Name: 9-フェナントロル感受性カチオン電流の特性評価のための新たに分離されたヒトデトルサトール平滑筋細胞の調製と利用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-01-31T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: 学ぶヒト膀胱平滑筋細胞の酵素分離法とパッチクランプ電気生理学。TRPM4イオンチャネルと9-フェナントロル感受性カチオン電流を単細胞レベルで評価し、膀胱生理と薬理学的標的の理解を深める。

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この作品は、ジョージ・V・ペトコフへのNIH-R01DK106964とP20DK123971の助成金によってサポートされました。著者らは、原稿の批判的な評価に対するヴィクトル・ヤロツキー博士とサラ・マクスウェル氏に感謝する。また、MUSCとUTHSCの泌尿器科スタッフ外科医(トーマス・キーン博士、ハリー・クラーク博士、スティーブン・サベージ、ロス・ラメス博士、サンディップ・プラサド博士、ジョナサン・ピカール、クリストファー・レッドベター、アンソニー・パターソン、MUSCとUTHSC泌尿器科の住民)にも感謝しています。ヴォーン、サミュエル・ウォーカー・ニックルズ、マシュー・ヤング、エリン・バーンズ、ジャスティン・エレット、ライアン・レヴェイ、オースティン・ヤング、マーク・カリン、ニマ・バラダラン、オルグベミソラ・マッコイ、トレイシー・ティプトン、ブライス・ワイアット、アリッサ・グライマン、サラ・スタロスタ、アーロン・ブロッホ、クリスティーン・キャロウェイ、ルシル・コックス、クリスチャン・ディーワン、エリン・ハイトマン、ブラッドリー・ヒューストン、スティーブン・レッグ、ロバート・S・リビー、コール・ロックリア、クリステン・マーリー、モニカ・オハンロン、パトリック・プロブスト、シンシア・シャラディン、エリザベス・ツアービル、ダニエル・サパタが人間の組織収集に役立つ。

