Name: 再建微小外科における虚血再灌流損傷の研究のための前臨床ラットモデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-11-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 5 s
Description: 学ぶラットを用いた再建微小外科における虚血再灌流損傷の前臨床モデル。8時間の虚血誘導後の皮弁生存率約40%を評価し、超音波血流計とレーザースペックル対比解析で血流と微小循環を測定する方法です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

研究プロジェクトは、ICTSナンビオシスの一部であるヘスス・ウソン低侵襲手術センター(CCMIJU)で行われました。研究は、次のナンビオシスユニットからの支援を受けて行われました: U21, 実験手術室;U22, 動物用住宅;そしてU14、細胞療法。この作業は ISCIII プロジェクト PI16/02164 によってサポートされました。この受け手は、研究設計、データ収集と分析、出版の決定、または原稿の準備には何の役割も持っていませんでした。特別な感謝は、数字を準備するためのマリア・ペレスと、絶え間ない励ましを提供し、科学的な文献目録をサポートするためのフェルナンダ・カリゾーザに拡張されています。

すべての手続きは、ヘスス・ウソン低侵襲手術センターの倫理委員会とヨーロッパの法律に基づく地方政府の福祉ガイドラインに従って行われました。
1. 手術前および外科的準備
<ol><li>ハウスウィスターラットは、食べ物と水への無料アクセスで22〜25°Cのケージに290〜350グラムの重量を量ります。ストレス誘発の問題を防ぐために手術の前に1週間の順応。</li>
	<li>ラットを麻酔誘導室に入れ、5分の酸素(0.5-1 L/min)を送り、気化器を使用して5%のセボフルランを送達して麻酔を誘発する。</li>
	<li>麻酔が誘発されたら、ラットを部屋から取り出します。ラットに吸入フェイスマスクを置き、麻酔を維持するために2%セボフルランの流量を提供する。つま先のピンチに対する応答の欠如を確認します。</li>
	<li>角膜の乾燥や損傷を防ぐために目の保護軟膏を使用してください。</li>
	<li>全身麻酔下で動物を次のように監視する:直腸温度計(35.9~37.5°C)を設置し、粘膜の色を確認し、げっ歯類パルスオキシメータを配置してO2飽和度(>95%)を確認します。心拍数(250~450 bpm)。</li>
	<li>低体温を避け、術後麻酔の回復を改善するために、熱サポート(電気加熱パッドまたは循環水毛布)を使用してください。</li>
	<li>適切な水分補給を維持するために、温かい皮下生理食塩水の5 mLを注入する。</li>
	<li>鎮痛薬と抗炎症薬(メロキシカム1mg/kg/日)と予防抗生物質(エンロフロキサシン7.5mg/kg/日)を処置前および術後5日間皮下に提供する。</li>
	<li>動物の腹部と鼠径部を剃ります。</li>
	<li>局所ポビドロン-ヨウ素を適用し、70%のエタノールを続けます。無菌のドレープで動物を覆う。</li>
</ol>2. 無料のスキンフラップモデル手術
<ol><li>外科マーカーを使用して、腹部の中間線と6 cmの側面の1つに一致する3 cm x 6 cmのフラップを描きます。次に、腹部の中間線で6cmの皮膚切開を行い、6cm中線切開の上下部分に2つの垂直な3cm切開を行う。</li>
	<li>設計された3 cm x 6 cmのスキンフラップの解剖を開始するには、はさみとAdson鉗子を使用して、皮膚の可動性のために(メスではなく)フラップを上げます。</li>
	<li>頭蓋領域から大脳領域に向かってフラップをゆっくりと引き出し、解剖を助け、豊富な緩い結合組織に囲まれた上腹部のペディクルを特定します。</li>
	<li>フラップペディクルに触れることなく、または容器の壁を損傷しないように、アドベンティティアをできるだけ少なく把握して解剖します。</li>
