2019年8月16日
この手順では、DsRedベースのエピトープリガンドが固定化され、タンパク質Aの代替として、粗植物抽出物または細胞培養上清からのモノクローナル抗体の捕捉のための高選択的親和性樹脂を産生する。
モノクローナル抗体は、バイオ医薬品市場を支配し、典型的にはプロテインAクロマトグラフィーによって精製されます。従う樹脂は、抗体系治療薬の価格に影響を及ぼす生産時の主要なコストドライバである。ここでは、HIV中和抗体2F5の線状エピトープの担体として読み取られる蛍光タンパク質に基づく新しい親和性リガンドについて説明する。
一般に我々の方法はモノクローナル抗体の捕獲に使用することができるアフィニティークロマトグラフィー樹脂の速い生成を可能にする。我々は、粗植物抽出物から抗体2F5を捕捉することによってこの能力を実証した。動的結合能力と樹脂再利用性を向上させるために、捕捉条件と溶液バッファーを最適化しました。
当社の樹脂は、タンパク質Aよりも一般的に緩い条件を可能にし、モノクローナル抗体の精製コストを削減する可能性を秘めています。さらに、樹脂は、直鎖状エピトープに結合する他の抗体に容易に適合させることができる。この手順を開始するには、実験の設計で定義された1リットル当たり5〜15グラムの範囲になるように、調製された親和性リガンド溶液の濃度を調整する。
カップリング反応ができるまで氷の上に溶液を保管します。次に、2ミリリットルのシリンジを1本のDFE溶液で満たします。そして、1ミリリットルのベッド容量を持つNHS活性化クロスリンクアガロースカラムに注射器を取り付けるアダプターを準備します。
カップリングに使用される10カラムごとに、30ミリリットルの不活性化溶液、30ミリリットルの低pH溶液、および1ミリリットルの貯蔵溶液を調製します。その後、チューブに1ミリモル塩酸の20ミリリットルを調製します。そして、少なくとも20分間氷の上でそれをインキュベートします。
カップリング反応中にすべてのステップの分数を通して流れを監視するために精密スケールを準備します。この後、密閉されたNHS活性化架橋アガロースカラムを開きます。アダプターの入口にバッファーのドロップを適用して、空気が列に入らないようにします。
列の入口にシリンジアダプターを取り付けます。6ミリリットルの氷冷1ミリモル塩酸でカラムを洗い、1分あたり1ミリリットル以下の流量で洗います。2ミリリットルのシリンジを使用して、すぐに1.5ミリリットルのDFE溶液を毎分1ミリリットル未満の流量で注入する。
そして、後続の分析のために精度のスケールで分数を通して流れを収集します。両端に柱を密封し、摂氏22度で15~45分インキュベートします。次に、活性化溶液の6ミリリットルを注入し、続いて低pH溶液の6ミリリットルを、毎分1ミリリットル未満の流量で、非共有結合リガンドを樹脂から除去する。
6ミリリットルの活性化溶液を注入し、カラムを15分間インキュベートする。この後、カラムに低pH溶液を6ミリリットル注入します。活性化溶液の6ミリリットルが続く。
次に、カラムに低pH溶液の別の6ミリリットルを注入します。2ミリリットルの貯蔵溶液をカラムに注入し、摂氏4度で保管します。まず、2F5を含む透明化植物抽出物、または好ましい細胞ベースの発現系用上清の100ミリリットルを調製し、2F5も含む。
次に、平衡バッファーと、高鉄X強度錯覚バッファーを、テキストプロトコルで概説したとおりに用意する。クロマトグラフィーシステムをバッファでフラッシュします。クロマトグラフィー システムに DFE アフィニティカラムをマウントします。
そして5CVの平衡バッファーと平衡化し、毎分1ミリリットルの流量で。280ナノメートルでUV吸光度を監視します。その後、明確化された植物抽出物、または上清の80ミリリットルを毎分5ミリリットルの流量でカラムに積み込みます。
2分の接触時間を保証する。2ミリリットルの分数または画期的な曲線再構成でサンプルを通して流れを収集します。直ちにサンプル分析が不可能な場合は、サンプルを通して摂氏4度で流量を保存します。
この後、平衡バッファーの6CVでカラムを洗浄します。洗浄の始まり、中、最後にサンプルを集める。MAB2F5を5巻の高いイオン強度の錯覚バッファーで希釈します。
280ナノメートルのUV信号がベースラインより5ミリの吸光度単位に増加した場合、DFE分数を収集します。テキストプロトコルで概説されているように、エピトープと抗体のペアごとに錯覚バッファーを最適化します。融合タンパク質DFEは、トランスジェニックタバコ植物で発現し、温室で増殖する。
DFEの全体的な回復は23.5キログラム当たりミリグラムです。90%以上の純度で樹脂に固定化されたDFEの絶対量は、カラムに注入されたDFEの質量に応じて増加し、1リットル当たり約15グラムでプラトンが増加し、一方、結合収率は、より多くのDFEが注入されるにつれて継続的に低下する。DFE分子は、カップリング後も赤色の蛍光を保持することが見られます。
色の強度は、固定化されたDFEの総量に対応します。したがって、カラムカラーは、結合効率とカラム品質を推定する簡易品質管理パラメータとして使用できます。組換え2F5抗体は、植物で成長したニコチアナベンタミアナ植物で一時的に産生される。
粗植物抽出物からの2F5の捕獲は、アフィニティーカラムを用いて試験され、精製されたDFEのおよそ7ミリグラムと結合される。1.25モルの塩化マグネシウム濃度は、100%近い回収率とプロテインA樹脂に匹敵する約97%の純度でDFE親和性樹脂から2F5を溶出するのに十分です。DFEアフィニティ樹脂のDBCを10%2F5のブレークスルーで、25サイクルの間に直線的に低下し、初期値の約15%にする。
我々は、我々の親和性リガンドの結合容量を最適化するために、実験アプローチの設計を使用しました。これらの条件は、将来的に他のリガンドのために微調整することができます。我々の方法は、産物特異的リガンドのサブキャリアタンパク質をスレッド化するために、花性タンパク質を使用する。
同時に、単に、オペレータに即時かつ直感的なフィードバックを提供し、動員手順の視覚的な品質インジケータとして機能を追加します。
本研究では、粗植物抽出物または細胞培養上清からモノクローナル抗体を選択的に捕捉するための、新規なDsRedベースのアフィニティー樹脂を提示します。本手法は、従来のプロテインAクロマトグラフィーと比較して、精製コストを削減することを目的としています。
プロテインAクロマトグラフィーは、モノクローナル抗体精製の主要なコスト要因となっており、バイオ医薬品の価格に影響を与えています。本手法では、活性化架橋アガロースに固定化したDsRedベースのアフィニティーリガンドを用いる、コスト効率の高い代替案を提示します。これにより、粗抽出液から線状エピトープを持つ抗体を選択的に回収することが可能になります。本アプローチは、高価なリガンドへの依存度を低減し、再利用可能で視覚的な定量が可能なレジンシステムを提供することで、初期段階のターゲットバリデーションおよびアッセイ開発を支援します。
本手法は、初期のターゲットバリデーションからリード化合物の同定に至るディスカバリー・コンティニュアムに適合しており、線状エピトープを持つ複数の抗体ターゲットに適用可能な、迅速なレジン作製プラットフォームを提供します。