Name: モルモットの内リンパ性水力を誘導する改訂された外科的アプローチ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-06-04T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 5 s
Description: 学ぶモルモットの内リンパ性水力誘導法。硬膜外アプローチで内リンパ嚢を閉塞し、蝸牛機能と聴覚障害の病態メカニズムを研究する実験モデルを確立する方法です。

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シャノン・M・レフラーのフィギュアと材料表の支援に感謝します。本論文で報告された研究は、国立衛生研究所内の国立難聴およびその他のコミュニケーション障害研究所、トレーニング助成金「臨床医/研究者の育成」、賞番号T32DC000022(C.V.V.)、R01 DC014997(J.T.L)によって支援されました。コンテンツは著者の責任であり、必ずしも国立衛生研究所の公式見解を表すものではありません。

プロトコルセクションに記載されているすべての手順は、セントルイス制度動物の世話と使用委員会でワシントン大学によって承認されたプロトコルに記載されているように行われました.
1. 動脈導入とバイタルサインのモニタリング
注:本研究では、社内の繁殖コロニーから得られた色素性NIH株モルモットを用いた。
<ol><li>少なくとも350グラムの重さのどちらかのセックスのモルモットを使用してください。</li>
	<li>モルモットを新生児温かいイソレットに入れ、ケタミン/キシラジン混合物を腹腔内(50mg/kgケタミンおよび10mg/kgキシラジン)で誘導麻酔に与える。足指ピンチ反射が失われるまでモルモットを観察してください。</li>
	<li>つま先ピンチ反射の喪失が起こると、一般的に人間の使用のために宣伝されたヘアトリマーで後部首とモルモットの頭を剃ります。</li>
	<li>12 mLの皮下ボーラスを動物の背面に注入します。</li>
	<li>モルモットのスパインを脚を上げた温暖化パッドの上に置き、腹腔内に27.5Gの蝶の針を置きます。空気のみが吸引されることを確認して、蝶の針が腹腔内空間の正しい位置にあることを確認します。血液または体液が吸引された場合、血管系または腸系への送達が懸念される。蝶の針は麻酔の反復投与のために使用される。</li>
	<li>モルモットを起こしやすい位置にひっくり返し、頭を定位ホルダーに固定します。</li>
	<li>パルスオキシメータを足に固定します。色素モルモットを使用する場合、色素足は酸素飽和を読み取るのを防ぐことができます。したがって、色素化されていない足の上にパルスオキシメーターを置きます。</li>
	<li>体温を監視するために直腸温度プローブを挿入します。直腸プローブは、体温を38°Cに保つ温暖化ブランケットシステムの一部です。直腸プローブが所定の位置に置かれるまで、暖かい毛布をオンにして、暖かい毛布を過熱させないようにしてください。直腸プローブを配置するのが困難な場合は、モルモットの体と一緒に置くことができます。</li>
	<li>モルモットの両眼に潤滑剤を塗布して、角膜擦過を防ぎます。</li>
	<li>90%以上の酸素飽和レベルを維持するために、鼻の近くに位置するゴムチューブを介して必要に応じて補足酸素を投与します。</li>
	<li>エンロフロキサシン 0.5 mg/kg を抗生物質予防として皮下に与える。</li>
	<li>0.25 mg/kg ブピバカインを与える 1:100,000 局所麻酔と血管収縮効果の予想切開部位で皮下1:100,000エピネフリン.</li>
	<li>メンテナンス麻酔を20分ごとに4サイクル提供し、必要に応じてバイタルサインに基づいてのみ提供します。体温、呼吸数、酸素飽和度、心拍数などにより、麻酔の深さを日常的に監視します。</li>
	<li>バイタルサインを15分ごとに監視します(温度、呼吸数、心拍数、酸素飽和度)。</li>
</ol>2. 手術準備
<ol><li>モルモットの頭部が定位ホルダーにしっかりと配置されたら、後ろにマスキングテープを置いて、咬合部の上の皮膚に沿って十分な緊張を提供します。テープの端を立体的ホルダーに固定します。</li>
	<li>オクシプットと後頸部の上に皮膚をヨウ素溶液と70%エタノールを3回無菌で自由に準備します。</li>
	<li>この時点で、無菌の予防措置とオートクレーブされた器具を使用してください。モルモットの上に無菌ドレープを置きます。</li>
</ol>3. 外科的処置
<ol><li>15枚の刃を使用して、後部咬傷に沿って小さな正中線切開を行い、後部首に伸びる。皮膚の下に入ると、虹彩はさみを使って後頭部の骨から右後頸部の筋肉を取り外す。筋肉を切断している間に出血が起こった場合は、滅菌綿球で圧力をかけることによって制御する。</li>
