Name: オートプハギックとプロテアソームフラックスにおける日のリズムの測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-09-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 18 s
Description: 学ぶマウス肝臓におけるオートファジーとプロテアソーム活性の日リズム測定法。in vivoでタンパク質分解を評価し、代謝リズム研究に活用できます。

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この研究は、RO1HL135846と児童開発研究所の助成金(PD-II-2016-529)によって資金提供されました。

ここに記載されているプロトコルは、セントルイス動物ケアと使用委員会(IACUC)のワシントン大学によって承認されました。
1. マウスハウジングと実験設計
<ol><li>タンパク質回転率の毎日のリズムを検出するために、ハウスマウス(雄または女性C57BL/6J、4−8週齢、20−25g)の標準的な12時間の光/暗いサイクルの下で、食物提供のアドリビタムを提供する。動物にストレスを与えないように、使用前に施設内で少なくとも1週間マウスを順応させ、単一のハウジングを避ける。タンパク質異化のリズムが本当に概日的であることを証明するために(すなわち、動物の内部生体時計によって駆動される)、マウスを一定の暗い条件下で収容し、マウスが外因性光にさらされるのを避けるように注意する。 注:概日リズム実験用マウスハウジングの詳細については、以下のリファレンス11を参照してください。</li>
	<li>各時点に対して、3匹のマウスをシャムコントロールとして割り当て、使用するプロテアーゼ阻害剤の種類ごとに少なくとも3匹のマウスを割り当てます(プロテプハギックフラックス用のルペプチンおよびプロテソームフラックス測定用ボルテゾミブ)。組織サンプルを得るために、昼夜のサイクルを通して4時間間隔で均等に間隔をあけた6つの時間ポイントを計画します。 注:リン酸緩衝生理食べ物(PBS)、レペプチン、およびボルテゾミブを用いた24時間、6時間の実験では、合計54匹のマウスが必要です(治療1回あたり3匹×3回×6時間点)。</li>
</ol>2. マウス肝臓採取用ホモジネーション溶液、阻害剤ストックソリューション、バイアルの調製
<ol><li>新鮮な均質化バッファー(HB)を調製し、氷上に保つ:10 mMトリス-HCl pH 7.5、250 mMスクロース、5 mM EDTA pH 8.0、および100mLあたり1プロテアーゼ阻害剤錠剤。 注:マウス1匹につき約10mLのHBが必要です。</li>
	<li>生物学的サンプルの下流処理のために、各サンプルは、粗い均質性を保持するために15 mL円錐管、核後の上清を保持するための15 mLチューブ、3,000 x gと20,000 x gペレットを保持する2つの1.5mLマイクロセントリフュージチューブを必要とします。材料は、それぞれ、細胞質画分を保持する1.5 mLマイクロ遠心管チューブ。粗い均質性を意図した各チューブに7 mLの冷たいHBを加え、氷の上に保ちます。</li>
	<li>無菌PBS中のレペプチンヘミ硫酸塩の2mg/mLストック溶液を調製する。また、ジメチルスルホキシド(DMSO)中のボルテゾミブの50mg/mL溶液を調調用する。アリコットと-80 °Cでソリューションを保存します。</li>
</ol>3. プロテアーゼ阻害剤投与
<ol><li>ルーペプチン(2mg/mL)およびボルテゾミブ(50mg/mL)のストック溶液を、各時間点の15分前に室温に解凍する。ルププチンストックは注入の準備ができています。滅菌PBSでボルテゾミブを希釈し、50 μg/mLの作業溶液を得る。 注:ボルテゾミブは光に敏感なので、使用するまで光から作業ストックを保護します。</li>
	<li>マウスの重量を量り、「シャム」PBS(0.5 mL)、ルペプチン(40mg/kg)、またはボルテゾミブ(1.6 μg/kg)の食後注射を行います。マウスを、受け取った注射の種類別にグループ化した適切にマークされたケージに戻す。標準化されたテーブルでマウスが処理または操作される時間を記録します (補足ファイル「サンプルデータ」を参照)。 注:線量計算機は、補足ファイル「サンプルデータ」の援助として含まれています。変動を最小限に抑えるためには、インジェクションをタイムポイントからタイムポイントまで迅速かつ同じ順序で実行することが重要です。</li>
</ol>4. 組織の取得と貯蔵
<ol><li>注射の2時間後、制度的に承認されたIACUCプロトコルに従ってマウスを1匹ずつ安楽死させる。例えば、マウスを麻酔し、子宮頸部脱臼により安楽死させる。安楽死の直後に解剖ステップに進みます。 注:観察可能な反射なしで前足をつまむことで頸部脱臼の前に完全な麻酔を確保してください。</li>
	<li>マウスの腹部にメッツェンバウムはさみで1.5〜2.0cmの切開を行い、肝臓の左葉を取り除きます。肝臓の左葉を外部化し、外科的なはさみでそれを切除します。肝臓サンプルを7mLの氷冷HBに適切に標識された15mL円錐管に沈めます。試料は処理中氷の上に保管してください。 注:サンプルは、先に進む前に氷の上または4°Cで一晩保存することができます。マクロオートファジーおよびプロテアソーム活性の標準マーカーが唯一の意図された読み出しである場合、肝臓サンプルは液体窒素中でフラッシュ凍結され、後で処理するために-80°Cで保存することができます。他の分解標的(例えば、プロテオミクスを介して)を調べるために、凍結することなくサンプルを処理する。</li>
	<li>すべてのサンプルが取得されるまで、次のマウスを安楽死させ、解剖します。マウスを注入したのと同じグループ順に処理し、このステップの持続時間を記録します(補足ファイル「サンプルデータ」を参照)。各マウスは、注入された阻害剤の露光時間の差を制限するために5分以下で処理する必要があります。</li>
</ol>5. 肝臓サンプルの生化学的分画
注:図 1Bは、分数スキームを示しています。
<ol><li>HBの各肝臓サンプルと7 mLを15 mL容量のダンスホモジナイザーに移します。緩いピストンの10ストロークとタイトなピストンの15ストロークでサンプルを均質化します。得られた粗質を15mL円錐形チューブに戻す。すべての肝臓サンプルが均質化されるまで繰り返します。</li>
