Name: げっ歯類の脳におけるタンパク質発現を測定するために近赤外蛍光と高解像度走査を用いること (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 4 s
Description: 学ぶ近赤外蛍光と高解像度走査を用いたげっ歯類脳のタンパク質発現測定法。免疫組織化学でAMPA/NMDA受容体比などの分子シグナル伝達経路を解析し、学習・記憶の神経生物学マーカーを定量化できます。

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この報告書の研究は、DK に授与される NIGMS (1P20GM103653) の助成金によって賄われた。

次のプロトコルは、デラウェア大学の制度的動物ケアと使用委員会 (IACUC) によって承認されました。男性スプレイグスプラーグラット約 55-75 日は、このプロトコルのために使用されました。
1. 脳の抽出と組織の準備
<ol><li>ラットが麻酔誘導チャンバ内のイソフルランを有する麻酔ラットはもはや足のピンチに対する反応を示さない。</li>
	<li>ギロチンを使用して急速な斬首を介してラットを犠牲にする。</li>
	<li>頭蓋骨の後部から前方に皮膚を切断し、頭蓋骨の上からクリアします。</li>
	<li>慎重に頭蓋骨の後部を除去し、その後、頭蓋骨の正中線をカット小さな解剖はさみを使用して、脳組織を損傷を避けるために、常に頭蓋骨の上に押し上げて、rongeurs を使用してください。</li>
	<li>脳を露出させるために頭蓋骨の右と左半分を剥がすために rongeurs を使用してください。</li>
	<li>小さなスパチュラを使用して脳と神経をすくい、慎重に脳を高め、ドライアイス (少なくとも-20 ° c) で冷やしたイソペンタンで脳を凍結させます。この後、スライスするまで-80 ° c の冷凍庫で脳を保存します。</li>
	<li>-9 ° c から-12 ° c の間で維持されるクライオスタット内の 30 ~ 50 μ m の対象領域で、脳をスライスします。直接ガラススライド上にスライスをマウントし、免疫細胞化学アッセイの時間まで-80 ° c の冷凍庫に保管してください。 注:このプロトコルに関心のある脳領域は海馬と扁桃体であった。</li>
</ol>2. 単一免疫組織化反応
注:二重免疫組織化反応の場合、このプロトコルは単一の免疫組織化学的反応と同じであり、この反応は、異なる宿主 (例えば、ウサギおよびマウス) の2つの一次抗体と、対応する2つの二次抗体を有するプライマリーは、単一のホスト (例えば、ヤギの antirabbit とヤギの antimouse) からでなければなりません。二次抗体はまた、高解像度スキャナで利用可能な2つの異なるスペクトルからでなければなりません。例えば、680 nm および1つの二次抗体800CW で発光スペクトルピークを有する1つの二次抗体 (780 nm での発光スペクトルピーク) がある。
<ol><li>ガラスのスライドを冷凍庫から取り出し、室温まで30分平衡化ことができます。</li>
	<li>パラホルムアルデヒドの下で、室温で1− 2 h の 0.1 M リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 中に 4% の脳組織を固定します。</li>