ここに記載されているすべての方法は、テネシー大学健康科学センター(メンフィス、TN、IRB#17-05714-XP)、サウスカロライナ医科大学(チャールストン、SC、IRB#00045232)の機関審査委員会によって承認されています。承認された手順は、粘膜、排尿筋平滑筋、ソローサを含むすべての層を含む全厚尿膀胱標本(>1 cm)を、膀胱の外科的部分的抽出を受けている患者ドナーから採取することを可能にする。患者ドナーは成人(現在まで研究された年齢範囲:25〜87歳)、男性または女性のいずれか、過活動膀胱の症状の有無(米国泌尿器科学会I-PSSスコア41によって分類される)。外科的処置は、尿路上皮癌に対する根治性膀胱切除術、腺癌を含む様々な病状を伴う。このような場合、採取した尿膀胱標本は腫瘍の部位から離れたものである。
1. DSM組織の解剖と粘膜フリーDSM片の調製
<ol><li>冷間解離・消化液で満たされた密閉容器で手術室から実験室に到着した全厚の尿膀胱標本を調べる(図1および表2DSの組成)。 注:試験片は、通常、数時間から一晩の間、冷たいDSで保管されています。より長いストレージの場合、DS (表 2) は 1 mM CaCl2で補足されます。</li>
	<li>人間の厚みDSM試料(粘膜、DSM、ソローサを含むすべての層を含む)を氷冷DSで除去し、洗浄し、付着した破片および血液を洗い流します。</li>
	<li>尿中膀胱標本をピン留めし、上向きの粘膜とソローサを下に、シリコーンエヌンテオマーコーティング(材料表)150mm直径150mmの丸皿に氷冷DSを充填した(図1B)。</li>
	<li>マイクロシザーと鉗子を用いた鋭い解剖により、隣接する脂肪組織、血管、上皮(ウロテリウム)および筋粘膜を試料から取り除きます。</li>
	<li>粘膜フリーのDSMピース(長さ約2~3mm、幅4~6mm)を切り取ります(図1C)。</li>
</ol>2. 単離した単一のDSM細胞を生み出すDSM片の酵素解離
<ol><li>3~6個のDSM片を、パパインとジチオトライトルを含む1~2mLのDS(DS-P、表2)を含むチューブに入れ、DS-P中のDSM片を30〜45分間インキュベートし、〜37°Cで30〜45分間チューブを穏やかに振ります(時には10〜15分ごとに1回)。 注:酵素処理の温度を最適に制御するために、組織片と酵素液を含むチューブを、循環加熱水浴(図1D)または高精度の温度制御振潮浴(図1E)に接続された水で満たされたガラス組織室に置きます(</li>
	<li>チューブからDS-Pを取り出し、氷冷DSでDSM片を短時間洗浄し、チューブの底に座っているDSM片を残して、冷たいDSをチューブから廃棄します。</li>
	<li>DS含有コラゲアーゼII(DS-C、表2)をDSM片でチューブに1~2mL加え、軽く混ぜます。~37°Cで25~40分間、時折チューブを軽く振ります(10~15分おき)。</li>
	<li>DS-Cを捨て、酵素処理されたDSM片を氷冷DSで5〜10回洗浄する。</li>
	<li>最後の洗浄に続いて、チューブの中にDS溶液を残します。火で磨かれたパスツールピペットで軽くトチュレートし、単一のDSM細胞を放出します。</li>
	<li>DSM細胞を含むDS溶液をガラス底のチャンバーまたはカバースリップに数滴置き、少なくとも5分後に顕微鏡で品質を視覚的に検査し(20xまたは40xの目的を使用)、細胞が付着できるようにアプリケーションに従って底部。</li>
	<li>すぐに電気生理学的実験のために新たに単離されたDSM細胞を使用するか、または使用するまで氷上または冷蔵庫でDSを含むチューブに細胞を保存します(通常は8時間までの調製)。 注: 同じ調製物の中で、細胞の品質は、非常に生存可能なDSM細胞から、過剰に消化されたDSM細胞までさまざまです(図2)。連続的なパパイン・コラゲターゼ法が非常に多くの生存不可能な細胞を生み出す場合、調製物は廃棄され、DSM片の新しい消化が行われるが、潜伏間隔は減少する。手順がDSM個の後続の消化のためにあまりにも少ないDSM細胞をもたらす場合、インキュベーション間隔が増加する。α平滑筋アクチンに対する陽性免疫反応性は、DSM細胞の同一性を確認する(図3)。</li>
</ol>3. アンホテリシン-B穿球全セル電圧パッチクランプ技術を用いてDSM細胞からの電圧ステップ誘導カチオン電流を記録する
<ol><li>反転顕微鏡のステージに座っているガラス底のチャンバーに細胞懸濁液0.25-1 mLの細胞懸濁液を、細胞がガラス底に付着することを可能にする。</li>
	<li>少なくとも45分間インキュベートした後、浴からDSを取り出し、入口管減速を介して重力によって助けられた溶液流が新しい溶液にDSを置き換え、真空廃棄物容器に接続された出口チューブがチャンバー溶液を除去し、オーバーフローを防ぐスーパーフュージョンによってE溶液(表2)に置き換えます。なお、E溶液には、テトラエチランモニウム(TEA+)およびセシウム(Cs+)イオンが含まれ、K+電流を阻害する。</li>
	<li>ジメチルスルホキシド(DMSO)中のアンホテリシン-Bの働くストック溶液を調製する(DMSOの10μLあたり1mg)。アンホテリシン粉末を完全に溶解するには、超音波処理(少なくとも15分)と溶液をよくボルテックス。 注:このステップは通常10分未満かかります。1.5 mLマイクロ遠心管でのDSMOの30-40 μLで3〜4mgのアンホテリシンBを溶解します。より多量のアンホテリシン-Bは、通常、より多くのDSMO溶媒を必要とし、チューブ内に存在するアンホテリシン-B固体粒子の混合および不完全な可溶化のためのより長い間隔をもたらす。</li>
	<li>アンホテリシン-Bのストック溶液をピペット溶液中に溶解し(溶液P、表2)、最終濃度200~500μg/mLを得た。このステップでは、ピペット溶液中のアンホテリシン-B沈殿物形成の最適な混合と予防を確実にするために、ステップあたり30〜60分間の高速設定(8-10/10)での広範な超音波処理と渦を必要とします。 注:アンホテリシン-Bは、時間の経過とともに沈殿し、光感受性です。アンホテリシンBを含む働くピペット溶液は、溶解性をチェックし、ピペット充填前に手混合し、暗闇の中に保ちます。</li>
	<li>複数のパッチ電極、火磨き電極チップを引っ張り、必要に応じて先端を歯科用ワックスでコーティングします。</li>
	<li>パッチ電極の先端をピペット溶液(溶液P、表2)でアンホテリシン-Bを使用せずに、溶液中に電極を短時間浸漬して充填します。</li>
	<li>アンホテリシンBを含む同じピペット溶液で電極をバックフィルします。</li>
	<li>パッチクランプアンプヘッドステージに接続されたホルダーに電極を取り付けます。</li>
	<li>マイクロマニピュレーターを使用して、電極の先端が水没するように細胞外溶液の表面のすぐ下に電極を置きます。</li>
	<li>電圧クランプモードでは、保持電位を0 mVに設定し、商用アンプのピペットオフセットダイヤル(材料表)で電流を0 pAに調整します。</li>