	<li>4°Cで10分間700xgで均質なサンプルをペレット核と破片にスピンします。 核後上清(S1)の上4mLを新鮮な15mL円錐管に移します。</li>
	<li>ブラッドフォードまたはビシンコニン酸(BCA)アッセイを使用して、製造元の指示に従って分画S1のタンパク質濃度を決定します。次に、必要に応じて新鮮なHBをS1に加えることによって、すべてのサンプルの濃度を2.1mg/mLまたは所望の濃度に等化します。正規化されたサンプルは、「総タンパク質」(Tot)分数です。下流の分析目的および品質の改善のために、Tot分画のアリコート500 μLおよび-80 °Cで貯える。</li>
	<li>残りのトット画分の1.5mLをマイクロ遠心管に移し、3,000 x gで15分間4°Cでスピンします。得得た上清(S2)の1mLを新鮮なマイクロ遠心管に移し、氷の上に置く。</li>
	<li>残りの上清を吸引し、3,000 x gペレット(3KP)を1.5mLの冷たいHBで2回洗浄します。下流のプロテオミクスが予想される場合、3KPペレットは-80°Cで乾燥して保存することができます。西洋ブロッティングのみが予想される場合は、ドデシル硫酸ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)サンプルバッファー(材料表)の200μLで3KPペレットを再中断し、95°Cで5分間沸騰させます。</li>
	<li>S2分画を20,000 x gで20分間4°Cで回します。得得た上清(S3)を新鮮なマイクロ遠心管に移します。S3は細胞質(細胞)画分である。SDS-PAGEの場合は、150 μLのCyto分画と4x SDS-PAGEサンプルバッファの50 μLを組み合わせ、95°Cで5分間沸騰させます。</li>
	<li>残りの上清を20,000 x gペレット(20KP)から吸引し、1.5mLの冷たいHBで2回洗浄します。下流のプロテオミクスが予想される場合、20KPペレットは-80°Cで乾燥して保存することができます。西洋ブロッティングのみが予想される場合は、SDS-PAGEサンプルバッファの100 μLで20KPペレットを再中断し、95°Cで5分間沸騰させます。</li>
</ol>6. ウェスタンブロッティング読み出し
<ol><li>ウェスタンブロッティングを介してマクロオートファギックおよびプロテアソームフラックスを定量するために、精製されたGST-LC3b(2 μg/mL)、p62-His6(2 μg/mL)、およびLys48リンクポリウビキチン(K48-Ub、50μg/mL)のストック溶液を1x SDSページバッファで構成する。95°Cで5分間沸騰させた後、アリコートを-80°Cで保存し、将来の使用のために保存します。</li>
	<li>SDS-PAGEの時点では、1x SDS-PAGEサンプルバッファーで1:3を連続的に希釈することにより、標準タンパク質混合物の6点標準曲線を生成する。各標準曲線サンプルの10 μLを26ウェル4-12%SDS-PAGEミディゲルにロードし、その後に市販の分子量標準であるタンパク質標準(材料の表)を染色しました。</li>
	<li>オートプハギグラックスを測定するために、各ウェルに3KPサンプルの12 μLをロードします。 注:シャム、ボルテゾミブ、およびレペプチン治療が行われ、1回の治療につき3匹のマウスを想定すると、各時点は9つのサンプルで構成されるべきである。したがって、各ミディゲルは2つのタイムポイントに標準曲線を加えて収容することができ、典型的な時系列実験では読み出しに3つのミディゲルが必要になります。</li>
	<li>プロテアソームフラックスを測定するには、各ウェルにCyto分画の12 μLをロードします。</li>
	<li>SDS-PAGEによってタンパク質サンプルを分離し、標準プロトコルを使用してポリビニリデンフッ化物(PVDF)膜に移す。LC3bのウェスタンブロッティングが予想される場合は、20%メタノール含有転写バッファーを用いてゲルを転写する。さもなければ、これは高分子量タンパク質種のより効率的な転送を可能にするように、10%メタノール含有転写バッファーを使用する。</li>
	<li>標準プロトコルを使用してウェスタン ブロッティングを実行します。マクロオートプハギ性フラックスを分析するために、抗p62または抗LC3b抗体(1:1,000)を含む3KPサンプルを含むブロット膜を4°Cで一晩。プロテアソームフラックスを分析するために、抗Lys48特異的ポリウビキチン(1:1,000)を用いたCytoサンプルを含むブロット膜を4°Cで一晩。</li>
	<li>標準的な二次抗体およびイメージング装置を用いて画像西部ブロット。特定の時系列実験を構成するすべての膜を一緒にイメージします。</li>
</ol>7. データ分析
注:補足ファイル「サンプルデータ」を参照してください。
<ol><li>ウェスタン ブロット サンプルに対して密度測定を実行するには、標準グラフィックスソフトウェア、イメージ スタジオ、または ImageJ を使用します。</li>
	<li>標準曲線と実験サンプルの両方について、対象バンドに対して密度測定を実行します。Image Studio では、p62 を例にして、下部にタンパク質モノマーを含む長い長方形を描き、膜の上部まで伸ばします。四角形をコピー、貼り付け、残りのサンプルに移動します。サンプル間で定量化に使用される四角形を一貫しておく必要があります。</li>
	<li>分析ウィンドウの右下にある[レポート]と [スプレッドシートの起動]を押して、定量をスプレッドシートに保存します。</li>
	<li>連続的に希釈された標準サンプルを使用してスプレッドシートを使用して密度標準曲線を生成し、線形回帰または多項式回帰を使用して、最適な標準曲線方程式を取得します。この式を使用して、実験サンプルでp62、LC3b-IIまたはLys48-polyUbの量を外挿する。</li>
	<li>フラックス測定を得るためには、各阻害剤処理サンプルの外挿タンパク質量を、同じ時点からPBSサンプルの平均値から差し引きます(補足ファイル「サンプルデータ」を参照)。</li>
	<li>一方通行分散分析を用いてタンパク質回転率の時間変動の統計的有意性を評価する。これは、標準的なスプレッドシートソフトウェアを使用して行うことができます。</li>
</ol>