	<li>
5-0吸引と無菌灌漑を備えた#3mm、#2mm、および#1mmダイヤモンドバリの組み合わせを使用して、外部後頭紋、ランボイド隆起、後頭腫縫合線、および前頭部の後部マージンによって境界される頭蓋骨外解術を行う。
	<ol>
<li>後頭部の骨を硬膜から分離しながら、塩水湿した綿のボールを骨の下にそっと置きます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>#0.5mmのダイヤモンドバリでシグモイドのサイヌスを骨格化し、その上に骨を慎重に取り除きます。</li>
	<li>シグモイドの正腸が露出したら、綿球を使用してシグモイド正腸内介を静かに引き込み、3-0吸引を使用して切り替えます。</li>
	<li>オペルキュラムをペトロウス側頭骨の中に位置するスリットのような構造として識別する。サブアルクフォッサは優れた位置にあり、シグモイド副鼻脊部はそれに仲介されます。その後、内リンパ嚢の余分なオセウス部分は、オペルキュラムに入る明確な嚢として視覚化され、シグモイド・サイヌスの上に付着した硬膜に取り付けられる。オペルキュラムは楕円形で、約3〜4mm×1.5~2mmです。しかし、手術の観点から見ると、オペルキュラムはおよそ1mmのスリットとして現れる。外科ビューから嚢の可視部分は、小さくない場合、オペルキュラの可視部分とほぼ同じ大きさである。</li>
	<li>
内リンパ嚢の余分な骨外部分を明確に可視化し、内リンパ嚢の外発性および内腔部分の間の緊張を高めるために、シグモイド正弦内に穏やかな引き込みを適用する。
	<ol>
<li>細かい角度のピックを使用して、内リンパ嚢の中間部分を穏やかに消します。排泄プロセスは、硬膜とオペルキュラムの間に目に見える接続を残さなく、重要です。その後、オペルキュラムの内側に細かいピックを置き、骨の内側に沿って広く擦り傷を与えます。</li>
		<li>細かいピックを内リンパ管の方向に回し、盲目的に裏地を破壊します。この時点で、オペルキュラム内の血管から何らかの出血が起こる可能性がある。それは綿の小片と制御することができる。</li>
	</ol>
</li>
	<li>空のオペルキュラムを小さな綿で乾かします。綿を乾燥させておくために必要に応じて3-0吸引を使用します。</li>
	<li>側頭骨の扁良膜部分に沿って擦り傷を小さいキュレットを使用して骨粉塵を得る。オペルキュラムに骨粉をたっぷり詰めます。綿のボールと吸引を使用して、骨粉で梱包しながらエリアを乾燥させておきます。</li>
	<li>骨ワックスをオペルキュラムに塗布して密封します。余分な骨ワックスが頭蓋骨に外れないようにしてください。</li>
	<li>骨の欠陥をカバーするために骨のワックスを使用してください。</li>
	<li>中断された方法で4-0編組、吸収可能な縫合糸で後頸部筋肉に近似。</li>
	<li>4-0の編組、吸収可能な縫合糸を使用して、下切削閉鎖を行います。</li>
</ol>4. 手続後のケア
<ol><li>カスタム定位ホルダーからモルモットを取り出し、温暖化アイソレットに移します。</li>
	<li>2 mg/kg アティパメゾールと 24 mL の授乳リンゲル溶液 (切開部から離れて) を与える。キシラジンの利尿作用により、ラクチンゲル溶液を与える。術後鎮痛のカバレッジのために0.2 mg/kgのメロキシカムを皮下に投与する。</li>
	<li>モルモットが麻酔から完全に出現するまで、15分ごとにバイタルサインを得る。</li>
	<li>回復期間中に手術の終わりから約2時間のラクタル化リンガーの溶液の追加の12 mL液状ボーラスを与える。</li>
	<li>モルモットが警戒し、アンビュル、ボイド、腸の動きをしたら、モルモットを動物施設に戻します。モルモットが麻酔から完全に出現するには、約2〜4時間が必要です。</li>
	<li>モルモットは、最初の3回の術後日に毎日2回監視します。不快感の徴候が観察された場合, 0.2 mg/kg メロキシカムを必要に応じて 24 時間ごとに皮下投与.あるいは、症状がメロキシカムによって十分に管理されていない場合、ブプレノルフィン(0.05mg/kg)を皮下投与してもよい。</li>
	<li>モルモットが術前の体重に達するまで、1日2回、1日2回皮下に12mLの液体ボーラスを与える。モルモットが術後3日目より前に術前の体重に達した場合は、流体ボルスを停止します。モルモットが最初の3日後に体重を減らし続ける場合は、通常、粉砕されたモルモット食品ペレットと混合された人間の消費のために宣伝されたサプリメント栄養シェイクを使用してください。</li>
	<li>モルモットは、毎週終点まで監視します。</li>
</ol>

