Name: 蛍光免疫顕微鏡を用いたパラフィン組み込みネコリン動脈血栓における好中球外細胞トラップの同定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-03-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 48 s
Description: 学ぶ 蛍光免疫顕微鏡と二重免疫標識法を用いて、パラフィン包埋ネコ動脈血栓における好中球外細胞トラップ（NETs）を同定する方法です。熱誘導抗原回収により、従来の組織学的手法よりも鮮明な可視化が可能となり、獣医学における血栓症の病態理解に貢献します。

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この研究は、カリフォルニア大学デービスコンパニオンアニマルヘルスセンター(CCAH 2018-30-F)からの資金によって支えられました。著者らは、ケビン・ウーラード博士が蛍光顕微鏡を使用することを認めたい。

ここで説明するすべての方法は、カリフォルニア大学デービス校の制度的動物管理および使用委員会のガイドラインに従って行われました。組織の壊死と生検は、所有者の同意を得て行われました。
1. 組織固定、埋め込み、切除
<ol><li>大動脈分岐を解剖し、下降大動脈、大腿動脈、および一般的な腸骨動脈(図1A)を含む、人道的安楽死または死亡の直後に。鈍いは、少なくとも24時間と48時間未満の10%中性緩衝ホルマリンにそれを完全に沈める前に、筋膜(図1B)を解剖します。</li>
	<li>試料を脱水するために、まず10%中性緩衝ホルマリンを1時間37°Cに加熱して沈水する。その後、37°C(70%、95%、100%)に加熱されたエタノール濃度の上昇に沈水それぞれ1時間2倍。最後に、すすかずに、100%トルエンで2倍を1時間加熱して37°Cに加熱した。</li>
	<li>62°Cに加熱したパラフィンを加え、パラフィンを完全に一晩固める。</li>
	<li>ミクロトームを使用したパラフィン埋め込み組織のセクション2~3 μmを、正に帯電したガラススライドに配置します。さらに分析するまで-80°Cで切除組織を保管してください。</li>
</ol>2. 脱パラフィン、再水和、熱誘導抗原の検索
<ol><li>ガラススライド上のセクションの分離と水分補給を実行するには、ガラススライドをラックに配置し、次の順序で処理します。<ol>
<li>3分間100%キシレンで完全に沈み込む。ステップ間でリンスしないでください。</li>
		<li>エタノールの濃度を減少させる完全に水没 (100%, 95%, 70%)室温(RT)で、3倍の3分ずつ。ステップ間でリンスしないでください。</li>
		<li>2分間、脱イオン水に完全に沈み込みます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>2~3 分間、0.1 % Tween (TBST, pH = 7.6) でトリスバッファー生理液線にセクションを配置します。</li>
	<li>100°Cに加熱脱イオン水で貯水池を充填します。蒸気室を20分間平衡化します。 注:熱誘導抗原の検索は、食品蒸し器などの温度設定が設定されたスチーマーによって生成された間接加熱で行うのが最善です。</li>
	<li>トリスとEDTA(pH=9)を含む市販の抗原検索溶液を温度制御ホットプレート上で95〜97°Cに加熱し、一定の攪拌を行います。沸騰しないようにしてください。 注: ソリューションは、温めると曇りになります。</li>
	<li>加熱した抗原検索液をスライド容器に注ぎ、容器を蒸し器のチャンバーに入れます。抗原検索溶液を3~4分間、蒸気器の温度に平衡化させ、チャンバーの温度が約95°Cであることを確認します。</li>
	<li>熱い抗原の検索の解決にスライドを完全に水に沈め、20分間の蒸し器を介して外部加熱の適用を続ける。</li>
	<li>スチーマーからスライド容器を取り出し、スライドおよび抗原検索溶液を冷却してRTに冷却させ、希釈された抗原検索溶液を4°Cに保存し、必要に応じて最大2倍再利用します。</li>
	<li>スライド3xをTBSTで5分間洗います。</li>
</ol>3. 免疫標識と自己蛍光のクエンチ
注:表 1は、次の手順で使用されるブロッキング バッファの構成を示しています。
<ol><li>緩やかな揺れ(30~50 rpm)の下でRTで2時間ブロックバッファ1のインキュベートセクション。乾燥を避けるためにパラフィンフィルムでシールします。</li>
	<li>洗浄せずに、100μLの希釈ウサギポリクローナル抗ヒトシトルリン化ヒストンH3(citH3)抗体(0.03mg/mLをブロッキングバッファー1に希釈)をスライドに直接塗布します。</li>
