Name: 免疫学的単一細胞力分光法のための単一T細胞または単一粒子による原子間力顕微鏡片持ちの機能化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-10T13:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 6 s
Description: 学ぶ原子間力顕微鏡片持ちの単一T細胞機能化法。樹状細胞との相互作用をリアルタイムで測定し、免疫シナプス形成や細胞応答を解析する。生体適合性接着剤を用い、T細胞の活性化状態を保持しながら精密な力分光測定が可能となる。

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この研究は、中国国家自然科学財団(31370878)、国家キープログラム(31630023)、革新的研究グループプログラム(81621002)によって支援されています。

マウス実験プロトコルは清華大学の動物ケアガイドラインに従う
1. 単一T細胞による片持ち可能な機能化
<ol><li>マウス脾臓細胞製剤<ol>
<li>二酸化炭素を用いてマウス(8〜16週齢(どちらかの性別)を犠牲にし、続いて子宮頸部脱臼を行う。</li>
		<li>75%のエタノールでマウスをきれいにし、中間線の皮膚切開を行い、脾臓摘出を行います。</li>
		<li>ガラススライドを使用して2%の胎児ウシ血清(FBS)を含むPBSの4 mLで脾臓を均質化し、70 μmメッシュナイロンストレーナーを通して細胞懸濁液を通過させることによって凝集体および破片を除去する。</li>
		<li>5分間500xgで細胞懸濁液を遠心分離し、上清を捨て、赤血球溶解バッファーの2mL(室温でバランスをとった)で細胞を5分間再懸濁する。</li>
		<li></li></ol></li><li><ol><li></li><li></li><li><li><li></li><li> </li></ol></li><li><ol><li></li><li></li><li></li><li></li><li><li><li> </li><li></li><li><li><li></li></ol></li><li><ol><li> </li><li><li><li><li><li><li></li><li> </li></ol></li><li> <ol><li><li><li><li></ol></li><li><ol><li></li><li><li> </li><li> </li><li> </li><li> </li><li> </li><li> </li></ol></li></ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59609/59609fig1v2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59609/59609fig1large.jpg" target="_blank"></a><ol start="7"><li> <ol><li></li><li> </li><li></ol></li></ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59609/59609fig2v2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59609/59609fig2large.jpg" target="_blank"></a><ol><li><ol><li> </li><li></li><li><li></li><li> </li></ol></li></ol><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59609/59609fig3.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59609/59609fig3large.jpg" target="_blank"></a><ol start="2"><li><ol><li><li></ol></li><li><ol><li></li><li><li> </li><li><li> </li><li></ol></li><li> <ol><li></li><li> </li><li><li><li><li><li><li> </li></ol></li></ol>

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<li>Scheuring, S., Dufrene, Y. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+force+microscopy%3A+probing+the+spatial+organization%2C+interactions+and+elasticity+of+microbial+cell+envelopes+at+molecular+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Atomic force microscopy: probing the spatial organization, interactions and elasticity of microbial cell envelopes at molecular resolution.</a> Molecular Microbiology. 75 (6), 1327-1336 (2010).</li>
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<li>Vitte, J., Pierres, A., Benoliel, A. M., Bongrand, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+quantification+of+the+modulation+of+interaction+between+cell-+or+surface-bound+LFA-1+and+ICAM-1%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Leukocyte+Biology%22%5BJournal%5D)">Direct quantification of the modulation of interaction between cell- or surface-bound LFA-1 and ICAM-1.</a> Journal of Leukocyte Biology. 76 (3), 594-602 (2004).</li>
<li>Beaussart, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+the+forces+guiding+microbial+cell+adhesion+using+single-cell+force+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Quantifying the forces guiding microbial cell adhesion using single-cell force spectroscopy.</a> Nature Protocols. 9 (5), 1049-1055 (2014).</li>
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<li>Hosseini, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+synapse+formation+determines+interaction+forces+between+T+cells+and+antigen-presenting+cells+measured+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Immune synapse formation determines interaction forces between T cells and antigen-presenting cells measured by atomic force microscopy.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (42), 17852-17857 (2009).</li>
</ol>