	<li>スライドは、0.1 M トリスバッファ付き生理食塩水 (TBS) で3回、それぞれ10分間リンスします。透過処理は、軽度の洗剤 (例えば、0.01% の洗剤) で30−60分間スライドをインキュベートすることによって細胞膜を刺激する。</li>
	<li>TBS でスライドを15分間洗浄します。</li>
	<li>正しい濃度で PBS 中の目的タンパク質の一次抗体を希釈します。例えば、直ちに初期遺伝子 c − Fos を検出し、1:500 の濃度でウサギ原発性抗 c − Fos 抗体を調製する。</li>
	<li>一次抗体溶液を直接脳組織 (3 インチ x 1 インチのスライドあたり約200μ l) にピペットで挿入します。</li>
	<li>カバースリップを使用して、室温または一晩 (~ 17 h) で4° c の1− 2 h の一次抗体希釈で、ガラススライド上の脳組織をインキュベートします。</li>
	<li>少量の洗剤を加えた TBS 中のカバースリップを取り除き、洗浄します (例: 0.01% の洗剤、「TBS-T」) それぞれ15分間で4回。</li>
	<li>2時間室温で二次抗体で脳切片をインキュベートするためにカバースリップを使用します。 注:二次抗体は、適切な希釈液に、TBS、洗剤、および 1.5% の宿主血清を含有する希釈剤でなければならない。例えば、1: 2000 の希釈液中のヤギ二次抗体には、1.5% のヤギ血清と 0.05% の洗剤が含まれます。</li>
	<li>TBS-T でスライドを4回、それぞれ20分間、TBS で4回、それぞれ20分間洗浄します。</li>
	<li>ドライスライドを暗所で室温で一晩で乾燥させる。スライドが乾いている場合は、イメージングの準備ができています。</li>
</ol>3. イメージング
<ol><li>近赤外の走査インターフェイスにスライドを置き、組織を下向きにします。選択ツールを使用して、一度に1つのガラススライドまたは複数のスライドのいずれかをイメージします。</li>
	<li>イメージスライドは、オフセットが 0 nm、解像度が21μ m の最高品質設定を使用します。スキャンは通常、使用するスキャン装置に応じて13−19時間かかります。</li>
	<li>画像解析ソフトウェア (例: ImageStudio) にイメージをインポートして、半定量的なタンパク質分析を表示してマークします。</li>
</ol>4. タンパク質発現解析
<ol><li>画像解析ソフトウェアを開き、画像がスキャンされた作業領域を選択します。</li>
	<li>画像解析ソフトウェアでスキャンした画像を開き、スキャンを表示し、表示される波長と、未加工の画像または合計定量放出を変更せずに表示するコントラスト、明るさ、および倍率を調整します。</li>
	<li>定量化する主要な領域を特定し、ページの上部にある [解析] タブを選択し、[矩形を描画] (または [楕円を描画/フリーハンドで描画)] を選択して、定量化する領域の上に四角形を描画します。</li>
	<li>四角形のサイズを表示するには、画面の左下にある図形を選択してから、右下にある [列] を選択します。図形のサイズを指定するには、高さと幅の列を追加します。 注:定量化を比較する際には、形状サイズを制御することが重要です。その領域のエミッションの正確なサンプリングを得るためには、所望の定量化場所内に配置された同一の形状を使用することをお勧めします。</li>
	<li>その後、図形に名前を付け、繰り返します。すべてのリージョンをサンプリングしたら、[列] タブから使用可能なデータを集計および分析できます。</li>
</ol>

