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コンカナバリンによる涙腺への注射によって誘発される水性欠損性ドライアイ病のウサギモデル:薬物有効性...
コンカナバリンによる涙腺への注射によって誘発される水性欠損性ドライアイ病のウサギモデル:薬物有効性...
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A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

コンカナバリンによる涙腺への注射によって誘発される水性欠損性ドライアイ病のウサギモデル:薬物有効性研究への応用

Full Text
13,124 Views
08:04 min
January 24, 2020

DOI: 10.3791/59631-v

Robert A. Honkanen1, Liqun Huang2,3, Basil Rigas2

1Department of Ophthalmology,Stony Brook University, 2Department of Preventive Medicine,Stony Brook University, 3Medicon Pharmaceuticals, Inc.

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article describes a novel method for inducing acute or chronic dry eye disease in rabbits through the injection of concanavalin A into the lacrimal gland system. This technique offers a reliable and reproducible model for studying dry eye disease and evaluating pharmacological treatments.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Ophthalmology
  • Pharmacology

Background

  • Dry eye disease is a common condition affecting ocular health.
  • Existing animal models for dry eye disease have limitations.
  • Reliable models are essential for testing new treatments.
  • Concanavalin A is known to induce inflammation in lacrimal glands.

Purpose of Study

  • To develop a consistent method for inducing dry eye disease in rabbits.
  • To create a model suitable for pharmacological studies.
  • To enhance the understanding of dry eye disease pathophysiology.

Methods Used

  • Injection of concanavalin A into all portions of the lacrimal gland system.
  • Use of ultrasound guidance for accurate injection.
  • Sequential injections to extend the duration of dry eye symptoms.
  • Assessment of tear production and ocular health post-injection.

Main Results

  • The method reliably induces dry eye disease characterized by decreased tear production.
  • Inflammatory responses were observed in the lacrimal glands.
  • Symptoms lasted approximately one week after a single injection.
  • Repeated injections can lead to a permanent dry eye condition.

Conclusions

  • This method provides a robust model for studying dry eye disease.
  • It allows for the evaluation of therapeutic interventions.
  • Attention to anatomical details and ultrasound guidance is crucial for success.

Frequently Asked Questions

What is dry eye disease?
Dry eye disease is a condition characterized by insufficient tear production or poor tear quality, leading to discomfort and potential damage to the eye.
How does concanavalin A induce dry eye disease?
Concanavalin A induces an inflammatory response in the lacrimal glands, resulting in decreased tear production and dry eye symptoms.
Why is an animal model important for studying dry eye disease?
Animal models allow researchers to investigate the mechanisms of dry eye disease and test potential treatments in a controlled environment.
What are the advantages of this new method?
This method provides a reliable, reproducible model that can be used to study both acute and chronic forms of dry eye disease.
How long do the effects of the injections last?
The effects of a single set of injections typically last about one week, but repeated injections can lead to a more permanent condition.
What precautions should be taken during the procedure?
Proper precautions should be taken to prevent needle stick injuries, and familiarity with cranial anatomy is essential for successful injections.

この記事では、眼窩涙腺系のすべての部分にコンカナリンAを注入することによって、ウサギの急性または慢性ドライアイ病を誘発する方法の開発について説明します。この方法は、既に報告されているものよりも優れ、薬理剤の研究に適したドライアイの再現性、安定モデルを生成する。

我々の方法は、すべての涙腺を注入し、注射を繰り返す我々の方法のおかげで急性または慢性することができるドライアイ病の不足している信頼性の高い動物モデルを提供します。この技術は、広く可変サイズの腺に超音波ガイダンスを使用して、この方法を完全なアプローチにする優れた涙腺まで、劣った涙腺にコンカナリンAを確実に提供する。このモデルは、水欠乏性のドライアイ病を誘発する、シンプルで最適化された非外科的手段を提供する。

薬効や病態生理学の研究に適しています。後部の不安を特定し、超音波の局在化を利用することは、最初は困難な場合があります。すべての毛皮を取り除くことは、これらのステップの両方のための超音波の局在化を助けるために重要である。

この手順を実演するのが、私の研究室の大学院生であるウェイ・ホアンです。耳葉が完全に直立しなくなったリラックスした頭部位置を観察することによって軽度の鎮静を確認した後、マイクロピペットを使用して25マイクロリットルの防腐剤を含まないリドカインを最初の目に塗布し、まぶたの間に柔軟なワイヤー蓋鏡を配置する。0.3鉗子を使用して、その頂点でニクタンス膜をつかみ、角膜の上にそれを伸ばします。