<ol><li>Green, C. B., Takahashi, J. S., Bass, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+meter+of+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The meter of metabolism.</a> Cell. 134 (5), 728-742 (2008).</li>
<li>Ma, B. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LPS+suppresses+expression+of+asialoglycoprotein-binding+protein+through+TLR4+in+thioglycolate-elicited+peritoneal+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Glycoconjugate+Journal%22%5BJournal%5D)">LPS suppresses expression of asialoglycoprotein-binding protein through TLR4 in thioglycolate-elicited peritoneal macrophages.</a> Glycoconjugate Journal. 24 (4-5), 243-249 (2007).</li>
<li>Ryzhikov, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diurnal+Rhythms+Spatially+and+Temporally+Organize+Autophagy%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Diurnal Rhythms Spatially and Temporally Organize Autophagy.</a> Cell Reports. 26 (7), 1880-1892 (2019).</li>
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<li>Desvergne, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circadian+modulation+of+proteasome+activity+and+accumulation+of+oxidized+protein+in+human+embryonic+kidney+HEK+293+cells+and+primary+dermal+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radical+Biology+and+Medicine%22%5BJournal%5D)">Circadian modulation of proteasome activity and accumulation of oxidized protein in human embryonic kidney HEK 293 cells and primary dermal fibroblasts.</a> Free Radical Biology and Medicine. 94, 195-207 (2016).</li>
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<li>Haspel, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+macroautophagic+flux+in+vivo+using+a+leupeptin-based+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">Characterization of macroautophagic flux in vivo using a leupeptin-based assay.</a> Autophagy. 7 (6), 629-642 (2011).</li>
<li>Klionsky, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+use+and+interpretation+of+assays+for+monitoring+autophagy+%283rd+edition%29%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy (3rd edition).</a> Autophagy. 12 (1), 1-222 (2016).</li>
<li>Eckel-Mahan, K., Sassone-Corsi, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotyping+Circadian+Rhythms+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Mouse+Biology%22%5BJournal%5D)">Phenotyping Circadian Rhythms in Mice.</a> Current Protocols in Mouse Biology. 5 (3), 271-281 (2015).</li>
<li>Hughes, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+Genome-Scale+Analysis+of+Biological+Rhythms%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Rhythms%22%5BJournal%5D)">Guidelines for Genome-Scale Analysis of Biological Rhythms.</a> Journal of Biological Rhythms. 32 (5), 380-393 (2017).</li>
</ol>