著者は何も開示していない。

AFMベースの単細胞力分光法は、生細胞の生体物理学的特性に対処するための強力なツールとして進化してきました。これらのアプリケーションでは、目的の細胞上の特定の相互作用または特性をプローブするために、片持ちは適切に機能化する必要があります。ここで、単一T細胞と単一ミクロンサイズのビーズを先端のない片持ち先に結合する方法についてそれぞれ説明する。片持ち式に単一のTセルを付着させるため、細胞接着剤として生体適合性接着剤を選択した。これは、海洋ムール貝から抽出された特別に配合されたタンパク質溶液です。その接着性は、ヒドロキシル基が非特異的な方法で細胞表面に露出した残基と水素結合を形成することができるポリフェノール残基に由来する。この結合方法は、通常、結合された細胞の細胞機能を妨げない。適切な接着のためには、付着する細胞の状態も重要である。新しく精製されたマウスCD4+T細胞の場合、片持ち機能に使用する前に、ヒトIL-2で一晩で処理する必要があります。さもなければ、彼らはかなり迅速に細胞死を受けるでしょう。細胞が良好な状態でない場合、片持ち式に取り付けることができる場合でも、接着強度が弱いために数回の力プローブの後に片持ちから切り離される可能性が...

原子力顕微鏡(AFM)、汎用性の高いツールは、細胞生物学研究1、2、3、4、5で多くの応用を発見しました。その高解像度イメージング機能とは別に、ネイティブ力プローブ機能により、生細胞の生物物理学的特性を単一細胞レベル6、7の現場で直接調べることができる。これらには、細胞内構造または細胞全体の剛性8、9、10、11、12、特異的リガンド/受容体結合強度が含まれる。細胞表面上の単一分子レベル13は、固体粒子と細胞の単一対間または2つの細胞間の接着力1、2、14、15。後者の2つは、多くの場合、単一細胞力分光法(SCFS)16として分類される。様々なばね定数を持つ容易に利用可能な片持ちのために、AFMにアクセス可能な力範囲は、数十からの力を含む細胞イベントの全範囲を十分にカバーするいくつかのピコニュートン(pN)からマイクロニュートン(μN)までかなり広いです。受容体ベースの単一分子結合などのpNの、nNへの、例えば、咽頭細胞イベント15。この大きなダイナミックフォースレンジは、光学/磁気ピンセットやバイオ膜力プローブなどの他の力プローブ技術に比べてAFMに有利であり、弱力測定に適しており、通常は200 pN17未満の力を持ちます。,18.さらに、AFMは、時空間的に定義された方法で単一細胞に様々な刺激を提供する高精度マニピュレータとして機能することができます 4,19.これは、リアルタイム単一細胞活性化研究に望ましい。生細胞蛍光イメージングと組み合わせることで、特定の刺激に対するその後の細胞応答を同時に監視できるため、AFMベースのSCFSは光学イメージングとして非常に堅牢になり、細胞シグナル伝達をプローブする実用的なツールを提供します。例えば、AFMは、骨芽細胞20でカルシウム過渡を引き出すために必要な株を決定するために使用された。本研究では、AFM先端を用いた培養骨芽細胞への局所的な力の適用後、カルシウム過渡性画像を用いてカルシウム過渡を蛍光で追跡した。最近では、肝系ステラー細胞(HSC)が増殖したコラーゲン線維化を伸縮するためにAFMが採用され、このメカノ変換HSC活性化は蛍光Srcバイオセンサによってリアルタイムモニタリングされ、そのリン酸化物は、バイオセンサの蛍光強度は、HSC活性化3と相関している。
AFMベースのSCFS実験では、AFM片持ち式の適切な機能化が測定の成功に向けた重要なステップです。私たちの研究の関心は免疫細胞の活性化に焦点を当てているので、我々は定期的に食細胞症や強力な免疫応答を引き起こす可能性のある単一固体粒子などの粒子状物質を持つ片持ちを機能化 4,14,活性化樹状細胞(DC)2などの抗原提示細胞を有する免疫シナプスを形成できる15および単一T細胞。 単一固体粒子は、通常、空気中のエポキシ接着剤を介して片持ちに結合されますが、単一のT細胞は、その非粘着性の性質のために、溶液中の生体適合性接着剤を介して片持ちに機能化されます。ここでは、これら2種類の片持ち修正を行い、2つの関連するアプリケーションを提供する方法について説明する。最初の応用は、AFM-SCFSとのT細胞/DC相互作用をプローブし、細胞力学の観点から制御T細胞の抑制機構を理解することです。2つ目は、AFMと生細胞蛍光イメージングを組み合わせて、受容体非依存ホスファチリノシトール4,5-ビスリン酸(PIP2)の分子機構を明らかにするために、固体粒子に対するマクロファージの細胞応答をリアルタイムで監視することを含む。モエシンは、咽頭細胞症を媒介した。このプロトコルの目的は、興味を持つ研究者が免疫学的研究のためのAFMベースの単一細胞分析を用いて独自の実験設定を設計し、実装するための参照フレームワークを提供することです。

