Name: マウスにおける下腹部および後肢の脳閉回路灌流における確立 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-08-13T12:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 27 s
Description: 学ぶマウス下腹部および後肢のin situ灌流法。膀胱、前立腺、性器、骨、筋肉、足の皮膚への薬物送達と免疫相互作用を研究する革新的な技術です。従来のex-vivo法では困難な器官の灌流が可能となります。

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この研究は、DS、スカッグス薬学部ADR種子助成金プログラム(DS)にNIH助成金CA194058によってサポートされました。中国国立自然科学財団(グラント31771093)、吉林省国際協力プロジェクト(No.201180414085GH)、中央大学基礎研究基金、JLU科学技術革新的研究チームプログラム(2017TD-27、2019TD-36)。

ここに記載されているすべての方法は、コロラド大学の制度的動物ケアと使用委員会(IACUC)によって承認されています。
1. 灌流システムを予熱する
<ol><li>図1Aのカスタマイズされた構成に示すように、すべての水ジャケット部品(パーフューズ貯留槽、湿潤チャンバー、および蓋)に対して37°C循環水浴を開始することにより、手術前に灌流システムを準備する。チューブが清潔であることを確認し、必要に応じて交換してください。パーフューズ量を制限するには、湿潤チャンバ内の気泡トラップをパーフューズト貯留層として使用する(図1B-6)。</li>
</ol>2. 血管カテーテル法
<ol><li>イゾフルランの獣医麻酔装置を使用して8-10週齢のBALB/cマウスで麻酔を誘発し、3~5%のイゾフルランと酸素流量を0.3 L/minで行います。代わりに、ケタミン/キシラジンまたは腹腔内麻酔の他のタイプを使用してください。2つの方法で麻酔の深さを評価する:つま先ピンチと角膜反射。</li>
	<li>4-0シルク縫合糸を針で二重蒸留水にプレウェットします。</li>
	<li>麻酔マウスを外科医に向けた発泡スチロールボード上の上の上の上の上の上に置き、前肢と後肢をテープで固定します。イソプロピルアルコールで腹部を拭き、中線に沿って腹部をハサミで「T」の形で切ります。電気凝固(焼灼)によって切開の縁の周りの出血を止める。</li>
	<li>腹部の右側に胃、よく、そして大腸、結腸を押して腹部大動脈、大静脈、そして一般的な腸骨およびイリオルバール動脈および静脈を明らかにする。</li>
	<li>解剖顕微鏡の下で、4-0シルク縫合糸を使用して、男性のイリオルバール動脈/静脈、および卵巣動脈/静脈および女性のイリオルバール動脈/静脈を見つけてリゲートする(図2 黄色の線)。</li>
	<li>解剖顕微鏡の下で、腹部大動脈と下の大静脈の下に2つの4-0シルク縫合糸をループし(腸骨動脈と静脈の上に約1cm、1mm離れて図 2)、腸骨血管に最も近い縫合糸で緩い結び目を作ります(図2、白い点線)。あるいは、この結び目には6-0シルク縫合糸を使用できます。</li>
	<li>解剖顕微鏡の下で、下の大静脈と腹部大動脈の両方をポルト・エギーユで水平に整列させ、伸ばします。24 Gの翼を持つシールドI.V.カテーテルを使用して腹部大動脈を穿刺し、ボタンを押して針のコアを引っ込み、約5mmのカテーテルを容器に挿入します。<ol>