	<li>商業用取得ソフトウェア(材料表)の膜試験ウィンドウ/機能を使用して電極抵抗を決定します。アクティブにするには、[ツール] → [メンブレン テスト] →[再生] をクリックするか、ソフトウェアのショートカット アイコンをクリックします。決定された電極抵抗は、2~5MΩの範囲にする必要があります。 注:市販の集録ソフトウェアまたはアンプのシールテストオプションで提供される膜テスト機能は、電圧ステップを繰り返し適用することによって、電極抵抗を監視するために使用することができます。</li>
	<li>マイクロマニピュレータを使用して選択したDSMセルに向かって電極を進めながら電極抵抗の監視を続けます(図4A)。 注:実行可能なDSM細胞と見なされるためには、細胞はスピンドル状の細長い形態、細胞の周りの明確なハロー、鮮明なエッジ、半収縮(蛇行)の外観を示す必要があります。</li>
	<li>電極で細胞表面に触れるとき - 膜試験機能で測定された電極抵抗の急速な増加によって示される - チューブを介して電極ホルダーに穏やかな急速な負圧を加えることによってギガシールを形成する。この結果、電極の先端に生じる負圧が生じ、電極膜を電極に引き込み、ギガシールの形成や電極と形質膜との間の非常に密着性を助ける(図4B)。</li>
	<li>ギガシールが形成されたら、商用アンプの高速かつ低速のダイヤルを調整してピペット容量を補正し、膜テスト機能を使用してギガシールの安定性(リーク電流)を監視します。</li>
	<li>時間を許可する,典型的には30〜60分,アンホテリシン-Bがピペットを拡散させ,1価のカチオンに対して主に選択的に細孔を形成する細孔に挿入する。このステップでは、膜試験機能を使用してギガシールのモニタリングを続けます。細胞穿球が増加するにつれて、静電容量のトランジェントの振幅(図4Bと図4Cを比較して、それぞれ非効果的な細胞穿調を表示する)を膜試験関数で測定する。</li>
	<li>パッチ穿水が最適な場合(通常は50MΩ未満の安定したシリーズ抵抗によって判断される)、アンプのセル容量とシリーズ抵抗のダイヤルを調整して静電容量トランジェントを取り消します。このとき、シリーズ抵抗補償も行うことができる(図4D)。</li>
	<li>指定されたプロトコルによって誘発される安定した電圧ステップ誘導型カチオン電流が観測されたら、スーパーフュージョンによってテストする化合物または生理学的状態を適用し、制御、試験条件、および(可能であれば)洗浄応答を記録する商用取得ソフトウェア。<ol>
<li>DSMセルを-64または-74 mVに保持し、電圧を400または500 msの-94~+96または+106 mVに10 mV単位で踏み込んで保持電位に戻すことを含む、定期的な電圧ステッププロトコルで電流を記録します。 注:膜電位値は、14 mVの液体接合電位に合わせて調整されます(PおよびE溶液を使用して、表2)。液体接合電位は、商業用集録ソフトウェア([材料の表]) で 、[ツール]→ [ジャンクション電位] をクリックし、溶液イオン成分の濃度を入力することによって得られます。ランプ プロトコルは、現在の記録を取得するためにも使用できます。</li>
		<li>加算前制御、試験条件、および洗浄のための記録電流を記録する実験中に、連続〜1分間隔で電圧プロトコルを実行します。</li>
	</ol></li>
</ol>4. データ分析と可視化
<ol><li>[ファイル]>[開く] をクリックして、開くファイルを選択して、コントロール、テスト条件、およびウォッシュアウト用の商用データ分析ソフトウェア([マテリアルの表]) で、記録されたファイルを開きます。 注: 分析の場合、通常は、条件ごとに 3 つのファイル (1 つのプロトコル実行に対する 1 つのトレースセットを含む) が開かれ、分析されます。応答は、その後、各条件の平均応答を得るために平均化されます。データ取得に使用されるソフトウェアには、ユーザーが指定した複数のテスト実行を自動的に収集し、代替として使用できる単一の出力ファイルの平均化オプションが含まれています。</li>
	<li>各電圧で測定された電流トレースの最後の200ミリ秒にわたる平均応答を取得します。選択された期間間隔は、定常レベルの電圧ステップ電流活性化を反映します。これを行うには、次の手順に従います。<ol>
<li>商業用解析ソフトウェア (資料表) で分析対象のファイルを選択します。 注: ソフトウェアは、最後にインポートしたファイルをアクティブな表示ウィンドウに配置します。オープン・ファイルには、電圧ステップ・プロトコルで得られた一連の重複トレースが表示されます。デフォルトでは、アクティブウィンドウ内に4つのカーソル(ハイライトされたトレースのx値とy値を表示)が表示されます。</li>
		<li>分析範囲が200 msになるように、400または500 msの電圧ステップの終わりにカーソル2を配置し、その前の200 msの間隔でカーソル1を配置することによって、分析のための範囲を選択します。</li>
		<li>[分析]>[クイックグラフ]>[IV]ショートカットアイコンをクリックして、各電圧の応答を取得します(データを生成する前のプロンプトウィンドウで、Y軸(現在の)信号領域オプション「Cursors 1.2」と「平均」が選択されていることを確認します。[OK] をクリックしてI-V グラフを生成し、そのデータを [結果] 列シートに配置します。</li>
		<li>手順 4.2.1 から 4.2.3 を繰り返して、追加のファイルを分析します。[分析]→[クイックグラフ]>[IV]またはIV アイコンのショートカットをクリックし、[置換]ではなく[追加]を選択して、トレースの処理中に[結果]シートに追加データを追加します。</li>
		<li>データをスプレッドシートにコピーするには、目的の列を選択し、Ctrl キーを押しながら Cキーを押してコピーし、Ctrl キーを押しながら Vキーを押して貼り付けます。[ファイル] → [名前を付けて保存] をクリックして、結果ワークシートを商用分析ソフトウェア ([材料のテーブル] ) の (*.rlt) 形式で保存します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>各セルについて、3 つの条件すべてについて、事前加算制御の最大電圧ステップの値に対する応答を正規化し (式:応答/応答制御-最大)、応答を電流(または電流密度)値と電圧関係の比較としてグラフ化します(図 6)。<ol>
<li>ワークシートプロセッサで、電流(pA)または電流密度(pA/pF)のいずれかとして平均応答を決定し、制御、試験条件(この例では9フェナントロル)、および各電圧ステップでのウォッシュアウトを行います。</li>
		<li>各条件の電圧(制御、9-フェナントロル、およびウォッシュアウト)の値を、式に続く事前加算制御の最高電圧(図6の+96 mV)で得られる最大制御応答で除算します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>概要分析では、視覚化用のグラフィカル プログラム (GraphPad Prism など) に簡単にコピーできる形式でデータを配置します。</li>
</ol>

