Name: 切り替え可能なプロトポルフィリンIX依存性活性酸素種のin situ光生成によるマウス皮膚における幹細胞ニッチの刺激と組織再生 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: 学ぶマウス皮膚における活性酸素種のin situ光生成法。mALAクリームと赤色光照射により幹細胞ニッチを刺激し、創傷治癒と毛髪再生を促進する制御された非侵襲的プロトコルです。

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この研究は、スペインの経済経済大臣(RTC-2014-2626-1からJE)およびサルドカルロスIII研究所(PI15/01458からJE)からの助成金によってサポートされています。ECは、Atracción de Talento Investigador grant 2017-T2/BMD-5766(Comunidad de Madrid and UAM)の支援を受けています。

すべてのマウス飼育および実験手順は、動物実験に関する地域、国内、国際的な法律およびガイドラインに準拠して実施する必要があります。
1.発毛の誘導、熱傷の誘発、および尾部皮膚上皮全体における長期BrdU LRCの同定
注:以下に説明する実験計画には、10日齢または7週齢のC57BL / 6マウス、できれば同腹仔を使用してください。すべての実験手順において、動物は3%イソフルラン吸入によって麻酔されるか、示されているように頸部脱臼によって安楽死させられます。
<ol><li>第2休止期(生後約50日目)におけるマウスの背部皮膚における発毛の誘導<ol><li>3%イソフルランを吸入してマウスに麻酔をかける。ペダル反射の欠如(しっかりとしたつま先をつまむ)によって完全な深部麻酔を確認します。バリカンと脱毛クリームを使用して、各マウスの背中の皮膚の2つの独立した横並びの領域を剃ります(材料表)。左側をコントロールに、右側を治療に使用します。 注:剃毛後、このマウス系統のメラニン形成と成長期(成長)期への参入の指標である灰色/黒ではなく、鉃毛後の背中の皮膚がピンクがかっていることを確認してください。</li>
		<li>PBSで完全に洗浄して、すべてのクリームの残りを取り除き、セクション2.1で説明されているように、非致死性ROSレベルの一過性のin situ産生の誘導に進みます。.</li>
		<li>各動物の対照および治療された背中の皮膚領域の高解像度画像を毎日取得することにより、毛包の成長を記録します(たとえば、5〜20倍の双眼レンズに結合されたHDカメラを使用)。</li>
	</ol></li>
	<li>第2休止期(休止期)におけるマウスの背部皮膚における2度 熱傷病変の誘導(生後約50日目)<ol><li>マウスに麻酔をかける。バリカンと脱毛クリームを使用して各マウスの背中の皮膚領域全体を剃り、PBSで完全に洗浄して、すべてのクリームの残りを取り除きます。 注:燃焼手順の直前に、滅菌生理食塩水中のリドカイン0.5%(2 mg / ml)の皮下注射を7 mg / mlを超えない状態で投与します。.</li>
		<li>真ちゅう製の棒(断面1 cm)を沸騰水に浸して95°Cに予熱し、各マウスの背側後皮表面の中央領域に5秒間塗布します。</li>
		<li>熱傷発生直後に、脱水症を防ぐために、電気毛布に1 mLの生理溶液(0.9%NaCl)を腹腔内注射します。動物を24時間回復させ、セクション2.3で説明されているように、非致死性ROSレベルの一過性のin situ産生の誘導に進みます。</li>
		<li>各動物の対照および治療された背中の皮膚領域の高解像度画像を毎日取得することにより、火傷の進行を記録します(たとえば、5〜20倍の双眼レンズに結合されたHDカメラを使用)。</li>
	</ol></li>
	<li>尾部皮膚上皮における長期BrdU LRCの生成と同定<ol><li>10/14日齢の同腹仔に腹腔内注射(麻酔なし)1日1回、4日間連続して、50 mg / kg体重のBrdUをPBSに溶解します。.標識段階の後、治療の前にマウスを50〜60日間成長させます。 注意: 注射ごとに新しい針を使用してください。</li>