<table><tbody><tr><td><強い>素材</強い></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 &mu;l ピペットチップ</td><td>サーモフィッシャー</td><td>104-Q</td><td></td></tr><tr><td>15 ml チューブ</td><td>コーニング</td><td>430791</td><td></td></tr><tr><td>直径 6 cm 培養皿</td><td>NALGENE nunc</td><td>150462</td><td></td></tr><tr><td>6 ウェル培養プレート</td><td>JET</td><td>TCP011006</td><td></td></tr><tr><td>AFM カンチレバー</td><td>NanoWorld</td><td>Arrow-TL1-50</td><td>チップレスカンチレバー</td></tr><tr><td>&β;-メルカプトエタノール</td><td>Σ</td><td>7604</td><td></td></tr><tr><td>生体適合性接着剤</td><td>BD Cell-Tak</td><td>354240</td><td></td></tr><tr><td>CD4+ T 細胞単離 カクテル</td><td>STEMCELL</td><td>19852C.1</td><td></td></tr><tr><td>DC2.4 細胞株</td><td>K. Rock (マサチューセッツ大学医学部、マサチューセッツ州ウースター) からの贈り物デ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>キストラン被覆磁性粒子</td><td>STEMCELL</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>GENEray</td><td>Generay-E1101-500 ml</td><td></td></tr><tr><td>エポキシ</td><td>ERGO</td><td>7100</td><td></td></tr><tr><td>エタノール</td><td>twbio</td><td>00019</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Ex Cell Bio</td><td>FSP500</td><td></td></tr><tr><td>FcR blocker</td><td>STEMCELL</td><td>18731</td><td></td></tr><tr><td>ガラス カバースリップ</td><td>ローカル ベンダー (Hai Men Lian Sheng)</td> <td>HX-E37</td><td>直径 24mm、薄さ 0.17mm</td></tr><tr><td>ガラス スライド</td><td>JinTong研究室および機器管理部門、海門&nbsp;</td><td>N/A</td><td>カスタマイズ</td></tr><tr><td>H2O2 (30%)</td><td>Sino pharm</td><td>10011218</td><td></td></tr><tr><td>H2SO4</td><td>Sino pharm</td><td>80120892</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>51558</td><td></td></tr><tr><td>マグネット</td><td>STEMCELL</td><td>18000</td><td></td></tr><tr><td>メッシュ ナイロン ストレーナー</td><td>BD Falcon</td><td>REF 352350</td><td></td></tr><tr><td>実験室でクローニング</td>された<td>Moesin-EGFP</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>CD25 Treg細胞ポジティブ単離キット</td><td>STEMCELL</td><td>18782</td><td>コンポーネント:FcR Blocker、Regulatory T cell Positive Selection Cocktail、PE Selection Cocktail、Dextran RapidSpheres、</td></tr><tr><td>マウス CD4+ Tcell isolation kit</td><td>STEMCELL</td><td>19852</td><td>コンポーネント:CD4+T 細胞単離カクテル、ストレプトアビジンRapidSpheres、ラット血清</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Lanyi化学製品有限公司?北京</td><td>1310-73-2</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Solarbio</td><td>P1022-500</td><td></td></tr><tr><td>PEセレクションカクテル</td><td>STEMCELL</td><td>18151</td><td></td></tr>ペ<tr><td>ニシリン-ストレプトマイシン</td><td>Hyclone</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>PLC&delta;-PH-mCherry</td><td>Addgene</td><td>36075</td><td></td></tr><tr><td>ポリスチレン微小球6.0&mu;m</td><td>Polysciences</td><td>07312-5</td><td></td></tr><tr><td>ポリスチレン丸底チューブ</td><td>BD Falcon</td><td>352054</td><td></td></tr><tr><td>ラット血清</td><td>STEMCELL</td><td>13551</td><td></td></tr><tr><td>RAW264.7</td><td>&nbsp;ATCC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>組換えヒトインターロイキン-2</td><td>Peprotech</td><td>Peprotech, 200-02-1000</td><td></td></tr><tr><td>赤血球溶解バッファー</td><td>Beyotime</td><td>C3702</td><td></td></tr><tr><td>制御性T細胞ポジティブセレクションカクテル</td><td>STEMCELL</td><td>18782C</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>ライフ</td><td>C11875500BT</td><td></td></tr><tr><td>サンプルチャンバー</td><td>自家製</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ストレプトアビジン被覆磁性粒子</td><td>STEMCELL</td><td>50001</td><td></td></tr><tr><td>トランスフェクションキット</td><td>Clontech</td><td>631318</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン0.25%EDTA</td><td>ライフ</td><td>25200114</td><td></td></tr><tr><td>ピンセット</td><td>JD</td><td>N / A</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号<</td><td>strong>Comments</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20x 対物レンズ NA 0.8</td><td>ツァイス</td><td>420650-9901</td><td>Plan-Apochromat</td></tr><tr><td>原子間力顕微鏡</td><td>JPK</td><td>cellHesion200</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>ベックマン・コールター</td><td>アレグラ X-12R</td><td></td></tr><tr><td>蛍光イメージング</td><td>ツァイス顕微鏡スタンド</td><td></td><td></td>をベースとした自家製対物レンズ型全反射蛍光顕微鏡</tr><tr><td>加湿CO2インキュベーター</td><td>サーモフィッシャー</td><td>HERACELL 150i</td><td></td></tr><tr><td>倒立型光学顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td>オブザーバーA1 マニュアル</td><td></td></tr></tbody></table>