<ol><li>Kimura, R. S., Schuknecht, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membranous+Hydrops+in+the+Inner+Ear+of+the+Guinea+Pig+after+Obliteration+of+the+Endolymphatic+Sac%5BTitle%5D)+AND+%22Pract+oto-rhino-laryng%22%5BJournal%5D)">Membranous Hydrops in the Inner Ear of the Guinea Pig after Obliteration of the Endolymphatic Sac.</a> Pract oto-rhino-laryng. 27, 343-354 (1965).</li>
<li>Salt, A. N., DeMott, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time+course+of+endolymph+volume+increase+in+experimental+hydrops+measured+in+vivo+with+an+ionic+volume+marker%5BTitle%5D)+AND+%22Hearing+Research%22%5BJournal%5D)">Time course of endolymph volume increase in experimental hydrops measured in vivo with an ionic volume marker.</a> Hearing Research. 74 (1-2), 165-172 (1994).</li>
<li>Walsted, A., Garbarsch, C., Michaels, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+craniotomy+and+cerebrospinal+fluid+loss+on+the+inner+ear.+An+experimental+study%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Oto-Laryngologica%22%5BJournal%5D)">Effect of craniotomy and cerebrospinal fluid loss on the inner ear. An experimental study.</a> Acta Oto-Laryngologica. 114 (6), 626-631 (1994).</li>
<li>Andrews, J. C., Bohmer, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+surgical+approach+to+the+endolymphatic+sac+and+the+cochlear+aqueduct+in+the+guinea+pig%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Otolaryngology%22%5BJournal%5D)">The surgical approach to the endolymphatic sac and the cochlear aqueduct in the guinea pig.</a> American Journal of Otolaryngology. 10 (1), 61-66 (1989).</li>
<li>Lee, J. R., Wright, C. G., Meyerhoff, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+occipital+approach+to+the+endolymphatic+sac+and+cochlear+aqueduct+of+the+guinea+pig%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Otolaryngology%22%5BJournal%5D)">Modified occipital approach to the endolymphatic sac and cochlear aqueduct of the guinea pig.</a> American Journal of Otolaryngology. 14 (2), 165-169 (1993).</li>
<li>Megerian, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+induction+of+endolymphatic+hydrops+by+obliteration+of+the+endolymphatic+duct%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Surgical induction of endolymphatic hydrops by obliteration of the endolymphatic duct.</a> Journal of Visualized Experiments. (35), (2010).</li>
<li>Lichtenhan, J. T., Cooper, N. P., Guinan, J. J. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+auditory+threshold+estimation+technique+for+low+frequencies%3A+proof+of+concept%5BTitle%5D)+AND+%22Ear+and+Hearing%22%5BJournal%5D)">A new auditory threshold estimation technique for low frequencies: proof of concept.</a> Ear and Hearing. 34 (1), 42-51 (2013).</li>
<li>Lichtenhan, J. T., Hartsock, J., Dornhoffer, J. R., Donovan, K. M., Salt, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug+delivery+into+the+cochlear+apex%3A+Improved+control+to+sequentially+affect+finely+spaced+regions+along+the+entire+length+of+the+cochlear+spiral%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Drug delivery into the cochlear apex: Improved control to sequentially affect finely spaced regions along the entire length of the cochlear spiral.</a> Journal of Neuroscience Methods. 273, 201-209 (2016).</li>
<li>Lichtenhan, J. T., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Guinan, J. J. Jr, Salt, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+auditory+nerve+overlapped+waveform+%28ANOW%29+originates+in+the+cochlear+apex%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Association+for+Research+in+Otolaryngology%22%5BJournal%5D)">The auditory nerve overlapped waveform (ANOW) originates in the cochlear apex.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 15 (3), 395-411 (2014).</li>
<li>Lichtenhan, J. T., Hirose, K., Buchman, C. A., Duncan, R. K., Salt, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+administration+of+2-Hydroxypropyl-Beta-Cyclodextrin+into+guinea+pig+cochleae%3A+Effects+on+physiological+and+histological+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Direct administration of 2-Hydroxypropyl-Beta-Cyclodextrin into guinea pig cochleae: Effects on physiological and histological measurements.</a> PloS One. 12 (4), e0175236(2017).</li>
<li>Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Image+to+ImageJ%3A+25+years+of+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis.</a> Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