<li>下の大静脈で同じ手順を繰り返し、カテーテル化された血管の周りに両方の縫合糸の結び目を結びます。 注:針は血管を通して簡単に穿刺することができます。したがって、血管を伸ばし、針を血管と平行に保ちます。針が約1mmを血管に貫通するとすぐに針の芯を引き込みます。腹部大動脈は、下の大静脈の下にあり、結合組織に包まれるため、はるかに薄く、より弾力性があります。したがって、大オルタはカテーテルに「つかまり」、したがって、カテーテルが抜け出す可能性を減らすために、静脈の前にカテーテル化する必要があります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>即座に接着剤を塗布して、カテーテルを勃起脊髄に固定し、腹部の器官を交換し、麻酔を維持しながら手術を終了します。 注:腹腔に完全に交換することができない臓器は、灌流プロセス中に灌流媒体で定期的に湿らせなうます。</li>
</ol>3. 灌流システムのセットアップ
<ol><li>シリコンパッド上の37°Cにプリウォームされた水ジャケット湿ったチャンバーにマウスを移し、カテーテルの翼を19Gの針でパッドに固定します。</li>
	<li>動脈カテーテルの端(入口)に、前温灌流バッファー(リンガーの乳酸溶液に5%BSAを補う)を充填し、スクリューオンコネクタを使用してカテーテル端を入口灌流チューブと接続します(図1B、赤矢印)。 注:コネクタに止血鉗子を持ち、カテーテルを動かさないようにテープでチューブを固定します。</li>
	<li>蠕動流量を0.6 mL/minに調整し、灌流流出(図1B、青矢印)を5〜10分間放入して静脈カテーテルを通して血液を洗い流します。出口のカテーテルにはいくつかの血栓がある。灌流回路を閉じる前に、パーフューズドバッファーで血栓を洗い流してください。</li>
	<li>ねじコネクタを使用して、静脈カテーテルの端部をコンセントのチューブに接続して回路を閉じます(図1B)。この時点で、CO2ガス安楽死を行い、胸部穿刺またはその他の方法で検証する。</li>
	<li>湿った部屋を温めた蓋で覆います。定期的に透過性のレベルを確認し、必要に応じてさらに追加します。灌流は、最大2時間行うことができる。 注:閉じた灌流システムを設定するには、5 mLのパーフューズが必要です。漏れや浮腫がない場合、パーフューズの体積は1mL未満減少し、追加のバッファは必要ありません。末梢循環血栓によって誘発される浮腫を避けるために、0.002%ヘパリンを含む灌流バッファーは、灌流の最初の10分間に使用することができるが、切開部の端部での漏れを避けるためにヘパリンなしで緩衝液に変更すべきである。</li>
	<li>必要に応じて、任意の時点で灌流リザーバーまたは注入口に選択した試薬を追加します(図1B-5)。例えば、10 mg/mL Hoechst33342の10 μLをパーフューズに加えて、灌流終了の2時間前に細胞核を染色することができ、または1 mg/mL DyLight 649-レクチンの50 μLを透過の終わりの30分前に血管内皮細胞を染色する。 注:Hoechst溶液で骨髄を染色しようとする場合、マウスは手術の30分前に事前注射する必要があります。</li>
	<li>蛍光試薬を灌流した後、さらに10分間、灌流バッファーで洗い流し、バックグラウンド蛍光を最小限に抑えます。</li>
</ol>4. 浸透器官の解析
<ol><li>精巣、前立腺、膀胱、大腿骨、筋肉、皮膚(例えば、足)を含む器官を収集する。約1mm3 のオルガンを物品切りし、2枚のガラススライドの間で平らにします。<ol>
<li>DAPI/Cy5励起および発光フィルターを用いた反転蛍光共焦点顕微鏡(励起レーザー:DAPI、405 nm;Cy5,640 nm)。0.45の数値絞りを使用して、少なくとも200倍の倍率の目的を使用してください。</li>
		<li>あるいは、24時間4%ホルムアルデヒド溶液で器官を固定し、ヘマトキシリン-エオシン染色19を行う。</li>
	</ol>
</li>
	<li>無傷の骨髄観察のための骨窓を作成するには、大腿骨または脛骨の両端を固定し、骨膜を露出させるために19G針の横端で皮質骨を削り取る。残留骨の薄い層を保つように注意してください。上述したようにDAPIおよびCy5チャネルを用いた反転蛍光共焦点顕微鏡でガラスと画像に面した窓とのカバースリップに骨を置きます。骨髄腔内の細胞および血管ネットワークは容易に観察することができる。</li>
</ol>