	<li>8/0ナイロン縫合糸を使用して、近位の大腿骨血管、横円周大腿骨血管、およびサフェノス血管の合字によって閉塞します。それによって、フラップの灌流は大腿動脈によって提供され、表在性の大腸上腹部動脈を通って直接続き、静脈排液は表在性大腿骨上腹部静脈に向かって行われる。</li>
	<li>血管ペディクルをクランプし、8時間虚血期間を開始するためにそれをカットします。手順の間に温度を維持するために電気毛布を使用する。温かい(25°C)0.9%生理沈水溶液の2つの5ml注射は皮下投与される。最初の管理は、手順の開始後 2 時間実行されます。および第2は、動物の適切な回復を得るための手順の終わりに。</li>
	<li>ヘパリン化生理行き溶液(100 U/mL)を使用してフラップをパーフューズし、微小循環から停滞した血液を除去します。</li>
	<li>10/0ナイロン縫合糸を使用して、マイクロサージカルなアナストモーゼを行います。</li>
	<li>虚血の8時間後、微小血管クランプを取り外してフラップを再浸透させ、以下に説明するように血管のパテンシーを確認する。</li>
</ol>3. 術中評価
<ol><li>静脈と動脈の手動口蓋検査(空および補充試験)を行う。これを行うには、2つの微小外科的鉗子を使用し、解剖学的に遠位に配置し、搾乳を行う。最初に解剖部位に最も近い鉗子を解放する。血管切除が空になった後も血流が続く場合、解剖は特許である。</li>
	<li>通過時間超音波流量計とマイクロサージカルプローブを使用して血流を評価します。
	<ol>
<li>流れプローブの適切なサイズを選択するために、ペディクル容器の直径を測定します。 注:0.7 mmの流れの調査は0.4 mmから0.7 mmまで及ぶ容器を測定できる;1.0 mmの流れの調査は0.7 mmから1.0 mmまで及ぶ容器を測定できる;1.5 mmの流れの調査は1.0 mmから1.5 mmまで及ぶ容器を測定できる。</li>
		<li>流れプローブの超音波検出ウィンドウ(リフレクターとトランスデューサの間)にターゲット容器を配置し、流量を定量化します。 注:プローブを容器の平面に中立に保持し、張力や引っ張りを避けます。</li>
		<li>すべてのバーがディスプレイ上で緑色であることを観察することにより、音響カップリングの品質を確認します。 注:良好な音響カップリングを得ることが困難な場合は、超音波ゲルまたは生理食塩水溶液を局所的に使用してください。</li>
		<li>良好なカップリングが達成され、容器が張力なしで音響窓に置かれたら、データを格納するためにディスプレイの録音ボタンをクリックします。 注:信頼性の高い正しい測定値を得るためには、波形パターンが常に繰り返し可能であることを確認します。</li>
	</ol></li>
	<li>完了したら、ポリグリコール酸(PGA)4-0吸収性編組縫合糸(16mm 3/8三角形針)を使用して皮膚を閉じます。縫合糸の一部が術後にラットによって噛まれた場合、強度と組織位置を維持するために、単純な中断パターンを使用します。</li>
	<li>レーザースペックルコントラスト解析(LASCA)を使用してフラップの微小循環を評価します。
	<ol>
<li>各動物と研究の各フォローアップのための新しい記録を作成します。この場合は、[ファイル]/[新しいレコーディング]をクリックします。新しいウィンドウが開き、セットアップ パネルが表示されます。次に、プロジェクト名、件名、オペレータ、およびレコーディング名の情報を編集します。</li>
		<li>再現性を最大限に高めるには、作業距離、測定領域、ポイント密度、フレームレート、周囲光条件のパラメータを標準化します。<ol>
<li>組織に対してレーザーを動かして、作業距離を調整します。目的の組織に向かってレーザーヘッドを拡大または縮小します。測定値を確認するには、[イメージの設定]をクリックします。ここでは、12.0 cmに設定します。</li>
			<li>[イメージの設定]で目的の幅と高さを入力して、測定領域を標準化します。設計されたフラップは3 cm x 6 cmを測定する。この測定では、幅 4.0 cm、高さ 7.0 cm を選択して余分なスペースを設定します。</li>
