Name: 心筋梗塞マウスモデルにおける修飾mRNAの導入 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-06-11T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: 学ぶ 心筋梗塞マウスモデルにおける修飾mRNA（modRNA）を用いた遺伝子導入法。心臓への正確な注射部位と標準化されたプロトコルを習得し、心血管研究における遺伝子治療の再現性を向上させる。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

著者らは、アン・アヌ・クリアンがこの原稿を助けたであることを認めている。この研究は、ザンギ研究所に授与された心臓病のスタートアップ助成金とNIH助成金R01 HL142768-01によって資金提供されました

ここで概説されているすべての動物の手順は、マウントシナイ制度ケアと使用委員会でIcahn医学部によって承認されています。
1. モドRNAの合成
注:modRNA合成の詳細はKondratら13.にあります。
<ol><li>プラスミドテンプレート(材料表)を注文し、mRNAテンプレートとして使用するクリーンなPCR製品を生成します。</li>
	<li>以下のカスタマイズされたリボヌクレオシドブレンド(材料表):T7転写キット、 6 mM アンチリバースキャップアナログ (ARCA) 30-O-Me-m7G(50) ppp(50)G, 75 mM グアノシン三リン酸, 75 mM アデノシン三リン酸, 75 mM シチジン三リン酸, 100 mM シュードリジン-5-三リン酸, T7 DNase酵素.</li>
	<li>ステップ1.2で作られたmodRNAを転写クリーンアップキット(材料表)で精製し、南極ホスファターゼで治療します。次に、転写クリーンアップキットでmodRNAを再精製し、分光光度計を用いて定量化する。</li>
	<li>モドRNAをエタノールと酢酸アンモニウムで沈殿させ、10 mM Tris-HClおよび1 mM EDTAで再懸濁します。</li>
	<li>遠心フィルターによる生体内送達用のmodRNAを濃縮し、自動化された電気泳動プラットフォーム(材料表)を使用して品質を測定する。</li>
</ol>2. 生体内送達のためのmodRNA注入の調製
<ol><li>モドRNA濃度に基づいて、ルシファーゼ(Luc)/Cre modRNA注入の100 μgに必要な体積を計算します。</li>
	<li>計算されたモッRNAの体積をヌクレアーゼフリー水(0.3 g/mL)および0.1 Mクエン酸溶液(pH = 7)(それぞれ推奨される20 μL)で調製したスクロース溶液の等しい部分と混合します。</li>
	<li>生理液を加えて、注入の最終容積を60μLにします。</li>
</ol>3. 心筋梗塞手術
<ol><li>動物の麻酔と準備 注:この研究は、生後8〜12週の雄と雌のCFWマウスを使用しています。<ol>
<li>誘導室を使用して2%イ皮溶ランでマウスを麻酔し、麻酔を維持するために鼻と口の上にフェイスマスクを付けた背部位置に動物を背部に置きます。7-8 mm気道管とフィルターを装備した人工呼吸器を使用して、機械的換気によって麻酔を維持します。</li>
