麻酔した。これらの技術は、後部海馬CA1のニューロンの数十から数百のニューロンでニューロン構造または活性誘発可塑性の繰り返しイメージングを可能にします。さらに、この慢性的な調製物は、微小内視鏡検査、ヘッドマウントワイドフィールド顕微鏡、3フォトン顕微鏡などの他の技術と組み合わせて使用することができ、したがって、関与する細胞およびネットワークプロセスを研究するためにツールボックスを大幅に拡大学習と記憶の中で。

カニューレはCA1に背部だけ置かれるので、CA1の背部の側面は、腹部のものと比較した場合、顕微鏡に近位である。静脈は、最も近位構造であり、層オリエンス(SO)、層ピラミッド(SP)、層ラジエーテル(SR)および層ラクノサム分子(SLM)、最も遠位層(図1B) 、C)。細胞内分解能を有する神経構造の縦2Pイメージングと細胞分解能を有する活性誘発可塑性を代表的な結果として提示する。蛍光色素の緑色蛍光タンパク質(GFP)、d2VenusおよびTurboFP635を励起するために、フェムト秒パルスTi:サファイアレーザーを920nmに調整し、サンプルで平均レーザーパワーを5〜25mWに調整します。異なる発光波長は、発光フィルタと異なる光増数管を使用して分離されます。
樹状構造および樹状脊椎ダイナミクスの縦方向イメージング。
海馬PNをまばらに標識し、その構造を可視化するために、Thy1-GFPトランスジェニックマウスライン(Mライン)を使用する。Thy1-GFPマウスは、PN25のまばらでランダムな集団におけるThy1プロモーターの制御下で細胞質増強GFPを発現する。 一般に、CA1 PN の主軸は XY イメージング平面とほぼ垂直です (図 1B、図 2A、補足ムービー1)。基礎デンドライトはSOで、ソマからカニューレに向かって伸びるのに対し、頂点と頂点のタフトデンドライトはカニューレに遠く及び、反対方向に広がる(補足ムービー1)。製剤は、静脈の最も深い繊維をそのまま残すので、カニューレのすぐ下にある視野を横断するいくつかの蛍光繊維が、目に見えるはずである(図2Aおよび図1)。調製により、脊椎分解能を持つPNデンドライトのイメージングが可能になります(図2 A-C)。画像デンドライトおよび樹状脊椎には、25X 1.0 NA、4 mm WD、水浸漬商業用対物レンズが使用される。
縦方向追跡のために、カニューレの視野内のいくつかの脳領域は、最初のイメージングセッション中に定義される。各領域は、約 240 x 240 μm の面積に対応し、1 ~ 7 の樹状セグメントを含みます (図 2B)。これらの領域は、イメージングカニューレの下の体積におけるGFP発現のパターンを示す低倍率の3次元スタックに手動でマッピングされる(図2A)。次に、CA1 PN基底デンドライトの1μm zステップ画像スタックが、約14日間(図2C)までの異なる時間間隔(24時間〜3日)で取得される。より長いイメージング期間および間隔は可能である26.各イメージングセッションは約60~90分です。ほとんどの画像はSOでは樹状脊椎であるが、SRの斜めの樹脊椎(図2D-F)で樹状脊椎を画像化することも可能である。脊椎密度に加えて、この方法は、生存、利得および損失率26、27、28、29、30を定量化することにより、脊椎ダイナミクスの研究を可能にする。31歳,32. 樹状脊椎をスコア付けして追跡するには (図 2C)、カスタム MATLAB インターフェイスが使用されます。これにより、異なる時点で取得された画像スタックの位置合わせが可能になり、樹状の長さと脊椎位置を時間26で追跡しながら、デンドライトと脊椎の手動ラベリングをサポートします。重要なのは、この方法を使用して、既存の樹状脊椎と新生児の樹状脊椎を区別するために(最初のものを除く)。.樹状脊椎の異なるクラスは、メモリの取得と保持33で異なる役割を持っていると考えられているので、これは重要です。
活性誘発可塑性の縦方向イメージング.
CA1 PNにおける画像活性誘発可塑性を、円弧内のシナプス活性応答性素子(E-SARE)の増強形態を介して緑色蛍光不安定化d2Venusを発現するウイルスベクターを注入する。ePGKプロモーター34を介してエンハンサー/プロモーターおよび赤色蛍光TurboFP635。これにより、各動物35における数百のCA1 PNの活性誘発可塑性のイメージングレベルを可能にする。PNの非常に密な標識を考えると、一般にCA1 PNのデンドライトを解決することは不可能です(補足ムービー2)。
CA1 PNのソマタを画像化するために、40X 0.8 NA、3mm WD、水浸漬対物レンズを使用する。縦方向の追跡では、最初のイメージングセッション中にマウスごとに1~9の脳領域が定義されます。 各領域は約 300 x 300 μm の領域に対応し、50 ~ 150 セルが含まれています (図 3A)。これらの領域は、低倍率で表示される局所組織のランドマークに手動でマッピングされます。次いで、3μm zステップ画像スタックが取得され、CA1 PNのSP(図3Aおよび補足ムービー2)を、最大約30日間(24時間から6日間)の異なる時間間隔で包含する。各イメージングセッションは、新しい環境または濃縮環境(EE、図3B)にさらされ、数日の間に崩壊した後、約6〜90分続きます。したがって、我々は一般的に経験後6〜8時間を画像化し、イメージングセッション35の間に5日間を可能にする。