		<li>組織ホールマウントの調製前のさまざまな時点での尾部皮膚における一過性のin situ非致死性ROS産生の誘導については、セクション2.3で説明されているように進めます。.</li>
		<li>尾表皮のホールマウントを準備するには、頸部脱臼によってマウスを安楽死させ、外科用ハサミで尾を切り取ります。<ol><li>メスを使って尾に沿って縦方向にまっすぐに切開し、背骨から皮膚全体を一枚として剥がします。皮をむいた皮膚を5 mLチューブ中のPBS中の5 mM EDTAで37°Cで4時間インキュベートし、鉗子を使用して無傷の表皮シートを真皮から慎重に分離します。</li>
			<li>組織をPBS中の4%ホルムアルデヒド中で室温(RT)で少なくとも72時間固定し、適切な抗体を使用してBrdU検出に進みます。</li>
			<li>蛍光/共焦点顕微鏡を使用して、組織ホールマウントの調製前の異なる時間における光制御および光線力学処理を含む、各実験条件におけるLRCを同定および定量します(前述の詳細19,20)。 注意: 固定された表皮シートは、0.02%アジ化ナトリウムを含むPBSで4°Cで最大3か月間保存できます。固定表皮シートは、標準的な組織学的切片手順に従って、必要なタンパク質の免疫局在化に使用できます。</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>2. マウス皮膚における非致死性ROSレベルの一過性産生の誘導
注:マウスの皮膚で非致死的なROSレベルの一時的な生成を誘発するために、内因性光増感剤PpIXの前駆体を使用した光線力学的治療、この場合はメチルアミノレブリン酸(mALA)、および赤色光が使用されます。
<ol><li>背中の皮膚の発毛を誘導するための一時的なROS産生をオンにするには、セクション1.1に示すように動物を準備します。<ol><li>右部に~25mgのmALAを局所クリーム(材料表)の形で塗布し、左側を個人差のない内部統制として保ちます。暗所で2.5時間インキュベートし、余分なクリームをPBSで完全に洗い流します。麻酔の深さを確認するには、完全に回復するまで10分ごとに動物を監視します。 注:背中の皮膚でのPpIXの生成は、青色光(407 nm)励起下での赤色蛍光によってその場でテストする必要があります。</li>
		<li>動物に麻酔をかけます。</li>
		<li>背中の皮膚全体に適切な赤色光源(材料表)を照射し、総線量は2.5〜4 J / cm2です。完全に回復するまでマウスを電気毛布の上に置き、手順1.1.3の説明に従って続行します。 注意: 放射照度は、光源と組織の間の距離を操作して調整し、電力エネルギーメーター(材料表)を使用して測定する必要があります。実験は、各動物の独立した剃毛領域のいずれかで完全な発毛が観察されたときに終了したと見なされます。全体の手順はたった1回の写真治療を含みます。</li>
	</ol></li>
	<li>2度の 熱傷病変の治癒改善のために一時的なROS産生をオンにするには、セクション1.2に示すように動物を準備します。<ol><li>~25 mgのmALAを局所クリームの形で、約4 mmの隣接組織を含む火傷した表面に沿って塗布します。暗所で2.5時間インキュベートし、余分なクリームをPBSで完全に洗い流します。麻酔の深さを確認するには、完全に回復するまで10分ごとに動物を監視します。</li>
		<li>動物に麻酔をかけます。</li>
		<li>背中の皮膚全体に適切な赤色光源を照射し、総線量は2.5〜4 J / cm2です。完全に回復するまでマウスを電気毛布の上に置き、手順1.2.4の説明に従って続行します。 注:各動物の実験手順は、完全な火傷の治癒が観察されたときに終了したと見なされます。全体の手順はたった1回の写真治療を含みます。</li>
	</ol></li>