免疫学的単一細胞力分光法のための単一t細胞または単一粒子による原子間力顕微鏡片持ちの機能化

Functionalization of Atomic Force Microscope Cantilevers with Single-T Cells or Single-Particle for Immunological Single-Cell Force Spectroscopy

原子力顕微鏡ベースの単一細胞力分光法(AFM-SCFS)は、生細胞の生物物理学的特性を研究するための強力なツールです。この技術は、細胞、受容体およびリガンド間の相互作用の強さとダイナミクスを、他の多くのバリエーションと共に調知することを可能にする。また、単一細胞に対して物理的または生化学的刺激を時空間的に制御した方法で送り出すメカニズムとしても機能し、生細胞と組み合わせると、特定の細胞活性化とその後の細胞イベントをリアルタイムで監視することができます。蛍光イメージング。これらのAFM-SCFS測定の重要なステップは、AFM片持ち機能化、つまり、目的の対象を片持ちに取り付けることです。ここでは、免疫学的研究のために、単一のT細胞と単一のポリスチレンビーズでAFM片持ちを修飾する方法を紹介する。前者は、溶液中の平らな片持ちの先端に単一のT細胞を結合する生体適合性の接着剤を含み、後者は空気環境における単一ビーズ接着のためのエポキシ接着剤に依存する。各片持ち修正に関連する2つの免疫学的応用も同様に提供される。ここで説明する方法は、異なる細胞タイプおよび固体粒子に容易に適合させることができる。

図4Aは、1つのアプローチリトラクトサイクルにおける単一Tセルと単一DCとの結合相互作用からの典型的な力距離曲線を示す。明るい赤い曲線は延長曲線で、濃い赤のカーブは引き込み曲線です。延長曲線は通常、インデントまたは剛性解析に使用されるので、ここでは引き込み曲線のみが細胞接着に関係します。曲線の最小値(緑色の円)は、最大接着力の尺度を与えます。カーブの下の領域(シェード領域)は、T セルを DC から分離するために必要な作業(エネルギー)を表します。完全な分離の前に、鋭利で段階的な破裂事象がしばしば観察される。これは、セル/セル界面で強い結合が原因でセル表面から引き抜かれ、連続引っ張りの下で離散的に破壊される膜テザーと解釈されます。歩数、高さ、およびステップの長さは、細胞膜21の機械的特性を特徴付けるために使用することができる。T細胞-DC相互作用については、結合強度に関心があり、各曲線に対して最大接着力のみが解析されます。図...