著者は何も開示していない。

我々のプロトコルは、一般的に利用可能な分子生物学装置を使用してマウスのタンパク質回転率の生物学的リズムを測定する技術的に簡単な手段を説明する。時系列実験の長さと関連する生物学的サンプルの数のために、マウスの注入方法、組織獲得のタイミングおよび生化学的処理に関する実験全体で一貫性を保ることが重要である。サンプル。注射、安楽死、頸部脱臼のステップは、本格的な実験を始める前にオペレータの練習を必要とするかもしれません。異なる個人が異なる速度で解剖するので、単一のオペレータがすべての組織解剖を行うことが最善ですが、これが不可能な場合は、プロテアーゼ阻害剤の注射と組織の収穫の間の時間を2時間から3または4時間(2時間または4時間()これは、時間ポイント間で一貫して行われる場合)。
トラブルシューティングの一般的な理由には、生物学的反復サンプル間のフラックスの変動性と、西洋ブロット品質の低さが含まれます。サンプルの変動性に関しては、解剖速度または経験レベルが異なる複数の演算子を使用しているためです。これは、平均解剖時間がマウスあたり5分未満になるまで、練習実験を行うことによって軽減することがで...

概日リズムは、自然全体で明らかな生物学的機能の毎日の予測可能な変動を指します。睡眠覚醒サイクルのようなマクロ的な行動から、生体分子のリズミカルな豊富さのような分子現象まで、あらゆる生物学的規模で存在します。近年、概日リズム生成に不可欠な「クロック遺伝子」の発見により、概日リズムの研究が変容しています。クロック遺伝子ノックアウトマウスの研究は、代謝1などのコア細胞プロセスを一時的に組織化する概日リズムの中心的な役割を明らかにした。概日リズムがこれを実現する方法の中で、タンパク質異化に時間構造を与えることによってです。
我々を含むいくつかのグループは、細胞タンパク質異化症、オートファジーおよびユビキチンプロテアソーム系の2つの主要な道が、日次リズム2、3、4、5の対象となることを示している。オートファジーは、目的のタンパク質が新規小胞(マクロオートファジー)の構築を通じて、または直接転移を通じてこの劣化小器官に送達されるタンパク質異化のリソソーム依存性アームを表す。チャネル(シャペロン媒介オートファジー)6.ユビキチン・プロテアソーム系は、タンパク質がポリユビキチン化され、プロテアソームに送り込まれる主要な非リソソーム経路であり、細胞質および核7、8全体で見られる高分子分解機である。オートファジーとプロテアソーム活性のリズムは、細胞のハウスキーピングに役割を果たす可能性が高いので重要です。その結果、前臨床疾患モデルと互換性のあるタンパク質異化の日常的な振動を検出できる標準化された手順を持つことは貴重です。
ここでは、研究室3,9の研究の基礎となっているマウス肝臓のオートファギックフラックスの日常的変動を定量化するためのプロトコルを提供します。我々の方法は、「ターンオーバーアッセイ」10、多くのグループがプロテオ溶解活性(またはフラックス)を測定するために使用されるアプローチとして分類される。このアプローチでは、リソソームまたはプロテアソームに特異的なプロテアーゼ阻害剤をマウスに投与し、その後、組織サンプルが一定の時間間隔後に得られる。並行して、組織サンプルは、シャム注射を行ったマウスから得られる。組織サンプルを均質化し、生化学的に分離し、リソソーム富化および細胞質画分を得る。これらの画分は、マクロオートファジーマーカー(LC3bおよびp62)またはプロテアソーム基質(ポリユビキチン化タンパク質)に特異的な抗体を用いてウェスタンブロッティングを介して並行して分析される。時間が経つにつれて、プロテアーゼ阻害剤を注射された動物は、通常リサイクルされるであろうタンパク質を蓄積します。その結果、ターンオーバー率は、プロテアーゼ阻害剤処理されたサンプル中のマーカータンパク質の豊富さをシャム処理サンプルと比較することによって推測される。この方法を1日を通して一定の時間間隔で繰り返すことにより、プロテオ分解における概日変動を再構築することができる(図1A)。