	<li>尾部皮膚における一過性のROS産生をオンにするには、セクション1.3に示すようにマウスを準備し、背部組織領域全体に局所クリームの形で~25 mgのmALAを塗布し、背中の皮膚についてはセクション2.1の説明に従って進めます。動物の安楽死の24時間、48時間、または72時間前に写真処理と対応する光制御を実行し、尾の皮膚全体のマウントをさらに抽出します。 注:すべての実験デザインにおいて、抗酸化性ROSスカベンジャーを使用してプロセスのROS依存性をアッセイします(例:.、mALA治療の5日前からPBS、pH 7.2の20 mg / mL溶液の腹腔内注射による100 mg / kg体重のN-アセチルシステインの毎日の接種、または、代わりに、50%エタノール中の100 mg / mLアスコルビン酸の2回の投与、 30分間間隔をあけて、mALA処置と赤色光照射との間の時間間隔で皮膚に局所適用した)。</li>
</ol>3.皮膚のROS検出
<ol><li>ヒドロエチジンを用いた光線力学処理後の尾部皮膚におけるROS産生のEx-vivo評価 注:ヒドロエチジンは、ROSと特異的に反応して蛍光色素2-ヒドロキシエチジウム(hET)を生成する非蛍光分子です。<ol><li>セクション1.3.3に記載されているように得られた尾の皮全体を、PBS溶液(対照サンプル)またはさらに2 mM mALA(光線力学的処理サンプル)を含む5 mM EDTA中で37°Cで3時間インキュベートします。</li>
		<li>いずれの場合も、ジメチルスルホキシド(DMSO)中の25 mg/mLストックからヒドロエチジンを最終濃度3.2 μMまで添加し、室温で暗所で1時間インキュベートします。</li>
		<li>尾部皮膚サンプルを指先でガラス表面上に伸ばし、10 J/cm2 フルエンスで636 nmの赤色光を照射します。</li>
		<li>すぐに表皮を真皮から分離し、セクション1.3.3で説明されているように表皮シートを固定します。</li>
		<li>緑色の励起光を用いて蛍光/共焦点顕微鏡でhETの赤色発光を評価し、高品質の画像を撮影して、さらなる分析を進めます。 注:hET自動酸化のネガティブコントロールとして、光線力学的治療がない場合の組織サンプルのhET染色を使用してください。</li>
	</ol></li>
	<li>発毛誘導と熱傷治癒と光線力学治療後の背部皮膚におけるROS産生のin vivo検出 注:このステップは、細胞内エステラーゼ酵素による切断後、ROSと特異的に反応して2',7'-ジクロロフルオレセイン(DCF)蛍光色素を与える細胞透過性非蛍光化合物である2',7'-ジクロロジヒドロフルオレセインジアセテート(DHF-DA)を使用して実行されます。<ol><li>発毛の誘導(セクション1.1)または火傷の治癒(セクション1.2)のために準備された動物を使用してください。局所mALAクリーム治療(セクション2.1および2.2を参照)の直前に、すべてのターゲットコントロール/治療された皮膚領域にDHF-DAの50%エタノール中の1 mg / mLの100 μLを局所的に分注し、皮膚に材料を完全に吸収させ、局所mALAクリームの塗布を進めます。</li>
		<li>処理した動物を暗所で4時間インキュベートし、局所mALAクリームをPBSで皮膚から完全に洗い流し、100μLのDHF-DA溶液の2回目の用量を皮膚に分注します。麻酔の深さを確認するには、完全に回復するまで10分ごとに動物を監視します。</li>
		<li>処理した動物を暗所で50分間インキュベートし、麻酔をかけ、LEDランプを使用して636nmの赤色光の2.5〜4 J / cm2 の範囲のフルエンスを背中の皮膚全体に照射します。</li>
		<li>照射直後、in vivoイメージングシステムを用いて皮膚に発生したROSレベルを評価します(材料表)。フィルターボックスを445-490 nm励起と515-575 nm発光に設定し、高品質の画像をキャプチャして、さらなる分析に進みます。 注:DHF-DA自動酸化のネガティブコントロールとして、光線力学的治療がない場合の組織サンプルのDHF-DA染色を使用してください。</li>
	</ol></li>
</ol>