ここで説明する手順は、酵素消化を使用して全厚ヒト尿膀胱標本から生存可能で新しく単離されたDSM細胞の調製に関与するステップと、アンホテリシンB穿孔パッチクランプアプローチを用いたTRPM4チャネル阻害剤9-フェナントロルに敏感な全細胞カチオン電流の記録に関与するステップを説明する。酵素的手順は、シーケンシャルパパインコラゲターゼ消化方法として本明細書と呼ばれる2段階の逐次暴露に依存する。DSM組織は、まず、公称Ca2+フリー条件下でパパインおよびジチオトレイトール(酵素安定剤)で処理され、続いて第2段階において、低Ca2+の存在下でコラゲターゼII型によって行われる。平滑筋細胞の低Ca2+条件下でパパイン消化を行うための根拠は、1980年代後半にさかのぼります。パパインで調製した新たに単離された頸動脈平滑筋細胞は、細長い形状を示し、生存率(トリパンブルー取り込みに対する耐性)を示し、収縮刺激(より高いCa2+およびヒスタミン)65に応答した。数年後、この方法はDSM細胞の調製に適用されました(表1を参照)。他のタイプではなく、コラゲターゼII型の選択は、DSMを含む平滑筋組織に理想的に適する比較的高いタンパク質分解活性に関連する。実際、コラゲ酵素処理だけでも、広範な酵素暴露(≥60分)53、54を必要とするが、単一のDSM細胞を生じることができた。コラゲ酵素活性はCa2+に依存し、酵素はCa2+フリー条件下では不活性であるため、DSM片の最適酵素消化はCa2+66の存在を必要とする。この場合、DS-Cには100-200 μM [Ca2+] (表 2)が含まれています。酵素処理後、消化されたDSM片は、酵素またはCa2+を使用せずに冷たいDSで何度も穏やかに洗浄され、組織に結合した酵素を除去する。氷冷DSは、DSM細胞の完全性を維持し、残りのパパインまたはコラゲターゼの酵素活性を制限するのに役立ちます。最後のステップでは、酵素処理されたDSM片を火で研磨したパスツールピペットでトリトリケーションすると、単一のDSM細胞が放出されます。DSM細胞は、パッチクランプ研究または他のタイプの実験のために記録室にすぐに置かれるか、または同じ日に後で使用するためにDSの氷の上に保存される(通常、調製から8時間以内に、細胞は最大24時間生存可能なままである)。
単一のDSM細胞を正常に取得するためのいくつかの重要な考慮事項を特定しました。最初は人間のDSMの標本の源の質に関係する。組織の完全性を最適に維持するために、開いた膀胱の外科から得られるDSMのサンプルはできるだけ早く氷冷DSに置かれ、冷たい環境で維持される。具体的には、患者からの外科的抽出時に、膀胱標本は手術室で完全に準備されたサイドテーブルの上に直ちに置かれる。標本全体の総検査(通常は根治または単純な嚢胞切除術中に得られる)とその開口部が続く。目視検査の後、全厚尿中のはしご標本の片片を、腫瘍とひどく関与していない試料の遠隔領域から取り出し、すぐに冷たい(〜4°C)解剖溶液(DS)(表2)を入れたカップ(50または100mL)に入れ、蓋で密閉した。組織の収穫の計画的な性質に起因して、収穫を行う手術室の人員および補助スタッフは、組織抽出時に手術室で利用可能な材料を持つために手術ケースの開始時に警告される。これらの予防措置は、処理ステップのルーチンと一緒に、繰り返し、組織のための暖かい虚血時間を維持する - 抽出からDS溶液を有する冷蔵容器内の配置 - 5分未満に。容器は冷たい環境を維持するために冷却器で冷却装置または氷の上に置かれ、実験室に運ばれます(氷冷)。試験体が実験室に到着すると、解剖と酵素解離のステップが開始されます。酵素解離後に、与えられたDSM標本が高品質のDSM細胞をもたらすかどうかを予測することは非常に困難であるため、酵素解離ステップを進めます。多くの場合、電気生理学的実験と並行して、我々のグループは、同じDSM標本から調製されたDSMストリップに等角張力記録を行います。我々は、通常、等角収縮研究(我々の未発表の観察)のための実行可能なストリップを提供することに成功した製剤から高品質のDSM細胞を得ることができることを発見しました。
第2の因子は、異なる酵素ロット変動に関連しています。パパインとコラゲターゼII型の両方について、サプライヤーから新しい多くの酵素が到着するたびに、組織消化のためのDSにおける酵素活性が変化する可能性があることを観察した。したがって、我々は、定期的に、各新しいロットのための酵素濃度とインキュベーション間隔を最適化します。ロット変動寄与を最小限に抑えるために、同じロットの大量の注文を行い、使用まで2 mLのアリコートに大量のストック溶液を作り、~-20°Cで保存します。しかし、時間が経つにつれて、凍結された株式(2週間まで保存)は、その酵素活性を失う可能性があります。第3の変数は酵素消化処理の温度に関する。パパインとコラゲターゼの両方の酵素活性は、温度依存性を示す。パパインおよびコラゲターゼII型は、正常身体生理学67、68を包含する温度範囲において活性を示す。そこで、DSM細胞の完全性を保つために、より高い温度を避けて~37°Cで酵素処理を安定に保ち、これを目指します。第4の考察は、生存性の高い(優れた古典的平滑筋特性を示す)から非健康な過剰消化細胞に至るまで、各調製物内に存在するDSM細胞の品質の変動に関するものである。長期の酵素インキュベーション間隔は、多数の損傷細胞を得る主な理由の1つです。過剰な酵素処理はまた、イオンチャネル、受容体、および輸送体のタンパク質構造を損ない、その機能性に悪影響を及ぼします。酵素的に得られた結果の解釈は、新たに分離された細胞は、この配慮を念頭に置く必要があります。酵素消化条件の最適化は、生存度の高い細胞の割合を増加させることを目的としています。マイクロアレイ解析のようなより多くの生存可能な細胞に依存する実験的アプローチは、単一細胞パッチクランプ電気生理学やCa2+イメージングなどの少数の細胞で正常に行われたものよりも堅牢な最適化を必要とします。上記の要因を考慮することで、過去10年間の研究努力が、高品質の単一DSM細胞を得る上で導かれました。
穿くりパッチクランプ技術は、四半世紀以上にわたって電気生理学的アプローチの主力となっています。いくつかの出版物は技術的な考慮事項の詳細を提供します69,70,71,72,73.細胞穿水は、アンホテリシン-B、ナイスタチン、グラミシジン、またはβ-エスシンで得ることができます(参照参照32各概要) を参照)。他の電気生理学的アプローチよりも穿水されたパッチクランプ記録の主な利点は、天然の細胞内環境(細胞内Caを含む)です。2+シグナル伝達分子(例えば、cAMP、PKA、リン酸塩、ホスホジエステラーゼ)が保存される。したがって、この技術は、生理的条件下で全細胞イオンチャネル電流およびその調節機構を調査するのに理想的である。重要な注意点は、細胞内細胞組成は、従来の全細胞および単一チャネル切除パッチ(内部および外部)記録のような他の電気生理学的方法とは異なり、正確に制御できないことです。我々の経験では、3つの因子が、アンホテリシン-B-穿状パッチクランプ実験の実験結果の成功に日常的に寄与する。1 つ目は、録音を試みるために選択された DSM セルの品質です。DSM細胞が半収縮性(蛇様)を表示して生存率が高いとき、細胞表面の周りに明確に定義されたハローを有する高コントラストの光沢のある外観を、記録室のガラス底にしっかりと付着させ、その後ギガシール形成および細胞穿調が比較的容易に起こる。成功のための第2および第3の要因は、それぞれ、アンホテリシン-B(ジメチルスルホキシド/DMSOおよび細胞内ピペット溶液)の供給源および可溶化の質に関連する。我々は、ソースとロット変動の面で異なるサプライヤー間の不一致を観察した。毎日、粉末からアンホテリシン-Bストック溶液の新鮮な溶液を調製し、その後に細胞内ピペット溶液で希釈します。これらのステップは、広範な超音波処理と渦を必要とします。作りたてのアンホテリシン-B含有ピペット溶液で、細胞穿水に成功した(<50 MΩ) following giga-seal formation can be usually obtained within 30 min. The concentration of amphotericin-B in the pipette solution also requires optimization dependent on the amphotericin-B lot and source. Under our experimental conditions, the final amphotericin-B concentrations in the pipette range from 200 to 500 µg/mL. Since amphotericin-B exhibits light sensitivity, its solutions need to be kept in the dark. Using the amphotericin-B perforated patch-clamp technique, our group recorded voltage-step induced K mω)="" following="" giga-seal="" formation="" can="" be="" usually="" obtained="" within="" 30="" min.="" the="" concentration="" of="" amphotericin-b="" in="" the="" pipette="" solution="" also="" requires="" optimization="" dependent="" on="" the="" amphotericin-b="" lot="" and="" source.="" under="" our="" experimental="" conditions,="" the="" final="" amphotericin-b="" concentrations="" in="" the="" pipette="" range="" from="" 200="" to="" 500="" µg/ml.="" since="" amphotericin-b="" exhibits="" light="" sensitivity,="" its="" solutions="" need="" to="" be="" kept="" in="" the="" dark.="" using="" the="" amphotericin-b="" perforated="" patch-clamp="" technique,="" our="" group="" recorded="" voltage-step="" induced=""></50 MΩ) following giga-seal formation can be usually obtained within 30 min. The concentration of amphotericin-B in the pipette solution also requires optimization dependent on the amphotericin-B lot and source. Under our experimental conditions, the final amphotericin-B concentrations in the pipette range from 200 to 500 µg/mL. Since amphotericin-B exhibits light sensitivity, its solutions need to be kept in the dark. Using the amphotericin-B perforated patch-clamp technique, our group recorded voltage-step induced K>+Ca2+、ヒト、モルモット、マウス、ラットDSM細胞からの非選択的カチオン電流17,21,22,23,29,30,31,35,60.ここで、ヒトDSM細胞における非選択的カチオン電流を記録するための条件について説明する。9-フェナントロル, TRPM4 チャネルのブロッカー, DSM 興奮性の制御でこれらのチャネルの役割をサポートする減衰電圧ステップ誘導電流.注意として、それは通常、ギガシールを取得した後、少なくとも45分を必要とし、最適安定な電圧ステップ誘発非選択的なカチオン電流を記録するために穿調の開始。電圧ランプは、電圧ステッププロトコルの代替として使用することもできます。30,64.ここでは、前者のアプローチは電圧依存性の不活性化の影響を最小限に抑え、持続時間にわたって誘発電流の平均化を可能にするので、過偏極性保持膜電位からの電圧ステッププロトコルがランププロトコルよりも好ましかったランプが電圧ごとに単一のデータポイントを提供する電圧-ステップの。後者の点は、電流が電圧ステップ中に可変的な活動を示すので、特にヒトDSM細胞に適用されます(図 5そして図 6).アンホテリシン-B穿刺パッチクランプ技術は、DSM細胞および他の細胞タイプの特性を同定する上で不可欠であり、今後も新たな発見を提供する際に引き続き補佐官となるだろう。さらに、新たに単離された単一DSM細胞を全細胞Kの測定に使用できる+Cl-、および Ca2+パッチクランプ技術の従来のモード、電流クランプによる膜電位記録、および当社の以前の報告に例示された単一チャンネル記録を用いた電流23,29,35,64.
単一細胞パッチクランプ法に加えて、新たに分離されたDSM細胞は、Ca2+イメージング、RT-PCR/q-RT-PCR、免疫細胞化学、その位置近接ライゲーションアッセイ、およびゲノムアプローチ(例えば、マイクロアレイ、RNA-セク、CHIP-seq)15、18、30、34を含む他の技術的アプローチで研究することができます。単一細胞転写体測定法が進化し続け、高感度になる中、個々のDSM細胞の電気的または薬理学的特性をそれらの転写/プロテオームプロファイルと日常的かつ特異的に結びつける能力を将来に想定しています。これは、まずDSM細胞から記録し、次にmRNAまたはタンパク質を抽出し、続いて転写/プロテオミック分析を行うことによって達成されます。このような方法は非DSM細胞で既に試験されているが、それらは、現在のところ技術的に困難であり、ルーチンと考えられる感度に欠け、そしていくつかの選択された遺伝子産物74の検出に成功することに限定されている。制御および罹患患者ドナーから得られたDSM細胞に対して行われる機能分子プロファイル発現連結研究は、正常なDSM機能、病因、および効果的な新規治療アプローチの同定に不可欠な生理学的プロセスに関する洞察を提供する。