	<li>各セクションにカバースリップ(24 mm x 40 mm x 0.13~0.17 mm)を配置し、抗体混合物の均等な分布を可能にします。</li>
	<li>穏やかな揺れ(30-50のrpm)と4 °Cで12-16時間のインキュベート。乾燥を避けるためにパラフィルムフィルムでシールします。</li>
	<li>TBSTで3倍の洗濯を5分間洗います。</li>
	<li>ステップ3.3に記載されているように、アレクサFluor 488(0.04 mg/mLまたはブロッキングバッファ1で1:50の最終濃度に希釈)に結合したヤギ抗ウサギ抗体の100 μLを適用します。RTで1時間インキュベートして、穏やかな揺れ(30~50 rpm)で行います。スライドを光から保護します。</li>
	<li>TBST 3xで5分間洗います。</li>
	<li>緩やかな揺動(30~50 rpm)の下で4°Cでブロッキングバッファ2のセクションをインキュベートします。光から守る。</li>
	<li>TBST 3xで5分間洗います。</li>
	<li>ブロッキングバッファ3のブロックセクションは、ステップ3.3でRTで2時間(30〜50 rpm)でブロックします。</li>
	<li>ステップ3.2-3.4に記載されているように、ビオチン化ポリクローナルウサギ抗ヒトNE抗体(最終濃度=ブロッキングバッファ3の0.2 μg/mL)を4°Cで12〜16時間インキュベートしたセクション。</li>
	<li>TBST 3xで5分間洗います。</li>
	<li>ALEXA Fluor 594ストレプトアビジンコンジュゲート(ブロッキングバッファ3では1:100または0.02 mg/mLに希釈)を用いてインキュベートし、RTで1時間のステップ3.2-3.3に記載されているように、乾燥を防ぐためにパラフィンで保護します。</li>
	<li>TBST 1xで5分間洗います。</li>
	<li>100 μLの自家蛍光焼入れ液混合物を、製造業者の指示に従って1分間、セクションに直接塗布します。</li>
	<li>すぐに10分間、TBST 6xでスライドを洗います。</li>
	<li>各スライドに300 nM DAPIの100 μLを覆い、暗闇の中で5分間おります。</li>
	<li>TBSTで3分間洗います。</li>
	<li>自己蛍光消光キットの一部であるアンチフェード実装媒体のドロップ(約50μL)を、セクションを囲むガラススライドに直接塗布します。カバースリップ(24 mm x 40 mm x 0.13~0.17 mm)を、泡を作成せずに、セクションにそっと置きます。</li>
	<li>浸漬レンズによる顕微鏡分析のために取り付け媒体が硬化するまで、サンプルを4°Cの暗闇の中で一晩治すことができます。</li>
</ol>4. 好中球細胞外トラップの同定
注:次のプロトコルは、1,280 x 960デジタルCCDカメラを搭載した反転性蛍光顕微鏡を利用しています(材料表を参照)。
<ol><li>血栓を見つけるには、大動脈の長さに沿って、大動脈分岐、および10倍の目的を有する位相対視による各大腿動脈に沿って、目を通してスキャンする。血栓は、赤血球、白血球、および内皮に隣接する血小板を含む組織の集まりであり、位相コントラストおよび明視野顕微鏡で(図2A、図2B)。</li>
	<li>最初に、10x および 20x の目標を持つ DAPI チャネル (励起 = 357/44 nm) を使用して NET のセクションを調べます (図 2C)。cfDNAは位相コントラストや明るい視野顕微鏡で見ると細胞の細胞質の範囲内にない縮合DNAとして現れる。</li>
	<li>テキサス赤チャネル(励起= 585/29 nm、発光= 628/32 nm)および緑色蛍光タンパク質チャネル(励起= 470/22 nm、放出量= 525/50nm)上の細胞外NEおよびcitH3をそれぞれ10、20、および40xの目標で同定する。</li>
	<li>イメージ J (NIH) などの利用可能なソフトウェアを使用して、血栓内の NET を評価および分析します。NET形成は、cfDNA、細胞外citH3、およびNEの共局在化に基づいて、前述の18に基づいて同定される。ピクセルの輝度の飽和を避けるために、画像の取得を通じて各チャンネルの一貫した露出時間とゲインを維持します。</li>
	<li>各血栓を降りる大間への近接度に基づいて、大間に最も近いゾーン1、大間から最も遠いゾーン3、ゾーン1と3の間のゾーン2を3つの等しいゾーンに分割してマッピングします。オペレータが各被験者の病状に目がくらんだ状態で、各ゾーンで少なくとも10個のランダムフィールドを取る。各ゾーンの NET を使用してフィールド数を平均化するか、ゾーンあたりの平均 NET 占有面積を計算することにより、血栓中の NET の分布を特徴付けます。</li>
</ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