			<li>[イメージ設定]で[ポイント密度]を高く設定します。高、中、低の 3 つのオプションがあります。</li>
		</ol>
</li>
		<li>イメージキャプチャ設定で、録画のフレームレート(10 イメージ/s)と録画の継続時間(1分)を選択します。 注:手術室で同じ周囲光状態を有し、評価を操作または実行している間。</li>
		<li>[録音]ボタンをクリックして記録を開始します。セットアップパネルは録音パネルに置き換えられます。データは自動的に保存されます。さらに比較を有効にするには、手順中にスナップショットを作成します。 注:灌流縮尺は、視覚化を改善するために変更することができます([ ツール |フィルタとカラースケール |灌流スケール |手動 0 ~ 150)が、測定された灌流値は影響を受けません。記録の前後に、異なる対象領域(ROI)を作成して、それらの中の灌流を測定することができます。ここでは、練習フラップの面積(3cm×6cm)のみを評価した。</li>
	</ol></li>
	<li>生存領域と壊死領域を測定するには、ImageJ ソフトウェアを使用します。
	<ol>
<li>フラップの側面に定規を見つけ、フラップ生存領域のマクロ的な測定のためのコントロール写真を撮ります。</li>
		<li>画像を評価するには、ImageJ ユーザー インターフェイスを開きます。[ファイル]をクリックし、測定するイメージを開きます。</li>
		<li>ツールボックスで[直線]を選択し、ルーラーの 1 cm 上に直線を描画します。[分析] |[スケール] を設定し、テキスト ボックスに 1 cm の値を既知の距離で表示します。</li>
		<li>ポリゴン選択ツールをクリックし、フラップの上にポリゴン ラインを描画して、実行可能な領域を計算します。最終的には、[分析|面積の値を取得する測定。</li>
	</ol></li>
	<li>手術領域の自己変異を防ぐために、ハウジングの前に動物に術後ドレッシングを置きます。手順の後、動物は、温度制御(22°C〜25°C)の部屋で、個別にケージに収容されます。</li>
</ol>4. 術後評価と組織サンプリング
<ol><li>このプロトコルで前述したのと同じ手順(ステップ1.2および1.3)に従って、フラップ評価および組織サンプリングのために術後7日でラットを麻酔する。つま先のピンチに対する反応の欠如によって麻酔の深さを確認してください。</li>
	<li>フラップ生存領域と壊死領域のマクロ的測定を可能にするために手術領域を撮影します。プロトコルで前に説明した術中評価と同じ手順に従って、術後のマクロスコピック測定を行います (ステップ 3.5)。 注:ポリゴン選択ツールを使用する際には、実行可能領域を区切るフラップ上に線を描画します(cm2で測定)。生存面積のパーセンテージは、(総フラップ面積の生存面積/cm2のcm2)×100として算出することができる。 </li>
	<li>LASCA技術(ステップ3.4)を使用してフラップの微小循環を評価し、灌流差を可視化および定量化する</li>
	<li>マクロ分析の後、4/0縫合糸を取り除き、フラップを上昇させ、通過時間超音波を使用して血管ペディクル血流を再評価します。</li>
	<li>
フラップを1.5cm x 6cmの2つの部分に縦方向に分割して組織サンプリングを行います。
	<ol>
<li>室温で4%パラホルムアルデヒドを有する生検容器に一部を浸漬し、さらなる組織学的分析を行います。</li>
		<li>凍結保存チューブに組織の他の部分を導入し、液体窒素に浸し、その後、将来の分子分析のために-80°Cで保存することにより、チューブを凍結保存します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>倫理委員会の勧告に従って2 M KCl/kgの急速な心内注射を使用して、一般的な吸入麻酔下でラットを安楽死させる。</li>
</ol>