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</ol>

この作業で説明されている手順のすべての商用アプリケーションは、EC、MIC、およびJEによって作成され、商業的利用のためにDerma Innovate SLにライセンス供与されたCSIC-UAM特許(EP2932967A1)によって保護されています。JEとJJMは、Derma Innovate SLのアドバイザリーポジションを持っています。

ここでは、マウス皮膚における生体内の内因性ROS産生を一過性に活性化させ、生理的効果を発揮する方法論を提示する。この方法論は、内因性光増感剤PpIXの制御された局所刺激を誘導するための光力学的手順に基づいている(図1B)。この実験的アプローチは、in vivo実験システムでROS生物学を研究するための興味深いツールであり、外部ROS源(通常は過酸化水素)を使用し、組織/サンプルでのROSの制御された局所的な産生を可能にする方法論よりも大きな進歩を構成します。
アミノレブリン酸ベースの前駆体が細胞内のPpIXの蓄積を促進するために過剰に投与されることを考えると、この方法論の重要なステップは、損傷閾値を下回るが強い刺激効果を示す組織内のROSレベルの一時的な産生を誘発するための適切な光線量の確立である。現在、細胞や組織で産生されるあらゆる種類のROSの正確な量を直接定量する技術はありません。私たちの方法論では、所与の光線量、産生されるROSの正確な量、および所与の生物学的効果(例えば、細胞死または細胞増殖)との間の直接的な相関...

活性酸素種(ROS)は、分子状酸素を化学的に還元して水を形成した結果であり、一重項酸素、スーパーオキシドアニオン、過酸化水素、およびヒドロキシルラジカル1,2,3が含まれます。ROSは、その非常に化学的反応性のために非常に短い寿命を有する。好気性生物では、ミトコンドリアの好気性呼吸(電子伝達系)の主要な漏出性副産物として、ROSが細胞内に偶然形成されます。細胞内の高レベルのROSの一時的な蓄積は、タンパク質、脂質および糖の不可逆的な不活性化およびDNA分子における突然変異の導入を引き起こす可能性のある酸化ストレス状態をもたらす2,3,4,5。細胞、組織、および生物全体における酸化的損傷の漸進的な蓄積は、時間とともに着実に増加し、細胞死プログラムの誘導、いくつかの病状、および老化プロセスに関連しています2,3,4,6。
好気性生物は、細胞や組織における過剰なROS蓄積に対処するための効率的な分子機構を着実に進化させてきました。これらのメカニズムには、分子状酸素と過酸化水素へのスーパーオキシドラジカル変異を触媒するスーパーオキシドジスムターゼ(SOD)タンパク質ファミリーのメンバー、および抗酸化プールを使用するさまざまなカタラーゼとペルオキシダーゼ(グルタチオン、NADPH、ペルオキシレドキシン、チオレドキシン7,8)が含まれますその後の過酸化水素の水および分子状酸素への変換を触媒します。
しかし、いくつかの報告は、増殖、分化、移動性などの重要な細胞機能を調節する分子回路の重要な構成要素としてのROSの役割を支持しています2,3,4。この概念は、リポキシゲナーゼ、シクロオキシゲナーゼ、NADPHオキシダーゼなど、好気性生物における専用のROS産生メカニズムの初期同定と特性評価によってさらに裏付けられています9,10。この意味で、ROSは脊椎動物の胚発生中に積極的な役割を果たし11、12、13、ショウジョウバエの造血前駆細胞の分化プログラム14、ゼブラフィッシュの治癒誘導、アフリカツメガエルの尾の再生など、さまざまな実験系で報告されています15.哺乳類では、ROSはニューロスフェアモデルにおける神経幹細胞の自己複製/分化能16および結腸直腸癌開始時の腸幹細胞機能の調節解除に関与しています17。皮膚では、ROSシグナル伝達は表皮分化と皮膚幹細胞ニッチおよび毛包成長サイクルの調節に関連しています18,19。
この観点から、正常状態または病理学的状態の両方における生物学的システムにおけるROSの生理学的役割を決定するための主要な実験的制限は、細胞および組織におけるこれらの分子の制御された産生を誘導するための適切な実験ツールの欠如であり、それらの生理学的産生に正確に類似しています第二のシグナル伝達メッセンジャーとして。現在、ほとんどの実験的アプローチは、主に過酸化水素の形での外因性ROSの投与を含む。我々は最近、内因性光増感剤プロトポルフィリンIX(PpIX;例えば、アミノラエブリン酸またはそのメチル誘導体メチルアミノレブリン酸)の前駆体を投与し、さらに赤色光を試料に照射して細胞内分子状酸素からのROSのその場形成を誘導することに基づいて、マウス皮膚における内因性ROSの一過性の非致死性in vivo産生をオンにする実験的アプローチを実施した(図1).この光線力学的手順は、常在する幹細胞ニッチを刺激するために効率的に使用され得、したがって、組織の再生プログラムを活性化し19、20、皮膚再生医療における新しい治療モダリティへの道を開く。ここでは、毛包19,21のバルジ領域における長期の5-ブロモ-2'-デオキシウリジン(BrdU)標識保持細胞(LRC)の数の増加、およびその後の一過性によって誘発される再生プログラムの活性化(発毛および火傷治癒プロセスの加速)として測定される幹細胞ニッチの刺激の代表例を示すプロトコルの詳細な説明を提示します。 C57Bl6マウス系統の皮膚における非致死性ROS産生。