<ol><li>Ghaidan, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ten+year+follow-up+of+lung+transplantations+using+initially+rejected+donor+lungs+after+reconditioning+using+ex+vivo+lung+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiothoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Ten year follow-up of lung transplantations using initially rejected donor lungs after reconditioning using ex vivo lung perfusion.</a> Journal of Cardiothoracic Surgery. 14 (1), 125(2019).</li>
<li>Kabagambe, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+Ex+vivo+Hypothermic+and+Normothermic+Perfusion+for+Assessment+of+High-risk+Deceased+Donor+Human+Kidneys+for+Transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Combined Ex vivo Hypothermic and Normothermic Perfusion for Assessment of High-risk Deceased Donor Human Kidneys for Transplantation.</a> Transplantation. 103 (2), 392-400 (2019).</li>
<li>Knaak, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+subnormothermic+ex+vivo+liver+perfusion+for+the+storage%2C+assessment%2C+and+repair+of+marginal+liver+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Technique of subnormothermic ex vivo liver perfusion for the storage, assessment, and repair of marginal liver grafts.</a> Journal of Visualized Experiments. (90), e51419(2014).</li>
<li>Hems, R., Ross, B. D., Berry, M. N., Krebs, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gluconeogenesis+in+the+perfused+rat+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+Journal%22%5BJournal%5D)">Gluconeogenesis in the perfused rat liver.</a> Biochemical Journal. 101 (2), 284-292 (1966).</li>
<li>Nielsen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasopressin+increases+water+permeability+of+kidney+collecting+duct+by+inducing+translocation+of+aquaporin-CD+water+channels+to+plasma+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Vasopressin increases water permeability of kidney collecting duct by inducing translocation of aquaporin-CD water channels to plasma membrane.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (4), 1013-1017 (1995).</li>
<li>Sutherland, F. J., Hearse, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolated+blood+and+perfusion+fluid+perfused+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacological+Research%22%5BJournal%5D)">The isolated blood and perfusion fluid perfused heart.</a> Pharmacological Research. 41 (6), 613-627 (2000).</li>
<li>Schreiter, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+ex+vivo+perfusion+system+emulating+in+vivo+conditions+in+noncirrhotic+and+cirrhotic+human+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology+and+Experimental+Therapeutics%22%5BJournal%5D)">An ex vivo perfusion system emulating in vivo conditions in noncirrhotic and cirrhotic human liver.</a> Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 342 (3), 730-741 (2012).</li>
<li>Sevick, E. M., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viscous+resistance+to+blood+flow+in+solid+tumors%3A+effect+of+hematocrit+on+intratumor+blood+viscosity%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Viscous resistance to blood flow in solid tumors: effect of hematocrit on intratumor blood viscosity.</a> Cancer Research. 49 (13), 3513-3519 (1989).</li>
<li>Duyverman, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+isolated+tumor+perfusion+model+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">An isolated tumor perfusion model in mice.</a> Nature Protocols. 7 (4), 749-755 (2012).</li>
<li>Sears, H. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+perfusion+of+a+tumor-containing+colon+with+monoclonal+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Ex vivo perfusion of a tumor-containing colon with monoclonal antibody.</a> J Surg Res. 31 (2), 145-150 (1981).</li>
<li>Duda, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malignant+cells+facilitate+lung+metastasis+by+bringing+their+own+soil%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Malignant cells facilitate lung metastasis by bringing their own soil.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (50), 21677-21682 (2010).</li>
<li>Kristjansen, P. E., Boucher, Y., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dexamethasone+reduces+the+interstitial+fluid+pressure+in+a+human+colon+adenocarcinoma+xenograft%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Dexamethasone reduces the interstitial fluid pressure in a human colon adenocarcinoma xenograft.</a> Cancer Research. 53 (20), 4764-4766 (1993).</li>
<li>Sevick, E. M., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Geometric+resistance+to+blood+flow+in+solid+tumors+perfused+ex+vivo%3A+effects+of+tumor+size+and+perfusion+pressure%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Geometric resistance to blood flow in solid tumors perfused ex vivo: effects of tumor size and perfusion pressure.</a> Cancer Research. 49 (13), 3506-3512 (1989).</li>
<li>Zhang, W. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+Maintenance+of+Primary+Human+Multiple+Myeloma+Cells+through+the+Optimization+of+the+Osteoblastic+Niche%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Ex vivo Maintenance of Primary Human Multiple Myeloma Cells through the Optimization of the Osteoblastic Niche.</a> PLoS One. 10 (5), (2015).</li>
<li>Di Buduo, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modular+flow+chamber+for+engineering+bone+marrow+architecture+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Modular flow chamber for engineering bone marrow architecture and function.</a> Biomaterials. 146, 60-71 (2017).</li>
<li>Lokerse, W. J. M., Eggermont, A. M. M., Grull, H., Koning, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+evaluation+of+an+isolated+limb+infusion+model+for+investigation+of+drug+delivery+kinetics+to+solid+tumors+by+thermosensitive+liposomes+and+hyperthermia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">Development and evaluation of an isolated limb infusion model for investigation of drug delivery kinetics to solid tumors by thermosensitive liposomes and hyperthermia.</a> Journal of Controlled Release. 270, 282-289 (2018).</li>
<li>Tietjen, G. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoparticle+targeting+to+the+endothelium+during+normothermic+machine+perfusion+of+human+kidneys%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Nanoparticle targeting to the endothelium during normothermic machine perfusion of human kidneys.</a> Science Translational Medicine. 9 (418), (2017).</li>
<li>Ternullo, S., de Weerd, L., Flaten, G. E., Holsaeter, A. M., Skalko-Basnet, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolated+perfused+human+skin+flap+model%3A+A+missing+link+in+skin+penetration+studies%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Pharmaceutical+Sciences%22%5BJournal%5D)">The isolated perfused human skin flap model: A missing link in skin penetration studies.</a> European Journal of Pharmaceutical Sciences. 96, 334-341 (2017).</li>
<li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematoxylin+and+eosin+staining+of+tissue+and+cell+sections%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2008, 4986(2008).</li>
<li>Hekman, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+Dual-Modality+Imaging+in+Renal+Cell+Carcinoma%3A+An+Ex+vivo+Kidney+Perfusion+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Targeted Dual-Modality Imaging in Renal Cell Carcinoma: An Ex vivo Kidney Perfusion Study.</a> Clinical Cancer Research. 22 (18), 4634-4642 (2016).</li>
<li>Graham, R. A., Brown, T. R., Meyer, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+ex+vivo+model+for+the+study+of+tumor+metabolism+by+nuclear+magnetic+resonance%3A+characterization+of+the+phosphorus-31+spectrum+of+the+isolated+perfused+Morris+hepatoma+7777%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">An ex vivo model for the study of tumor metabolism by nuclear magnetic resonance: characterization of the phosphorus-31 spectrum of the isolated perfused Morris hepatoma 7777.</a> Cancer Research. 51 (3), 841-849 (1991).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