我々は、二重免疫標識プロトコルおよび免疫蛍光顕微鏡を用いて、固定ネコ心原性動脈血栓におけるNETを同定するためのプロトコルを記述する。心原性動脈血栓のみが染色されたが、理論的には、このプロトコルは他のタイプの血栓および他の獣医種に使用することができる。ネコの動脈血栓内のNETの同定は、NETが猫の血栓症に役割を果たす可能性があることを示唆している。
固定およびパラフィン埋め込み組織における免疫蛍光によるNETの検出は、H&Eのような従来の組織学的染色よりも優れているが、これはしばしば好中球13に囲まれたクロマチンの糸を示す。固定動脈血栓の免疫細胞化学および免疫蛍光は、citH3のようなcfDNAおよび他の細胞外タンパク質の同時検出を可能にする、NETs形成18、19に特異的であることが知られている。19組織や血栓のNET検出には凍結製剤が最適ではないため、4%ホルムアルデヒドと10%メタノールを含む10%中性緩衝ホルマ...

肥大性心筋症の猫は、生命を脅かす血栓塞栓性合併症のリスクがある 1,,2.猫の心原性動脈血栓塞栓症(CATE)に関連する高い罹患率と死亡率にもかかわらず、猫におけるCATEの基礎となる病態生理は十分に理解されていない。この壊滅的な状態の危険にさらされている猫を治療し、識別するための限られた診断および治療ツールもあります 3.
自然免疫におけるその役割に加えて、好中球は、ヒストンと好中球エラスターゼ(NE)および骨髄ペロペロキシダーゼのような顆粒タンパク質で覆われた無細胞DNA(cfDNA)のウェブのようなネットワークである好中球細胞外トラップ(NETs)を放出することによって血栓症に役割を果たすることが示されている。好中球は、全身性炎症、病原体との直接の遭遇、および活性化された血小板44、5、6、75,6との相互作用に応答してNETs形成を受ける。犬では、好中球由来のDNAが血栓溶血を阻害し、NETタンパク質が血栓形成を加速することが示されている。NETsが循環細胞および凝固成分をトラップする能力は、血栓原性特性88、9、10、11、12の鍵でもあります。,9,10,11,12
NETは細胞外好中球タンパク質、ヒストン、およびcfDNAの共局在化によって検出される。このため、脱パラフィン組織の免疫蛍光による固定組織におけるNETの同定および定量は、明視野顕微鏡44,55を用いた伝統的なヘマトキシリンおよびエオシン(H&E)染色よりも優れている。免疫蛍光顕微鏡を用いたいくつかのヒト研究では、NETsを冠状動脈血栓、脳卒中血栓、アテローム血栓症、静脈血栓13、14、15、16、17の構造成分として同定した。13,14,15,16,17現在までに、ネコ血栓中のNETを検出および定量する標準化された方法は説明されていない。ネコの心原性動脈血栓におけるNETの同定は、NETsおよび血栓症における将来の翻訳研究を促進する可能性があるため、猫におけるパラフィン埋め込まれた動脈血栓におけるNET同定および評価の技術について述べている。