<table><tbody><tr><td>2&prime;,7&prime;-ジクロロフルオレシンジアセテート</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D6883-50MG</td><td></td></tr><tr><td>5'-ブロモ-2'-脱酸素ウリジン</td><td>ΣAldrich</td><td>B5002-500MG</td><td></td></tr><tr><td>抗ブロモデオキシウリジン-フルオレセイン</td><td>ロシュ</td><td>11202693001</td><td></td></tr><tr><td>脱毛クリーム(例:Veet)</td><td>Veet</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dihydroethidium</td><td>Sigma Aldrich</td><td>37291-25MG</td><td></td></tr><tr><td>In Vivoイメージングシステム、例えば、局所クリームの形でのIVIS Lumina 2</td><td>Perkin Elmer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>mALA、例えば、METVIX Crema 160 mg/g</td><td>Galderma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>パワーエネルギーメーター(例:ThorLabs Model PM100D)</td><td>ThorLabs</td><td></td><td></td></tr><tr><td>赤色光源、例えば、636 nm Aktilite LEDランプ</td><td>Photocure ASA</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

切り替え可能なプロトポルフィリンix依存性活性酸素種のin situ光生成によるマウス皮膚における幹細胞ニッチの刺激と組織再生

Stimulation of Stem Cell Niches and Tissue Regeneration in Mouse Skin by Switchable Protoporphyrin IX-Dependent Photogeneration of Reactive Oxygen Species In Situ

ここでは、マウス皮膚において内因性活性酸素種(ROS)の切り替え可能なin vivo光生成を誘導するためのプロトコルについて述べる。この一過性のROSのin situ産生は、幹細胞ニッチにおける細胞増殖を効率的に活性化し、熱傷治癒および毛包成長プロセスの促進を通じて強く現れる組織再生を刺激する。このプロトコルは、内因性光増感剤プロトポルフィリンIXの前駆体で組織を処理し、さらに厳密に制御された物理化学的パラメータの下で組織に赤色光を照射する調節可能な光線力学治療に基づいています。全体として、このプロトコルは、ROS生物学を分析するための興味深い実験ツールを構成します。

マウスの背中と尾の皮膚にmALA前駆体を局所投与すると、青色光(407 nm)励起下でのこの化合物の赤みがかったピンク色の蛍光によって示されるように、組織全体、そして顕著なことに毛包にPpIXが有意に蓄積されます(図2A、C)。その後、2.5−4 J/cm 2のフルエンスで赤色光(636 nm)を治療した組織に照射すると、組織、特に毛包のバルジ領域におけるROSの一時的な産生が促進されます(図2B、D)。
in vivoでマウスの皮膚で非致死性ROS産生をオンにすると、光治療の2日後に毛包のバルジ領域にある体性幹細胞に分類されるLRCの数が大幅に増加します(図3、左パネル)。特に、LRC数の増加は一過性であり、治療後6日で正常なレベルに戻ります(図3、右パネ...

このプロトコルの目的は、マウスの皮膚で非致死レベルの活性酸素種(ROS)の一時的なin vivo産生を誘導し、組織内の生理学的応答をさらに促進することです。

切り替え可能なプロトポルフィリンIX依存性活性酸素種のin situ光生成によるマウス皮膚における幹細胞ニッチの刺激と組織再生

Here, we describe a protocol to induce switchable in vivo photogeneration of endogenous reactive oxygen species (ROS) in mouse skin. This transient ...

私たちの方法論は、in vivo で組織内の内因性活性酸素種または ROS 産生の一時的な活性化を誘導するための信頼性の高い実験ツールを提供する最初の方法論です。私たちの方法論は、基本的に赤色光源を使用して、皮膚の生理学的刺激性ROSレベルの一貫した生成をもたらす、堅牢でユーザーフレンドリーで非侵襲的な手順を提供します。皮膚におけるROSの生理学的誘導が組織幹のニーズを達成するにつれて、良好な治癒と髪の成長を含む皮膚再生療法の方法論をさらに適用しました。ROSの生物学とシグナル伝達は、現在、研究の温床となっています。in vivoでのROS機能を調査する際の主な制限は、制御された内因性ROS産生を誘導するための適切なツールが不足していることです。当社の方法論はユーザーフレンドリーで簡単ですが、ランプ、IV、ISなどのすべてのデバイスは、適切に校正する必要があります。重要な化学前駆体は新鮮でなければならず、すべての手順またはプロトコルに厳密に従う必要があります。第2休止期のマウスの背側皮膚の発毛を誘導するために、約50日目の出生後同腹子メイトC57ブラックシックスマウスでペダル反射に対する反応の欠如を確認した後、カミソリと脱毛クリームを使用して、各マウスの背面から皮膚の2つの独立した隣り合わせの領域を取り除きます。数分後、PBSでクリームを取り除き、各動物の対照および治療された背側の皮膚領域の高解像度画像を毎日取得することにより、毛包の成長を記録します。第2休止期にマウスの背側皮膚に第2度の熱傷病変を作製させるには、マウスの背面から毛を取り除きます。断面1cmの真鍮棒を沸騰したお湯で摂氏95度に予熱し、マウスの皮膚の中央部に5秒間棒を塗布します。火傷発生直後に、動物に1ミリリットルの生理液を腹腔内注射して脱水症を防ぎ、マウスを24時間回復させてから治療に進みます。BrdU標識保持細胞またはLRCを作製するためには、10日齢または14日齢の同腹仔を1日1回、4日間連続して腹腔内に注入し、体重1キログラムあたり50ミリグラムのBrdUをPBSに注入します。標識段階の後、処理を適用する前にマウスを50〜60日間発育させます。発毛分析のためにマウスの皮膚における非致死性活性酸素種またはROSレベルの一過性の産生を誘導するには、ベースラインの発毛画像を取得した後、約25ミリグラムのmALAクリームを右側の剃毛された皮膚領域に局所的に塗布し、動物を2.5時間暗所に置きます。光増感剤治療期間の終了時に、PBSで余分なクリームを徹底的に除去し、青色光励起下での赤色蛍光発現によりPP9のin situ産生を確認した後、背中の皮膚全体に適切な赤色光源を照射し、合計2.5〜4ジュール/平方センチメートルの線量を照射します。次に、マウスを電気毛布で回復させ、完全に横臥になるまで監視してから、動物をケージに戻します。第2度の熱傷治癒のために一過性のROS産生をオンにするには、右側の熱傷面と隣接する組織約4ミリメートルに沿って約25ミリグラムのmALAクリームを塗布し、示されているように動物を2.5時間暗闇に置きます。クリームを取り除いた後、背中の皮膚全体に照射し、示されているようにモニタリングしながらマウスが回復するのを待ちます。