d2VenusおよびTurboFP635蛍光値を定量化するために、細胞ソマを中心とした神経細胞体よりも小さい直径4.64μmの円形領域が描かれます。次に、次の時点に進み、同じセルの相馬を同じ方法でスコア付けし、縦方向データセット内のすべての時点およびすべての可視セルに対してこの手順を反復化します。各ニューロン(活性依存)d2Venus放出の平均値は、その平均(活性非依存)TurboFP635放出によって正規化される。この方法は、CA1 PN35(図3C)のアンサンブル可塑性の長期ダイナミクスの調査を可能にする。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59598/59598fig1.jpg"> 図1:生体内深層脳光学イメージングの準備(A) 上(左)と側面(右)の図をイメージ化します。イメージングカニューレは海馬への光学アクセスを可能にするために透明なガラス底を備えています。(B)撮像カニューレの相対位置を強調する調製物の概略的記述は、CA1 PNおよび背部から腹部までの繊維の3層である。(C, D)イメージングセッション中のイメージングセットアップ(C)および動物固定(D)の概略的記述。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59598/59598fig1large.jpg" target="_blank">この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59598/59598fig2.jpg"> 図 2:樹状構造および樹状脊椎ダイナミクスの縦方向イメージング。(A)2P画像スタック(最大強度投影(MIP)59の画像平面、2μm z間隔)のニューロンおよびデンドライトは、ライブThy1-GFPマウスでGFPによって標識された。(B) 高倍率(53の画像面のMIP、1 μm z間隔)は、SOに位置する基底デンドライトを詳細にする。(C)14日間にわたって画像化された樹状セグメントのタイムラプス画像シーケンス。矢印は、14日間にわたって追跡された樹状脊椎を示します。(D, E)ライブThy1-GFPマウスでGFPによって標識されたニューロンとデンドライトの2P画像スタック;(D) ZY 投影 (31 イメージプレーン、3 μm Z 間隔) および (E) XY 投影 (17 イメージプレーン、3 μm Z 間隔)(F)SR.アローヘッドに位置する頂点樹線および樹状脊椎を詳細にする高倍率(単一画像平面)は樹状脊椎を示す。励起:920 nm;放出ピーク:510 nm。スケールバー: A, 50 μm;B, 10 μm;C, 2 μm;D と E, 15 μm;F, 4 μm.<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59598/59598fig2large.jpg" target="_blank">この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59598/59598fig3.jpg"> 図 3:活性誘発可塑性の縦方向イメージング。(A) ライブマウスからの2P画像(単一画像)で、ベースライン日0と1日目のEE後に同じセルを示す。 (B) 2P 画像スタック(4-6 画像平面の MIP、3 μm z 間隔)は、環境 A (1 日目、19 日目、25 日目) および環境 B (7 日目および 13 日目) に固有の E-SARE 活性化パターンを示す。緑:d2金星蛍光。赤:ターボFP635蛍光。励起:920 nm;d2ヴィーナス発光ピーク:530 nm;ターボFP635発光ピーク:635nm。スケールバー: A, 20 μm;B, 10 μmこの数字は、Attardo et al., 201835から変更されています。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59598/59598fig3large.jpg" target="_blank">この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59598/59598fig4.jpg"> 図 4:3光子(3P)顕微鏡を用いて海馬DGにおける神経構造のイメージング(A-H)。CA1および(F-H)顆粒細胞におけるライブThy1-GFPマウス詳細(A-E)PNにおけるGFPによって標識されたニューロンおよびデンドライトの3P画像(単一画像平面)。励起:1400 nm;放出ピーク:510 nm。スケールバー: 40 μm.<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59598/59598fig4large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
補足ムービー 1: ライブ Thy1-GFP マウスでの画像化視野。カニューレの底部からSLMに伸びる生きたThy1-GFPマウスにおいて、GFP(白色)で標識されたニューロンおよびデンドライトの2P画像スタック(83画像平面、7μm Z間隔)。深さの増加に伴う蛍光信号の減衰を考慮して、光増数管のゲインの非線形グラデーションを使用しました。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59598/Movie_1_FINAL.avi">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
補足ムービー2:活性誘発可塑性のイメージング。SP.グリーンを包含する生マウスにおけるIEG発現のE-SAREレポーターを発現するニューロンの2P画像スタック(28画像平面、3μm z間隔):d2Venus蛍光。赤:ターボFP635蛍光。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59598/Movie_2_FINAL.avi">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>