<table><tbody><tr><td>4,6-ジアミジノ-2-フェニリン (DAPI)</td><td>Life Technologies Corporation</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 Streptavidin conjugate</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Catalog # S11227</td><td></td></tr><tr><td>抗シトルリン化ヒストンH3抗体</td><td>Abcam</td><td>Ab5103</td><td></td></tr><tr><td>EVOS FL Cell Imaging System</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>AMEFC4300</td><td></td></tr><tr><td>EVOS Imagingシステム対物レンズ 10x</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>AMEP4681</td><td>NA 0.25, WD 6.9/7.45 mm</td></tr><tr><td>EVOS Imaging System 対物レンズ 20x</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>AMEP4682</td><td>NA 0.40, WD 6.8 mm</td></tr><tr><td>EVOS Imaging System 対物レンズ 40x</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>AMEP4699</td><td>NA 0.75, WD 0.72 mm</td></tr><tr><td>ヤギ抗ウサギ Alexa Fluor 488 抗体</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>カタログ # A32723</td><td></td></tr><tr><td>ヤギの血清</td><td>ジャクソン免疫研究所</td><td>カタログ#NC9660079。メーカー部品#005-000-121</td><td></td></tr>好<tr><td>中球エラスターゼ抗体</td><td>Bioss抗体</td><td>BS-6982R-Biotin</td><td>Rabbitポリクローナル抗体、ビオチン結合</td></tr><tr><td>NP40</td><td>ピアス</td><td>製品#28324。ロット#EJ64292</td><td></td></tr><tr><td>正電荷顕微鏡スライドトーマス</td><td></td>科学<td>メーカーNo.1354W-72</td><td></td></tr><tr><td>ウサギ</td>血清<td>ライフテクノロジー</td><td>カタログ#10510</td><td></td></tr><tr><td>ターゲット検索ソリューション</td><td>Agilent Dako</td><td>S2367</td><td>TRIS / EDTA、pH 9(10x)</td></tr><tr><td>TrueVIEW自家蛍光消光キット</td><td>ベクトル研究所</td><td>SP-8400</td><td></td></tr></tbody></table>

蛍光免疫顕微鏡を用いたパラフィン組み込みネコリン動脈血栓における好中球外細胞トラップの同定

Identification of Neutrophil Extracellular Traps in Paraffin-Embedded Feline Arterial Thrombi using Immunofluorescence Microscopy

細胞外トラップ(NET)は、細胞を含まないDNA(cfDNA)とヒストンや好中球エラスターゼ(NE)などのタンパク質から構成され、全身性炎症や病原体に応答して好中球によって放出される。NETsは以前、ヒトや犬の血栓形成を増強し、線維化症を阻害することが示されているが、肥大性心筋症に続く生命を脅かす合併症である心原性動脈血栓塞栓症(CATE)を有する猫におけるNETsの役割は不明です。猫の心原性動脈血栓におけるNETを同定し、定量化する標準化された方法は、CATEにおける病理学的役割の理解を進める。ここでは、壊死中に抽出された大動脈分岐内のホルムアルデヒド固定およびパラフィン埋め込みトロンビ中のNETを同定する技術について述べている。キシレンとの脱パラフィン後、大動脈切片は間接的に熱誘導抗原の検索を受けた。その後、切片を遮断、透過、およびex vivo NETsを、無細胞DNA(cfDNA)、ヒストンH3(citH3)、および免疫蛍光顕微鏡を用いた好中球エラスターゼ(NE)の共局在化によって同定された。血栓中のNETの免疫検出を最適化するために、組織元素の自己蛍光は顕微鏡検査の前に自己蛍光消光プロセスを用いて制限された。この技術は、他の種のNETおよび血栓症を研究するのに有用なツールとなり、この複雑な状態の病態生理学に関する新しい洞察を提供する可能性がある。