<ol><li>Kandel, E. R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKandel%2C+ER+%22Principles+of+Neural+Science%22">Principles of Neural Science</a>. , McGraw Hill. New York. (2013).</li>
<li>Byrne, J. H., Roberts, J. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aByrne%2C+JH+%22From+Molecules+to+Networks%3A+An+Introduction+to+Cellular+and+Molecular+Neuroscience%22">From Molecules to Networks: An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience</a>. , Academic Press/Elsevier. (2009).</li>
<li>Salami, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+D2%2F3+binding+potential+modulates+neural+signatures+of+working+memory+in+a+load-dependent+fashion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Dopamine D2/3 binding potential modulates neural signatures of working memory in a load-dependent fashion.</a> Journal of Neuroscience. , (2018).</li>
<li>Merali, Z., Khan, S., Michaud, D. S., Shippy, S. A., Anisman, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+amygdaloid+corticotropin-releasing+hormone+%28CRH%29+mediate+anxiety-like+behaviors%3F+Dissociation+of+anxiogenic+effects+and+CRH+release%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Does amygdaloid corticotropin-releasing hormone (CRH) mediate anxiety-like behaviors? Dissociation of anxiogenic effects and CRH release.</a> European Journal of Neuroscience. 20 (1), 229-239 (2004).</li>
<li>English, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dataset+of+mouse+hippocampus+profiled+by+LC-MS%2FMS+for+label-free+quantitation%5BTitle%5D)+AND+%22Data+in+Brief%22%5BJournal%5D)">Dataset of mouse hippocampus profiled by LC-MS/MS for label-free quantitation.</a> Data in Brief. 7, 341-343 (2016).</li>
<li>David, M. A., Tayebi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+protein+aggregates+in+brain+and+cerebrospinal+fluid+derived+from+multiple+sclerosis+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neurology%22%5BJournal%5D)">Detection of protein aggregates in brain and cerebrospinal fluid derived from multiple sclerosis patients.</a> Frontiers in Neurology. 5, 251(2014).</li>
<li>Oliver, C., Jamur, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunocytochemical+methods+and+protocols%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Immunocytochemical methods and protocols.</a> Methods in Molecular Biology. , (2010).</li>
<li>Spitzer, N., Sammons, G. S., Price, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autofluorescent+cells+in+rat+brain+can+be+convincing+impostors+in+green+fluorescent+reporter+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Autofluorescent cells in rat brain can be convincing impostors in green fluorescent reporter studies.</a> Journal of Neuroscience Methods. 197 (1), 48-55 (2011).</li>
<li>Knox, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+c-Jun+to+identify+fear+extinction+learning-specific+patterns+of+neural+activity+that+are+affected+by+single+prolonged+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Researach%22%5BJournal%5D)">Using c-Jun to identify fear extinction learning-specific patterns of neural activity that are affected by single prolonged stress.</a> Behavioural Brain Researach. 341, 189-197 (2018).</li>
<li>Knox, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+circuits+via+which+single+prolonged+stress+exposure+leads+to+fear+extinction+retention+deficits%5BTitle%5D)+AND+%22Learning+%26+Memory%22%5BJournal%5D)">Neural circuits via which single prolonged stress exposure leads to fear extinction retention deficits.</a> Learning & Memory. 23 (12), 689-698 (2016).</li>
<li>Malinow, R., Malenka, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AMPA+receptor+trafficking+and+synaptic+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">AMPA receptor trafficking and synaptic plasticity.</a> Annual Review of Neuroscience. 25, 103-126 (2002).</li>
<li>Nabavi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+a+memory+with+LTD+and+LTP%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Engineering a memory with LTD and LTP.</a> Nature. 511 (7509), 348-352 (2014).</li>
<li>Kimmelmann-Shultz, B., Mohammadmirzaei, N., Della Valle, R., Knox, D. Using high resolution near infrared imaging to measure fear-learning induced changes in AMPA/NMDA ratios throughout the fear circuit. The Annual Delaware Neuroscience Research and Poster Symposium, Newark, DE, , (2018).</li>
<li>Eagle, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+prolonged+stress+enhances+hippocampal+glucocorticoid+receptor+and+phosphorylated+protein+kinase+B+levels%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience+Research%22%5BJournal%5D)">Single prolonged stress enhances hippocampal glucocorticoid receptor and phosphorylated protein kinase B levels.</a> Neuroscience Research. 75 (2), 130-137 (2013).</li>
</ol>