<ol><li>Siemionow, M., Arslan, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemia%2Freperfusion+injury%3A+a+review+in+relation+to+free+tissue+transfers%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Ischemia/reperfusion injury: a review in relation to free tissue transfers.</a> Microsurgery. 24 (6), 468-475 (2004).</li>
<li>Wang, W. Z., Baynosa, R. C., Zamboni, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Update+on+ischemia-reperfusion+injury+for+the+plastic+surgeon%3A+2011%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Update on ischemia-reperfusion injury for the plastic surgeon: 2011.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 128 (6), 685-692 (2011).</li>
<li>Chen, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Timing+of+presentation+of+the+first+signs+of+vascular+compromise+dictates+the+salvage+outcome+of+free+flap+transfers%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Timing of presentation of the first signs of vascular compromise dictates the salvage outcome of free flap transfers.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 120 (1), 187-195 (2007).</li>
<li>Sears, E. D., Chung, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replantation+of+finger+avulsion+injuries%3A+a+systematic+review+of+survival+and+functional+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Hand+Surgery%22%5BJournal%5D)">Replantation of finger avulsion injuries: a systematic review of survival and functional outcomes.</a> The Journal of Hand Surgery. 36 (4), 686-694 (2011).</li>
<li>Caterson, E. J., Lopez, J., Medina, M., Pomahac, B., Tullius, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemia-reperfusion+injury+in+vascularized+composite+allotransplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Craniofacial+Surgery%22%5BJournal%5D)">Ischemia-reperfusion injury in vascularized composite allotransplantation.</a> The Journal of Craniofacial Surgery. 24 (1), 51-56 (2013).</li>
<li>Amin, K. R., Wong, J. K. F., Fildes, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategies+to+Reduce+Ischemia+Reperfusion+Injury+in+Vascularized+Composite+Allotransplantation+of+the+Limb%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Hand+Surgery%22%5BJournal%5D)">Strategies to Reduce Ischemia Reperfusion Injury in Vascularized Composite Allotransplantation of the Limb.</a> The Journal of Hand Surgery. 42 (12), 1019-1024 (2017).</li>
<li>Barre-Sinoussi, F., Montagutelli, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+are+essential+to+biological+research%3A+issues+and+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Future+Science+OA%22%5BJournal%5D)">Animal models are essential to biological research: issues and perspectives.</a> Future Science OA. 1 (4), (2015).</li>
<li>Shaughness, G., Blackburn, C., Ballestin, A., Akelina, Y., Ascherman, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predicting+Thrombosis+Formation+in+1-mm-Diameter+Arterial+Anastomoses+with+Transit-Time+Ultrasound+Technology%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Predicting Thrombosis Formation in 1-mm-Diameter Arterial Anastomoses with Transit-Time Ultrasound Technology.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 139 (6), 1400-1405 (2017).</li>
<li>Ballestin, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemia-reperfusion+injury+in+a+rat+microvascular+skin+free+flap+model%3A+A+histological%2C+genetic%2C+and+blood+flow+study%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Ischemia-reperfusion injury in a rat microvascular skin free flap model: A histological, genetic, and blood flow study.</a> PloS One. 13 (12), 0209624(2018).</li>
<li>Kochi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+Arterial+Anatomy+of+the+Murine+Hindlimb%3A+Functional+Role+in+the+Design+and+Understanding+of+Ischemia+Models%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Characterization of the Arterial Anatomy of the Murine Hindlimb: Functional Role in the Design and Understanding of Ischemia Models.</a> PloS One. 8 (12), (2013).</li>
<li>Smit, J. M., Zeebregts, C. J., Acosta, R., Werker, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advancements+in+free+flap+monitoring+in+the+last+decade%3A+a+critical+review%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Advancements in free flap monitoring in the last decade: a critical review.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 125 (1), 177-185 (2010).</li>
<li>Krag, C., Holck, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+value+of+the+patency+test+in+microvascular+anastomosis%3A+Correlation+between+observed+patency+and+size+of+intraluminal+thrombus%3A+An+experimental+study+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Plastic+Surgery%22%5BJournal%5D)">The value of the patency test in microvascular anastomosis: Correlation between observed patency and size of intraluminal thrombus: An experimental study in rats.</a> British Journal of Plastic Surgery. 34, 64-66 (1981).</li>
<li>Selber, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+prospective+study+of+transit-time+flow+volume+measurement+for+intraoperative+evaluation+and+optimization+of+free+flaps%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">A prospective study of transit-time flow volume measurement for intraoperative evaluation and optimization of free flaps.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 131 (2), 270-281 (2013).</li>
<li>Briers, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+speckle+contrast+imaging%3A+theoretical+and+practical+limitations%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Laser speckle contrast imaging: theoretical and practical limitations.</a> Journal of Biomedical Optics. 18 (6), 066018(2013).</li>
<li>Zotterman, J., Bergkvist, M., Iredahl, F., Tesselaar, E., Farnebo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+of+partial+and+full+venous+outflow+obstruction+in+a+porcine+flap+model+using+laser+speckle+contrast+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Plastic%2C+Recontructive+and+Aesthetic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Monitoring of partial and full venous outflow obstruction in a porcine flap model using laser speckle contrast imaging.</a> Journal of Plastic, Recontructive and Aesthetic Surgery. 69 (7), 936-943 (2016).</li>
<li>Zotterman, J., Tesselaar, E., Farnebo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+laser+speckle+contrast+imaging+to+predict+flap+necrosis%3A+An+experimental+study+in+a+porcine+flap+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Plastic%2C+Recontructive+and+Aesthetic+Surgery%22%5BJournal%5D)">The use of laser speckle contrast imaging to predict flap necrosis: An experimental study in a porcine flap model.</a> Journal of Plastic, Recontructive and Aesthetic Surgery. 72 (5), 771-777 (2019).</li>
</ol>