我々は、免疫学的研究のための単一のT細胞およびビーズ粒子を用いて原子間力顕微鏡(AFM)片持ちを機能化するプロトコルを提示する。AFMによる単一対T細胞樹状細胞結合をプローブし、蛍光イメージングを用いてAFMによる単一固体粒子に対するマクロファージのリアルタイム細胞応答を監視する手順が示されている。

免疫学的単一細胞力分光法のための単一T細胞または単一粒子による原子間力顕微鏡片持ちの機能化

Atomic force microscopy based single cell force spectroscopy (AFM-SCFS) is a powerful tool for studying biophysical properties of living cells. This ...

このプロトコルは、単一のT細胞および固体粒子を用いてAFM片持ち体を機能させる最善の方法を説明する。これらのヒントは、単一対樹状細胞-T細胞相互作用をプローブし、それぞれ気まぐれなサイズの細胞応答を監視するために使用することができます。この技術の主な利点は、カンチレバーの単一のT細胞の官能化のために生体適合性接着剤を使用することです。この接着剤は真核細胞に不活性であり、T細胞をベースライン活性化段階に保ちます。これらの方法は、免疫細胞活性化および免疫シナプス形成などの複雑な細胞間事象に関する洞察を提供する。この方法は、細胞細胞または細胞表面相互作用を含む他のシステムにも拡張できます。この技術に新しい人のために、T細胞が使用前に良好な状態にあり、それらが一晩IL-2で前処理されていることを確認することが重要です。また、生体適合性接着剤を使用する場合は、不要な酸化から保護するために迅速に移動します。この手順を開始するには、テキストプロトコルに従って、単一のTセルを顕微鏡用に準備します。次に、DC2.4細胞を播種したガラスカバーリップを調製し、加湿チャンバーで一晩37°Cおよび5%CO2で細胞をインキュベートする。ピラニア処理、プラズマ洗浄、またはUVオゾン洗浄を使用して、低いばね定数で柔らかくてチップのない片持ち器を洗浄します。次に、洗浄したカンチレバーをAFMスキャンヘッドに取り付ける。次に、きれいなサンプルチャンバーを準備し、純水でそれを満たします。まずガラス基板上で力曲線を走らせ、カンチレバーの感度を得ることによって水溶液中のカンチレバーを較正する。次に、熱ノイズスペクトルを記録して、ばね定数を抽出します。カンチレバーが正しく調整されたら、AFMスキャンヘッドを溶液から取り外します。取り付けられた片持ちレバーを数滴の純粋なエタノールで洗い、カンチレバーをスキャンヘッドで乾燥させます。5%CO2で生きている細胞環境エンクロージャを摂氏37度に予熱します。次に、DC2.4細胞を播種したガラスカバースリップをサンプルチャンバアセンブリに取り付け、すぐに600マイクロリットルのミディアムBをチャンバーに加えます。完成したアセンブリを AFM サンプル ステージに配置します。ヒトIL-2インキュベートCD4陽性T細胞をサンプルチャンバーに加えます。ターゲットT細胞がカバースリップの底に完全に落ち着くまで待ってから、顕微鏡下の視野に細胞を持ち込みます。今、ピペットで取り付けられたカンチレバーの端に生体適合性接着剤の2マイクロリットルの滴を追加します。カンチレバーに生体適合性の接着剤を塗布したら、密着性を最大限に高めるためには、その後のステップをできるだけ早く仕上げな必要があります。スキャニングヘッドをサンプルステージに素早く置き、接着剤でコーティングされたカンチレバーを溶液に浸します。健康 T 細胞が片持ち面の先端の下に位置するまでサンプル ステージを移動します。次に、走査ヘッドを動かして位置を細かく調整する。次に、手動でカンチレバーを下げます。50ミクロンのステップサイズから始まり、カンチレバー画像の鮮明さによって示されるように、10、5、2、そして最後に0.5ミクロンに徐々に減少します。ステッパーモーターの位置を保持し、カンチレバー先端とセルをより良く整列させるためにスキャンヘッドの位置を調整します。