Name: マウス副腎のマルチプレックス免疫染色のためのマイクロウェーブおよび蛍光色素-Tyramide - 同じ宿主種からの非共役一次抗体を使用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-02-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: 学ぶマルチプレックス免疫染色法。マイクロウェーブによる抗体剥離と蛍光色素-Tyramideを用いて、マウス副腎組織で同じ宿主種由来の非共役一次抗体を使用した多重標識を実現します。

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この作業は、NIH R00 HD00 HD032636 によってサポートされています。

1. 第1抗体で染色する
<ol><li>脱ワックスおよびリハイドレートFFPEスライドは、以下の各ステップに5分ずつ割り当て済み:キシレンまたは同等の試薬3x、100%エタノール2x、95%エタノール1x、70%エタノール1x、50%エタノール1x、蒸留水2倍。 注:スライドは、最後のステップに取り付けるまで、この再水和ステップから始めて湿った状態を保つ必要があります。</li>
	<li>任意抗原検索のために、8分間の沸騰クエン酸ナトリウム溶液(10mM、pH = 6.0)の275mLにスライドを置きます。溶液を沸騰させ続けるには、スライドを14 x 9.5 x 9 cm3(W x L x H)ピペットチップボックスの底に平らに置き、蓋をして70%のパワーで溶液を電子レンジで700W電子レンジで8分間置きます。その後、電子レンジからピペットチップボックスを取り出し、蓋を開け、溶液を室温(RT)で少なくとも20分間冷やします。</li>
	<li>スライドをPBST(0.1%ポリソルベート20/80のリン酸緩衝生理食塩水)を含むCoplin瓶に移します。PBSTで5分3倍洗浄します。すぐに次のステップに進まない場合は、このステップでスライドをRTのCoplin jarに数時間、または4°Cで1〜2日間保存します。</li>
	<li>ブロッキング溶液を調製するには、二次抗体の宿主種の正常血清をブロッキング試薬として用いる。他の市販ブロッキング試薬も使用できる。本研究で提示された研究に用いた正常血清を用いた場合、PBSTの4.9 mLに100μLの正常なロバ血清を加える。ブロッキング溶液は、4°Cで最大3日間保存できます。</li>
	<li>ブロッキングの場合は、スライドからPBSTを振り払い、十分なブロッキング溶液で素早くカバーします。30分間加湿チャンバーでRTでスライドをインキュベートします。</li>
	<li>ブロッキング溶液を使用して一次抗体溶液(2回のスライドで500μL)を調製し、一次抗体を所望の濃度に希釈する。溶液は、使用するまで氷の上に保存する必要があります。<ol>
<li>3βHSDの場合、498 μLのブロッキング溶液に3βHSDの2μLを加えます。</li>
		<li>THの場合、499 μLのブロッキング溶液に0.5μLのTH抗体を添加します。</li>
		<li>β-カテニンの場合、499 μLのブロッキング溶液に1μLのβカテニン抗体を添加します。</li>
		<li>20αHSDの場合、ブロッキング溶液の499 μLに20αHSD抗体の1μLを加えます。</li>
		<li>CYP2F2の場合、CYP2F2抗体の2μLを498μLのブロッキング溶液に添加します。</li>
	</ol></li>
	<li>一次抗体をスライドから遮断液を振り払い、それらを十分な一次抗体溶液で素早く覆すことで、一次抗体をインキュベートする。4°Cで一晩加湿チャンバー内のスライドをインキュベートする。インキュベーション中、スライドは、乾燥を防ぐためにパラフィンフィルムの小片で覆われてもよい。</li>
	<li>翌朝、5分3倍のPBSTでスライドを洗います。</li>
	<li>ビオチン化二次抗体を所望の濃度(例えば、ロバ抗マウス抗体またはロバ抗ウサギ抗体の1μL)を499μLのブロッキングに希釈するブロッキング溶液(2つのスライドのための500μL)を使用して二次抗体溶液(2つのスライドのための500μL)を調製するソリューション)。溶液は、使用するまで氷の上に保存する必要があります。</li>
	<li>スライドからPBSTを振り払い、十分な二次抗体溶液で素早く覆うことによって、第2の抗体をインキュベートする。RTで1時間の加湿チャンバーでスライドをインキュベートします。 注:内因性ビオチンが懸念される場合は、ビオチン化二次抗体の代わりにペルオキシダーゼ結合二次抗体を使用してください。ステップ1.10でペルオキシダーゼ結合二次抗体を使用する場合は、ステップ1.14へジャンプする。</li>