デトルサム筋肉(DSM)細胞は、尿膀胱内で最も豊富な細胞型を構成し、最終的には、それぞれ、弛緩および収縮を通じて尿貯蔵およびボイドを制御する。DSM細胞は、隣接する結合組織、神経プロセス、間質細胞、および他の細胞タイプ1と絡み合う平滑筋束を形成する。泌尿器膀胱機能におけるDSM細胞の役割の現在の理解は、マルチレベル統合アプローチを通じて達成された。各実験方法は、インビトロ内の単一細胞に基づくかどうか、インビトロ/ex vivoにおける平滑筋束を含む組織ストリップ、またはインビボ決定(サイトメトリーおよびボイド機能評価など)のいずれであっても、DSMの生理学的および薬理学的特性に関する重要かつ具体的な洞察を提供する(詳細についてはレビュー1、2、3、4、5を参照)。しかし、単一細胞から得られた結果の解釈は、結論が単一細胞型自体に具体的に帰属することを可能にする。この実現は、全厚の尿膀胱標本から単離したてのDSM細胞を得るための信頼性の高い再現性の高い方法を確立するための原動力となっています。他の多くの細胞タイプとは異なり、平滑筋細胞は、それらの電気生理学的および収縮特性の特定の変化を含むそれらの天然表現型の喪失のために確実に培養することができない7、8。この事実は、生理活性の新たに単離されたDSM細胞に対して行われる研究の重要性をさらに強化する。
1980年代後半から1990年代初頭にかけて、イゼンベルグのグループ(ドイツ)は、モルモット尿膀胱9、10、11、12、13(表1)から得られた新たに単離されたDSM細胞に関する一連の電気生理学的研究を発表した。この方法は、重要な細胞を得るのに役立ち、他の人が従うための最初のガイドラインとして役立つ2つの重要な観察を強調した。それらは、1)酵素処理前のCa2+フリー溶液/培地で単離されたDSM片を前処理し、2)コラゲナーゼを含む溶液で組織消化した。これら2つの重要なステップは、DSM細胞解離手順の全ての後続の変異体に組み込まれている(表1)。現在、当社グループは2段階の逐次パパイン・コラゲターゼ解離アプローチを採用しています。DSM片は、まずパパインを含む酵素溶液で処理され、次いでコラゲターゼII型を同じ溶液(DS、解剖/消化液)中で可溶化した溶液で処理される。このアプローチは、モルモット、ブタ、ラット、マウス、および重要なヒト(表1)を含む様々な種から単一のDSM細胞を生成する。
単一のDSM細胞は、複数の分子生物学および生理学的実験のためのソースを提供する。これまで、免疫細胞化学で研究されたタンパク質およびmRNAの表現、 RT-PCR/qRT-PCRの判定により、大導電電圧とCa 2+活性化(BK)、小コンダクタンスCa2+アクティベートK+タイプ3(SK3)、電圧ゲート付きK +(Kv)、L型電圧ゲート付きCa+(Ca v)、および過渡型受容体電位メラスタチンタイプ4(T4)を含む様々なイオンチャネルに対する高レベルの検出が明らかになった。14,15,16,17,18,19,20,21,22.これらはすべてDSM興奮性、細胞内Ca2+レベルおよび収縮性を制御すると考えられている。Patch-clamp electrophysiological approaches, performed directly on guinea pig, mouse, rat, or human DSM cells, provided direct demonstration of biophysical and pharmacological properties of L-type Cav, Kv (Kv2.x. Kv7), SK, BK, and TRPM4 channels17,19,20,21,22,23,24,25 、26, 27,28,29,30,31.このアプローチには、従来の全セル電圧クランプ、穿水電圧クランプ、およびシングルチャンネル記録(セル接続、内部および外部構成)が含まれていました。さらに、電流クランプを用いたDSMの膜電位記録は、標的に係合する薬理学的薬剤が細胞興奮性を変化させるという証拠を提供した。例えば、TRPM4阻害剤9−フェナントロルは、ヒトから得られたDSM細胞において過分極化を誘導し、モルモット、およびラット尿膀胱19、20、22、31を挙げることができる。様々な電気生理学的方法の中で、アンホテリシン-B(およびナイスタチン、グラミシジン、β-エスキン)穿引パッチクランプ記録は、本質的な細胞内シグナル伝達分子および経路を維持することによって重要な利点を提供する。低分子量カチオンとより少ない程度に、Cl-しかし、Ca2+を含むタンパク質またはシグナル伝達分子ではない - アンホテリシンBまたはナイスタチン32によって形成された形質膜孔を通して透過性である。穿くりパッチクランプ実験の成功の結果は、この手法に特有のいくつかの一般的な変数に依存する。ここでは、我々のグループが15年、22年、33年、34年、35年、36、37、38、39年間にうまく使用したアンホテリシンBを利用した手順の詳細について説明します。
間違いなく、非選択的なカチオンチャネルは、DSM細胞の中で最も理解されていないチャネルタイプの1つです。非選択的なカチオンのようなチャネルの最初のレポートは1993年にさかのぼります。ウェルナーとイゼンバーグ11の論文は、イオン透過性のランク順序を表示する33 pSストレッチ活性化シングルチャンネルについて説明しました:K+>Na+>Cs+>Ba 2+ >Ca2+、 非選択的なカチオンチャネルの一般的な阻害剤である Gd3+によるチャネル活性の阻害。ほぼ10年後、ThorneloeとNelson40は、全細胞記録を用いて、マウスDSM細胞におけるNa+透過性カチオン電流をGd3+によって阻害したと説明した。非選択的カチオンチャネルの分子的アイデンティティとその生物物理学的特徴付けは依然として決定されていないので、この研究分野における将来の調査が保証される。本明細書で説明する非選択的カチオンチャネル電流の記録に関するプロトコルは、Cs+、TEA+、及びニフェジピン(表2)を用いて、生理学的および薬理学的にKvおよびCav電流を緩和する−非選択的カチオンチャネルの電気生理学的調査において有用であり続けるであろう。我々は、モルモットにおけるTRPM4チャネルブロッカー9-フェナントロルによる全細胞カチオン電流の阻害の程度を決定するためにこの特定のプロトコルを利用した、ラットおよびヒトDSM細胞19、20、22。
ここでは、ヒト尿膀胱から単離された単一DSM細胞を得るための方法は、パッチクランプ技術、Ca2+イメージング、免疫細胞化学、その場近位訴訟アッセイ、および単一細胞RT-PCR/qRT PCR-および単細胞RT-PCR/qRT PCR-および単細胞RT-PCR/qRT PCR-およびチップチップを含む高度な分子生物学的技術の様々な構成を使用した電気生理学的調査に非常に適した生存細胞を提供する。アンホテリシン-B穿引パッチクランプ法を使用すると、他の構成とは異なり、ネイティブセル環境が維持されます。ここで概説する特定の条件を使用して行われると、DSM細胞におけるK+およびCa2+電流の寄与を否定するように設計され、電圧ステップ誘導電流は、生物物理学的および薬理学的特性評価に適した非選択的カチオン電流の特性を示す。