		<li>手術プラットフォーム上でマウスを固定するには、外科用テープで手足を固定します。胸部の首の領域と左側を剃り、70%エタノールとポビドネヨウ素を使用して消毒します。消毒手順を2回繰り返します。麻酔の深さを評価するために尾と後ろ足をつまんで、その反射神経をチェックしてください。</li>
		<li>ノルマニア(37.5-38 °C)でコア体温を継続的に監視し、維持します。</li>
		<li>気管内挿管を行うことによって、開いた気道を維持します。これを行うには、マウスを腹側の位置に置き、口を実験者に向けて置き、舌をそっと引き出します。首の角度を調整し、挿管経路をまっすぐにし、挿管カニューレを押します。</li>
		<li>動物が呼吸を通して呼吸できない場合には、気管切開を行うことができる。顕微鏡を用いて、皮膚、筋肉、組織を隔離する正中線に沿って子宮頸部切開を行う。気管がはっきりと見える場合は、小さな穴を開け、微小手術鉗子を使用して気管の頭蓋部分を保持することによって、気管内チューブを、グロティスの下の2つのカートリッジリングの間の組織に挿入します。</li>
		<li>マウスの胸部の動きを観察し、両方の肺が酸素を受け取っていることを確認します。呼吸数(RR)は1分あたり約120回の呼吸で、吸気圧は17-18 cm H2Oです。</li>
	</ol>
</li>
	<li>左前前降下(LAD)動脈結紮<ol>
<li>LADライゲーションを行うために、マウスを右側に横たわるように注意深く回します。皮膚を持ち上げ、3番目と4番目の肋骨の間で左側面の胸部切除術を行い、組織と筋肉を慎重に解剖します。出血を防ぐために焼灼を使用してください。</li>
		<li>胸郭を慎重に開き、開いたら、鋭利な物体で肺に触れることなく、心臓を見つけます。胸腔を開いたままにして心臓をはっきりと見るために、切開部にレトラクタを置きます。今度は肺を切開の端に移動し、心臓を覆っている心膜嚢の一部を取り除いて心臓の前表面にアクセスする。</li>
		<li>肺動脈と左耳結部の間に位置する深い光赤色の血管として見ることができるLADを慎重に特定する。7-0シルク縫合糸の単一縫合糸でLAD近位をリゲートします。胸管(28G、静脈カテーテル)を、第4肋骨と第5肋骨の間に置く。</li>
		<li>胸部切開部を層で閉じます。リブを適応させるために6-0シルクランニング縫合糸を使用し、皮膚を閉じるために5-0シルクランニング縫合糸を使用してください。将来の心エコー測定のために適切なウィンドウを残してください。</li>
		<li>2 mL のシリンジを使用して、温かい等張液(水1Lに塩化ナトリウム 9 g)を慎重に排出します。マウスを背面に置きます。気管切開術を行う場合は、気管内チューブを取り出し、7-0シルク縫合糸を使用すると、気管カートリッジリングを1つのステッチで調整します。フェイスマスクをマウスに置き、5-0シルクランニング縫合糸を使用して皮膚を閉じます。</li>
		<li>回復段階では、挿管カニューレを人工呼吸器から切り離し、自発的な呼吸を可能にする。意識が得られるまで、動物をヒートランプの下に置きます。完全に目が覚めていくまで、手術後は動物を放置しないでください。</li>
		<li>ブプレノフィンを用いた疼痛療法を0.1mg/kg体重で管理し、12時間間隔で次の3日間皮下注射を行う。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. modRNAの心臓送達