作者は何も開示することはありません。

この記事では、近赤外免疫細胞化学を高解像度スキャニングと組み合わせて使用することで、脳組織におけるタンパク質発現の半定量的な測定値を得ることができることを示しています。また、同じ脳領域で同時に2つのタンパク質を標識するために使用することができます.我々は以前、近赤外免疫組織化学を用いて、複数の脳領域9,10における早期の遺伝子発現を測定してきた。早期の初期の遺伝子は、神経活動の尺度として使用することができる。また、これらの半定量的なタンパク質発現の測定を統計分析に適用し、脳領域を、即時初期遺伝子の相関レベル (IEGs) でグループ化することを可能にしました。これを機能的接続性の尺度として使用し、感情学習とメモリ9,10の間の恐怖回路内のノード間のストレスが機能的な接続にどのように影響するかを調べた。我々は、高解像度スキャニング13を備えた近赤外免疫細胞化学...

神経科学の研究は、脳内の細胞が特定の機能1を媒介する方法の調査に関するものです。これらは、グリア細胞が中枢神経系において免疫を与える方法などの性質の細胞であるか、または背部海馬におけるニューロンの活性が空間的なナビゲーションをもたらす方法を説明することを目的とする実験を伴うことができる。広い意味では、細胞機能は、セル内で発現されているタンパク質およびこれらのタンパク質2の活性によって決定される。その結果、脳細胞におけるタンパク質の発現および/または活性の測定は、神経科学の研究にとって重要である。
脳内のタンパク質発現を測定するために、多くの技術が利用可能である。これらには、小ペプチド4の受容体密度3およびマイクロ透析のための陽電子放射地形などのインビボの方法が含まれる。より一般的には、ex vivo の方法は、タンパク質の機能および発現を検査するために使用される。これらには、質量分析技術5、ウェスタンブロットおよび酵素結合免疫吸着アッセイ (ELISA)6、および免疫細胞化学7が含まれる。免疫細胞化学は、神経科学の分野で広く使用されています。この技術は、一次抗体を使用して、目的のタンパク質 (または抗原) を検出する (例えば、c − Fos) および共役二次抗体がタンパク質-一次抗体複合体を検出することを含む (図 1)。タンパク質-一次抗体-二次抗体複合体の検出を可能にするために、二次抗体は、それらに結合した西洋ワサビペルオキシダーゼ (HRP) などの酸化剤を有する。これにより、光顕微鏡7を使用して検出することができる細胞における析出物の形成を可能にする。二次抗体はまた、化学物質がそれらに共役して蛍光を発することができます (すなわち、蛍光色素)。これらの化学物質を刺激すると光が放出され、これはタンパク質-一次抗体-二次抗体複合体7を検出するために使用することができる。最後に、一次抗体は還元剤と蛍光性化学物質を結合させ、二次抗体の必要性を直接否定することがあります (図 1)。
興味深いことに、多くの免疫細胞化学方法は、脳細胞のタンパク質の可視化を可能にするが、特定の細胞または脳領域内のタンパク質の量を定量化する能力はない。還元反応からの析出物を検出するために光顕微鏡を使用することは、ニューロンおよびグリアの可視化を可能にするが、この方法は、細胞内または特定の脳領域におけるタンパク質発現を定量化するために使用することはできない。理論上、蛍光顕微鏡は、このために使用することができるが、蛍光性二次抗体から放出される光は、タンパク質−一次抗体−二次抗体複合体の尺度であるからである。しかしながら、脳組織における自己蛍光は、脳組織8におけるタンパク質発現を定量化するために蛍光顕微鏡を使用することを困難にすることができる。結果として、脳組織の蛍光画像から放出される光は、脳内のタンパク質発現を定量化するためにめったに用いられない。
これらの問題の多くは、高解像度スキャン9,10と共に近赤外免疫細胞化学を使用して対処することができます。本稿では、近赤外発光スペクトルの蛍光色素と結合した免疫細胞化学を高解像度スキャニング (例えば 10 ~ 21 μ m) と組み合わせることで、異なるタンパク質の半定量を可能にするシャープな画像を得る方法について述べる。脳領域。