<table><tbody><tr><td>4x SDS PAGE サンプルバッファー</td><td>Invitrogen</td><td>Cat# NP0008</td><td></td></tr><tr><td>Bortezomib</td><td>EMD Millipore</td><td>Cat# 5.04314.0001;CAS: 179324-69-7</td><td></td></tr><tr><td>Image Studio</td><td>LICOR</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Immobilon-FL PVDF membrane 0.45 micron</td><td>Merck Millipore Ltd</td><td>Cat# IPFL00010</td><td></td></tr><tr><td>K48-linkage Specific Polyubiquitin (D9D5) Rabbit mAb</td><td>Cell Signaling Technology</td><td>Cat#8081S;RRID:AB_10859893</td><td></td></tr><tr><td>LC3a</td><td>Boston Biochem</td><td>Cat# UL-430</td><td></td></tr><tr><td>LC3b 抗体</td><td>Novus</td><td>Cat#NB100-2220;RRID:AB_10003146</td><td></td></tr><tr><td>LC3b抗体</td><td>Cell Signaling Technology</td><td>Cat#2775;RRID:AB_915950</td><td></td></tr><tr><td>ロイペプチン</td><td>シグマ</td><td>Cat# L2884;CAS: 103476-89-7</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE 4-12% Bis-Tris Midi Protein Gels</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>Cat# WG1403BOX</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE LDS Sample Buffer (4x)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>Cat# NP0007</td><td></td></tr><tr><td>P62-his</td><td>Novus</td><td>Cat# NBP1-44490</td><td></td></tr><tr><td>Precision Plus Protein All Blue Prestained Protein Standards</td><td>Bio-Rad</td><td>Cat# 1610373</td><td></td></tr><tr><td>ウサギ抗p62 / SQSTM1</td><td>ミリポアシグマ</td><td>猫#P0067;RRID:AB_1841064</td><td></td></tr><tr><td>rhPoly-Ub WT (2-7) (K48)</td><td>Boston Biochem</td><td>Cat# UC-230</td><td></td></tr><tr><td>SDS-PAGE Midi-size Gels</td><td>Invitrogen</td><td>Cat# WG1403</td><td></td></tr><tr><td>SIGMAFAST Protease Inhibitor Tablets</td><td>Millipore-Sigma</td><td>Cat# S8830</td><td></td></tr></tbody></table>