提示された硬膜外法は、組織学的に確認された内リンパ水力および低周波難聴を達成する際に86%の成功率を示した。この方法は、術後30日目までに内リンパ水力の組織学的証拠を確実に達成し、硬膜内アプローチ2を用いた以前の研究と一致する。既存の方法に関する方法の意義は、CSFリークが必要とされないことであり、したがって、代償性、内リンパ容積の一時的な膨張をもたらすことが示唆されている潜在的な交論変数を除去する3。全体的に、この方法は、実験的な内リンパ水力を誘導する迅速で安全で信頼性の高い方法を示しています。
提示された方法は、以前の研究と比較していくつかの強みを有する。第一に、このアプローチは硬膜外であり、CSFリークの潜在的な罹患率および交戦効果を最小限に抑えた。第二に、ドリルの代わりに細かいピックを使用して、内リンパ嚢を消射し、内リンパ管を傷つける方法は、後部半規管への潜在的な傷害を回避する。重要なステップは、硬膜とオペルキュラ間の目に見える接続を確保することです。第三に、ドリルの代わりに側頭...

内リンパ水腫は、スカラメディアの拡大である。内リンパ水性水たんの存在は、スカラ媒体の断面積を用いて測定することができる。臨床内リンパ性水力は、メニエール病に見られるような低周波感神経難聴に関連付けることができると考えられている。しかし、難聴の起源は不明のままである。内リンパ水力に関連する低周波難聴の起源を十分に研究するためには、信頼性の高いモデルが必要です。
1965年、木村とシュクネヒトは、硬膜内アプローチ1を用いてモルモットに内リンパ水節を誘導する方法を説明した。彼らの技術は、後頭蓋フォッサアプローチを使用して、オペルキュラムにアクセスし、フォッサをsubarcuateにしました。このステップには、硬膜を切開し、リンガーの溶液を浸した綿パッドで小脳を後退させ、内リンパ管と内リンパ嚢の中間部分を掘削する。骨ワックスをオペルキュラムに入れ、遠位内リンパ嚢から内リンパ管を分離した。頭蓋骨欠損は、吸収性ゼラチン粉末(例えば、Gelfoam)を配置し、上の筋肉を再近似することによって閉じた。内リンパ性ヒドロプスの組織学的証拠は、術後1、3、7、14、21、および30で一貫して発見され、硬膜内アプローチが組織学的に確認された内リンパ性水文学的水力を誘導する信頼できる方法であることを実証した。木村やシュクネヒトと同じ硬膜内アプローチを用いたが、異なる時間点を有するが、SaltとDeMottは、内腔の第2ターンにおけるスカラ培地が4日目以降2日目に有意に拡大したことを確認した。木村とシュクネヒトの硬膜内アプローチを用いて脳脊髄液(CSF)漏れを誘発する実際の罹患率は、当初の研究では報告されなかったが、CSF漏れの存在は髄膜炎のリスクを高める可能性がある。CSFの喪失は、回リンパの流出を引き起こし、モルモット3の内リンパ体積の同時一時的な拡大をもたらすことが示唆されている。内リンパ水たたまきを誘発する硬膜外アプローチは、より安全な選択肢であろう。
1989年、アンドリュースとボーマーは、内リンパ性嚢および管に到達するための2つの硬膜外外科的アプローチを、中頭蓋窩アプローチまたは後頭蓋窩アプローチを介して、内リンパ嚢4を抹消する方法を説明した。彼らは、ダイヤモンドドリルでオペルキュラムを取り除き、内リンパ嚢の中間部分を掘削するか、細かいピックを使用して内リンパ嚢と管を破壊することを説明した。1993年、リー、ライト、マイヤーホフは、内リンパ嚢とダクトを通る掘削を含む同様のアプローチを説明したが、同時に人工内水道管5を妨害するという点で異なった。彼らは、内リンパ嚢を消滅させ、人工内耳管通管を閉塞した4週間後に、神学を介して評価された内リンパ水溶液の存在を実証した。Megerianらは、内リンパ嚢および管管の内側部分を直接掘削して内リンパ嚢および管6に入ることを示す硬膜外硬膜外硬膜外の義務を示すビデオ記事を最初に公開した。彼らは、手術後28週で犠牲となったモルモットの内リンパ性ヒドロプスの組織学的証拠と、16kHz領域6の難聴を実証した。硬膜外アプローチを用いて、早期に組織学的に確認された内リンパ性ハイドロプスと低周波難聴を誘発できるかどうかは不明であった。
このレポートの全体的な目標は、内リンパ嚢を抹消し、内リンパ管を細かいピックで負傷させることによって、術後30日で実験的な内リンパ水球を誘導する硬膜外アプローチを実証することです。この技術の使用の背後にある根拠は、ペトロウス側頭骨を掘削する必要性を避け、それによって誤って硬膜を傷つけてCSF漏れを引き起こすリスクを取り除き、後部半規管を負傷させる可能性を軽減し、シグモイド・シヌスの損傷のリスクを減らすことです。