	<li>5分3倍のPBSTでスライドを洗います。</li>
	<li>ワサビ酸ペルオキシダーゼ結合ストレプトアビジン(SA-HRP)溶液(2回のスライドで500 μL)を調製し、0.5 μLのSA-HRPをPBSの499μLに加えます。最終濃度は1μg/mLです。</li>
	<li>SA-HRP溶液を使用してインキュベートします。スライドからPBSTを振り払い、十分なSA-HRPソリューションでスライドを素早くカバーします。RTで0.5時間の加湿チャンバーでスライドをインキュベートします。</li>
	<li>5分3倍のPBSTでスライドを洗います。</li>
	<li>フッ素フォア・チラミド溶液を、メーカーの指示に従って希釈バッファーで希釈液(例えば、5 μLのフルオロフォア・チラミドを496μLの希釈バッファーに希釈)して希釈液を希釈して調製します。</li>
	<li>スライドからPBSTを振り払い、十分な蛍光体-腸溶性溶液でスライドを素早く覆すことで、フルオロフォア・チラミドでシグナル開発を行います。RTで1分間加湿チャンバーにインキュベートします。インキュベーション時間は、所望の蛍光強度を得るように調整されてもよい。PBSTを含むCoplinジャーにスライドを転送して反応を停止します。3分2xのPBSTでスライドを洗います。</li>
	<li>シグナルは、蛍光顕微鏡下で速やかにチェックして、この段階で結果を確認してもよい。カバースリップが使用されていない場合は、サンプルを湿らせたままに、各セクションにグリセロール:PBS(1:1)のドロップを適用します。3分2xのPBSTでスライドを洗います。スライドは、次のステップに移動する前に、3日間PBSTで数日間保存され得る。</li>
</ol>2. 最初の抗体を取り除く
<ol><li>275 mLの沸騰したクエン酸ナトリウム溶液(10mM、pH = 6.0)に少なくとも8分間置きます。スライドを14 x 9.5 x 9 cm3(W x L x H)ピペットチップボックスの底に平らに置き、700Wの電子レンジで70%の電力で溶液をマイクロウェーブして沸騰させます。より長い剥離時間が好ましい場合は、常にスライドをバッファー溶液に浸し続けるために、沸騰したクエン酸ナトリウム溶液を使用して緩衝液を上に置く必要があるかもしれません。電子レンジからピペットチップボックスを取り出し、蓋を開け、溶液をRTで少なくとも20分間冷やします。</li>
	<li>スライドをPBSTを含むコプリン瓶に移します。PBSTで5分3倍洗浄します。すぐに実行しない場合は、次のステップをRTで数時間または4°Cで1〜2日間COPリンジャーに保存します。</li>
</ol>3. 第2抗体を含む染色
<ol><li>ブロッキング ステップから開始し、ステップ 1.5 からステップ 1.14 の同じ手順に従います。シグナル発生ステップ(ステップ1.15およびステップ1.16)で、異なる蛍光スペクトルで蛍光体-tyramideを使用します。 注: マルチプレックス染色を可能にするために、この方法を使用してスライドを複数回削除できます。最後の抗体は、レポーターとして蛍光体-腸化剤を必要としません。フルオロフォア結合二次抗体は、最後の一次抗体からのシグナルを示すために使用されるかもしれません。</li>
	<li>核カウンター染色が必要な場合は、RTで2 μg/mL 4'、6-ジアミジノ-2-フェニリンドール(DAPI)またはヘクスト溶液を1分間インキュベートします。その後、3分2倍のPBSTでスライドを洗います。</li>
</ol>4. 蛍光顕微鏡を用いた画像診断による信号検出
<ol><li>免疫蛍光に適した取り付け媒体のドロップでカバースリップを取付けます。</li>
	<li>イメージングのために、蛍光顕微鏡を使用して、各蛍光チャネルのシグナルを検出します。核染色(DAPI)チャネルと4xレンズから始め、スライド上の組織を見つけます。</li>
	<li>イメージング用の10倍レンズに切り替えます。露光時間(300ミリ秒)と光源の強度(80%の強度)を調整します。信号が明るすぎる、または暗すぎる場合は、これらの設定を調整します。ステージを動かさずに各チャンネルの写真を撮ります。各チャンネルに再焦点を当てる必要があります。顕微鏡ソフトウェアまたはImageJ(imagej.nih.gov/ij/)を使用して、各チャンネルの画像をマージします。</li>
</ol>