確固たる接触が、0.5~1.5ナノニュートンの典型的な力に対応する、レーザーの位置の小さな変位によって示されるまで続けます。30秒接触した後、片持ちレバーを引き込む。セルがカンチレバーと一緒に移動すると、アタッチが成功しました。それ以外の場合は、新しいカンチレバーに切り替える前に、接着ステップを最大3回繰り返します。付属のTセルをDC2.4セルの上に置き、サンプルステージとスキャンヘッドを移動します。適切なパラメータを設定した後、サンプル上で力分光法を実行します。新しい調査ラウンドのために、新しい、きれいな片持ち面を取り付ける。純水で較正し、T細胞樹状細胞ペアに戻り、スキャンを繰り返します。洗浄したガラスカバースリップをサンプルチャンバアセンブリに取り付けます。カバースリップの左側に、エタノールで希釈し、直径6ミクロンのポリスチレンビーズを含むビーズ溶液の滴を加えます。溶剤が蒸発したら、20倍の目的を備えた明視野顕微鏡を使用してビーズの間隔を確認します。個々のビーズが十分に分離されていることを確認します。次に、マイクロピペットチップまたはつまようじをよく混合したエポキシ接着剤に浸し、ここで示すように、右側に連続した穏やかなタッチで3つの別々のスポットに少量の接着剤を移します。次に、洗浄されたチップレスの片持ちをAFMスキャンヘッドに取り付け、クリーンな表面で空気中で較正し、ばね定数を得ます。次に、最後のエポキシ接着剤スポットの左側の境界上に片持ち線先を配置し、ステッパーモーターの小さなステップサイズを使用して、カンチレバーを接着剤の近くにゆっくりと持って来ます。接着剤と接触したら、AFMスキャンヘッドを後方に動かして片持ちを横に素早く引っ張ります。余分な接着剤をガラスにこすり落とし、先端の一番端に少量の接着剤しか残さずに取り除きます。さて、よく隔離されたビーズの上に片持ちの先端を動かします。ゆっくりと単一のビーズにアプローチし、約10秒間2〜5ナノニュートンの範囲でそれにしっかりと接触します。接触を行う際に、細かい先端調整を使用して、先端の一番の端にビーズを配置します。接点の端にある先端を引き込む。ビードが元の焦点面から消えた場合、着付けイベントが正常に行われます。最後に、ビーズを変えたカンチレバーを慎重に取り外し、エポキシが完全に治癒するために一晩片持ち箱に保管します。ここでは、1つのアプローチリトラクトサイクルの過程で、単一のT細胞と単一樹状細胞との結合相互作用からの典型的な力距離曲線を示します。明るい赤い曲線は延長曲線で、濃い赤色のカーブは引き込みカーブです。曲線の最小値は、T細胞と樹状細胞の間の最大接着力の尺度を示し、曲線の下の領域はそれらを分離するために必要な作業を表します。鋭利で段階的な破裂事象は、細胞界面での強い結合のために膜テザーが細胞表面から引き出され、連続引き下げ下で離散的に破壊されると解釈することができる。ここで、樹状細胞に結合する従来のT細胞は灰色で示され、樹状細胞に結合する制御性T細胞は青色で示されている。従来のT細胞と制御性T細胞との間の接着力は、抗原提示細胞によって提示されるペプチド抗原を認識し、一方、制御性T細胞は、免疫反応の終わりに向かって従来のT細胞媒介性免疫を遮断する抑制T細胞である。この蛍光標識された貪食性RAW264.7細胞の模式図は、単一の裸の6ミクロンの直径、ポリスチレンビーズで接近している細胞を示している。ビーズを係合すると、膜PIP2は接触部位、b近くでソートされ、その後、モエシンの膜動員を誘導し、貪食事象をもたらす。ここで説明する手順に加えて、AFMベースの単一細胞力分光法を蛍光イメージングと併用して、単一細胞レベルでリアルタイムで免疫細胞活性化を研究することができる。蛍光技術を組み合わせることで、樹状細胞とT細胞対の間に免疫シナプスを形成するなど、より複雑な細胞プロセスにリアルタイムで対処することを可能にする。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

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