オートプハギックとプロテアソームフラックスにおける日のリズムの測定

Measuring Diurnal Rhythms in Autophagic and Proteasomal Flux

細胞は、リソソームおよび非リソソーム経路を含む不要なタンパク質および他の材料をリサイクルするためのいくつかの方法を採用しています。主なリソソーム依存性経路はオートファジーと呼ばれ、タンパク質異化症の主要な非リソソーム法はユビキチンプロテアソーム系である。モデル生物の最近の研究は、オートファジーとユビキチンプロテアソームシステムの両方の活性が一日を通して一定ではなく、代わりに毎日(概日)リズムに応じて変化することを示唆しています。タンパク質回転率の生体リズムを測定する能力は、細胞の品質管理がどのように達成されるかを理解し、目的の特定のタンパク質のダイナミクスを理解するために重要です。ここでは、タンパク質回転率の概日成分を捕捉する生体内でオートプハギックおよびプロテアソームフラックスを定量するための標準化されたプロトコルを提示する。当社のプロトコルには、マウスの取り扱い、組織処理、分画、およびマウス肝臓を出発材料として使用したオートファギックフラックス定量の詳細が含まれています。

代表的なデータを図2A,Bに示し、これらのデータの定量化を図2C,Dに示します(補足ファイル「サンプルデータ」も参照)。わかりやすくするために、図 2にローディング コントロールを示していませんが、これらは並行して取得する必要があります。典型的には、β-アクチンに対するウェスタンブロットがこの目的のために使用されるが、全タンパク質染色(ポンソーSなど)で十分である。任意の時点におけるオートファジーフラックスの主な読み出しは、リソペム濃縮3KP画分のルペプチン処理とシャムサンプルの間のマクロオートファジー特異的マーカー(p62またはLC3b-II)の量の差を2で割った3KP分数(の数)プロテアーゼ阻害剤の注射と組織収穫の間の時間)。同様のデータは20KPサンプルからも得ることができますが、マウス肝臓での経験は、信号のほとんどが3KP分画で分離するということです。...

オートファジーとマウス肝臓のプロテアソームを介してタンパク質異化の生体リズムを測定するための我々のプロトコルを説明する.

Cells employ several methods for recycling unwanted proteins and other material, including lysosomal and non-lysosomal pathways. The main ...

我々のプロトコルは、マウス組織におけるオートファジーおよびプロテアソーム活性の速度を測定することを可能にし、これらの活動内の概日変動を検出するのに十分な感度である。この技術は、細胞および組織におけるタンパク質の同化作用を評価するために生体内で使用することができ、必要な材料は比較的低技術であり、任意の分子生物学研究室にアクセス可能である。手順を実証することは、私の研究室のポストドクターであるミハイル・リジコフです。各タイムポイントの前に15分間、ロイペプチンとボルテゾミブのストック溶液を室温まで温め、解凍したボルテゾミブを無菌PBSで希釈して1ミリリットル当たり50ミリグラムの作業溶液を得る。プロテアーゼ阻害剤投与の場合、腹腔内は1キログラム当たり40ミリグラムのロイペプチンまたはボルテゾミブ1キログラム当たり1.6マイクログラムを各実験動物に注入する。陰性コントロールの場合は、0.5ミリリットルのPBSでマウスを注射します。各マウスを注入時に受けた治療の種類別にグループ化されたケージに戻し、標準化されたテーブルでマウスが治療または操作された時間を記録します。注射の2時間後、各犠牲実験動物から採取した左肝葉を氷上の15ミリリットル円錐形管に適当に標識した氷冷均質化バッファーの7ミリリットルに沈水する。すべてのサンプルが取得されたら、最初のサンプルとホモジナイゼーションバッファーの全容を15ミリリットル容量のDounceホモジナイザーに移し、緩いピストンの10ストロークとタイトピストンの15ストロークでサンプルを均質化します。結果として得られた粗ホモゲンを元のチューブに戻し、ちょうど実証したように次のサンプルを均質化します。すべてのサンプルが均質化されたら、遠心分離によってホモジネート核および破片を沈降させ、各核後上清の上位4ミリリットルを新しい15ミリリットルのチューブに移す。標準プロトコルに従ってこの最初の上清分の割合のタンパク質濃度を決定し、必要に応じて新鮮な均質化バッファーで1ミリリットル当たり2.1ミリグラムにすべてのサンプルの濃度を均等にします。下流の分析と品質改善のために、正規化された全タンパク質分率の500マイクロリットルをマイナス80°Cの貯蔵用に1.5ミリリットルのマイクロ遠心分離管にアリコートした。残りの全タンパク質分画の1.5ミリリットルを個々のマイクロ遠心分離チューブに移し、遠心分離によってタンパク質サンプルをペレットにします。得られた第2分の上清の1ミリリットルを氷上の新しいマイクロ遠心分離管に移し、残りの上清を吸引する。3Kペレットを1回の新鮮な冷たい均質化バッファーで1.5ミリリットルで2回洗浄し、SDS-PAGEサンプルバッファーの200マイクロリットルで3Kペレットを再中断し、サンプルを摂氏95度で5分間沸騰させます。20、0