<ol><li>MIに続くインスリン注射器(31G)を用いて、ステップ2.3の筋肉内(IM)で調製したmodRNAの合計60μLを送達する。<ol>
<li>梗塞領域を取り囲む心筋の3つの異なる部位(ライクトの両側に2つ、頂点に1つ)でmodRNAの20 μLを注入します。胸部を閉じる前に、LADの直後に注射を行います。 注: modRNA インジェクション部位の代表的な画像は、図 1に示されています。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. 心臓ポストMIにおけるタンパク質発現の検証
<ol><li>生物発光イメージングシステムを用いたルシメラーゼmodRNA発現 注:60μLのスク糖バッファーで調製されたLuc mRNAの合計100 μgは、MIの後にCFWマウスの心臓に直接注入されます。<ol>
<li>24時間ポストMIおよびmodRNA注射で、誘導チャンバーを用いて2%イソフルランを用いてマウスを麻酔し、腹腔内注入ルシフェリン(150mg/g体重)をインビボでLucシグナルを検証する。</li>
		<li>Luc シグナルが飽和状態になるまで、2 分ごとに生物発光イメージング システムを使用してマウスを画像化します。</li>
		<li>収集した画像データをイメージング解析ソフトウェアで定量化します。生理学を注射したマウスは、Luc発現のベースライン読み取り値としてのみ使用し、生理学注射マウスから収集されたバックグラウンドシグナルを差し引きます。 注意:Luc信号はp/ s / cm2/sr x 10 6で表されます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>遺伝子導入検証のための免疫染色<ol>
<li>クレでトランスフェクションを検証するには、100mg/kgケタミンと10mg/kgのキシラジンの後に頚部脱臼の腹腔内注射を使用して、24時間の注射後に動物を犠牲にします。切開する前に、70%アルコール綿棒を使用して胸部および腹部を消毒する。</li>
		<li>胸骨より1cm低い横切開を行い、頭に向かってハサミを動かし、肋骨ケージを切り裂いて胸腔を開きます。</li>
		<li>胸部を開き、右心室に1mLの無菌PBSを注入して余分な血液を除去します。すぐに心臓を切り出し、残りの血液を洗い流すために滅菌PBSに入れます。</li>
		<li>心臓を4%パラホルムアルデヒド(PFA)で24時間固定し、続いて4°Cで30%スクロース溶液中で一晩インキュベーションを行った。翌日は最適な切断温度媒体に心臓を埋め込み、クライオスタットを使用して10μmの厚さでそれらを切り離します。</li>
		<li>心臓トロポニンI(cTNI)に対して一次抗体でセクションを染色し、蛍光二次抗体で標識します。核を特定するには、4',6-ジミジノ-2-フェニリンドール(DAPI)を5分間染色し、蛍光顕微鏡を使用してスライドを画像化します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. 統計分析
<ol><li>生理的なマウスとLuc注射マウスのLuc式に基づいて棒グラフをプロットし、平均値±SEMとして値を報告します。</li>
</ol>