<table><tbody><tr><td>12 mL シリンジ</td><td>ヘンケ・サス・ウルフ</td><td>5100-X00V0</td><td></td></tr><tr><td>1mLと3mLの注射器</td><td>BD Precision(フィッシャーサイエンスから注文)</td><td>14-826-87 15859152</td><td></td></tr><tr><td>27.5バタフライゲージ針</td><td>テルモ・サーフェロ ウィングドインフュージョンセット、テルモ株式会社、日本)(マッケソンから注文)</td><td>448407</td><td></td></tr><tr><td>4-0縫合</td><td>マッケソン</td><td>1034507</td><td></td></tr><tr><td>4×4のガーゼスポンジ</td><td>ドゥカル(順序形式:マッケソン)</td><td>374454</td><td></td></tr><tr><td>60 mL シリンジ</td><td>フィッシャー科学</td><td>22-031-375</td><td></td></tr><tr><td>アンスパッハ耳科ドリル</td><td>アンスパッハ</td><td>SC2100</td><td></td></tr><tr><td>アティパメゾール</td><td>ゾーティス</td><td>107204-6</td><td></td></tr><tr><td>オートクレーブ</td><td>フィッシャー科学</td><td><a href="https://www.fishersci.com/shop/products/fisher-scientific-isotemp-general-purpose-heating-drying-ovens/151030508">15-103-0508</a></td><td></td></tr><tr><td>オートクレーブバッグ</td><td>マッケソン</td><td>524881</td><td></td></tr><tr><td>銃剣セパレーター</td><td>オリンポス</td><td>アル・130564</td><td></td></tr><tr><td>ブピビカイン</td><td>オーロ・メディックス・ファーマ</td><td>555150-169-10</td><td></td></tr><tr><td>透明な無菌のドレープ</td><td>3歳</td><td>1020</td><td></td></tr><tr><td>綿球</td><td>フィッシャーブランド(フィッシャーサイから注文)</td><td>22-456-885</td><td></td></tr><tr><td>綿棒</td><td>マッケソン</td><td>508716</td><td></td></tr><tr><td>ダイヤモンドバリ #3、#2、#1、#0.5 mm</td><td>アンスパッハ</td><td>QD8-3SD;QD8-2SD;QD8-1SD;QD8-05SD</td><td></td></tr><tr><td>おむつパッド</td><td>マッケソン</td><td>945330</td><td></td></tr><tr><td>使い捨て15枚刃</td><td>スワン・モートン</td><td>0305</td><td></td></tr><tr><td>エンロフロキサシン</td><td>ホスピラ</td><td>0409-4888-01</td><td></td></tr><tr><td>エピネフリン</td><td>マッケソン</td><td><a href="https://www.findacode.com/code.php?set=NDC&amp;c=63739-0456">63739-0456</a></td><td></td></tr><tr><td>眼軟膏</td><td>デクラ獣医製品</td><td>17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>フリーエレベーター</td><td>グレース・メディカル</td><td>215100FX</td><td></td></tr><tr><td>ゲルフォーム</td><td>ファイザー(マッケソンから発注)</td><td>82830</td><td></td></tr><tr><td>ヘアトリマー</td><td>Oster Power Pro