尾皮に一過性のROS産生を誘導するには、BrdUで処理したマウスの背側組織領域全体に約25ミリグラムのmALAクリームを塗布し、実証されているように尾の背側皮膚に照射します。マウスを安楽死させた後、BrdU検出のために尾皮を採取します。メスを使って各動物から尻尾を採取し、縦方向にまっすぐに切開し、背骨から一枚で皮膚全体を剥がします。皮をむいた皮膚片を5ミリモルのEDTAとPBS、および5ミリリットルのチューブで摂氏37度で4時間インキュベートし、鉗子で真皮から表皮の無傷のシートを慎重に分離できるようにします。分離した組織を4%ホルムアルデヒドとPBSに室温で少なくとも72時間固定します。次に、固定組織を目的の蛍光標識抗体で標識してから、標準プロトコルに従って蛍光共焦点顕微鏡で組織を視覚化し、各実験条件下でLRCを同定および定量します。ROS産生のex vivo評価では、実証されているようにマウスの尾皮片を採取した後、対照組織と5ミリモルのEDTAおよびPBSのみをインキュベートし、2ミリモルのmALAを添加したEDTAの光線力学処理サンプルをインキュベートします。次に、組織の各セットにヒドロエチジンを最終濃度3.2マイクロモルまで添加し、すべてのサンプルを室温の暗所で1時間インキュベートします。インキュベーションの最後に、指先を使用して尾皮サンプルをガラス表面上に伸ばし、処理された組織に1平方センチメートルあたり10ジュールのフルエンスで636ナノメートルの赤色光を照射します。治療終了時には、すぐに表皮を真皮から分離し、表皮シートを4%ホルムアルデヒドとPBSで室温で少なくとも72時間固定します。.固定の最後に、緑色の励起光を用いた蛍光顕微鏡で赤色の2-ヒドロキシエチジウムの発光を評価し、高品質な画像の取得を可能にします。赤色光照射直後の背側皮膚におけるROS産生のin vivo検出のために、DH-FDA1ミリリットルあたり1ミリグラムの100マイクロリットルと50%エタノールをすべての標的制御および治療皮膚領域に適用します。mALA前駆体をマウスの背中と尾の皮膚に局所投与すると、青色光励起下でのこの化合物の赤みがかったピンク色の蛍光が示すように、組織全体、特に毛包にプロトポルフィリンIXが有意に蓄積します。その後、処理された組織に赤色光を照射すると、組織内、特に毛包の膨らみ領域におけるROSの一時的な産生が促進されます。in vivoでマウスの皮膚で非致死性のROS産生をオンにすると、光線力学治療の2日後に毛包の膨らみ領域のLRCの数が大幅に増加します。特に、LRC数の増加は一過性であり、治療後6日で正常なレベルに戻ります。一過性のROS産生は、第2度の火傷後の皮膚治癒を促進します。損傷した皮膚の漸進的な減少の定量化は、創傷治癒促進プロセス組織の堅牢性と統計的有意性を示しています。同様に、非致死性のROSレベルは、毛包が成長刺激に反応しにくい段階である2回目の協調休止期に剃毛した後、発毛を強く促進します。さらに、光処理後のROS産生も、抗酸化化合物の適用により大幅に減少します。青色光励起下での赤色蛍光発現によるPP IXのin situ産生は、慎重に確認する必要があります。ROSの生成を誘導するには、赤色光源の放射照度が正しく確立されている必要があります。対組織および総光量。ROS導入後、現在の生化学的および細胞および分子生物学的手法を使用して、収集されたサンプルを分析し、組織の動的生理学的応答を評価することができます。私たちの方法論は、in vivo 組織における内因性 ROS の一過性産生の生理学的影響を調査するための強力なツールを提供します。これは、ROSシグナル伝達の分野の研究者にとって非常に役立つ可能性のある新しい実験的アプローチです。

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