Name: ヒト線維筋組織を可視化するホスホトン酸調製のマイクロX線コンピュータ断層撮影の使用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-09-05T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 6 s
Description: 学ぶホスホトン酸調製マイクロCTを用いたヒト眼窩輪筋靭帯の非侵襲的可視化法。このプロトコルは軟組織コントラストを向上させ、繊細な線維筋組織の三次元構造解析を可能にする。

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本研究は延世大学医学部の教員研究助成金(6-2018-0099)の支援を受けた。著者らは、延世大学医学部に自分の体を非常に寛大に寄付した人々に感謝します。私たちは、彼らの技術サポート(延世大学医学部外科解剖学教育センターのスタッフ)に対して、キム・ジュンホとチョン・ホー・バンに感謝しています。また、本研究で使用される高品質のマイクロCTスキャンシステムに対しても、株式会社ジェノスに感謝しています。

この研究で利用されたすべての死体は、延世大学医学部の外科解剖学教育センターに合法的に寄付されました。
1. サンプルの取得
<ol><li>サンプル収穫のための切断領域を示すために、色鉛筆で死体に切開線を描きます。描かれた切開線が中間のカンサスに中間的に伸び、横に横に、下まぶたの優れた境界線に優れ、軌道縁から線の下1cmに劣っていることを確認する。 注:マイクロCT機器の最大スキャンサイズに基づいてサンプルサイズを検討してください(当社の機器は、7×7センチメートルの最大オブジェクト寸法の画像を取得することができます)。ここでは、ORL領域から幅約1cm、長さ3cm、重さ1.25gの試料を採取した。</li>
	<li>切開ラインに従って顔のティッシュを刃で切る。刃先が骨に触れるように、切り傷が深いことを確認します。サンプルには、皮膚、皮下組織、筋肉、脂肪、および骨膜が含まれている必要があります。</li>
	<li>サンプルを直ちに10%ホルマリンで固定し、室温で5~7日間保存します(図1A)。 注:エンバードとフレッシュな死体の両方がこの研究に使用できます。ただし、死体の固定ソリューションは、生物学的実験で使用されるソリューションとは若干異なる場合があります。したがって、エンバード死体からサンプルを得た後でも、再び10%ホルマリンでサンプルを固定することをお勧めします。</li>
</ol>2. 染色の準備
<ol><li>固定した後、サンプルを3個(厚さ5~7mm)にスライスします。このプロセス中に各ピースの位置と方向を失わなさ。 注:私たちが使用するmicroCTスキャナは、7 cm³の最大サイズをカバーすることができますが、PTAソリューションは、それが厚すぎる場合、サンプルに正常に浸透することはできません。</li>
	<li>サンプルの方向を後で確認できるように、針と黒い糸を使用して各部分の上側を縫います。</li>
	<li>1日30%、50%、70%のエタノール溶液でサンプルを脱水します。</li>
	<li>染色するまで70%エタノールにサンプルを入れる。</li>
</ol>3. PTAの準備
<ol><li>マイクロCTスキャンがスケジュールされる1週間前にPTA染色プロセスを開始します。</li>
	<li>70%エタノール溶液の210 mLを準備し、それにPTA電力の2.1グラムを追加します。55-60 rpmでシェーカーを使用してよく混ぜます。 注:PTA溶液の濃度は、エタノール中の1%でなければなりません。</li>
	<li>スライスした各部分に3つの70 mLプラスチック容器を準備します。PTA ソリューションを使用してコンテナーを埋めます。容器に標本を浸し、効果的な浸透のためにシェーカーに置きます。サンプルは5~7日間放置します(図1B)。</li>