measuring-diurnal-rhythms-in-autophagic-and-proteasomal-flux

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

このビデオは、蛍光ペプチドアッセイを使用して、恐怖条件付けおよび制御ラットの脳から外側扁桃体の異なる細胞内コンパートメントにおけるプロテアソーム活性を測定する方法を示しています。プロテアソームは蛍光ペプチド基質を切断して蛍光分子を放出し、プレートリーダーを使用して定量化し、核およびシナプスタンパク質画分のプロテアソーム活性を評価します。核活性の増加は遺伝子発現の変化を示唆し、シナプス活性の低下は長期記憶の維持に必要なタンパク質の安定化を示しています。...

ラット脳の異なる細胞内コンパートメントにおけるプロテアソーム活性の測定

オートファジーは、細胞がタンパク質や細胞小器官が低下し、リサイクルを可能にするユビキタスプロセスです。我々はautolysosomesに小さいが、オートファゴソームとリソソームの形成と流通を含むオートファジーの誘導に関連付けられている本質的な、物理的な変化、およびそれらの融合を可視化し、定量化するための高度な蛍光顕微鏡を適用します。...

高度な3D蛍光顕微鏡を用いたオートファジーの定量分析

蛍光標識したオートファジーマーカーのタイムラプス顕微鏡は、高時間分解能とダイナミックオートファジー応答の監視ができます。...

初期のオートファジーイベントの細胞イメージングライブOmegasomesを以降

ここでは、LC3スポット計数とともに、3つのオートファジーマーカーの明るい詳細画像を比較し、それらの共局在化を定量化する分析的特徴を有するマルチスペクトルイメージングフローサイトメトリーを用いて、客観的、定量的および統計的に堅牢な方法でオートファジーを測定した。...

マルチスペクトルイメージングフローサイトメトリーを用いたLC3、p62、およびLAMP1共局在の測定によるオートファジーフラックスの評価

ここで哺乳類細胞における一括 autophagic 貯留活性を測定する簡単なよく検証されたプロトコルが記述されています。メソッドは、sedimentable セル画総細胞 LDH レベルと比較して乳酸脱水素酵素 (LDH)...

隔離の乳酸脱水素酵素試金-哺乳類細胞における一括 Autophagic 隔離活動を決定するシンプルで信頼性の高い方法

Mitophagy、ミトコンドリアの選択的分解はミトコンドリアの恒常性に関与しているし、様々 な疾患の緩和します。ただし、mitophagy 活性を測定する便利な実験方法は非常に限られました。ここでは、フローサイトメトリーを用いた mitophagy...

蛍光レポーターの pH 依存性を用いたフローサイトメトリー流 mt 桂馬によって Mitophagy の高感度測定

このプロトコルは、げっ歯類の脳の異なる細胞区画におけるユビキチンプロテアソーム系(UPS)活性を効率的に定量するように設計されている。ユーザーは、同じ動物の核、細胞質およびシナプス画のUPS機能を調べることができ、これらの複雑な分析を行うために必要な時間と動物の数を減らすことができます。...

げっ歯類脳における細胞内ユビキチンプロテアソーム活性の定量化

このプロトコルは、パルスSILACによる老化細胞および非分裂細胞の代謝標識、非標的質量分析分析、およびタンパク質半減期の合理化された計算のためのワークフローを記述します。...

代謝標識および質量分析による老化および非分裂培養細胞におけるタンパク質代謝回転率の測定

代謝細胞外フラックス分析装置を用いてマウスおよびヒト好中球およびHL60細胞のミトコンドリア呼吸を測定する段階的プロトコルについて説明する。...

好中球のミトコンドリア生体エネルギープロファイルのリアルタイム測定

中間代謝フラックスのガスクロマトグラフィー質量分析による安定同位体のプロファイリングは、線虫で説明されています...

開発と成人期における中間代謝フラックスの安定同位体プロファイル線虫（Caenorhabditis elegans）</em

学ぶマウス肝臓におけるオートファジーとプロテアソーム活性の日リズム測定法。in vivoでタンパク質分解を評価し、代謝リズム研究に活用できます。

オートプハギックとプロテアソームフラックスにおける日のリズムの測定

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