<ol><li>Muruve, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+innate+immune+response+to+adenovirus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">The innate immune response to adenovirus vectors.</a> Human Gene Therapy. 15 (12), 1157-1166 (2004).</li>
<li>Donsante, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observed+incidence+of+tumorigenesis+in+long-term+rodent+studies+of+rAAV+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Observed incidence of tumorigenesis in long-term rodent studies of rAAV vectors.</a> Gene Therapy. 8 (17), 1343-1346 (2001).</li>
<li>Calcedo, R., Wilson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Humoral+Immune+Response+to+AAV%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">Humoral Immune Response to AAV.</a> Frontiers in Immunology. 4, 341(2013).</li>
<li>Diebold, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nucleic+acid+agonists+for+Toll-like+receptor+7+are+defined+by+the+presence+of+uridine+ribonucleotides%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Nucleic acid agonists for Toll-like receptor 7 are defined by the presence of uridine ribonucleotides.</a> European Journal of Immunology. 36 (12), 3256-3267 (2006).</li>
<li>Magadum, A., Kaur, K., Zangi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((mRNA-Based+Protein+Replacement+Therapy+for+the+Heart%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy%22%5BJournal%5D)">mRNA-Based Protein Replacement Therapy for the Heart.</a> Molecular Therapy. 27 (4), 785-793 (2019).</li>
<li>Kariko, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incorporation+of+pseudouridine+into+mRNA+yields+superior+nonimmunogenic+vector+with+increased+translational+capacity+and+biological+stability%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy%22%5BJournal%5D)">Incorporation of pseudouridine into mRNA yields superior nonimmunogenic vector with increased translational capacity and biological stability.</a> Molecular Therapy. 16 (11), 1833-1840 (2008).</li>
<li>Hadas, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+Modified+mRNA+In+Vitro+Synthesis+Protocol+for+Heart+Gene+Therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy-+Methods+and+Clinical+Development%22%5BJournal%5D)">Optimizing Modified mRNA In Vitro Synthesis Protocol for Heart Gene Therapy.</a> Molecular Therapy- Methods and Clinical Development. 14, 300-305 (2019).</li>
<li>Sultana, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+Cardiac+Delivery+of+Modified+mRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy%22%5BJournal%5D)">Optimizing Cardiac Delivery of Modified mRNA.</a> Molecular Therapy. 25 (6), 1306-1315 (2017).</li>
<li>Zangi, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+mRNA+directs+the+fate+of+heart+progenitor+cells+and+induces+vascular+regeneration+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Modified mRNA directs the fate of heart progenitor cells and induces vascular regeneration after myocardial infarction.</a> Nature Biotechnology. 31 (10), 898-907 (2013).</li>
<li>Carlsson, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purified+VEGF-A+mRNA+Improves+Cardiac+Function+after+Intracardiac+Injection+1+Week+Post-myocardial+Infarction+in+Swine%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy+Methods+Clinical+Development%22%5BJournal%5D)">Purified VEGF-A mRNA Improves Cardiac Function after Intracardiac Injection 1 Week Post-myocardial Infarction in Swine.</a> Molecular Therapy Methods Clinical Development. 9, 330-346 (2018).</li>
<li>Huang, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+chemically+modified+mRNA-based+delivery+of+cytoprotective+factor+promotes+early+cardiomyocyte+survival+post-acute+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Pharmaceutics%22%5BJournal%5D)">Synthetic chemically modified mRNA-based delivery of cytoprotective factor promotes early cardiomyocyte survival post-acute myocardial infarction.</a> Molecular Pharmaceutics. 12 (3), 991-996 (2015).</li>
<li>Magadum, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ablation+of+a+Single+N-Glycosylation+Site+in+Human+FSTL+1+Induces+Cardiomyocyte+Proliferation+and+Cardiac+Regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy+-+Nucleic+Acids%22%5BJournal%5D)">Ablation of a Single N-Glycosylation Site in Human FSTL 1 Induces Cardiomyocyte Proliferation and Cardiac Regeneration.</a> Molecular Therapy - Nucleic Acids. 13, 133-143 (2018).</li>
<li>Kondrat, J., Sultana, N., Zangi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+Modified+mRNA+for+Myocardial+Delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Synthesis of Modified mRNA for Myocardial Delivery.</a> Methods in Molecular Biology. 1521, 127-138 (2017).</li>
<li>Gan, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intradermal+delivery+of+modified+mRNA+encoding+VEGF-A+in+patients+with+type+2+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communication%22%5BJournal%5D)">Intradermal delivery of modified mRNA encoding VEGF-A in patients with type 2 diabetes.</a> Nature Communication. 10 (1), 871(2019).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