<table><tbody><tr><td>脳抽出</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>麻酔誘導室</td><td>ケント・サイエンティフィック</td><td>VetFlo-0530SM</td><td></td></tr><tr><td>クライネ・ギロチン</td><td>ハーバード装置</td><td>73-1920</td><td></td></tr><tr><td>フリードマン・ロンガー</td><td>ファイン・サイエンス・ツール</td><td>16000-14</td> 頭<td>蓋骨の裏側を取り除くために使用</td></tr><tr><td>繊細な解剖はさみ</td><td>フィッシャー・サイエンティフィ</td>ック <td>08-951-5</td><td>頭蓋骨の正中線に沿って上向きにカットするために使用されます</td></tr><tr><td>マイクロスパチュラ</td><td>フィッシャー サイエンティフィ</td>ック <td>21-401-5</td><td>脳をすくい取るために使用されます</td></tr><tr><td>ガラス顕微鏡スライド</td><td>フィッシャー サイエンティフィ</td>ック <td>12-549-6</td><td></td></tr><tr><td>免疫組織化学反応</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;Triton X-100</td><td></td><td></td><td>パラホルムアルデヒドに固着した細胞を透過処理する中性界面活性剤として使用され、宿主血清や二次抗体と組み合わせた中性界面活性剤としても使用されます&nbsp;</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td></td><td></td><td>TBS&nbsp;に少量添加した洗剤として使用され、一次抗体Licor Odysseyスキャナーでスライドをカバースリップした後、TBS-Tを調達します</td></tr><tr><td></td><td>Licor Biotechnology Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>イメージスタジオ</td><td>リコーバイオテクノロジー株式会社</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

げっ歯類の脳におけるタンパク質発現を測定するために近赤外蛍光と高解像度走査を用いること

Using Near-infrared Fluorescence and High-resolution Scanning to Measure Protein Expression in the Rodent Brain

神経科学は、脳内の細胞が様々な機能を媒介する方法の研究であります.ニューロンおよびグリアにおけるタンパク質発現の測定は、細胞機能が細胞タンパク質の組成および活性によって決定されるため、神経科学の研究にとって重要である。この記事では、免疫細胞化学を近赤外高解像度スキャンと組み合わせることで、異なる脳領域におけるタンパク質発現の半定量的測定値を提供する方法について説明します。この技術は、同じ脳領域内の単一または二重タンパク質発現に使用することができる。この方法でタンパク質を測定することにより、実験的操作、学習と記憶の分子シグネチャ、分子経路での活動、複数の脳領域における神経活動を伴うタンパク質発現の相対的変化を得ることができます。正しいタンパク質と統計解析を使用して、脳領域間の機能的な接続性も決定することができます。実験室で免疫細胞化学を実装する容易さを考えると、近赤外高解像度スキャンで免疫細胞化学を使用すると、神経科学者の能力を拡張して、システムレベルで神経生物学プロセスを調べることができます。

免疫組織化学の高解像度スキャンを使用する前に、プロトコルが動作することを確認する必要があります。これは、同じ動物からの脳切片が一次および二次抗体と共にインキュベートされる検証アッセイを用いて、二次抗体単独で、または一次でも二次抗体でも達成することができる。このような検証アッセイの結果を図 2に示す。この反応において、我々は、背部海馬および扁桃体における直初期の遺伝子 c-ジュンを検出した。C-ジュンの発現は、一次および二次抗体が脳組織に適用された場合にのみ認められた。
図 3は扁桃核における二重タンパク質検出を示す。この実験では、同一脳組織におけるα-アミノ-3-ヒドロキシ-5-メチル-4-isoxazolepropionic 酸 (AMPA) 受容体と N-メチル-D-アスパルレセプター (NMDA) 受容体の NR2A サブユニッ...

ここでは、近赤外染料と免疫組織化学、高分解能走査を併用し、脳領域におけるアッセイタンパク質を測定するプロトコルを紹介します。

Neuroscience is the study of how cells in the brain mediate various functions. Measuring protein expression in neurons and glia is critical for the study ...