著者たちは何も開示する必要はない。

微小外科的遊離組織移動は、大きな欠陥を再構築するための選択の方法となっている。虚血の期間は、このような遊離組織移動の間に発生します。この期間が組織の許容度を超えると、I/R損傷は練習されたフリーフラップ9の故障を引き起こす可能性がある。再建マイクロサージャリーにおけるI/R損傷を研究するための費用対効果の高い翻訳前臨床モデルを開発する方法論の記述は、この病態生理学的プロセスを打ち消すために異なる化合物の研究を導くのに役立つ可能性がある。
記載された動物モデルでは、血管合字を配置し、自由フラップを上げた後、後肢血流の侵害は認められず、痛みやぐったりも認められなかった。Kochi et al.10が述べたように、我々のモデルはまた、筋肉内ネットワークを介して3つの担保経路を残した。
遊離フラップのモニタリングは、サルベージが虚血発症とその臨床認識との間の持続時間に反比例するので、11の重要性が最も重要である。この目的のために、フリーフラップは術中および術後に研究されるべきである。
術中に、広く使用されている空および補充試験または音響ドップラーは、同定を可能にするが、アナストモシス12を介した流れの有無を定量化することはできない。このため、我々は、外科医が微小外科的解薬13の血流を定量することを可能にする新しい方法である通過時間超音波技術を使用した。我々の研究では、すべての微小外科的アナストモーゼは、虚血性侮辱の8時間後と研究の終わりに特許であった。微小外科的アナストモーゼの作成直後に、文献8で推奨される最小値よりも高い血流量を指摘した。これは、研究の終わりに良好なペディクル灌流を予測し、結果が微小外科的技術の影響を受けるのではなく、事象のI/R損傷カスケードによって影響を受けたことを実証した。ただし、この手法には制限はありません。信頼できる結果を得るためには、マイクロサージカルプローブを容器の平面に中立に保持する必要があり、それを引っ張ったり、緊張を生み出したりしないでください。超音波ゲルまたは生理水を使用して達成することができる適切な信号を得るために良好な音響カップリングが必要です。装置によって提供される高品質のカップリング信号は、測定中に考慮すべき重要なパラメータです。
我々は、レーザースペックル造影画像またはレーザースペックルイメージングとしても知られるLASCA、術後14を使用している。この技術は、ここで検証されたフリーフラップ内の流れの半定量的リアルタイムマッピングのための貴重な技術を表します。制限の 1 つは、結果が任意の単位で提供され、実際のフロー値に直接関連しないことです。この意味で、この相関関係を検証するには、さらなる研究が必要です。レーザードップラー流量測定は、より一般的に使用されるが、それはフラップ内の単一点で灌流を測定するだけであるという事実によって制限されるが、LASCAはフラップ15内の皮膚灌流の局所的な変化の検出を可能にする。さらに、最近の研究16は、LASCAが術後フラップ壊死の危険性が高い領域を周術的に予測するかもしれないことを示した。我々の結果は、LASCAが自由フラップのペリおよび術後モニタリングのための有望な技術であることを示唆している。

マイクロサージャリーは、複雑な組織欠損を回復させるための介入(例えば、遊離組織移動)、切断された四肢の転置、さらには複合組織同種移植を可能にする再建のための一般的な外科的技術となっています。
微小外科的再建は、外傷、火傷、または直行的切り傷によって引き起こされる多種多様な欠陥に最適です。しかし、自由フラップ障害の割合が低く、その中でも虚血再灌流(I/R)損傷が主な原因の一つである。すべての微小外科的に転移した組織は、虚血の必須期間に耐え、その後再灌流を続けた。原発性虚血のこの期間は、通常、十分に許容される;したがって、微小外科的処置の成功率は90%1、2を超える。しかし、外科的改訂を必要とするフラップのわずか63.7%は完全に保存することができます3.また、指の外傷の再移植の場合、成功率は66%4です。I/R損傷に苦しむ複合組織同種移植の場合、I/R損傷が自然免疫を活性化するので拒絶率が増加する。
従って、この病態生理学的現象の研究が関心を持っている。動物モデルは、生理学的メカニズムを調査し、ヒト7に適用する前に新しい治療法を評価するために不可欠です。血管解剖学とラットとヒトの生理学的類似性は、ラットをI/R傷害などの生物学的プロセスの調査のための理想的なモデルにします。
ここでは、I/R損傷を伴うラットフリースキンフラップモデルの作成に関する詳細なプロトコルと、術中および術後の評価のためのさまざまな可能性を示します。この方法の全体的な目標は、I/R傷害および関連する損傷を減らすために可能な治療法を研究するのに有用な前臨床モデルを記述することです。