<ol><li>Lewis Carl, S. A., Gillete-Ferguson, I., Ferguson, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+indirect+immunofluorescence+procedure+for+staining+the+same+cryosection+with+two+mouse+monoclonal+primary+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+and+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">An indirect immunofluorescence procedure for staining the same cryosection with two mouse monoclonal primary antibodies.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 41 (8), 1273-1278 (1993).</li>
<li>Lan, H. Y., Mu, W., Nikolic-Paterson, D. J., Atkins, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel%2C+simple%2C+reliable%2C+and+sensitive+method+for+multiple+immunoenzyme+staining%3A+use+of+microwave+oven+heating+to+block+antibody+crossreactivity+and+retrieve+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+and+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">A novel, simple, reliable, and sensitive method for multiple immunoenzyme staining: use of microwave oven heating to block antibody crossreactivity and retrieve antigens.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 43 (1), 97-102 (1995).</li>
<li>Tornehave, D., Hougaard, D. M., Larsson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microwaving+for+double+indirect+immunofluorescence+with+primary+antibodies+from+the+same+species+and+for+staining+of+mouse+tissues+with+mouse+monoclonal+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Histochemistry+and+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Microwaving for double indirect immunofluorescence with primary antibodies from the same species and for staining of mouse tissues with mouse monoclonal antibodies.</a> Histochemistry and Cell Biology. 113 (1), 19-23 (2000).</li>
<li>Kim, M., Soontornniyomkij, V., Ji, B., Zhou, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((System-wide+immunohistochemical+analysis+of+protein+co-localization%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">System-wide immunohistochemical analysis of protein co-localization.</a> PLoS One. 7 (2), e32043(2012).</li>
<li>Bolognesi, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+Staining+by+Sequential+Immunostaining+and+Antibody+Removal+on+Routine+Tissue+Sections%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+and+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">Multiplex Staining by Sequential Immunostaining and Antibody Removal on Routine Tissue Sections.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 65 (8), 431-444 (2017).</li>
<li>Toth, Z. E., Mezey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+visualization+of+multiple+antigens+with+tyramide+signal+amplification+using+antibodies+from+the+same+species%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+and+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">Simultaneous visualization of multiple antigens with tyramide signal amplification using antibodies from the same species.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 55 (6), 545-554 (2007).</li>
<li>Buchwalow, I., Samoilova, V., Boecker, W., Tiemann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+immunolabeling+with+antibodies+from+the+same+host+species+in+combination+with+tyramide+signal+amplification%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Histochemica%22%5BJournal%5D)">Multiple immunolabeling with antibodies from the same host species in combination with tyramide signal amplification.</a> Acta Histochemica. 120 (5), 405-411 (2018).</li>
<li>Bauer, M., Schilling, N., Spanel-Borowski, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limitation+of+microwave+treatment+for+double+immunolabelling+with+antibodies+of+the+same+species+and+isotype%5BTitle%5D)+AND+%22Histochemistry+and+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Limitation of microwave treatment for double immunolabelling with antibodies of the same species and isotype.</a> Histochemistry and Cell Biology. 116 (3), 227-232 (2001).</li>
<li>Pirici, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibody+elution+method+for+multiple+immunohistochemistry+on+primary+antibodies+raised+in+the+same+species+and+of+the+same+subtype%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+and+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">Antibody elution method for multiple immunohistochemistry on primary antibodies raised in the same species and of the same subtype.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 57 (6), 567-575 (2009).</li>
<li>Glass, G., Papin, J. A., Mandell, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SIMPLE%3A+a+sequential+immunoperoxidase+labeling+and+erasing+method%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+and+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">SIMPLE: a sequential immunoperoxidase labeling and erasing method.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 57 (10), 899-905 (2009).</li>
<li>Zhang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fully+automated+5-plex+fluorescent+immunohistochemistry+with+tyramide+signal+amplification+and+same+species+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Investigation%22%5BJournal%5D)">Fully automated 5-plex fluorescent immunohistochemistry with tyramide signal amplification and same species antibodies.</a> Laboratory Investigation. 97 (7), 873-885 (2017).</li>
<li>Paul, A., Laufer, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+biotin+as+a+marker+of+adrenocortical+cells+with+steroidogenic+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Endogenous biotin as a marker of adrenocortical cells with steroidogenic potential.</a> Molecular and Cellular Endocrinology. 336 (1-2), 133-140 (2011).</li>
<li>Bussolati, G., Gugliotta, P., Volante, M., Pace, M., Papotti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retrieved+endogenous+biotin%3A+a+novel+marker+and+a+potential+pitfall+in+diagnostic+immunohistochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Histopathology%22%5BJournal%5D)">Retrieved endogenous biotin: a novel marker and a potential pitfall in diagnostic immunohistochemistry.</a> Histopathology. 31 (5), 400-407 (1997).</li>
<li>Wang, H., Pevsner, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+endogenous+biotin+in+various+tissues%3A+novel+functions+in+the+hippocampus+and+implications+for+its+use+in+avidin-biotin+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+and+Tissue+Research%22%5BJournal%5D)">Detection of endogenous biotin in various tissues: novel functions in the hippocampus and implications for its use in avidin-biotin technology.</a> Cell and Tissue Research. 296 (3), 511-516 (1999).</li>
</ol>