	<li>染色が完了したら、70%エタノールでサンプルを保存し、スキャンの準備をします。 注:染色されたサンプルは数ヶ月間維持することができますが、完全な染色を確実にするために、できるだけ早くサンプルをスキャンすることをお勧めします。</li>
</ol>4. マイクロCTスキャン
<ol><li>乾燥を防ぐためにパラフィルムでサンプルを包みます。変形を引き起こす可能性があるため、サンプルをきつく包みすぎないようにしてください。</li>
	<li>スキャナを開き、サンプルをトレイに置きます(図2)。</li>
	<li>ソース電圧(kV)=70、ソース電流(μA)=114、Alフィルタ=0.5mm、画像ピクセルサイズ(μm²)=20、ピクセル=2240×2240、露出(ms)=500、回転ステップ(deg)=0.3) 注: パラメータは、使用するサンプルやスキャナに従って変更できます。</li>
	<li>スキャンを開始します。 注:スキャンは、意図した解像度とスキャナの速度に応じて30~60分かかります。</li>
</ol>5. データの再構築と最適化
<ol><li>再構築ソフトウェアを実行します。スキャンしたファイルを起動するには、[アクション]メニューで [データセットを開く]を選択します。</li>
	<li>[再構築]ウィンドウの[設定]タブを選択します。次のようにパラメータを設定します: リングアーティファクト削減 = 7、ビーム硬化補正(%) = 40。 注: パラメータはサンプルに従って変更できます。</li>
	<li>[スタート]タブで [開始]タブを選択して、再構築を開始します。最終的なデータは、指定されたフォルダに格納されます。</li>
	<li>ファイルサイズ変更ソフトウェアを実行します。再構築されたファイルを起動するには、[ソース データ セット]を選択します。</li>
	<li>[宛先データ セット]タブでjpgを選択します。</li>
	<li>[サイズ変更]オプション1/2を選択し、[品質]オプションを[補間なし(高速)]オプション)を選択します。
</li>
	<li>スライド バーを[画像圧縮]タブで100 (最高)に調整します。 注: サイズ変更オプションは、3D レンダリング時にコンピュータの速度が低下しないようにすることです。ただし、広範囲にサイズ変更すると解像度が低下する可能性があります。処理が改善された許容可能な解像度を実現するために、半分にサイズ変更することをお勧めします。</li>
</ol>6. 3D再構成
<ol><li>3D ボリューム レンダリング ソフトウェアを実行します。</li>
	<li>データセットを起動するには、[アクション>ボリューム データを読み込む]を選択します。</li>
	<li>[転送機能エディタ]タブのヒストグラムの形状転送機能を変更して、明るさとコントラストレベルを調整します。</li>
	<li>[オプション>照明]を選択します。</li>
	<li>[シャドウ]アイコンと[サーフェス ライティング]アイコンを選択します。これらの効果は、現実的なモデリングトーンを提供します。</li>
	<li>モデルを移動 (クリックアンドドラッグ)、回転 (右クリックとドラッグ)、およびモデルを拡大または縮小して最適なビューを見つけます。</li>
	<li>平面をスライド(shift キーを押しながら内側の方向にドラッグ) をクリックすると、断面イメージが表示されます (図 3)。</li>
	<li>ライトアイコンをオンにします。照明表示バーを調整し、表示に最適な照明を見つけます。次に、アイコンをオフにして[照明]タブを閉じます。</li>
	<li>[オプション]を選択し、[クリッピング ボックスを表示]を選択して、最終的なイメージのボックスを非表示にします。</li>
	<li>[アクション>画像を保存する] を選択してイメージを保存します。</li>
</ol>