<table><tbody><tr><td>AureFlo Unit</td><td>Transonic (Ithaca, USA)</td><td>N/A</td><td>Transit-time ultrasound flowmeter equipment</td></tr><tr><td>Commbined Basic Hand- and Reconstructive Surgery Set (Round Handle)</td><td>S&T AG (ノイハウゼン、スイス)</td><td>RHR-SET.Art.No.00795</td><td>マイクロサージュリーインスツルメント一式</td></tr><tr><td>FLOW-i</td><td>Maquet Critical Care AB (Solna, Sweeden)</td><td>N/A</td><td>麻酔デリバリーシステム</td></tr><tr><td>マイクロクランプ ABB-1</td><td>S&T AG (ノイハウゼン、スイス)</td><td>00408V</td><td>フレーム付きダブル微小血管クランプ</td></tr><tr><td>マイクロクランプ ABB-11</td><td>S&T AG (ノイハウゼン、スイス)</td><td>00414V</td><td>ダブル微小血管クランプ フレームなし</td></tr><tr><td>マイクロクランプ B-1</td><td>S&T AG (ノイハウゼン、スイス)</td><td>00396V</td><td>Sigle microvascular clamp</td></tr><tr><td>Nylon suture 10/0</td><td>Laboratorio Arag&oacute;(スペイン・バルセロナ)</td><td>19921</td><td>顕微手術用縫合</td></tr>糸 <tr><td>OPMI Pentero 800</td><td>Carl Zeiss AG (Oberkochen, Germany)</td><td>該当なし</td><td>手術用顕微鏡</td></tr><tr><td>PeriCam PSI System</td><td>Perimed AB (J&auml;RF&auml;lla, Sweden)</td><td>N/A</td><td>レーザースペックルコントラスト分析装置</td></tr><tr><td>Philips Intellivue MX450</td><td>Philips Medizin Systeme (B&ouml;ブリンゲン、ドイツ)</td><td>N / A</td><td>モニタリングシステム</td></tr><tr><td>Protector posoperatorio para roedores</td><td>Fundaci&oacute;nセントロ・デ・シルグ&iacute;de M&iacute;ニマ 侵襲性&oacute;n Jes&uacute;米国&oacute;n (C&aacute;セレス、スペイン)</td><td>P201400272</td><td>げっ歯類の術後プロテクター</td></tr></tbody></table>

再建微小外科における虚血再灌流損傷の研究のための前臨床ラットモデル

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

虚血再灌流損傷は、再建マイクロサージャリーにおけるフラップ障害の主な原因である。ラットは、その費用対効果とヒトへの翻訳による生物医学研究の多くの分野で好ましい前臨床動物モデルである。このプロトコルは、虚血再灌流損傷を有するラットにおいて前臨床遊離皮膚フラップモデルを作成する方法を記載する。説明した3cm x 6cmラットの遊離皮膚フラップモデルは、いくつかの血管合字および血管ペディクルのセクションの配置後に容易に得られる。そして、虚血性侮辱および微小外科的アナストモシスの完了後8時間、遊離皮膚フラップは組織損傷を発症する。これらの虚血再灌流傷害関連損傷をこのモデルで研究することができ、この病態生理学的プロセスに対処する治療薬を評価するのに適したモデルとなる。さらに、この動物モデルの評価のためのプロトコルには、トランジットタイム超音波技術とレーザースペックルコントラスト分析の2つの主要なモニタリング技術が記載されています。

微小外科的アナストモーゼの作成直後に、文献8で推奨される最小流量よりも高い血流量を得た。したがって、すべての微小外科的解調は手術後1週間特許であった(図1)。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60292/60292fig1.jpg"> 図1:通過時間超音波血流評価(A)血流を評価する微小外科的フロープローブの位置。(B)フラップペディクルの解剖血管の血流パターン及び定量を得た。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60292/60292fig1large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
虚血性侮辱中の血流の微小循環的な剥奪の観察は、フラップ再灌流中の即時ハイパー灌流を含むLASCA技術で可能であり、そして、周術期的には、試験終了7日後に実際に壊死した術後フラップ壊死のリスクが少なく、術後フラップ壊死のリスクが高い(図2)。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60292/60292fig2.jpg"> 図2:レーザースペックルコントラスト解析技術(A)生理学的状態における微小循環組織血液灌流の可視化(B)虚血時の微小循環組織血液灌流の可視化. (C) 再灌流直後の微小循環組織血液灌流の可視化<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60292/60292fig2large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
虚血とその後の再灌流の8時間後のフラップ生存領域は約40%であった。以前に発表された結果9は、このモデルが虚血性侮辱を受けられなかったフラップと比較した場合に統計的に有意な差を示した。

ここでは、再建微小外科における虚血再灌流損傷の病態生理学を研究するための前臨床動物モデルについて説明する。ラットの表面的なカウダル上腹部に基づくこの遊離な皮膚フラップモデルは、虚血再灌流傷害関連損傷に対抗する異なる治療法および化合物の評価を可能にすることもできる。

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...