<table><tbody><tr><td>5 ml ポリスチレン丸底チューブ</td><td>ファルコン</td><td>352054</td><td>消化ステップで使用される酵素を含む DS 用チューブ</td></tr><tr><td>9-フェナントロール</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>211281</td><td>TRPM4 チャネル阻害剤</td></tr><tr><td>アムホテリシン-B</td><td>フィッシャー</td><td>BP928-250</td><td>パッチ/細胞穿孔に使用</td></tr><tr><td>アンホテリシン-B</td><td>欧州薬局方 参照標準</td><td>5</td><td>パッチ/に使用細胞穿孔</td></tr><tr><td>アンホテリシン-B</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9528-100MG</td><td>パッチ/細胞穿孔に使用</td></tr><tr><td>アナログボルテックスミキサー</td><td>VWR</td><td>58816-121</td><td></td></tr><tr><td>アスパラギン酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9006</td><td>細胞内ピペット溶液</td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td>DS</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C1016</td><td>細胞外溶液とDS</td></tr><tr><td>キャピラリーガラス</td><td>サッター</td><td>BF150-110-7.5</td><td>プルドパッチ電極調製用キャピラリー</td></tr><tr><td>水酸化セシウム水和物</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C8518</td><td>細胞内ピペットソリューション</td></tr><tr><td>Clampex ver.10 データ取得(Clampex)および解析(Clampfit)プログラムを含む</td><td>Axon Instruments/ Molecular Devices</td><td>pCLAMP-10</td><td>商用ソフトウェアおよびパッチクランプリグセットアップの一部</td></tr><tr><td>コラゲナーゼ2型</td><td>Worthington Biochemical Corporation</td><td>LS004177</td><td>DS-C</td></tr><tr><td>CsCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>203025</td><td>細胞外および細胞内溶液</td></tr><tr><td>デンタルワックス</td><td>Miltex Dental Wax Technologies, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>18058351 プローブ付きデジタル体温計</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>15-077-32</td><td>温度を監視するために組織浴に入れます</td></tr><tr><td>ジメチルスルホキシド(DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D2650</td><td>溶媒</td></tr><tr><td>DL-ジチオスレイトール(DDT)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9779</td><td>パパイン</td></tr><tr><td>EGTA</td>と併用する還元剤 <td>Sigma-Aldrich</td><td>E3889</td><td>Ca2+キレート剤、細胞内ピペット溶液に使用</td></tr><tr><td>フレーミング/ブラウンマイクロピペットプーラー</td><td>Sutter</td><td>P-97</td><td>非常に細い先端で電極を引っ張る必要</td></tr><tr><td>フローティングフォームチューブラック/ホルダー</td><td>VWR Scientific</td><td>82017-634</td><td>温度制御用酵素入りチューブ保持に使用</td></tr><tr><td>グルコース</td><td>Sigma</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>グルタミン酸(Na塩)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G1626</td><td>DS</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3375</td><td>pH Buffer</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP366-1</td><td>細胞外溶液</td></tr><tr><td>低ノイズデータ収集システム</td><td>Axon Instruments/ Molecular Devices</td><td>Digidata 1440A</td><td>パッチクランプリグセットアップの一部</td></tr><tr><td>マグネチックスターラー</td><td>VWR</td><td>01-442-684</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2 (ヘキサハイドレート)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2670</td><td>細胞外および細胞内ソリューション</td></tr><tr><td>MicroForge</td><td>成重</td><td>MF-830</td><td>研磨電極に使用</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td>細胞外および細胞内ソリューション</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8045</td><td></td></tr><tr><td>ニフェジピン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N7634</td><td>L型電位依存性 Ca2+チャネルブロッカー</td></tr><tr><td>ニコン倒立顕微鏡、TS100、T1-SMステージ付き、5倍、10倍、20倍、40倍対物レンズ付き</td><td>ニコン</td><td>製造中止</td><td>パッチクランプリグセットアップの一部</td></tr><tr><td>非金属シリンジ針、MicroFil</td><td>WPI</td><td>MF-34G-5</td><td>細胞内ピペット溶液の充填</td></tr><tr><td>パパイン</td><td>・ワージントン・バイオケミカル・コーポレーション</td><td>LS003126</td><td>DS-P</td></tr><tr><td>パスツールピペット</td><td>フィッシャーブランド</td><td>13-678-20A</td><td>チップは折られ、ファイヤーポリッシュされ、酵素的に処理された組織の滴定に使用され、ピースから単一のDSM細胞を放出します</td></tr><tr><td>パッチクランプアンプ</td><td>Axon Instruments/分子デバイス</td><td>Axon Axopatch 200B</td><td>パッチクランプリグセットアップの一部</td></tr><tr><td>PCコンピュータ</td><td>DELL</td><td>カスタム構成</td><td>パッチクランプリグセットアップの一部</td></tr><tr><td>pHメーター</td><td>アスペラインスツルメンツ</td><td>PH700</td><td></td></tr><tr><td>ポリエチレンチューブ</td><td>Intramedic</td><td>427-436</td><td>ガラス底記録チャンバーに接続された細胞外浴の超融合用チューブ</td></tr><tr><td>塩化テトラエチルアンモニウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T2265</td><td>KvおよびBKチャネルのイオンチャネルブロッカーを細胞外浴溶液に追加</td></tr><tr><td>Thermo Scientific Precision Shaking Water Bus(モデル 2870)</td><td>Thermo Scientific</td><td>販売終了</td><td>ティッシュチャンバー循環バスのセットアップの代替として採用された酵素消化の温度制御のためのウォーターバス</td></tr><tr><td>ティッシュバス、100mL</td><td>Radnoti</td><td>1583-101</td><td>循環バスに接続し、水で満たされ、DSとDSMピースのチューブは、消化ステップの温度を制御するためにセットアップに配置されます</td></tr><tr><td>ビニールチューブ</td><td>コールパー</td><td>マー06405-3</td><td>ティッシュバスを循環水バスに接続するなど、複数の用途があります</td></tr><tr><td>水循環バス、Haake D1 L</td><td>Haake</td><td>製造中止</td><td>ティッシュバスに接続</td></tr><tr><td>ウェイトスケール</td><td>メトラー・トレド</td><td>XS64</td><td></td></tr><tr><td>ZeissAxiovert 40C 倒立顕微鏡(10倍および40倍対物レンズ付き</td>) <td>カール・ツァイス</td><td>販売終了</td><td>パッチクランプリグセットアップの一部</td></tr></tbody></table>