<ol><li>Nierenberger, M., Remond, Y., Ahzi, S., Choquet, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+the+three-dimensional+collagen+network+in+soft+tissues+using+contrast+agents+and+high+resolution+micro-CT%3A+Application+to+porcine+iliac+veins%5BTitle%5D)+AND+%22Comptes+Rendus+Biologies%22%5BJournal%5D)">Assessing the three-dimensional collagen network in soft tissues using contrast agents and high resolution micro-CT: Application to porcine iliac veins.</a> Comptes Rendus Biologies. 338 (7), 425-433 (2015).</li>
<li>Vymazalová, K., Vargová, L., Zikmund, T., Kaiser, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+possibilities+of+studying+human+embryos+and+foetuses+using+micro-CT%3A+a+technical+note%5BTitle%5D)+AND+%22Anatomical+Science+International%22%5BJournal%5D)">The possibilities of studying human embryos and foetuses using micro-CT: a technical note.</a> Anatomical Science International. 92 (2), 299-303 (2017).</li>
<li>Tesařová, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+micro+computed-tomography+and+3D+printing+for+reverse+engineering+of+mouse+embryo+nasal+capsule%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Instrumentation%22%5BJournal%5D)">Use of micro computed-tomography and 3D printing for reverse engineering of mouse embryo nasal capsule.</a> Journal of Instrumentation. 11 (3), 1-11 (2016).</li>
<li>Nemetschek, T., Riedl, H., Jonak, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topochemistry+of+the+binding+of+phosphotungstic+acid+to+collagen%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Topochemistry of the binding of phosphotungstic acid to collagen.</a> Journal of Molecular Biology. 133 (1), 67-83 (1979).</li>
<li>Rao, R. N., Fallman, P. M., Falls, D. G., Meloan, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+of+PAS-phosphotungstic+acid-Diamine+Supra+Blue+FGL+and+immunological+reactions+for+type+I+collagen%5BTitle%5D)+AND+%22Histochemistry%22%5BJournal%5D)">A comparative study of PAS-phosphotungstic acid-Diamine Supra Blue FGL and immunological reactions for type I collagen.</a> Histochemistry. 91 (4), 283-289 (1989).</li>
<li>Metscher, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroCT+for+comparative+morphology%3A+simple+staining+methods+allow+high-contrast+3D+imaging+of+diverse+non-mineralized+animal+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Physiology%22%5BJournal%5D)">MicroCT for comparative morphology: simple staining methods allow high-contrast 3D imaging of diverse non-mineralized animal tissues.</a> BMC Physiology. 9 (11), (2009).</li>
<li>Metscher, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroCT+for+Developmental+Biology%3A+A+Versatile+Tool+for+High-Contrast+3D+Imaging+at+Histological+Resolutions%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Dynamics%22%5BJournal%5D)">MicroCT for Developmental Biology: A Versatile Tool for High-Contrast 3D Imaging at Histological Resolutions.</a> Developmental Dynamics. 238 (3), 632-640 (2009).</li>
<li>Nieminen, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+collagen+distribution+in+articular+cartilage+using+contrastenhanced+micro-computed+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Osteoarthritis+Cartilage%22%5BJournal%5D)">Determining collagen distribution in articular cartilage using contrastenhanced micro-computed tomography.</a> Osteoarthritis Cartilage. 23 (9), 1613-1621 (2015).</li>
<li>Kwon, O. J., Kwon, H., Choi, Y., Cho, T., Yang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+structure+of+the+orbicularis+retaining+ligament%3A+an+anatomical+study+using+micro+computed+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional structure of the orbicularis retaining ligament: an anatomical study using micro computed tomography.</a> Scientific Reports. 8 (1), 17042(2018).</li>
<li>Dullin, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%CE%BCCT+of+ex-vivo+stained+mouse+hearts+and+embryos+enables+a+precise+match+between+3D+virtual+histology%2C+classical+histology+and+immunochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">μCT of ex-vivo stained mouse hearts and embryos enables a precise match between 3D virtual histology, classical histology and immunochemistry.</a> PLoS One. 12 (2), e0170597(2017).</li>
<li>Zikmund, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-contrast+differentiation+resolution+3D+imaging+of+rodent+brain+by+X-ray+computed+microtomography%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Instrumentation%22%5BJournal%5D)">High-contrast differentiation resolution 3D imaging of rodent brain by X-ray computed microtomography.</a> Journal of Instrumentation. 13 (2), 1-12 (2018).</li>
<li>Anderson, R., Maga, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+procedure+for+rapid+imaging+of+adult+mouse+brains+with+MicroCT+using+iodine-based+contrast%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A novel procedure for rapid imaging of adult mouse brains with MicroCT using iodine-based contrast.</a> PLoS One. 10 (11), e0142974(2015).</li>
<li>Nieminen, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+histopathological+grading+of+osteochondral+tissue+using+contrast-enhanced+micro-computed+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Osteoarthritis+Cartilage%22%5BJournal%5D)">3D histopathological grading of osteochondral tissue using contrast-enhanced micro-computed tomography.</a> Osteoarthritis Cartilage. 26 (8), 1118-1126 (2018).</li>
<li>Greef, D. D., Buytaert, J. A. N., Aerts, J. R. M., Hoorebeke, L. V., Dierick, M., Dirckx, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Details+of+Human+Middle+Ear+Morphology+Based+on+Micro-CT+Imaging+of+Phosphotungstic+Acid+Stained+Samples%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Morphology%22%5BJournal%5D)">Details of Human Middle Ear Morphology Based on Micro-CT Imaging of Phosphotungstic Acid Stained Samples.</a> Journal of Morphology. 276 (9), 1025-1046 (2015).</li>
<li>Sutter, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrast-Enhanced+Microtomographic+Characterisation+of+Vessels+in+Native+Bone+and+Engineered+Vascularised+Grafts+Using+Ink-Gelatin+Perfusion+and+Phosphotungstic+Acid%5BTitle%5D)+AND+%22Contrast+Media+%26+Molecular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Contrast-Enhanced Microtomographic Characterisation of Vessels in Native Bone and Engineered Vascularised Grafts Using Ink-Gelatin Perfusion and Phosphotungstic Acid.</a> Contrast Media & Molecular Imaging. 2017, (2017).</li>
</ol>