Cordless(Amazonで注文)</td><td>078400-020-000</td><td></td></tr><tr><td>ヨウ素スクラブ</td><td>パデュー・ファーマ(マッケッソンから発注)</td><td>521243</td><td></td></tr><tr><td>アイリスハサミ</td><td>オリンポス</td><td>CL-542114</td><td></td></tr><tr><td>ケタミン</td><td>ヘンリー・シャイン動物保健</td><td>55853</td><td></td></tr><tr><td>乳化リンガー</td><td>B. ブラウン・メディカル(マッケソンから発注)</td><td>186662</td><td></td></tr><tr><td>ローゼンのランセットナイフ</td><td>グレース・メディカル</td><td>151100FX</td><td>本文では「キュレット」と呼ばれています</td></tr><tr><td>潤滑剤</td><td>ミレックス(クーパーサージカルから注文)</td><td>MX5030</td><td></td></tr><tr><td>マスキングテープ</td><td>3M(フィッシャーサイから注文)</td><td>19047259</td><td></td></tr><tr><td>金属長方形水槽</td><td>アマゾン</td><td>B07NQDBC6T</td><td></td></tr><tr><td>ニードルホルダー</td><td>オリンポス</td><td>CR 213015-ENT</td><td></td></tr><tr><td>針:27ゲージ、18ゲージ</td><td>BD Precision(フィッシャーサイエンスから注文)</td><td><a href="https://www.fishersci.com/shop/products/bd-general-use-precisionglide-hypodermic-needles-20/1482648">14-826-48 14-826-5D</a></td><td></td></tr><tr><td>新生児温暖化イソレット</td><td>空中生命維持システム</td><td>731-1800</td><td></td></tr><tr><td>操作顕微鏡</td><td>カール・ツァイス</td><td>OPMIピコ</td><td></td></tr><tr><td>酸素タンク</td><td>エアガス</td><td>OX USP200</td><td></td></tr><tr><td>パルスオキシメーター</td><td>CapnoTrue(Medacxから注文)</td><td>M-3090112001</td><td></td></tr><tr><td>加熱ブランケット付きの直腸プローブ</td><td>ハーバード・アパラタトゥス</td><td>プローブ:PY2 50-7217 加熱ブランケット:PY2 50-7214</td><td></td></tr><tr><td>赤いボディホルダー</td><td>リヒテンハン研究所</td><td>該当なし</td><td>社内製品</td></tr><tr><td>直角</td><td>オリンポス</td><td>BV-230337</td><td></td></tr><tr><td>ローゼンニードル</td><td>オリンポス</td><td>AM-130566</td><td>カスタマイズされたもので、私が袋を破るための器具です</td></tr><tr><td>O2投与用のゴムチューブ</td><td>フィッシャー科学</td><td>14-171-104</td><td></td></tr><tr><td>サランラップ</td><td>フィッシャー科学</td><td>NC9617977</td><td></td></tr><tr><td>立体定位ヘッドホルダー</td><td>WUSTL計装機械工場</td><td>該当なし</td><td>社内製品</td></tr><tr><td>無菌のカーテン</td><td>カーディナル・ヘルス</td><td>7553</td><td></td></tr><tr><td>バロンによる吸引チューブ</td><td>グレース・メディカル</td><td>034903FX 034905FX</td><td>#3と#5 吸引</td></tr><tr><td>ティッシュ・ピンプス アドソン・ブラウン</td><td>グレース・メディカル</td><td>325112FX</td><td></td></tr><tr><td>ワイトランダーリトラクター</td><td>オリンパス・グレース・メディカル</td><td>BL200011 100313FX</td><td></td></tr><tr><td>キシラジン</td><td>アコーン</td><td>59399-110-20</td><td></td></tr></tbody></table>