9-フェナントロル感受性カチオン電流の特性評価のための新たに分離されたヒトデトルサトール平滑筋細胞の調製と利用

Preparation and Utilization of Freshly Isolated Human Detrusor Smooth Muscle Cells for Characterization of 9-Phenanthrol-Sensitive Cation Currents

尿膀胱壁内に存在するデトルサ平滑筋(DSM)細胞は、最終的に尿の貯蔵および消損を促進する。生存可能、新鮮な、および単離されたDSM細胞の調製は、その達成が後続の機能的および分子的研究に最適な細胞を提供する重要な技術的課題を提示する。本明細書で開発され、精巧な方法は、10年以上にわたって私たちのグループによって正常に使用され、開いた膀胱手術から得られたヒト膀胱標本の解剖と、DSM片の酵素的な2段階治療と、新たに分離されたDSM細胞を得るための機械的トリチュレーションについて説明しています。最初のステップは、DSM層(筋肉質プロプリアとも呼ばれる)を粘膜(ウロテリウム、ラミナプログリア、および筋粘膜)および隣接する結合組織、血管および脂肪組織から分離することを含む。DSMは、公称Ca2+含有解離/消化溶液(DS)で断片(2-3 mm x 4-6mm)に切断されます。DSM片は次に、ステップあたり30〜45分間〜37°Cでパパインおよびコラゲターゼを含むDSと別々に移され、連続して処理される。酵素フリーウシ血清を含むDSと、火で磨かれたピペットによるトリチュレーションを用いた後、単一のDSM細胞を放出する。新たに分離されたDSM細胞は、イオンチャネルの電気生理学的および薬理学的特性を示すパッチクランプに最適です。具体的には、TRPM4チャネルブロッカー9フェナントロルは、アンホテリシン-B穿球パッチクランプアプローチで記録された電圧ステップ誘発カチオン電流を減少させることを示す。DSM細胞は、単一細胞RT-PCR、マイクロアレイ分析、免疫細胞化学、その位置近接ライゲーションアッセイ、およびCa2+イメージングなどの他の技術によっても研究することができる。単一のDSM細胞を利用することの主な利点は、観察が明らかにされた単一細胞特性に直接関連していることである。新たに分離されたヒトDSM細胞の研究は、尿膀胱におけるカチオン透過性を含む様々なイオンチャネルの特性を特徴付ける重要な洞察を提供し、DSM細胞特性および調節機構を解明する上でゴールドスタンダードとして継続する。

2段階の酵素手順を用いたヒト尿膀胱標本からの単一の単一の単離されたデトルザス平滑筋細胞の調製方法を記載する。得られた生存可能なDSM細胞は、生理学的および薬理学的特性を明らかにするために記載されたアンホテリシン-Bパッチクランプ電気生理学を含む様々な単一細胞技術によって研究することができる。

Detrusor smooth muscle (DSM) cells present within the urinary bladder wall ultimately facilitate urine storage and voiding. Preparation of the viable, ...