著者は何も開示していない。

ヒト軟部組織の検査においてPTA調製によるマイクロCTを実施した。簡単に言えば、標本は数日間ホルマリンで収穫され、固定され、続いてシリアルエタノール溶液中で脱水する。ホルマリン固定の直後にサンプルをPTA溶液に入れることで、急速な脱水による組織割れが生じる可能性があります。そのため、PTA染色の前に連続脱水が必要です。次に、試料を約1週間PTA溶液を用いて染色する。マイクロCTスキャン、3D再構成、解析を行うことができます。私たちの目標は、この方法を使用してORLと隣接する構造を観察することでした。我々は3Dモデルとして組織をうまく提示した。皮膚、靭帯、筋肉をはっきりと可視化した(図5)。
サンプルの処理中に、いくつかの点を考慮する必要があります。標本の大きさと染色の持続時間が主な懸念事項です。いくつかのパイロット研究の後、我々は、標本の適切な厚さが約5-7ミリメートルであり、染色の適切な持続時間が5-7日であることがわかりました。このような条件では、PTA溶液は約1mm/日の速度で試料を貫通する。厚さが7mmを超えると処...

手動解剖および組織学的観察は、通常、筋肉や結合組織などのヒト組織を調べるために使用される。しかし、手動解剖は繊細な構造を容易に損傷する可能性があり、組織学的観察は平らな断面面1、2に関する限られた情報を提供する。したがって、組織をより正確かつ効率的に検査するために改善された方法が必要である。
従来のコンピュータ断層撮影(CT)は、一般的に臨床現場で使用されるが、それは小さな構造2、3を区別する能力を欠いている。マイクロX線CT(マイクロCT)は、小さな構造物の3次元(3D)情報を破壊することなく、標本から得るための効果的なツールです。しかし、microCTは、高密度の組織だけが明確に視覚化することができるので、限られたアプリケーションを持っています。軟部組織の区別には使用できません。この制限を克服するために、染色剤を使用することができる。コントラスト増強剤は、ホスホトンスチン酸(PTA)、ホスホモリブジン酸、およびルゴルのヨウ素のような、走査時の軟部組織コントラスト率を向上させる4,5である。これらのエージェントを比較するいくつかの研究は、PTAが良好なパフォーマンスを示し、6、7、8を扱いやすいことを示唆しています。
オービキュラリスタリテイリング靭帯(ORL)は、軌道の周りの繊細な構造であり、従来の観察9の間に容易に損傷を受けることができる。この構造に関する3D情報を、PTAを造影剤として用いて調べ、正常に取得した。この方法は、心臓や肝臓などの他のヒト組織に関する研究に適用することができ、適切な修飾10、11、12を用いて適用することができる。

<table><tbody><tr><td>12 タングステン(VI)リン酸 n-水和物 リンタングステン酸</td><td>純生</td><td>84220-0410</td><td>PTA粉末</td></tr><tr><td>CTvox</td><td>Bruker</td><td>ver 2.7</td><td>3D偵察ソフトウェア</td></tr><tr><td>Nrecon</td><td>Bruker</td><td>ver 1.7.0.4</td><td>再構築ソフトウェア</td></tr><tr><td>Skyscan</td><td>Bruker</td><td>1173</td><td>MicroCTスキャナー</td></tr><tr><td>Tconv</td><td>Bruker</td><td>ver 2.0</td><td>ファイルサイズ変更ソフトウェア</td></tr></tbody></table>

ヒト線維筋組織を可視化するホスホトン酸調製のマイクロx線コンピュータ断層撮影の使用

Use of Micro X-ray Computed Tomography with Phosphotungstic Acid Preparation to Visualize Human Fibromuscular Tissue