この方法は、生きているマウスの海馬への光学的アクセスを可能にする慢性的な調製を記述する。この調製は、数週間の期間にわたって神経構造可塑性および活性誘発細胞可塑性の縦方向光学イメージングを行うために使用することができる。

生きたマウスにおける後部海馬CA1の縦方向2光子イメージング

Two-photon microscopy is a fundamental tool for neuroscience as it permits investigation of the brain of live animals at spatial scales ranging from ...

この手順は、学習タスクを実行しながら、記憶形成およびリコールのメカニズムを研究するために、生きているマウスの砂状海馬への繰り返し光学的アクセスを提供する。この技術により、光顕微鏡を使用して、数週間にわたってマイクロメートルレベルの空間分解能で生きたマウスの下側海馬を研究することができます。記憶喪失は、アルツハイマー病などのいくつかの脳疾患の一般的な特徴です。記憶形成とリコールのメカニズムを理解することは、最終的にこれらの病気に苦しむ患者を助けることができる。この方法は、小さな哺乳類などの頭蓋骨を持つ他の動物システムに適用することができる。生存手術中にバイタルサインを監視することは、気が散り、ストレスを感じることができます。最初に死んだ動物に対して手順を実行して、手順のより重要な側面に焦点を当てるのに役立つかもしれません。イメージングカニューレを準備するために、まず直径3ミリメートルのステンレス鋼管を1.6ミリメートルの長さの金属リングに切り取ります。切断後にリングのエッジが鈍くない場合は、凹凸を退出します。次に、一対の鉗子を使用して、金属リングの片面をUV硬化光学接着剤に浸します。次に、金属リングをガラスカバースリップの中央に配置し、リングの側面をカバースリップに触れる接着剤で覆います。UV硬化LEDドライバーユニットをオンにし、接着剤に365ナノメートルの波長光を1分間照らして接着剤を硬化させます。光源の方向を変更して、リングのすべての側面が均等に照らされていることを確認します。接着剤が少なくとも2時間硬化した後、止止めによって金属リングの開いた端からカニューレをしっかりと保持する。回転ファイルを取り付けた歯科ドリルを使用して、リングの側面と一緒に洗い流されるまで余分なガラスカバースリップを取り除きます。必要な機器を準備し、付随するテキストプロトコルに記載されているようにマウスを麻酔します。その後、髪を取り除き、マウスの頭の上に皮膚を消毒します。次に、はさみと鉗子を使用して、ラムダに近い位置で頭皮に小さな切り傷を作ります。耳の方向に横方向に移動し、眼窩の方向にロストラリーして矢状軸に約4ミリメートルのロストラルを形成します。頭蓋骨にリドカインの一滴を適用します。2分後、骨膜を取り除き、綿棒を使用して頭蓋骨を乾燥させます。次に、マウスの頭部を固定するためにイヤーバーを置きます。0.5ミリメートル幅のバリを備えたマイクロドリルを使用して、矢状縫合糸から約1.5ミリメートル、冠状縫合糸から2ミリメートル遠位の画像化された海馬の反対側の前頭骨に小さな穴を開けます。その後、0.86ミリメートル幅のステンレススチール製の骨ねじを頭蓋骨の穴にねじ込みます。接着セメントを使用して所定の位置に固定します。セメントを30秒から1分間乾燥させます。次に、直径3ミリメートルのトレフィンドリルを使用して、頭頂骨に小さな穴を開けます。矢状縫合糸から約1.5ミリメートル遠位、ラムドイド縫合糸から2ミリメートル遠位の穴を配置します。骨のフラップを慎重に取り外します。その後、デュモン鉗子を使用して髄を取り除く。皮質物質をアブレートして外部カプセルに到達する。真空ポンプに接続された19ゲージの鈍い針を使用し、生理的な状態で灌漑して、露出した組織の脱水を避け、出血が解決された後に残留血液を洗い流します。