このプロトコルは、同じ脳領域内の2つのタンパク質の定量化を可能にするので、重要である。これにより、実験者は、パンおよびリンフォタンパク質をアッサングすることによって、脳領域における分子シグナル伝達経路の活性を調べることができる。また、異なる認知現象のマーカーであるタンパク質のアッセイにも使用できます。免疫検査などの比較的単純な手法を用いて、一般的により関与する技術を必要とする質問に答えています。分子シグナル伝達経路の活性を調べることを含む,AMPA/NMDA比を調べる。マイナス9度とマイナス12度の間に維持されたクライオスタットを使用して、30〜50マイクロメートルの関心領域で以前に単離され、凍結したラット脳をスライスする。ガラススライドに直接スライスを取り付け、免疫細胞化学までマイナス80度で保存します。冷凍庫からガラススライドを取り出し、室温まで30分間平衡させます。ヒュームフードの下で作業し、組織固定のために室温で1〜2時間0.1モルPBSで4%パラホルムアルデヒドにスライドを置きます。その後、0.1モルTBSでスライドを3回3回10分間すすます。細胞膜を透過させるには、中性洗剤でスライドを30〜60分間インキュベートする。そして、TBSで再び15分間3回すすいでください。原稿に記載されているように正しい濃度でPBSに関心のあるタンパク質に対する一次抗体を希釈する。ピペット一次抗体溶液を脳組織に直接。スライドにカバースリップを置き、一次抗体希釈液中の脳組織を室温で1〜2時間インキュベートします。インキュベーション後、カバースリップを取り外し、少量の洗剤を加えたTBSでスライドを洗浄し、それぞれ15分間4回洗浄します。TBS、洗剤、および1.5%の宿主血清を含む希釈二次抗体。二次抗体をスライドに加え、カバースリップで覆い、室温で2時間インキュベートします。インキュベーション後、TBS-Tのスライドをそれぞれ20分間4回、TBSでそれぞれ20分間4回リンスします。暗闇の中で室温でスライドを乾燥させ、一晩乾燥させます。スライドを近赤外線スキャンインターフェースに配置し、組織を下に向けます。選択ツールを使用して、複数のスライドを一度にイメージ化します。解像度 21 マイクロメートルの最高品質設定を使用して、スライドをイメージします。ゼロナノメートルのオフセットで、画像分析ソフトウェアに画像をインポートして、半定量的タンパク質分析の表示とマークを付けます。画像解析ソフトウェアを開いた後、画像をスキャンした作業領域を選択します。次に、スキャンした画像を画像解析ソフトウェアで開き、スキャンを表示し、生画像または総定量化された放出を変更することなく、表示される波長、コントラスト、明るさ、および拡大率を調整します。定量の主要領域を特定したら、ページの上部にある解析タブを選択し、四角形を描画を選択して、定量化される領域に長方形を描画します。四角形のサイズを表示するには、画面の左下にある図形を選択します。次に、右下に沿って列を選択します。次に、高さと幅の列を追加して、図形のサイズを識別します。最後に、図形に名前を付けて繰り返します。すべての領域をサンプリングしたら、[列] タブで使用できるデータの結合と分析を続行します。このプロトコルが機能することを確認するために、脳切片を一次および二次抗体、二次抗体のみ、または一次抗体または二次抗体と共にインキュベートした。直ちに初期の遺伝子c-jun発現は、一次抗体と二次抗体の両方が脳組織に適用された場合にのみ、眼下海馬と扁桃体で検出された。NMDA受容体のAMPA受容体およびNR2AサブユニットのGluR1サブユニットは扁桃体核における便タンパク質検出においてアッセイした。これは、学習と記憶の神経生物学的シグネチャである扁桃体のサブ核におけるAMPA NMDA受容体の比率を調べることを可能にした。タンパク質発現の平均および正規化された尺度は、腹側海馬の高分解能スキャンから得られた。画像解析ソフトを用いて、形状からの光の対象領域と平均強度に矩形を配置し、タンパク質発現の尺度であるフルオロフォア発現の尺度として用いた。正規化曲線を得るために、曲線下の領域に高いシグナルと低い信号を発現する領域に形状を配置し、タンパク質発現の尺度として使用した。この手順で最大の闘争は、抗体を見つけて、それが動作することを確認することです。アプリケーションは簡単です。私のアドバイスは、まず定期的な免疫学的処置を試み、次にこの技術を試してみるとよいでしょう。常に検証アッセイを最初に実行する。覚えておくべきことは、抗体希釈を確認し、それが正しく適用されていることを確認することです。これらの手順を実行しないと、プロシージャは失敗します。

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神経科学

ここでは、半厚い脳スライスの画像蛍光標識細胞に迅速かつ簡単な方法を説明します。...