手動解剖および組織学的観察は人間の組織を調査するために使用される一般的な方法である。しかし、手動解剖は繊細な構造を損傷する可能性があり、処理および組織学的観察は断面イメージングを通じて限られた情報を提供する。マイクロX線コンピュータ断層撮影(microCT)は、標本を傷つけずに3次元情報を得るための効果的なツールです。しかしながら、軟部組織部の分化においては限られた効率を示す。リントンスチン酸(PTA)のようなコントラスト増強剤の使用は、軟部組織コントラストを改善することによってこの問題を解決することができます。我々は、軌道領域の繊細な構造であるヒトオービキュラ保持靭帯(ORL)を調べるためにPTAとマイクロCTを実施した。この方法では、収穫された試料をホルマリンで固定し、シリアルエタノール溶液で脱水し、PTA溶液で染色する。染色後、マイクロCT走査、3D再構成、解析を行います。皮膚、靭帯、筋肉は、この方法を使用して明確に視覚化することができます。試料の大きさと染色期間は、この方法の重要な特徴です。適切な標本の厚さは約5~7mmで、その上にプロセスが遅くなり、最適な持続時間は5~7日であり、その下に中央部に空の穴が時折発生した。切断中に小片の位置と方向を維持するために、各部品の同じ領域で縫製することをお勧めします。さらに、各部分を正しく識別するためには、解剖構造の予備的な分析が必要です。パラフィルムは乾燥を防ぐために使用することができますが、試料の歪みを防ぐために注意する必要があります。我々の多方向観測は、ORLが以前に報告したように、糸状の繊維ではなく、連続プレートの多層メッシュワークで構成であることを示した。これらの結果は、PTAによるマイクロCTスキャンが、ヒト組織の複雑な構造内の特定の区画を調べるのに有用であることを示唆している。がん組織、神経組織、心臓や肝臓などの様々な臓器の分析に役立つ場合があります。

ORLの詳細な再構成は、PTA調製によるマイクロCTによって達成された(図4)。真皮と骨膜の間に斜めに延びる靭帯線維筋構造が明らかに観察された(図4A)。コロナビュー(図4B)では、繊維の量と複雑さが横に増加した。水平図(図4C)では、樹木化された形成を伴う精巧なメッシュワークが観察された。先に報告したように、糸状の繊維ではなく、連続プレートを特徴とする形状を観察した。矢状図(図4D)では、ORL繊維の厚さが劣って減少した。全体として、この多方向観測は、ORLが位置に応じて数と厚さの変化を持つ連続プレートの多層メッシュワークで構成されていることを証明しました。
<img alt="Figure 1" class="xfig...

マイクロX線コンピュータ断層撮影は、損傷を受けていないヒト標本から3次元情報を得る上で有効であるが、軟部組織の観察に限られた成功を収めている。ホスホトン酸造影剤の使用は、この問題を解決することができます。この造影剤を実装し、ヒトの繊細な線維筋組織(靭帯を保持する内巣)を調べた。

ヒト線維筋組織を可視化するホスホトン酸調製のマイクロX線コンピュータ断層撮影の使用

Manual dissection and histological observation are common methods used to investigate human tissues. However, manual dissection can damage delicate ...