このプロトコルを用いて、パラフィン埋め込み血栓の脱パラフィン化、熱誘導抗原検索、および二重免疫標識を行い、ネコのCATE中のNETを初めて同定した。大動脈分岐内のトロンビは、標準的なH&amp;E染色および位相コントラスト顕微鏡を用いた蛍光顕微鏡と明視野顕微鏡検査によって位置付けられていた。明るいフィールド顕微鏡では、ネコ動脈血栓は赤血球、白血球、フィブリン、および血小板で構成された(図3A)。H&amp;E は特定の NET コンポーネントを染色することはできませんが、NETs は、近くの赤血球と白血球を囲むさまざまな長さの深い紫色の糸のネットワークとしてしばしば現れました (図 3A、点線のアウトライン)。血栓は位相対向顕微鏡における血管空間内の十分に区分された構造として特徴付けられた(図2A、図4B)。さらに、これらの領域内にNETsの存在を免疫蛍光顕微鏡法で確認した(<strong class...

熱誘導抗原検索と二重免疫標識プロトコルを用いてホルムアルデヒド固定およびパラフィン埋め込みネコの心原性動脈血栓中の好中球外細胞トラップ(NET)を同定する方法について述べた。

Neutrophil extracellular traps (NETs), composed of cell-free DNA (cfDNA) and proteins like histones and neutrophil elastase (NE), are released by ...