デトルス平滑筋細胞は尿膀胱の壁を形成し、最終的には尿の空隙と貯蔵を容易にする。当社のプロトコルは、単一の平滑筋細胞を新たに単離するための検証済みの信頼性の高い方法を提供します。新たに単離されたヒトデトル平滑筋細胞は、単一細胞レベルでの電気生理学的および分子検査の機会を提供する。コントロール、正常、および病気のヒト尿膀胱から単一のデトルサの平滑筋細胞を研究することにより、我々はイオンチャネルなどの薬理学的標的を検証する機会を有する。単一ヒトデトルストル平滑筋細胞は、パッチクランプ電気生理学などの電気生理学的実験に最適です。ここでは、非選択的なカチオンチャネルであるTRPM4、一過性受容体電位メラストタチン4チャネルという単一のイオンチャネルを研究する例を紹介する。初心者は、新しい単離されたDSM細胞を得るための重要な重要なステップを認識するなど、効率と精通性を必要とする解剖および酵素治療ステップに苦労する可能性があります。ヒト膀胱の神学に精通していることが重要であり、単一細胞を単一の細胞を単離するためのプロトコルステップは弾力性を保ち、最初はこのプロトコルを使用して最適でない細胞を得ることを期待する。全体の厚さの尿膀胱標本を調べることから始めます。標本をピン留めし、上向きの粘膜をシリコーンエナタイオマーコーティングされた150mmの丸皿に下ろし、鋭い解剖によって慎重にすべての粘膜を取り除きます。いくつかの粘膜フリーのデトルッサの平滑筋またはDSM片を切り取る。パパインとジチオトレイトール、またはDS-Pを含む事前に温められたDSの1〜2ミリリットルのチューブに3〜6個のDSMピースを入れる。30~45分間摂氏37度でインキュベートし、10~15分ごとにチューブを振るようにします。インキュベーション後、チューブからDS-Pを取り出し、DSM片を氷冷DSで短時間洗います。DSMピースを付けたDSを新しいチューブに移し、DSを取り外し、DSMピースをチューブの底に残します。コラゲターゼII型(DS-C)を含むDSの1〜2ミリリットルをチューブに加えます。そして、時折揺れで摂氏37度でそれをインキュベートします。DS-Cを捨て、酵素処理されたDSM片を氷冷DSで5~10回洗います。最後の洗浄の後、チューブ内のDSを残し、単一のDSM細胞を放出するために、火で磨かれたパスツールピペットで作品を穏やかにトリチュレートします。ピペット0.25〜1ミリリットルの細胞懸濁液を、反転顕微鏡のステージに座っているガラス底チャンバーに、少なくとも45分間インキュベートして細胞が付着できるようにします。その後、浴からDSを取り出し、重ね合わしてE溶液に交換します。複数のパッチ電極を引っ張り、電極先端を火で磨き、必要に応じて先端を歯科用ワックスでコーティングします。溶液中に電極を短時間浸して、アンホテリシンBを使わないピペット溶液でパッチ電極の先端を充填します。パッチクランプ電気生理学の成功は、DSM細胞の品質とアンホテリシン-Bの可溶化に依存します。アンホテリシンBを含む同じピペット溶液を電極にバックフィルし、パッチクランプアンプヘッドステージに接続されたホルダーに電極を取り付けます。電極の先端が水没するように、マイクロマニピュレーターを使用して電極を細胞外溶液の表面のすぐ下に配置します。そして、市販品取得ソフトウェアの膜試験窓機能を用いて電極抵抗を求め、目的のセルに向けて電極を前進させる。電極でセル表面に触れるときは、管を介して電極に穏やかな急速な負圧を印加してギガシールを形成する。これにより、電極の先端に負圧が発生し、膜試験で確認されたギガシールが成功します。アンホテリシンBがピペットを拡散させ、原形質膜に挿入し、主に1価カチオンに選択的に細孔を形成するまで30〜60分を要する。膜試験機能でギガシールのモニタリングを続けます。パッチの穿径が最適な場合は、セルの容量のダイヤルとアンプの直列抵抗を調整して、キャパシタンストランジェントを取り消します。安定した電圧ステップのカチオン電流が観測されたら、原稿に記載されているように、ルーティング電圧ステッププロトコルで電流を記録します。化合物または生理学的試験条件を適用して、過合による試験を行い、洗浄と同様に制御条件および試験条件に対する応答を記録します。このプロトコルは、機能的および分子的研究のために健康で新鮮なDSM細胞を分離するために使用することができます。健康な単一のDSM細胞は、スピンドル状の形態、鮮明な明確な縁、細胞の周りの明確に定義されたハロー、および顕微鏡下で見たときに半収縮の外観によって特徴付けられます。さらに、新たに単離されたDSM細胞は、機械的刺激およびカルバコールに反応する。細胞断片および非生存細胞または過剰消化細胞は、後続のパッチクランプ実験では避けるべきである。この単離細胞は、3つの異なるヒトDSM細胞において電圧ステップ誘導またはランププロトコルのいずれかで全細胞電流を測定したアンホテリシンB穿刺パッチクランプ実験で使用されている。実験は、9-フェナントロル、TRPM4チャネル阻害剤が効果的かつ可逆的にヒトDSMカチオン電流を阻害することを明らかにした。9フェナントロール感受性電流成分は、正の電圧および外向きの整流においてより強い阻害を示す。酵素処理ステップの条件は、温度、酵素処理の持続時間、酵素ロット源およびDSM細胞の品質を含むステップ2.2および2.3が、高品質のヒトDSM細胞を得るための重要な決定因子である。また、ヒトDSM細胞は、カルシウムや環状AMPなどの細胞内第二のメッセンジャーレベルの評価、免疫細胞化学によるタンパク質発現の検出、その際の近位訴訟アッセイによる共発現、RT-PCR、qRT-PCR、マイクロアレイ、次世代シーケンシングによるmRNA発現にも最適です。ヒトDSM細胞は、尿膀胱におけるBK、カルシウム、TRPM4チャネルの役割についての理解を進めています。今後の開発により、電気生理学的または薬理学的特性をトランスクリプトームまたはプロテオームプロファイルと特異的に結び付ける。

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

焦点のCa 2 +</sup平滑筋の>過渡検出

このビデオでは、2段階の連続酵素処理を使用して、ヒトの膀胱標本から排尿筋平滑筋細胞を分離する方法を示します。...

排尿筋平滑筋細胞の単離:ヒト膀胱標本からDSM細胞を得るための酵素消化手順

このビデオは、アムホテリシンB媒介穿孔パッチクランプ技術を使用して、排尿筋平滑筋細胞の一過性受容体電位メラスタチン4型(TRPM4)イオンチャネルからのカチオン性電流の特性評価を示しています。この技術は、イオンチャネルの生物物理学的および薬理学的特性の評価に役立ちます。...

アンホテリシン-B媒介穿孔パッチクランプ分析:膀胱細胞のイオン電流を研究するための電気生理学的手法

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カルシウムの同時測定のための人間の心房筋細胞の分離<sup&gt; 2 +</sup&gt;過渡と膜電流

腸神経系のニューロンおよびグリア成分を直接研究するための細胞培養プロトコルを実演します。成体マウスの筋神経叢から、電気生理学、免疫組織化学などにより個々のニューロンとグリアの機能を調べる能力を提供する、カバースリップ上のニューロン/グリア混合培養物。...

不定冠詞<em&gt;インビトロ</em成体マウスの筋層間神経叢から分離腸ニューロンとグリアの&gt;準備

この原稿は、薬理学的薬剤または神経刺激に応答して平滑筋収縮性を評価するためのインビトロの方法で 、シンプルでありながらパワフルなを提示します。主な用途は、薬物スクリーニングと理解組織生理学、薬理学、病理学である。...

下部尿路薬理学を評価するための方法として膀胱平滑筋収縮ストリップ

この説明は前のヴィヴォひと子宮筋の収縮や創.の応用を研究する実験的プロトコル小説研究プローブから薬理学的データを検証するだけでなく新たな子宮筋生理機能の理解を改善するためにこのテクニックを使用または薬剤をリードします。...

援助医薬品開発への人間の子宮平滑筋の収縮力測定

デトルソールフリー膀胱モデルは、サブグロテリウムへの直接アクセスを可能にし、尿の貯蔵および空洞化中にサブロテリウム/ラミナ・プロプリアにおける生物学的に活性なメディエーターの可用性を調節するための局所メカニズムを研究する。調製物は、無傷の膀胱の充填によく似ており、全身的な影響を受けずに圧力量の研究を行うことができます。...

膀胱充填中にスブロテリウムに直接アクセスするために脱皮筋を除去した分散型(Ex Vivo)マウス膀胱モデル

ここでは、ヒト人工多能性幹細胞(iPSC)からインビトロNJを生成するプロトコルを提供します。この方法は、成熟した形態と機能を有するMJを1ヶ月で単一のウェルで誘導することができる。結果として生じるNmJは、関連する疾患のモデル化、病理学的メカニズムの研究、または治療のための薬物化合物のスクリーニングに使用される可能性がある。...

ヒト人工多能性幹細胞から誘導されるインビトロ神経筋接合

このプロトコルは、膜電位の変化を測定することによって電気発生膜タンパク質を研究するための方法を記載しています。このアッセイは、上皮細胞株で内因的に発現する複数のイオンチャネルの機能的読み出しのためのプラットフォームを提供します。...

2つの上皮細胞株における2つの内因性イオンチャネルのハイスループット機能研究のための膜電位の蛍光ベースのアッセイ(英語)

学ぶヒト膀胱平滑筋細胞の酵素分離法とパッチクランプ電気生理学。TRPM4イオンチャネルと9-フェナントロル感受性カチオン電流を単細胞レベルで評価し、膀胱生理と薬理学的標的の理解を深める。

9-フェナントロル感受性カチオン電流の特性評価のための新たに分離されたヒトデトルサトール平滑筋細胞の調製と利用

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