虚血再灌流損傷は、再建的な微小手術におけるフラップ障害の主な原因である。このビデオでは、この病態生理学の研究のための前臨床動物モデルについて説明します。ラットの表面的な尾頭上皮血管に基づくこの自由な皮膚フラップモデルは、虚血再灌流傷害関連の損傷に対抗するために異なる治療法および化合物の評価を可能にし得る。微小外科的再建は、さまざまな欠陥に最適です。しかし、これらの手順は、虚血の必須期間を確保し、その後に再灌流を行う。この期間は通常十分に許容され、微小外科的処置の成功率は90%を超えるが、外科的改訂を必要とするフラップの73.7%だけが完全に安全である。また、指の排便傷害の再植え付けの場合、成功率は約60%であり、複合組織再移植の場合、傷害が自然免疫を活性化するので、虚血再灌流傷害予測率が増加する。したがって、この病態生理学的現象の研究は興味深い。この手順を開始するには、外科用マーカーを使用して6センチメートルのフラップで3センチメートルを描き、6センチメートルの側面の1つが腹部の正中線と一致することを確認します。次に、腹部の正中線で6センチメートルの皮膚切開、2つの垂直3センチメートルの切開、ならびに最初の切開に平行な6センチメートルのうちの1つを作る。指定された皮膚フラップの解剖を開始するには、はさみとAdson鉗子を使用してフラップを上げます。頭蓋領域から帯の領域に向かってフラップをそっと引っ張ります。フラップペディクルに触れることなく、または容器の壁に損傷を与えないように、できるだけ少ないアドベンティアをつかんで、フラップペディクルを解剖します。使用 8-0合字によって閉塞するナイロン縫合糸は、伏線血管、横回角大腿骨血管、および近位尾口大腿骨血管を表します。血管ペディクルをクランプし、8時間の虚血期間を開始するためにそれをカットします。ヘパリン化した生理液を使用してフラップを透過し、微小循環から停滞した血液を取り除きます。10-0ナイロン縫合糸を使用して、微小外科的なアナストモーセを行います。8時間の虚血の後、微小血管クランプを取り外してフラップを再浸透させ、血管の脈痛を確認する。まず、通過時間超音波流量計と微小外科プローブを用いて血流を評価する。流量を定量化するために、フロープローブの超音波検知窓にターゲット容器を置きます。良好なカップリングが達成され、容器が緊張せずに音響窓に置かれたら、データを保存するためにディスプレイの記録ボタンをクリックしてください。この後、4-0吸収性縫合糸を使用して皮膚を閉じます。フラップの微小循環を評価するには、レーザースペックルコントラスト分析を使用します。ファイル、新しい記録をクリックして、各サンプルと各フォローアップスタディのための新しい記録を行います。新しいウィンドウが開き、セットアップパネルが表示されます。ここでは、プロジェクト名、件名、オペレータ、およびレコーディング名の情報を編集します。組織に対してレーザーを動かして作業距離を調整します。レーザーヘッドを対象の組織に向かってズームインまたはズームアウトします。画像設定で、希望の幅と高さを入力して測定領域を標準化します。点密度を高に設定します。イメージ キャプチャの設定で、フレーム レートと記録の継続時間を選択します。次に、録音ボタンをクリックして録音を開始します。設定パネルは記録パネルに置き換えられ、データは自動的に保存されます。手順の間にスナップショットを作成して、さらに比較を有効にします。この後、最初にフラップの部位に定規を配置し、巨視的測定のための制御写真を撮ることによって、生存および壊死領域を測定するためにImageJソフトウェアを使用する。[ImageJ] ツールボックスで、直線を選択し、定規の 1 センチに線を引きます。[解析]をクリックしてスケールを設定し、既知の距離のテキストボックスに1センチメートルの値を入力します。ポリゴン選択ツールをクリックし、フラップの上にポリゴン ラインを描画して、有効な領域を計算します。分析をクリックし、面積の値を取得するために測定します。その後、自己突然変異を防ぐために、ハウジングの前に動物に術後ドレッシングを置きます。手術の7日後、手術領域を撮影して、フラップ生存領域と壊死領域の巨視的測定を可能にする。前述のレーザースペックルコントラスト解析技術を用いて、拡散の違いを可視化して定量化し、フラップの微小循環を評価します。巨視的分析の後、4-0縫合糸を取り除き、フラップを上げ、通過時間超音波を使用して血管ペディクル血流を再評価する。1.5センチメートルを6センチメートル測定する2つの部分に長手方向に分割することによって組織サンプリングを行います。微小手術用のアナストモーゼの作成直後に、文献で推奨される最小流量よりも高い血流値を得た。したがって、すべての微小外科的アナストモーゼは、手術の1週間後に特許であった。虚血性侮辱時の微小循環血流の観察は、レーザースペックルコントラスト解析技術で可能であった。これには、フラップ再灌流中および周術的に即時の過灌流が含まれ、灌流が少ない異なる領域は、研究終了の7日後に実際に壊死した術後フラップ壊死のリスクが高かった。8時間の虚血後のフラップ生存領域とその後の再灌流は約40%以前に公表された結果は、このモデルが虚血性侮辱が与えられるフラップと比較すると統計的に有意な差を示す。フラップペディクルに触れることなく、または血管壁に損傷を与えることを避けるためにできるだけ少ないアドベンチアをつかむだけでなく、外科技術による合併症を避けるために適切な微小外科的解剖を行うことを忘れないでください。術中、トランジット時間超音波技術は、微小外科用アナストモーゼの血流を定量化し、したがってフラップ灌流を予測することを可能にする。術後、レーザースペックルコントラスト解析により、フリーフラップ内の流量のリアルタイムマッピングの半連続性が可能になります。それは有望な技術ですが、さらなる研究が必要です。このビデオは、再建マイクロサージャリーの分野における虚血再灌流傷害に対抗する治療薬を評価するための適切なモデルのプロトコルを説明した。