26ゲージの鋭い針を使用して、リドカイン1%を1:100,000番目のエピネフリンの結合膜の基部に注入する。適度なブレは膜の上に形成されるべきである。その後、鏡を取り除き、左nictating膜に同じ注射を行います。

約5分後、蓋鏡を仲間の目に戻し、0.3鉗子を使ってその頂点のニッキング膜を引き込みます。ウエストコットはさみを使用して、そのベースでニクタンス膜を切断し、鏡を取り除きます。その後、目に局所抗生物質軟膏を置きます。

上皮腺注射のパルペブラル部分の場合、沈殿を確認した後、前眼窩および頭皮領域の毛皮を剪断し、脱毛クリームを使用して残留毛皮を完全に除去する。2分後にクリームを取り出し、適切な目に1%防腐剤を含まないリドカインの25マイクロリットルを塗布します。上まぶたをエグレットし、腺の手のひらの部分を示す突起が見えるまで後眼窩縁に穏やかな内側圧力を加える。

細かい歯の鉗子と27ゲージ針を装備した結核シリンを使用して、 針を2ミリメートル進める経結膜アプローチで直接組織に侵入し、注射直後にコンカナバリンAまたはCon A.の500マイクログラム溶液の100マイクロリットルを注入し、地球に内側圧力を加えて軌道上の涙腺を後部から突き出させる。閉じた湾曲した鉗子を使用して、頭蓋骨の骨の開口部が感じられるまで領域をインデントし、鉗子でさらに控えめな圧力を加えて、針の配置のランドマークとして皮膚にくぼみを残します。約4分の1インチのインデントマークの上に皮膚に垂直な27ゲージ針を装備した結核注射器を挿入し、注射部位と骨軌道リムの中間点を目指す横カンサスに向かって後部および外部に針をリダイレクトする。

針のハブに達したら、ゆっくりとILG注射のためのCon A.の1,000マイクログラム溶液の0.2ミリリットルを注入し、眼窩の下前部に沿ってILGの目立つ位置を見つけるために側面から動物を見る。外科用マーキングペンを使用して、ILG腺の表面的な部分がザイゴマ骨の表面的な休息場所から軌道上のより内側の位置に移行する皮膚に垂直線を引きます。垂直に保持された超音波プローブを皮膚のラインを横切って掃引し、ザイゴマ骨の端を特定する。

ILG 遷移は、周囲の高響部の線から認識可能な内側の境界線のない線に腺のイメージが変化する場合に発生します。この変化が観察されたときに皮膚に描かれた線に対するハンドピースの相対位置は、注入部位となる。コンAをザイゴマチックアーチの骨の内側のポイントに腺に配置するには、必要な注入深さを、ザイゴマ骨超響信号の深さに加えて、針の既知の長さを1ミリメートル引いたものとして設定します。

注射部位の腺に約12ミリメートルの針を挿入してから、身体外の露出針の長さが計算された差と等しくなるまでゆっくりと引き出します。その後、Con A溶液の1,000マイクログラムの0.2ミリリットルを注入し、超音波による注射の成功を確認する。ILGは、特徴的な超響性空間を示すべきである。

A注射は涙液産生の減少を伴う密なリンパ性浸潤によって特徴付けられる涙腺の強い炎症反応を誘発する。涙ラクトフェリンレベルは抑制され、角膜および結膜上皮が損なわれ、ローズベンガル染色が増加する。3つの軌道LG組織の注入は、一貫した均一なドライアイ病状態を生成する。

Con A注射の単一のセットは、10日目までにすべての臨床パラメータを正規化して約1週間続くドライアイ病を産生する。約1週間離れた連続的なCon A注射は、それに応じてドライアイ病の持続時間を延長する。約5セットの注射の後、ドライアイ病の状態は、多くの場合、さらなる注射を必要とせずに永久的になる。

涙腺構造を最適に局所化することが最も重要である。頭蓋の解剖学と超音波を使用してスキルと一緒に毛皮の除去を含む細部への注意に精通して、すべての結果を向上させます。この簡単な技術はシャープの使用を必要とするので、調査は針刺しの怪我を防ぐために適切な予防措置を取る必要があります。

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引き込み 問題155 ドライアイ ドライアイ病 ドライアイ症候群 ウサギモデル コンカナバリンA 涙液分解時間 シルマーの涙液検査 涙オスモルシティ バラベンガル染色 眼薬の開発

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