モルモットの内リンパ性水力を誘導する改訂された外科的アプローチ

A Revised Surgical Approach to Induce Endolymphatic Hydrops in the Guinea Pig

内リンパ水腫は、メニエール病に最も頻繁に関連するスカラ培地の拡大であるが、病態生理学的メカニズムは不明のままである。低周波難聴の起源など、内リンパ水力の属性を十分に研究するためには、信頼性の高いモデルが必要です。モルモットは、内リンパ水たばきによって推定的に影響を受ける低周波領域で聞こえるので、良いモデルです。これまでの研究では、内リンパ水力は、内リンパ管と嚢の掘削を伴う硬膜内または硬膜外アプローチを介して外科的に誘発できることを実証している。しかし、内リンパ管と嚢の危険な掘削を避ける硬膜外アプローチを用いて内リンパ水力モデルを作成できるかどうかは不明であった。本研究の目的は、内リンパ嚢を抹消し、内リンパ管を細かいピックで負傷させることによって、術後30日で実験的な内リンパ水球を誘導する改訂された硬膜外アプローチを実証することであった。サンプルサイズは7匹のモルモットで構成されていました。聴覚の機能測定が行われ、その後、側頭骨が組織学的分析のために採取された。このアプローチは、内リンパ水たくりの達成に86%の成功率を持っていた。脳脊髄液漏れのリスクは最小限であった。このサンプルでは、術後半円形の運河に対する周術期の死亡または負傷は起こらなかった。提示された方法は、30日の比較的迅速な時点で内リンパ水たまりを誘導する安全で信頼性の高い方法を示しています。臨床的な意味は、提示された方法は、さらに内リンパ水性水力に関連することができる低周波難聴の起源を探求するための信頼性の高いモデルを提供することです。

提示された方法は、内リンパ嚢を抹消し、2人の男性と5人の女性からなる7匹のモルモットの細かいピックで内リンパ管を傷つけるために硬膜外アプローチを使用した。手術の平均期間は、切開から閉鎖まで2時間であった。ドリル時間の合計は5~10分でした。モルモットが麻酔から完全に出現するには、最大4時間が必要でした。サンプルには術中または術後の死亡はなかった。モルモットのいずれにも後半円形の運河や硬膜にけがはなかった。シグモイド・サイヌスの損傷は、1匹のモルモット(データ分析から除外)で起こった。
モルモットは、犠牲の日(術後30日目)に、聴覚神経重なった波形(ANOW)および人工内耳複合作用電位(CAPs)を含む聴覚機能測定を行う第2の処置を受けた。ANOW と CAP の測定を行い、前に説明した方法7,8,9<...

この記事では、実験的な内リンパ性水力を誘導するために、モルモット内リンパ嚢を抹消し、細かいピックで内リンパ管を傷つけるための硬膜外アプローチを示しています。

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) ...