皮質がチングラムまたは脳梁の繊維を露出するカプセルから剥離するまで、一度に約50〜100ミクロンの皮質組織をゆっくりと吸う。その後、最も深い繊維、海馬の子牛が露出するまで慎重に後部繊維を剥がします。終了したら、生理食い物で組織をすすきます。次に、薄い鉗子を使用して底カニューレを生理線に浸し、頭蓋骨の穴の上に置きます。次に、ガラスカバースリップが繊維に接触するまでカニューレを頭蓋骨に押し込みます。頭蓋骨を乾かして、頭蓋骨の上に素早く粘着セメントを塗布し、カニューレを所定の位置に保持します。カニューレの縁にも接着剤を塗布するようにしてくださいが、カニューレに接着剤を入れないように注意してください。乾いたら、ステレオタックスアームを使用して、頭蓋骨に接触するカニューレの上にヘッドホルダープレートを配置します。歯科アクリルの混合物を準備し、全体の頭蓋骨全体にそれを適用します。露出した頭蓋骨全体、ネジ、開いた皮膚を歯科用アクリルで覆い、準備を安定させます。15分後、取り外し可能な粘着フィルムをヘッドホルダープレートに塗布し、カニューレに破片が入るのを防ぎます。脳を画像化する準備ができたら、麻酔の詳細については、付随するテキストプロトコルに従ってください。十分に鎮静したら、ヘッドホルダープレートから粘着フィルムを慎重に除去するために鉗子を使用してください。準備を損なわないように、フィルムをやさしく取り除いてください。次に、顕微鏡の下にマウスをヒーティングカーペットの上に置き、ヘッドプレートをホルダーに固定します。動物の目に目の軟膏を適用します。次に、注射器と細い針を使用してイメージングカニューレを洗浄し、脱イオン水をカニューレに滴下し、続いて真空ポンプで除去します。低倍率の長い作業距離の目標を使用して、カニューレの残留水、汚れ、完全性、蛍光の有無を視覚的に確認します。次に、ヘッドホルダーアームの角度を調整して、カニューレを視軸に合わせます。1.0個の開口と4ミリメートルの作動距離で25倍の目標に切り替えます。その後、カニューレに十分な脱イオン水を加えて満タンにし、カニューレの上に余分な水を維持します。最後に、2つの光子励起を使用し、蛍光信号を画像化します。ここに示されているのは、thy1-GFP トランスジェニック マウス脳からの 2P 画像スタックです。Thy1-GFPマウスは、錐体ニューロンのまばらなランダム集団においてThy1プロモーターの制御下で細胞質増強GFPを発現する。一般に、海馬CA1の大きさの錐体ニューロンの軸は、XYイメージング面に対してほぼ垂直である。これらの領域は、撮像カニューレの下の体積におけるGFP発現のパターンを示す低倍率三次元スタックに手動でマッピングされる。縦方向追跡では、カニューレの視野内のいくつかの脳領域が定義される。各領域は約240×240マイクロメートルの面積に対応し、1〜7樹状セグメントを含みます。ここでの画像シリーズは、CA1ピラミッド型ニューロンと基底樹状突起の1マイクロメーターzステップ画像スタックを14日間異なる時間間隔で取得した様子を示しています。ただし、長いイメージングの時間と間隔が可能です。ほとんどの画像は地層のオリエンスの樹状棘の画像ですが、層ラジウムの斜めの樹状突起で樹状脊椎を画像化することも可能です。この技術のもう一つの拡張は、ウイルスベクターを用いて後部CA1海馬領域を注入することによってCA1ピラミッドニューロンにおける活性誘発可塑性を画像化することです。これにより、各動物の何百ものCA1ピラミッド型ニューロンの可塑性を2P画像スタックとしてここに示すことができます。上にある組織を取り除くときに海馬の損傷を防ぐことが重要です。さらに、安定した準備を確実にするためにカニューレを正しく配置する必要があります。記載された調製物は動物の頭部に埋め込むことができるミニチュア顕微鏡のような光学のイメージ投射の異なった種類の使用を可能にする。これにより、研究者は自由に動く動物の神経活動に従うことができます。もともと、この技術は海馬ニューロンの構造的可塑性を研究するために使用された。今日, 他の脳領域でも神経活動を研究する実装.