a-pre-clinical-rat-model-for-study-ischemia-reperfusion-injury

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

ラットにおける虚血性脳損傷の外科的誘導は、脳卒中の研究に広く使用されているモデルです。ここでは、中大脳動脈の閉塞による局所脳虚血の誘導を示す。組織染色および磁気共鳴イメージングによる結果梗塞の可視化も示されている。...

ラット中大脳動脈の血管縫合閉塞による局所脳虚血モデル

外科手術による外傷、炎症反応を誘導する。サイトカイン、内因性リガンドは、虚血再灌流後に心筋梗塞サイズを調節することが知られています。我々は、開胸の影響を最小限に抑えるためにぶら下がって重みを使用してマウスの虚血再灌流の変更されたクローズド·胸のモデルを提示します。...

心筋虚血再灌流障害のマウスクローズド胸モデル

全組織転送が広く腫瘍切除および外傷後の形態および機能を回復させる再建手術で使用される。手術前に、この組織を前処理すると、結果を改善することがあります。この記事では説明し...

筋皮虚血再灌流傷害のラットモデル： 現場横腹直筋皮フラップで

ここで説明されている腎虚血再灌流障害のマウスモデルは、制御組織を提供する右腎摘出術と、急性腎障害をもたらす虚血を誘発するための左腎椎弓根のクランプで構成されています。このモデルは、正中線開腹術アプローチを使用しており、すべてのステップが 1...

腎臓虚血再灌流障害：障害のマウスモデルおよび再生

本研究の目的は、1-90後の中大脳動脈閉塞/再灌流(MCAO/R)後の脳梗塞および感覚運動機能を試験することにより、脳虚血の回復および後遺症の研究のための動物モデルを確立し、検証することですネズミの日。...

ラットの急性脳卒中後の脳回復を評価する前臨床モデル

ラット心臓の心筋虚血再灌流モデルは、自作リトラクター、ポリ塩化ビニルチューブ、および独自の結び目法を使用することによって改善される。心電図、トリフェニルテトラゾリウムクロリドおよび組織学的染色、ならびに生存率分析の結果は、改善されたモデル群が既存のモデル群よりも高い成功率および生存率を有することを示した。...

心筋虚血および再灌流傷害の改善されたげっ歯類モデル

本研究は、生存症例の左ミニ開胸術または非生存症例の正中胸骨切開術を使用したウサギの急性局所心筋虚血および再灌流損傷の再現性の高い動物モデルを示しています。...

ウサギの虚血と再灌流障害のモデル

現在のプロトコルは、損傷を引き起こすことなく脳血管の解剖学的構造を保存する中大脳動脈閉塞/再灌流のラットモデルを記述しています。...

脳血管の解剖学的構造を損なうことなく中大脳動脈閉塞・再灌流のラットモデル

このプロトコルは、総頸動脈を介した中大脳動脈閉塞再灌流の準備プロセスを説明しています。...

中大脳動脈閉塞再灌流のための修正モデル調製

周術期およびクリティカルケア関連の急性腎障害のための強力なモデルが提示される。それはほとんど臨床AKIの組織学的および機能的な変更を複製することが可能である心停止により誘発される全身の血流低下を使用する。...

正常体温心停止と心肺蘇生法：虚血再灌流障害のマウスモデル

学ぶラットを用いた再建微小外科における虚血再灌流損傷の前臨床モデル。8時間の虚血誘導後の皮弁生存率約40%を評価し、超音波血流計とレーザースペックル対比解析で血流と微小循環を測定する方法です。

再建微小外科における虚血再灌流損傷の研究のための前臨床ラットモデル

さらに動画を探す