記載された回路は、様々な研究問題、例えば薬物送達における異なる血清成分および組織障壁の役割、または免疫および幹細胞の密売を調査するために使用することができる。異なる薬物送達システム(例えば、リポソームおよびナノ粒子)は、送達における生理学的および生化学的要因の役割を理解するためにパーフューザートに添加することができる。灌流の持続時間は、研究された組織、科学的目標、およびパーフューズトの組成によって異なる場合があります。ここでは、乳酸とアルブミンを用いたリンガーの溶液からなる基本的な灌流媒体を用いて、最大2時間の灌流の結果を提示する。本研究の目的は、最適な臓器/組織機能と酸素化をサポートするために、灌流媒体や条件を開発し最適化するのではなく、灌流回路を確立することであった。栄養素、ビタミン、ホルモン、および血液細胞の添加は、前の文献で広範囲に調査されており、ヒトおよび動物組織の研究論文の数十に記載されている多くの灌流メディアと酸素化プロトコル7、99、10、11、1...

孤立した臓器灌流は、もともと移植のための臓器生理学を研究するために開発された11、2、3、2,3そして他の身体システムからの干渉なしに器官の機能の理解を可能にした。例えば、単離した腎臓および心臓灌流は、血行力学の基本原理および血管活性剤の効果を理解するのに非常に有用であったが、肝臓灌流は、健康および疾患組織44、5、6、75,6,7における薬物代謝を含む代謝機能を理解する上で重要であった。さらに、移植を目的とした臓器の生存率と機能を理解する上で、灌流研究は重要であった。癌研究では、単離された腫瘍灌流は、マウス、ラット、および新たに切除されたヒト組織88、99を用いていくつかのグループによって説明されている。いくつかの単離された腫瘍灌流では、腫瘍を卵巣脂肪パッドに移植し、腸間動脈10から血管を供給する腫瘍の成長を強制する。Jainグループは、結腸腺癌の単離灌流を用いて、腫瘍血球力学および転移88、11、12、13を理解するための先駆的な研究11,12を行った。他の革新的な工学的なex vivoのセットアップは、主要なヒト多発性骨髄腫細胞14を培養する96ウェルプレートベースの灌流装置および骨髄アーキテクチャおよび機能研究15を工学用のモジュラー流動室を含む。
生理学と病理研究に加えて、臓器灌流は薬物送達の基本原理を研究するために使用されてきた。したがって、1つの群は、単離されたラット四肢灌流を説明し、移植肉腫16におけるリポソームの蓄積を研究し、別の群は解剖されたヒト腎臓灌流を行い、ナノ粒子17の内皮標的化を研究した。Ternulloら. 単離された浸透ヒト皮膚フラップを近い生体内皮膚薬物浸透モデル18として使用した。
大きな臓器や組織の灌流におけるこれらの進歩にもかかわらず、マウスのsitu灌流モデルでは、a)肝臓、脾臓、腎臓などのクリアランス器官をバイパスするという報告はありません。b)骨盤臓器、皮膚、筋肉、生殖器官(男性)、膀胱、前立腺および骨髄が含まれる。これらの器官のサイズが小さく、脈管構造を供給するため、エキソビボカヌラ化および灌流回路の確立は実現不可能であった。マウスは、がんや免疫学の研究、および薬物送達において最も重要な動物モデルです。小さなマウス器官を穿フューズする能力は、骨盤に移植された腫瘍(膀胱、前立腺、卵巣、骨髄)を含むこれらの器官への薬物送達に関する興味深い質問を答えることを可能にし、これらの器官の疾患の基礎生理学および免疫学の研究を可能にする。この欠乏に対処するために、我々は、潜在的に組織損傷を回避することができ、単離された臓器灌流よりも機能的研究にはるかに適しているマウスのsitu灌流回路を開発した。