我々は、眼窩領域内の繊細な構造であるヒトオービキュラリス保持靭帯の非侵襲的な調査において軟部組織のコントラストを高めるために、ホスホトゥンジン酸を用いたmicroCTを実施する。このプロトコルは、人間の軟部組織の非侵襲的な調査の研究者を支援するために最適化されており、合理的な費用で実行するのは簡単です。サンプルを入手するには、まず、色鉛筆を使用して、サンプル採取用の皮膚の切断領域を示します。マークされた線が内側のキャンパスに内側に延び、横方向のキャンパスに延び、下まぶたの上側の境界に優れ、軌道縁から線の下1センチメートル下に劣っていることを確認します。次に、ブレードを使用してマークされたラインに沿って顔のティッシュを切断し、ブレード先端が骨に触れるのに十分な深さがあることを確認します。採取されたサンプルには、皮膚、皮下組織、筋肉、脂肪、骨膜が含まれなければならない。収集時に、室温で5〜7日間、すぐに10%ホルマリンでサンプルを固定します。固定期間の終わりに、サンプルを5~7ミリメートルの厚さ3個でスライスします。針と黒糸を使用して、サンプルの方向を後の時点で決定できるように、各サンプルの超側側を縫います。1濃度につき1日、上昇エタノール濃度系列でサンプルを脱水し、染色されるまで70%エタノール溶液中にサンプルを残します。マイコン断層撮影スキャンが予定される1週間前に、2.1グラムのPTAを210ミリリットルの70%エタノールに加え、1分間に55〜60回転でシェーカーに溶液を置きます。スライスした各部分に70ミリリットルのプラスチック容器を3個用意します。染料がアルコール溶液に溶解したら、容器に溶液を充填する。1%PTAの各容器に1つの標本を入れ、5〜7日間毎分55〜60回転でサンプルを振ります。染色が完了したら、サンプルを新鮮な70%エタノールで1週間保管し、スキャンの準備をします。マイクロCTスキャンの場合は、パラフィルムでサンプルをラップして乾燥を防ぎ、サンプルをスキャナートレイに置きます。スキャナのソース電圧を70キロボルト、ソース電流を114マイクロアンペア、アルミニウムフィルタを0.5ミリメートル、画像ピクセルサイズを20平方マイクロメートル、ピクセルを2,240 x 2,240、エクスポージャーを500ミリ秒、回転ステップを0.3度に設定します。次に、スキャンを開始します。スキャンが完了したら、再構築ソフトウェアを開き、[アクション] と [データセットを開く] を選択して、スキャンしたファイルを起動します。[設定]タブを選択し、リングアーティファクトの削減を7に設定し、ビーム硬化補正を行います。再構築を開始するには、[開始] を選択します。最終的なデータは、指定されたフォルダに格納されます。再構築の最後に、ファイルサイズ変更ソフトウェアを開き、[ソース データ セット] を選択して再構築されたファイルを起動します。[宛先データ セット] タブで jpg を選択し、[画質] オプションの [補間なし] の [1/2 サイズ変更] オプションを選択し、[イメージ圧縮] タブでスライド バーを 100 に調整して変換を開始します。3D 再構築の場合は、3D ボリューム レンダリング ソフトウェアを開き、[アクション] と [ボリューム データのロード] を選択します。明るさとコントラストレベルを調整するには、[関数の転送エディタ]タブのヒストグラムで形状転送機能を変更します。次に、[オプションと照明]を選択し、[影]アイコンと[サーフェス照明]アイコンを選択して、リアルなモデリングトーンを実現します。クリックしてドラッグし、右クリックしてドラッグして3D画像を移動および回転させて最適なビューを見つけ、必要に応じてズームインまたはズームアウトします。Shift キーを押しながらドラッグして、断面画像を表示する場所をスライドさせます。[ライト]アイコンをオンにして、表示に最適な照明を見つけるために照明表示バーを調整し、[ライト]アイコンをオフにして[照明]タブを閉じます。[オプション] タブで、[表示とクリッピング ボックス] を選択して、最終イメージのボックスを非表示にします。次に、画像を保存するアクションと画像の保存を選択します。このORLの詳細な再構築は、PTA調製物を用いたmicroCTによって実証され、真皮と骨膜の間に斜めに伸びる靭帯性線維筋構造の視覚化を可能にした。コロナの観点では、繊維の量と複雑さは横に増加します。水平ビューでは、樹状の形成を伴う精巧なメッシュワークが観察される。矢状の観点では、ORL繊維の厚みは劣って減少する。全体として、この多方向観測は、ORLが、その位置に応じて繊維の数と厚さのばらつきを持つ連続プレートの多層メッシュワークで構成されていることを証明しています。染色の持続時間が検体の体積に比べて不十分な場合、最終像は、試料の中央領域に空の穴を含み得る。PTA以外の他のエージェントを使用することができ、異なるエージェントは異なるメリットまたは染色機能の興味を持っています。したがって、実験に従って染色領域を最適化すると便利です。

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本研究では、無傷の筋肉体積による筋肉内脂肪組織(IMAT)沈着を視覚化および定量化するための脱細胞化ベースの方法論、およびIMATを構成する個々の脂肪細胞の指標を定量化する方法について説明します。...

脱細胞化による骨格筋脂肪浸潤の定量化

このプロトコルでは、マイクロコンピュータ断層撮影法を使用して、小動物の骨格筋や内臓組織、脂肪組織、骨格組織などの除脂肪体重を費用対効果の高い定量化を可能にします。痩せた組織と脂肪組織を区別し、生物医学研究、特に小動物でのトランスレーショナル研究に大きな利点をもたらします。...

マイクロコンピュータ断層撮影法を用いた小動物における非侵襲的骨格筋定量化

学ぶホスホトン酸調製マイクロCTを用いたヒト眼窩輪筋靭帯の非侵襲的可視化法。このプロトコルは軟組織コントラストを向上させ、繊細な線維筋組織の三次元構造解析を可能にする。

ヒト線維筋組織を可視化するホスホトン酸調製のマイクロX線コンピュータ断層撮影の使用

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