longitudinal-two-photon-imaging-of-dorsal-hippocampal-ca1-in-live-mice

Research

JoVE Journal

Behavior

行動

新皮質のマイクロ回路のネットワークのダイナミクスを理解するために、それは同時に、神経細胞の多数のアクティビティを記録することが不可欠です。のin...

レイヤーin vivoでの2光子カルシウムイメージングマウスの2 / 3

出典: Maruoka, H., et.al. 覚醒マウスにおけるミクログリアダイナミクスとニューロン活動の同時イメージング J. Vis. Exp.

覚醒マウスにおけるミクログリア動態と神経活動の同時イメージング

出典:Ulivi, A. F., et.al.Longitudinal Two-Photon Imaging of Dorsal Hippocampal CA1 in Live Mice. J. Vis. Exp. (2019) }このビデオは、生きたマウスの蛍光標識されたピラミッド型ニューロンの縦方向の2光子イメージングを示しています。...

生きたマウス海馬における蛍光標識ニューロンの縦断的2光子イメージング

出典:Kamei, R., et al.、マウス海馬におけるミクログリアのIn vivo慢性二光子イメージング。J. Vis. 経験。(2022年)このビデオは、海馬CA1(Cornu ammonis 1)と歯状回におけるミクログリアダイナミクスのin...

マウス海馬におけるミクログリアダイナミクスのin vivo二光子イメージング

ニューロンにおける経験依存的分子変化は行動の課題に応じて適応する脳の能力のために不可欠である。アン...

皮質ニューロンにおける経験依存性分子の変化の in vivo二光子イメージングにおける

ここでは、仮想現実環境での動作中のマウス皮質の2光子イメージングに関わる実験手順について説明します。...

仮想現実環境をナビゲートマウスにおける二光子カルシウムイメージング

生きている動物のTime-lapse imaging...

二光子<em&gt; in vivoで</em&gt;間引き頭蓋骨の準備を使用して、マウス皮質における樹状突起棘のイメージング

このビデオは、Thy1-GFPトランスジェニックラインのin vivo...

同時2光子<em&gt;インビボ</emマウス脳梁膨大後部皮質におけるシナプス入力とシナプス後ターゲットの&gt;イメージング

この記事では、注入カニューレを補ったカスタムメイドのイメージングウィンドウの準備と、マウスの海馬のCA1領域への移植を示す。...

マウスの振る舞いの海馬における神経活動を可視化するための頭蓋骨管制法

本稿では、精密制御手術と二光子顕微鏡を用いて、マウス海馬CA1の静止ミクログリアをin vivo...

インビボ マウス海馬におけるミクログリアの慢性二光子イメージング

ここでは、覚醒マウスにおけるミクログリア動態と神経活動を同時にイメージングするためのアデノ随伴ウイルス注入と頭蓋窓移植を組み合わせたプロトコルについて説明します。...

学ぶ 生きたマウスの後部海馬CA1における縦方向2光子イメージング法。ミクロメートルレベルの解像度で神経細胞の構造的可塑性と活動誘発可塑性を数週間にわたり観察し、記憶形成と想起のメカニズムを解明する。

生きたマウスにおける後部海馬CA1の縦方向2光子イメージング

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