<table><tbody><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3.5x-90xステレオズーム顕微鏡、ブームスタンド、LEDライト付き</td><td>Amscope</td><td>SKU:SM-3BZ-80S二酸化炭素</td><td></td></tr><tr><td>、USP</td><td>Airgasヘルスケア</td><td>19087-5283</td><td></td></tr>共<tr><td>焦点顕微鏡</td><td>NIKON</td><td>ECLIPSE Ti2</td><td></td></tr><tr><td>高温FIAB</td><td></td><td>付き使い捨て滅菌焼灼ペンF7244</td><td></td></tr><tr><td>モイストチャンバーバブルトラップ(図1のパート6)</td><td>ハーバード製装置</td><td>733692</td><td>パーフィセート容器としてカスタマイズ、定圧灌流も可能に</td></tr><tr><td>石英窓付きモイストチャンバーカバー(図1のパート3)</td><td></td><td>チャンバーの温度を保つ</td><td>ハーバード733524製装置</td></tr><tr><td>金属管式熱交換器付きモイストチャンバー</td><td>ハーバード製装置</td><td>732901</td><td>灌流液とマウスの温度を維持するための蓋付きウォータージャケット付きモイストチャンバー</td></tr><tr><td>縫合カッター付きオルセン・ヘガー針ホルダー</td><td>ファインサイエンスツール(FST)</td><td>125014</td><td></td></tr><tr><td>酸素圧縮、USP</td><td>エアガスヘルスケア</td><td>C2649150AE06</td><td></td></tr><tr><td>ローラーポンプ(図1のパート4)</td>モ<td></td><td>イストチャンバー</td><td></td>内のカニューレに灌流液を送達するハーバード製装置730113</tr><tr><td>SCP plugsysサーボ制御F /灌流(図1のパート1)</td><td>追跡速度を制御する</td><td>ハーバード装置</td>の<td>732806</td></tr>シリコン<tr><td>パッドハーバー</td><td>ド装置</td><td></td><td></td></tr>シリコーン<tr><td>チューブセット(図1の矢印)</td><td>ハーバード装置(TYGON)</td><td>733456</td><td></td></tr><tr><td>学生標準パターン鉗子</td><td>ファインサイエンスツール(FST)</td><td>91100-12</td><td></td></tr><tr><td>外科用ハサミ</td><td>ファインサイエンスツール(FST)</td><td>14001-14</td><td></td></tr><tr><td>モイストチャンバー用テーブル</td><td>ハーバード装置</td><td>734198</td><td></td></tr><tr><td>サーモサーキュレーター(図1のパート2)</td><td>ハーバード装置</td><td>724927</td><td>すべてのウォータージャケットコンポーネント用の循環ウォーターバス</td></tr><tr><td>3ウェイストップコック(図1のパート5)</td><td>コールパー</td><td>マー30600-02</td><td></td></tr><tr><td>獣医麻酔器</td><td>ハイランド</td><td>HME109</td><td></td></tr><tr><td>Materials</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>19-G BD PrecisionGlideの針</td><td>BD</td><td>305186</td><td>Insyte Autoguard 翼のある針を固定し、皮質骨を引っ掻くため</td></tr><tr><td>4-0 シルク縫合</td>糸 <td>Keebomed-Hopemedical</td><td>427411</td><td></td></tr><tr><td>6-0 シルク縫合</td>糸 <td>Keebomed-Hopemedical</td><td>427401</td><td></td></tr><tr><td>フィルター (0.2 &マイクロ;m)</td><td>ThermoFisher</td><td>42225-CA</td><td>Filter for 5% BSA-RINGER' (5% BSA-RINGER用)S</td></tr><tr><td>油性マーカー</td><td>Staedtler</td><td>342-9</td><td></td></tr><tr><td>シリンジ (10 mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-823-2E</td><td></td></tr><tr><td>シリンジ (60 mL)</td><td>BD</td><td>309653</td><td>Filter for 5% BSA-RINGER'S</td></tr><tr><td>試薬</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1% エバンス ブルー ( w/v ) リン酸緩衝生理食塩水 (PBS, pH 7.5)</td> <td>シグマ</td><td>314-13-6</td><td></td></tr><tr><td>10% 緩衝ホルマリン</td><td>velleyvet</td><td>36692</td><td></td></tr><tr><td>BALB/c マウス ( 8-10 週齢)</td> <td>Charles River</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Baxter Viaflex lactate Ringer's solution</td><td>EMRN Medical Supplies Inc.</td><td>JB2324</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>サーモフィッシャー</td><td>11021-037</td><td></td></tr><tr><td>シアノアクリレート接着剤</td><td>Krazy Glue</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DyLight-649-lectin</td><td>Vector Laboratories,Inc.</td><td>ZB1214</td><td></td></tr><tr><td>エタノール(70%(vol / vol))</td><td>Pharmco</td><td>111000190</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst33342</td><td>Life Technologies</td><td>H3570</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Piramal Enterprises Limited</td><td>66794-017-25</td><td></td></tr><tr><td>リン酸塩緩衝生理食塩水</td><td>Gibco</td><td>10010023</td><td></td></tr></tbody></table>

マウスにおける下腹部および後肢の脳閉回路灌流における確立

Establishing In Situ Closed Circuit Perfusion of Lower Abdominal Organs and Hind Limbs in Mice

エクスビボ灌流は、孤立した器官(例えば肝臓、腎臓)の機能を研究するための重要な生理学的ツールである。同時に、マウス器官のサイズが小さいため、骨、膀胱、皮膚、前立腺、生殖器官のエクスビボ灌流は困難であるか、または実現不可能である。ここでは、上記組織を含むマウスの下半身灌流回路を初めて報告するが、主なクリアランス器官(腎臓、肝臓、脾臓)をバイパスする。この回路は、腸骨動脈および静脈の上の腹部大動脈および下大静脈をカニューララットし、末梢血管を焼灼することによって確立される。灌流は、パーフューズン流を最大2時間維持した蠕動ポンプを介して行われる。蛍光レクチンおよびHoechst溶液によるその際の染色では、マイクロバスキュアチュアが正常に浸透していることを確認した。このマウスモデルは、病理学的プロセス、および薬物送達のメカニズム、腫瘍への循環腫瘍細胞の移動/転移、および浸透した器官および組織との免疫系の相互作用を研究するのに非常に有用なツールとなり得る。

10mL未満の灌流緩衝液の体積を保ちながら、8~10週齢マウスの腹部大動脈と下の大静脈のカヌレーションを通じて閉回路灌流システムを設置しました。 図3A は、Hoechst 33342およびDyLight 649-レクチンを含むリンガーの溶液で組織を浸透した後の共焦点画像を示す。筋肉、骨髄、精巣、膀胱、前立腺、足の皮膚は、効率的な核および血管染色を示す。 図3B は、ノルマンサーム灌流の3時間後の臓器のヘマトキシリン-エオジン染色を示す。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60847/60847fig1.jpg"> 図 1.単純化された灌流のセットアップ。(A)システムは(1)圧力/流量コントローラ、(2)循環加熱水浴、(3)加熱カバーとカスタ...