この手順を用いて、内リンパ水性水たまりは、十分な成功率を有するモルモットにおいて比較的迅速に誘導することができる。この技術の主な利点は、内リンパ水力はCSFリークまたは後半規管への傷害のための最小限のリスクで誘導することができるということです。ペダル反射に対する応答の欠如を確認した後、麻酔モルモットの背面にラクチオンリンガー溶液の12ミリリットル皮下液ボーラスを注入し、モルモットを温かいパッドの上のスペイン位置に置きます。27.5ゲージの蝶の針を腹腔内に置き、針先の中にのみ空気の存在を確認し、モルモットを起こしやすい位置に置きます。頭を定位ホルダに固定し、パルスオキシメーターを未顔足に固定します。直腸プローブと温かい毛布を使用して体温を摂氏38度に保ち、動物の目に軟膏を塗布します。後ろにマスキングテープを置いて、オクシプットの上の皮膚に沿って十分な張力を与え、テープの端を立体性ホルダーに固定します。その後、オクシプットと後頸部の上に皮膚を3つの連続したヨウ素スクラブと70%アルコールで自由に準備し、動物の上に無菌ドレープを置きます。15番の刃を使って後部咬傷に沿って小さな正中線切開を行い、後部首まで伸びるように外科的処置を開始する。皮膚の下に入ると、虹彩はさみを使って後頭部の骨から右後頸部筋肉を切り離し、無菌綿球からの圧力で出血を制御する。解剖顕微鏡と5-0吸引と無菌灌漑を備えた数3、2、および1ミリメートルのダイヤモンドバリの組み合わせを使用して、外部後頭紋まで横方向に境界付けられたクレーニクトミー、横方向にlambdoidal尾根、後頭突起縫合線を内側に行い、およびマグメンのマージンの周回を行う。そして、シグモイドのサイヌスを骨格化するために0.5ミリメートルのダイヤモンドバリを使用してください。後頭部の骨を硬膜から分離しながら、小さな生理塩水湿った綿を骨の下にそっと置きます。慎重に正気の上に骨を取り除き、綿のボールを使用してシグモイドの正腸の内側を静かに引き込みます。シグモイドの大腸菌を慎重に引き込み、ペトロウス側頭骨内に位置するスリット状の構造としてオペルキュラムを特定する。内リンパ性嚢の外因性部分は、オペルキュラムとシグモイド・サイヌスを覆う硬膜との間の明確な嚢様接続として視覚化することができる。Sigmoidの正気に穏やかな内側の引き込みを適用して、内リンパ嚢の外因性部分を明確に可視化し、嚢の外因性部分と内口部分の間の緊張を高める。細かい角度のピックを使用して、内リンパ嚢の中間部分を穏やかに取り除き、骨の内側に沿ってオペルキュラム内の細かいピックを広く削ります。この手順の成功には、硬膜とオペルキュラムの間に目に見える接続が残っていないことが重要です。小さなキュレットを使用して側頭骨に沿って擦り付けて骨チップを得り、オペルキュラムに骨チップを寛大に詰め込みます。頭蓋骨に余分なワックスが外れ、骨ワックスを使用してクラニエクトミーの欠陥をカバーするように注意して骨ワックスでオペルキュラムを密封します。次に、4-0の編組吸収性縫合糸を伴う後頸部筋肉を中断した方法で近似し、4-0の編組吸収性縫合糸を有する下切片閉鎖を使用して、単純な中断された縫合糸と表皮層で深層を近似することによって2層閉鎖を行う。この代表的な実験では、側頭骨の組織学的分析は、7匹のモルモットのうち6匹の左のコクレアと比較して、右の内耳痛全体の内リンパ水たまりを明らかにした。各ターンにわたるスカラメディアの断面積の定量化は、対照動物で観察されたものと比較して、内リンパ嚢の義務化後30日生存した動物の耳において、断面積が一般的に大きいことを示した。内リンパ性ハイドロプスを持つ動物では聴覚神経重畳の波形閾値が増加し、低周波難聴の存在を示すが、8~20キロヘルツの間のほとんどの高周波人工内科化合物作用電位閾値は正常範囲内であった。硬膜とオペルキュラムの間の領域が嚢を取り除いた後に乾燥している場合は、シグモイドのサイヌスに追加の引き込み値を置いて、それとオペルキュラムの間に目に見える接続がないことを確認してください。この手順に従って、内リンパ水腫に関する重要な研究問題に対処するために、人工内耳の解剖学および生理学に関する追加の研究を行うことができる。

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Research

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Neuroscience

神経科学

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