遺伝子治療は、心疾患の治療を大幅に進める大きな可能性を示しています。しかし, HF の治療のための最初の臨床試験で採用されている従来のツールは限られた成功を示しており、重篤な副作用に関連付けられている.修飾RNAは、心臓における遺伝子導入ツールとして絶えず人気を集めている非ウイルス遺伝子の送達を提示する。ModRNAは翻訳のために遺伝子の核局在を必要としないため、タンパク質の効率的かつ迅速な発現を提供します。また、mRNAがゲノム宿主に統合されないほど、modRNAによる遺伝子送達は突然変異のリスクをスキップする。その結果、従来の遺伝子導入車に比して、modRNAは単一の遺伝子または遺伝子の組み合わせを心臓に送達する最も魅力的なプラットフォームの1つとなっています。しかし、現在までに、損傷後の心臓へのmodRNAの調製および伝達のための標準化されたプロトコルはない。したがって、ここでの目的は、遺伝子治療ツールとしてのmodRNAの使用を改善し、治療目的に適したものにするために、げっ歯類の心臓におけるmodRNAの心臓内送達のための標準および最適化されたプロトコルを確立することであった。
<p class="jove_conten...

遺伝子治療は、ヒト疾患の治療、治癒、または予防のための核酸の送達を含む強力なツールです。心臓病の診断および治療アプローチの進歩にもかかわらず、心筋梗塞(MI)および心不全(HF)における遺伝子の送達には限られた成功があった。遺伝子治療のプロセスが簡単に見えるように、特定の送達車両を採用する前に最適化する必要がある多くの要因を考慮すると、著しく複雑なアプローチです。正しい送達ベクターは、非免疫原性、効率的、および人体の中で安定である必要があります。この分野での取り組みは、ウイルスまたは非ウイルスの2種類の送達システムを生成しました。アデノウイルス、レトロウイルス、レンチウイルス、またはアデノ関連ウイルスによる遺伝子導入を含む広く使用されているウイルス系は、例外的な導入能力を示している。しかし、クリニックでのそれらの使用は、強い免疫応答誘発1、腫瘍形成2のリスク、または中和抗体3の存在によって制限され、そのすべてがヒト遺伝子治療におけるウイルスベクターの広範かつ効果的な適用に対する主要な障害であり続ける。一方、その印象的な発現パターンにもかかわらず、裸のプラスミドDNAの送達はトランスフェクション効率が低く、mRNA転移はRNase4による分解に対する高い免疫原性および感受性を示4す。
mRNAの分野での広範な研究により、modRNAは、従来のベクター5よりも多くの利点のために、心臓および様々な他の器官に遺伝子を送達するための魅力的なツールとなっています。天然に存在するシュード尿酸と尿酸尿素を完全に置換すると、より強く一過性のタンパク質発現が生じ、自然免疫応答の誘導とゲノム統合のリスクが最小限に抑えられる6。最近確立されたプロトコルは、合成mRNA7の安定性とトランスバビリティを高めることでタンパク質翻訳をさらに高めるアンチリバースキャップアナログ(ARCA)の最適化量を使用する。
これまでの報告では、MI後のげっ歯類心筋の中でmodRNAによって送達される様々なレポーターまたは機能性遺伝子の発現が示されている。modRNAの適用により、心筋細胞および非心筋細胞の両方を含む心筋の重要な領域は、血管新生99、10、10心筋細胞生存11、および心筋細胞増殖を誘導する心筋損傷8のトランスフェクションに成功している。変異したヒトフォリスタチン様1に対してコードされるmodRNAの単一投与は、マウス成体CMの増殖を誘導し、心機能を有意に増加させ、瘢痕サイズを減少させ、そしてMI12後4週間の毛細血管密度を増加させる。最近の研究では、豚モデル10におけるVEGFA modRNAの適用によるMI後の心臓機能の改善が報告された。
したがって、心臓フィールドにおけるmodRNAの普及率の高まりに伴い、心臓ポストMIへのmodRNAの送達のためのプロトコルを開発し最適化することが不可欠である。このプロトコルおよびビデオに示す方法は、左前下方動脈(LAD)の永久結紮によるマウスMIの標準的な外科的処置を示し、続いて3つの部位のmodRNAの心臓内注射を行う。本論文の目的は、マウス心筋へのmodRNA送達の非常に正確で再現性の高い方法を明確に定義し、modRNAの適用を心臓遺伝子治療に広く利用できるようにすることである。