プロトコルは、膀胱、前立腺、性器、骨、筋肉および足の皮膚を含むマウス下半身の上皮灌流に記載されている。

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small ...

このプロトコルは、私たちの回路に含まれる臓器内の薬物送達と免疫相互作用に関する質問に答えるために使用することができます。この技術は、主なクリアランス器官を避けながら、従来の元生体法では浸透することができない器官の灌流を可能にする。手術を開始する前に、循環水浴と水ジャケットのコンポーネントのすべてを摂氏37度に設定します。チューブが洗浄されていることを確認し、パーフューズトの貯蔵所として湿ったチャンバー内の気泡トラップを使用して、パーフューズの体積を制限します。カテーテル法を実行するには、ペダル反射への応答の欠如を確認し、8〜10週齢の男性麻酔球でマウスを参照してください。そして、マウスを発泡スチロールボードの上の上に置き、頭を6時に置きます。動物の手足をテープで固定し、イソプロピルアルコールで腹部を拭きます。T字型の切開を腹部に作り、電気凝固を使用して切開の縁の周りの出血を止める。腹部の右側に胃、小腸および結腸を押し、腹部大動脈、大動脈、大静脈および一般的な腸骨およびイリオルバール動脈および静脈を明らかにする。解剖顕微鏡の下で、4-Oシルク縫合糸で卵巣およびイリオルバール動脈および静脈を見つけてリゲートする。腹部大動脈と下の大静脈の下に2つの4-Oシルク縫合糸をループします, 約1ミリメートル離れて、腸骨動脈と静脈の上に約1センチメートル.その後、腸骨容器に最も近い縫合糸で緩いうなずきを作ります。針ホルダーを使用して、下の大静脈と腹部大動脈の両方を水平に整列させ、伸ばします。そして、血管を伸ばしたままにしておくと、24ゲージの翼を持つシールドIVカテーテルを使用して腹部大動脈を穿刺する。針が約1ミリメートルを血管に入り込み、ボタンを押して針の芯を引き込み、カテーテルを容器に約5ミリメートル挿入します。同様に、下の大静脈に5ミリメートルのカテーテルを挿入します。そして、カテーテル化された容器の周りに両方の縫合糸を結ぶ。次に、瞬時接着剤を適用して、カテーテルをスピンaに固定化し、腹部の器官を交換します。灌流システムを設定するには、水ジャケット湿ったチャンバーのシリコンパッドにマウスを置き、カテーテルの翼を19ゲージの針でパッドに固定します。動脈カテーテル入口を、温める前の灌流バッファーで満たします。止血鉗子を使用し、ネジオンコネクタを使用してカテーテルの入口をチューブに取り付け、入口灌流チューブをテープで固定します。蠕動流量を毎分0.6ミリリットルに調整し、灌流流出を5〜10分間開放し、静脈カテーテルを通して血液を洗い流す。いくつかの血栓は、出口カテーテルに存在し、透過液バッファーで血栓を洗い流し、静脈カテーテルの端部に回路を閉じるためにコネクタのネジを使用します。その後、湿ったチャンバーを最大2時間の灌流のために事前に温めた蓋で覆い、定期的にパーフューズトのレベルをチェックします。ここで、Hoechst 33342およびDyLight-649レクチンを含むリンジャー溶液との灌流後の共焦点画像が示されている。筋肉、骨髄、精巣、膀胱、前立腺および足の皮膚は、典型的には、効率的な核および血管染色を示す。ヘマトキシリンおよびエオシン染色は、正常なサーミック灌流の3時間後に、明らかな組織損傷を伴わない器官の正常な紅潮を明らかにする。このモデルは、生理学的に無関係な環境で薬物取り込み経路を理解するために使用することができる。例えば、薬物蓄積における血清成分の役割を理解する。私たちは、皮膚中のリポソーム蓄積のメカニズムを理解するために、システムを使用しています。

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