セミ厚い脳スライスにおける高解像度蛍光イメージングへの迅速なアプローチ

このビデオでは、特定のシナプス前タンパク質の分布を定量化するためのマウス脳切片の免疫蛍光染色を実演しています。このプロセスでは、非特異的な部位をブロックし、標的タンパク質と参照マーカーに一次抗体を適用し、続いて二次抗体の標識と核対比染色を行います。リファレンスマーカーは、一貫したベースラインを提供することで正確な定量を保証し、シナプス前タンパク質の分布は共焦点顕微鏡を使用して脳領域全体で分析されます。...

免疫蛍光法を用いたマウス脳におけるシナプス前タンパク質の分布の定量化

出典:Jolly, S., et.al.二重蛍光In Situハイブリダイゼーションと免疫標識を組み合わせて、マウス脳切片における3つの遺伝子の発現を検出します。J. Vis. Exp. (2016).このビデオでは、ダブル蛍光in...

マウス脳切片における遺伝子発現を検出するための二重蛍光In Situハイブリダイゼーションの実施

出典: Kimmelmann-Shultz, B., et.al. }近赤外蛍光と高解像度スキャンを使用して、げっ歯類の脳内のタンパク質発現を測定します。J. Vis. Exp. (2019)...

近赤外蛍光と高分解能スキャニングを用いたげっ歯類脳におけるタンパク質発現の測定

出典: Lacin, E., et al.in vivoでの神経伝達物質の光学検出のための細胞ベースの神経伝達物質蛍光工学レポーター(CNiFER)の構築J. Vis. 経験。(2016年)このビデオは、マウス皮質に事前に注入された特殊なレポーター細胞である細胞ベースの神経伝達物質蛍光工学レポーター(CNiFER)を使用して、in...

細胞ベースの神経伝達物質蛍光工学レポーターを使用した神経伝達物質放出のイメージング

このプロトコルの目標は、蛍光活性化細胞選別(FACS)技術を使用して、細胞型特異的な遺伝子発現、エピジェネティックマーカー、およびまたはタンパク質発現のその後の解析のために、特定のタイプの神経細胞を選別することです。...

蛍光活性化セルソーティングを用いたラット脳組織における細胞型特異的遺伝子発現の検討

このビデオは、Thy1-GFPトランスジェニックラインのin vivo...

同時2光子<em&gt;インビボ</emマウス脳梁膨大後部皮質におけるシナプス入力とシナプス後ターゲットの&gt;イメージング

このプロトコルでは、相関超解像光学顕微鏡および走査型電子顕微鏡像によるゼブラフィッシュの網膜の細胞内タンパク質局在結果を取得する必要な手順について説明します。...

ゼブラフィッシュの網膜におけるタンパク質局在を解決する相関超解像および電子顕微鏡観察

ここでは、蛍光染色を使用してマーカー蛋白質、共焦点顕微鏡、コンピューターによる解析を基準にしてシナプス蛋白質の分布を決定する定量的アプローチについて述べる。...

蛍光抗体法を用いたマウス脳内シナプス蛋白質の不均質分布の定量化

このプロトコルは、げっ歯類の脳の異なる細胞区画におけるユビキチンプロテアソーム系(UPS)活性を効率的に定量するように設計されている。ユーザーは、同じ動物の核、細胞質およびシナプス画のUPS機能を調べることができ、これらの複雑な分析を行うために必要な時間と動物の数を減らすことができます。...

げっ歯類脳における細胞内ユビキチンプロテアソーム活性の定量化

げっ歯類やヒト被験者の脳組織から 生き生きとした...

げっ歯類とヒト脳組織におけるアクチン重合状態評価のための時間効率の高い蛍光分光法ベースアッセイ

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げっ歯類の脳におけるタンパク質発現を測定するために近赤外蛍光と高解像度走査を用いること

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