<table><tbody><tr><td>アデノシン三リン酸</td><td>Invitrogen</td><td>AMB13345</td><td>Megascript キットに含まれています</td></tr><tr><td>南極ホスファターゼ</td><td>ニューイングランド バイオラボ</td><td>M0289L</td><td></td></tr><tr><td>アンチリバースキャップ アナログ、30-O-Mem7G(50) ppp(50)G</td><td>TriLink Biotechnologies</td><td>N-7003</td><td></td></tr><tr><td>バイオルミネセンスイメージングシステム</td><td>パーキンエルマー</td><td>124262</td><td>IVIS100電荷結合デバイスイメージングシステム</td></tr><tr><td>鈍い開創器</td><td>FST</td><td>18200-09</td><td></td></tr><tr><td>心臓トロプニン I</td><td>アブカム</td><td>47003</td><td></td></tr><tr><td>シチジン三リン酸</td><td>Invitrogen</td><td>AMB13345</td><td>Megascriptキットに含まれています</td></tr><tr><td>デュアル麻酔システム</td><td>ハーバード装置</td><td>75-2001</td><td></td></tr><tr><td>鉗子- アドソン</td><td>FST</td><td>91106-12</td><td></td></tr><tr><td>鉗子 - デュモン #7</td><td>FST</td><td>91197-00</td><td></td></tr><tr><td>グアノシン三リン酸</td><td>Invitrogen</td><td>AMB13345</td><td>Megascript キットに含まれる</td></tr>もの <tr><td>In vitro 転写キット</td><td>Invitro</td><td>AMB13345</td><td>5X MEGAscript T7 キット</td></tr><tr><td>挿管カニューレ</td><td>ハーバード装置</td><td></td><td></td></tr><tr><td>メガクリアキット</td><td>ライフテクノロジー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ズ マウスベンチレーター</td><td>ハーバード装置</td><td>73-4279</td><td></td></tr><tr><td>N1-メチルシュードウリジン-5-三リン酸</td><td>TriLink Biotechnologies</td><td>N-1081</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 分光計</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Olsen Hegar ニードルホルダー 縫合糸ハサミ付き</td><td>FST</td><td>12002-12</td><td></td></tr><tr><td>プラスミドテンプレート</td><td>GeneArt、Thermo Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>シャープポインテッド解剖ハサミ</td><td>FST</td><td>14200-12</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>縫合糸</td><td>Ethicon</td><td>Y433H</td><td>5.00</td></tr><tr><td>縫合糸</td><td>Ethicon</td><td>Y432H</td><td>6.00</td></tr><tr><td>縫合糸</td><td>Ethicon</td><td>7733G</td><td>7.00</td></tr><tr><td>T7 DNase 酵素</td><td>Invitrogen</td><td>AMB13345</td><td>Megascript キットに含まれています</td></tr><tr><td>テープステーション</td><td>Aligent</td><td>4200</td><td></td></tr><tr><td>転写クリーンアップキット</td><td>Invitrogen</td><td>AM1908</td><td>Megaclear</td></tr><tr><td>Ultra-4 遠心フィルター 10k</td><td>Amicon</td><td>UFC801096</td><td></td></tr></tbody></table>

心筋梗塞マウスモデルにおける修飾mrnaの導入

Delivery of Modified mRNA in a Myocardial Infarction Mouse Model

心筋梗塞(MI)は、西洋世界における罹患率と死亡率の主要な原因である。過去10年間で、遺伝子治療は、その効率と例外的な治療効果のために、心臓病の有望な治療法となっています。MI後の損傷した組織を修復するために、様々な研究がDNAベースまたはウイルス遺伝子治療を採用しているが、送達された遺伝子、浮腫、不整脈、および心臓肥大の貧弱で制御不能な発現のためにかなりのハードルに直面している。合成修飾mRNA(modRNA)は、ゲノム統合のリスクなしに、高、一過性、安全、非免疫性、および制御されたmRNA送達を心臓組織に提供する新しい遺伝子治療アプローチを提示する。これらの顕著な特徴と心臓の鐘状の薬物動態を組み合わせることで、modRNAは心臓病の治療のための魅力的なアプローチとなっています。しかし、生体内での有効性を高めるためには、一貫した信頼性の高い配信方法に従う必要があります。したがって、modRNA送達効率を最大化し、in vivoアプリケーションに対するmodRNA使用の一貫性を得るために、マウスMIモデルにおけるmodRNAイントラ心臓内注入の調製および送達の最適化された方法が提示される。このプロトコルは、基礎的および翻訳的研究のためにmodRNAの提供をよりアクセスしやすくする。