パラフィン化のこのプロトコルは、パラフィンに続いてパラフィン化し、パラフィン埋め込まれた大動脈切片の抗原検索を行い、ネコ血栓症における好中球三細胞トラップの役割を研究するのに有用なツールであり得る。固定およびパラフィン埋め込み組織における免疫蛍光による好中球三細胞トラップの検出は、HNEのような従来の組織学的ステントより優れているため、より安全なDNAと細胞外タンパク質の同時検出が可能である。このプロトコルは、他のタイプの血栓および他の獣医種で使用することができる。ネコの動脈血栓中の好中球外細胞トラップの同定は、猫の血栓症に役割を果たす可能性があることを示唆している。ここで示すプロトコルはガイドラインです。我々は、研究者が抗原検索プロセスの持続時間及び条件を調整し、満足のいくシグナルを生み出すことを強く推奨する。自動システムを使用して、ガラススライド上のセクションの脱パラフィン化と再水和を実行するには、ガラススライドをラックに配置します。3分間100パーセント生理文で完全に水没します。この手順を 2 回繰り返します。ステップ間でリンスしないでください。室温で3回、3分間、エタノール濃度を減少させて完全に沈水します。2分間脱イオン水に完全に沈み、もう一度繰り返します。TBSTで処理した後、100°Cに加熱脱イオン水で貯水池を充填します。蒸気室を20分間平衡させます。ヒートプレート上で、TrisとEDTAを含む市販の抗原検索溶液をpH 9.0〜95〜97°Cで加熱します。沸騰しないようにしてください。熱い抗原の検索の解決のスライドを完全にスベルジュし、20分間、蒸し器を介して外部加熱の適用を続ける。次に、スライドをTBSTで3回5分間洗います。次に、ブロックバッファ1にセクションを配置します。30~50rpmの穏やかな揺れ下で室温で2時間インキュベートします。洗浄せずに、すぐに100マイクロリットルの希釈ウサギポリクローナル抗ヒトシトルリン化ヒストンH3抗体をスライドに直接塗布する。各セクションにカバースリップを置き、抗体混合物の均等な分布を可能にする。穏やかな揺れで摂氏4度で12〜16時間インキュベートします。その後、スライドをTBSTで3回洗い、毎回5分間洗います。抗体を適用するには、ピペットを使用し、アレクサFluor 488に結合したヤギ抗ウサギ抗体の100マイクロリットルを均等に配布します。スズ箔でスライドを覆い、穏やかな揺れの下で室温で1時間スライドをインキュベートします。原稿によるとTBSTで洗浄した後、緩やかな揺れ下で摂氏4度で一晩ブロッキングバッファ2にセクションをインキュベートする。光から保護します。TBSTで3回5分間洗います。緩やかな揺れ下で2時間室温で行われたようにブロッキングバッファ3のセクションをブロックします。先に説明した4°Cの抗ヒト好中球エラスターゼ抗体をビオチン・ラッド・プロイクローナル・エラスターゼ抗体で12〜16時間インキュベートする。TBSTで洗浄した後、室温で1時間アレクサフルーオール594ストレプトアビジンコンジュゲートでスライドをインキュベートします。その後、TBSTで1回5分間洗います。100マイクロリットルのオートフルオレセンスクエンチン化溶液混合物を、メーカーの指示に従って1分間、セクションに直接塗布します。すぐにTBSTでスライドを6回、毎回10分間洗います。各スライドを300ナノモルDAPIの100マイクロリットルで暗い5分間覆います。その後、TBSTで3分間5回洗います。アンチフェード実装メディアのドロップを、セクションの周囲のガラススライドに直接塗布します。気泡を作成せずに、カバースリップをセクションにそっと置きます。サンプルが摂氏4度で暗闇の中で一晩治るようにします。血栓を見つけるには、10倍の目的を持つ位相コントラスト顕微鏡を用いて、大動脈、大動脈分岐および各女性動脈の長さに沿って頸部にスキャンする。まず、357ナノメートルと44ナノメートルの励起を用いてDAPIチャネルを使用して無細胞DNAのセクションを調べる。テキサス州の赤および緑色蛍光タンパク質チャネル上で、細胞外好中球エラスターゼとシトルリン化ヒストンH3をそれぞれ同定します。ピクセルの輝度の飽和を避けるために、画像の取得を通じて各チャンネルの一貫した露出時間とゲインを維持します。好中球外細胞トラップは、好中球エラスターゼの共局在化、ヒストンH3および無細胞DNAの同局化に基づいて同定される。ヘマトキシリンとエオシン染色、および明視野顕微鏡を使用して、ネコ動脈血栓は赤血球、白血球、フィブリンおよび血小板で構成される。NETsは、近くの赤血球と白血球を取り巻く様々な長さの深い紫色の糸のネットワークとして現れました。このプロトコルを用いて、免疫蛍光顕微鏡は、無細胞DNA、細胞外シトルリン化ヒストンH3および好中球エラスターゼからなるNETの大規模な凝集体を明らかにした。免疫顕微鏡における位相コントラストの下で、血栓は血管空間内の十分に区分された構造として特徴付けられていた。しかし、いずれの対照試料でも血栓は検出されなかった。この図は、488ナノメートルの波長で画像化した赤血球のような血栓元素の深遠な自己蛍光を示しています。免疫標識後の簡単な自己蛍光の急な消光は、赤血球が豊富な領域でもタンパク質共局在化およびNET検出の感度を有意に増加させた。固定の持続時間は、特定の抗原の免疫反応性に影響を及ぼす。脱水とパラフィンの埋め込み24時間以下の固定をお勧めします。あるいは、メタノールフリーパラホルムアルデヒドを用いることで、ホルムアルデヒドの酸化によるギ酸およびケトンによる加工品を制限することができる。同じ種から発生した一次抗体を使用する際の干渉を防ぐために、我々は二次抗体上の残りの結合部位を飽和させる追加のブロッキングステップを含む。研究者は、アイソタイプ抗体、一次抗体および免疫標識ステップの排除、血栓症のない猫からの生物学的制御からなる陰性対照を含まなければならない。血栓の組織限界の自己蛍光は、好中球の細胞外トラップの顕微鏡的同定を打ち負かすことができる。研究者は、遠赤色蛍光体を使用することにより蛍光を最小限に抑えることができます。この技術は、他の獣医種における好中球細胞外トラップの研究に貴重なツールであり得る。これは、血栓症の病態生理学のより良い理解を提供することができます.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

好中球細胞外トラップ（ネット）DNA、ヒストンおよび好中球のタンパク質のネットワークです。先天性免疫応答の成分が、ネットは自己免疫および血栓症に関与しています。このプロトコルは、イヌ好中球の単離およびマイクロプレート蛍光アッセイを用いてのNETの定量化のための単純な方法を記載しています。...