生後8~10週齢のマウスをイゾフルランで麻酔し、挿管した。動物が麻酔下にあった後、左胸部領域を剃ってエタノールで殺菌し、心臓をLAD結紮のために露出させた。左冠動脈は、動脈の下に縫合糸をしっかりと結び付けることによって閉塞した(図表図1A)。梗塞が成功した後(左心室自由壁の青白で示される)、スク糖バッファーに溶解したLucまたはCre modRNAの100 μgの直接注射を、インスリン注射器を用いて傷害領域を取り囲む3つの異なる部位(図1B)で直接心筋に送達した。モッズRNA注射によるMI処置は、動物1匹につき30〜45分間続いた。動物は約90%の生存率後術を示した。処置後、胸部と皮膚は層でしっかりと縫合され、動物は正常に呼吸を始めたとたんに換気から取り除かれた。
LADライゲーションとその後のLuc modRNA注入の送達を行った後、我々は、生物発光イメージングシステムを用いたLucタンパク質発現24時間のトランスフェクションを検証した(<strong clas...

このプロトコルは、マウスの心筋梗塞後にmodRNAを使用して、目的の遺伝子を一時的にアップアレートする簡単で一貫した方法を提示する。

心筋梗塞マウスモデルにおける修飾mRNAの導入

Myocardial infarction (MI) is a leading cause of morbidity and mortality in the Western world. In the past decade, gene therapy has become a promising ...

修飾RNAは、心臓および他の器官への遺伝子導入のための新しい方法である。このプロトコルは、心筋梗塞後の心臓に一過性の所望の遺伝子を送達する正確なアプローチを提供する。この方法は心筋梗塞に限らず、虚血再灌流、および横大動脈収縮モデルにも適用できる。修飾RNAは、いくつかのヒト臨床試験で使用されています。しかし、この方法を用いて、遺伝子が心臓に移されるという標準化されたプロトコルはない。視覚デモンストレーションは、研究者が心臓の適切な場所で修飾されたRNAを正しく注入することを可能にする。プロセドゥルのデモンストレーションは、博士研究員のアジット・マガドゥムと、私たちの研究室の動物監督者エレナ・チェプルコです。modRNAで以前に調製された濃度に基づいて、100マイクログラムの注入に必要なmodRNAの量を計算する。スクロースとクエン酸塩溶液の等しい量を作ります。次に、計算されたmodRNAの体積を加え、注入量を60マイクロリットルにする十分な生理食塩水を加えます。動物を麻酔した後、腹側を上に置き、口を実験者に向けます。次に、気管内挿管を行うことにより開放気道を維持し、舌をそっと引き出す。首の角度を調整して挿管経路をまっすぐにし、挿管カニューレを押し込みます。マウスの胸部の動きを観察し、両方の肺が酸素を受け取っていることを確認します。呼吸数は毎分約120回の呼吸である必要があります。LADライゲーションを開始するには、マウスを右側に慎重に回します。皮膚を持ち上げ、3番目と4番目の肋骨の間で左の胸部切裂術を行う。鋭利な物体で肺に触れることなく、胸郭を慎重に開けます。胸腔を開いた状態に保つために切開部にレトラクタを置き、心臓の明確な眺めを提供する。次に、肺を切開の端まで移動させ、心臓を覆っている心膜嚢の一部を取り除く。肺動脈と左耳結部の間に位置する深部光赤色血管であるLADを慎重に特定する。単一のシルク縫合糸で近位LADをリゲートします。インスリン注射器を使用して、合計60マイクロリットルのmodRNA溶液を心臓に送達する。3つの異なる部位で、筋肉内に20マイクロリットルを注入する。ライゲーションの両側に1つの部位と心臓の頂点に1つ。修飾されたRNAを正しい部位に注入する最良の方法は、LADの閉塞後の顕微鏡下で組織の変色を観察することである。また、注入されたとき、循環に心臓室に到達するために組織に深く入りすぎないでください。胸部切開部を層で閉じます。最初の使用は、肋骨を適応させるために6-0シルクランニング縫合糸でした。その後、5-0シルクランニング縫合糸を使用して皮膚を閉じます。回復段階では、カニューレを取り除き、自発的な呼吸を可能にする。意識が回復するまで、動物を加熱パッドの上に置きます。完全に目が覚めていくまで、動物を放置しないでください。術後の痛みを管理する

delivery-of-modified-mrna-in-a-myocardial-infarction-mouse-model

Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

多数の遺伝子操作及び/または遺伝子、タンパク質、細胞、および/または生体物質の心筋内注射は、急性虚血/再灌流傷害およびマウスにおける慢性的リモデリングの研究に時間の次元に重ね合わされている。このビデオでは、虚血/再灌流、恒久的な冠動脈結紮、および心筋内注入の研究のための顕微手順を示しています。...

心筋梗塞のマウスモデルにおける冠動脈結紮および心筋内注入

マウスにおける実験的心筋梗塞を誘発するために用いる外科手術は、心臓や肺の左前方の表面を可視化するために、3番目と4番目のリブの間に左開胸で始まります。左冠動脈を結紮され、胸が閉じているとマウスが自発的に回復させる。...

マウスにおける冠動脈結紮のために修飾されたテクニック

我々は、再現性を高めるために左前下行枝（LAD）に結紮の位置決めにおいてより明確にするために可能にするマウスモデルにおける心筋梗塞（MI）をシミュレートするための実験的虚血/再灌流（I / R）傷害を誘導するための外科的方法を紹介マウスでのMIの実験の。...

左前下の動脈の結紮を通して心筋虚血再灌流傷害のマウスモデル

心エコーガイド下経皮的心筋内注入は、マウスの心臓への遺伝子導入剤又は細胞の送達のための、効率的で信頼性が高く、標的可能なモダリティを表しています。このプロトコルで説明されている手順に続いて、オペレータは、すぐにこの汎用性、低侵襲性技術で有能になることができます。...

マウスにおける超音波ガイド下経胸壁心筋内注射

最小限の侵襲操作によるマウスの心筋梗塞の再現性の高いモデルが記述されています。モデル化が容易に行えるため、高い再現性と生存率を実現しています。したがって、記載されているモデルは、3Rの原則(Replacement(置換)、Refinement(改良)、Reduction(リペアメント)、Refinement(リファインメント)、Reduction(リダクション)の要求に応じて、必要な動物の数を減らします。...

マウスにおける心筋梗塞を誘発する低侵襲手術手順

本明細書では、マウスにおける左前皮下冠動脈の永久的なライゲーションを達成する方法を示す外科的処置について説明する。このモデルは、心筋梗塞の病態生理学とそれに付着した生物学的プロセスを調べるために高い関連性がある。...

左前皮下冠動脈の永久的なライゲーションを用いたマウス心筋梗塞モデル

この記事では、マウスの心筋凍結傷害後の心臓リモデリングを研究するモデルを示す。...

マウスの心筋梗塞を研究する凍結傷害モデル

適切な麻酔下で、マウスの心臓を肋間腔から外在化し、ほとんどの検査室で容易に入手できる材料を使用して左前下行動脈(LAD)を結紮することにより、心筋梗塞の誘発に成功しました。...

マウスにおける心筋梗塞の誘導のための改良簡便法

ここでは、マイクロマニピュレーションによる左前下行冠動脈の精密結紮により、マウスの心筋梗塞または心筋虚血再灌流障害を誘発できる簡便で再現性のある方法について述べる。...

マウスにおける心筋梗塞および心筋虚血再灌流障害の誘発

ここに提示されるのは、マウスの左冠状動脈の永久結紮のための外科的処置である。このモデルは、心筋梗塞後の病態生理学および関連する炎症反応を調査するために使用できます。...

左冠動脈結紮術:心筋梗塞の外科用マウスモデル

学ぶ 心筋梗塞マウスモデルにおける修飾mRNA（modRNA）を用いた遺伝子導入法。心臓への正確な注射部位と標準化されたプロトコルを習得し、心血管研究における遺伝子治療の再現性を向上させる。

心筋梗塞マウスモデルにおける修飾mRNAの導入

さらに動画を探す