イヌ好中球細胞外トラップリリースの定量化のためのシンプルな蛍光アッセイ

全血からの犬好中球を分離し、蛍光顕微鏡を用いたライブ好中球におけるネットの形成を視覚化する方法について述べる。ネット形成とシトルリン化ヒストン H3 を定量化するプロトコルについて述べる、蛍光顕微鏡を用いた (citH3)...

体外蛍光顕微鏡による犬の好中球細胞外トラップ形成: ダイナミックな定量的分析

好中球細胞外トラップ(NET)は、刺激された好中球顆粒球によって生成される三次元構造である。近年、NETが多種多様な疾患に関与していることが明らかになりました。組織内のNETの検出は診断上の関連性を持つ可能性があるため、NETコンポーネントを標識するための標準化されたプロトコルが必要です。...

パラフィン埋め込み組織におけるヒトおよびマウス好中球外細胞トラップの免疫蛍光標識

好中球細胞外トラップ(NET)はさまざまな疾患と関連しており、その可視化には免疫蛍光法がよく用いられます。しかし、染色プロトコルは様々であり、多くの場合、1種類の組織しか検査されません。ここでは、マウスおよびヒト組織におけるNETsの染色に一般的に適用可能なプロトコルを確立します。...

ヒトおよびマウス組織における好中球細胞外トラップの免疫蛍光イメージング

好中球細胞外トラップ（NETS）は、病原性細菌、真菌、寄生虫を戦うために重要な自然免疫機構です。ここでは、ヒトの血液から好中球顆粒球を分離するやネットを形成するためにそれらを有効にする方法を説明します。我々は、光と電子顕微鏡内のネットを可視化する準備のテクニックを紹介。...

好中球細胞外トラップ：それらを生成して可視化する方法

以下のプロトコールでは、容易に入手可能な試薬を用いて、ヒト全血からの好中球細胞外トラップ（のNET）を単離するための非常に簡単な方法を記載している。次に、単離されたNETは、癌細胞を用いたin vitro接着アッセイにおいて使用することができる方法を示す。...

簡体ヒト好中球細胞外トラップ（のNET）の単離と取扱い

16S rRNAのをターゲットジゴキシン標識DNAプローブを用いたパラフィン包埋組織内細菌のその場検出で

脂質は細胞機能に重要な役割を果たしていることが知られています。ここでは、好中球細胞外トラップ形成の基礎となるメカニズムのより良い理解を得るために、HPTLC及びHPLCの両方を使用することにより、コレステロールレベルに重点を置いて、好中球の脂質組成を決定するための方法について説明します。...

脂質好中球の変化と好中球細胞外トラップのその後の形成を研究する方法

ここで取得し、好中球由来の巨大食細胞の新たに特徴付け亜集団を同定するための方法を説明します。これらの細胞は、新鮮なヒト血液好中球からの文化の中で開発し、食作用、オートファジー、非常に大きなサイズ、および拡張寿命を特徴とします。この方法はさらに、このユニークな好中球由来の亜集団を調査することが不可欠です。...

ヒト好中球由来の巨大食細胞の新規亜集団の開発および同定インビトロ

マクロファージ細胞外トラップは、新しく記述されたエンティティです。この資料に共焦点の顕微鏡検査方法に集中して体外と体内の肺検体から可視化方法します。...

共焦点顕微鏡を用いた可視化マクロファージ細胞外トラップ

学ぶ 蛍光免疫顕微鏡と二重免疫標識法を用いて、パラフィン包埋ネコ動脈血栓における好中球外細胞トラップ（NETs）を同定する方法です。熱誘導抗原回収により、従来の組織学的手法よりも鮮明な可視化が可能となり、獣医学における血栓症の病態理解に貢献します。

蛍光免疫顕微鏡を用いたパラフィン組み込みネコリン動脈血栓における好中球外細胞トラップの同定

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