著者たちは開示するものは何もない。

多重免疫染色は、2種以上の抗原の細胞共局在を調べるのに有用である。この広く使用されている技術は、一次抗体が異なるレポーター(直接染色)と共役する際に説得力のある共局在化結果を与えます。しかし、直接染色は通常、一次抗体を検出するために結合された二次抗体を含む間接染色と比較して弱いシグナルを提供する。間接染色において、高品質の多重免疫染色結果は、二次抗体が異なる一次抗体を区別できるかどうかに依存する。抗体の交差反応性の可能性があるため、間接染色法を利用した多重染色は、異なる宿主種からの一次抗体によりより明確に見られる。Carlたちは、過剰な非結合IgG F(ab)断片を用いて抗体交差反応性を遮断するプロトコルを開発した1.同様の戦略は、F(ab)単量体抗マウス抗体を使用して、抗マウス二次抗体が組織内の内因性マウス免疫グロブリンを検出するのを防ぐ「マウスオンマウス」染色にも使用されています。しかし、このブロッキング法は時間がかかり、特に検出抗原が高存在度の場合は、前のステップから抗体を完全に遮断しない可能性があります2。
<p class=...

多重免疫染色では、結合された一次抗体を用いた直接染色は有益な結果を提供することができる。二次抗体を使用しない場合、直接染色法は抗体交差反応性からの偽の共局在化シグナルのリスクが低い。しかし、一次抗体上の共役レポーター(フルオロフォア、酵素)またはビオチンは、その将来の使用を制限する。あるいは、間接免疫染色は、通常、標識された二次抗体を有する非共役一次抗体を用いてより強いシグナルを提供する。理想的には、多重免疫染色に使用される非共役一次抗体は、抗体交差反応性を回避するために異なる宿主種から来るべきである。しかしながら、異なる宿主種からの一次抗体の適切な組み合わせは、必ずしも利用可能とは限らない。
望ましくない一次抗体と反応する二次抗体のリスクを排除するために、いくつかの方法が確立されている。一般的な方法の1つは、第2一次抗体1で染色する前に、第1次抗体複合体上の残りの結合エピトープを遮断するF(ab)単量体抗体の使用である。抗体ストリッピングは、ウェスタンブロットシートのストリップおよび再プローブと類似しており、3,3'-ジアミノベンジドテトラヒドロリド(DAB)2および蛍光性チラミド堆積物3等の検出可能なレポーター分子の沈着を剥離することなく、以前染色した抗体複合体を除去する。この方法では、異なる色のレポーター分子が同じスライド上で多重結果を示すことができます。また、多重染色は、抗体の前に堆積した層を完全に除去し、その後に他の抗体から取得した画像のアライメントによっても達成可能である4、5。これらの方法はすべて信頼性の高い結果を得ることができますが、各方法には制限があり、複雑な手順または特別なイメージングシステムが必要です。
本プロトコルは、一般に利用可能な緩衝液を用いて抗体ストリッピング法を適用することを示す。このプロトコルは、同じホスト種からの2つの未標識一次抗体を有するホルマリン固定パラフィン埋め込み(FFPE)マウス副腎セクションに対して多重免疫蛍光染色を行うために使用することができる。

<table><tbody><tr><td>褪色防止 実装 Medium</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1000</td><td></td></tr><tr><td>ビオチン化ロバ 抗マウス</td><td>JacksonImmuno</td><td>715-066-151</td><td>1:500 希釈</td></tr><tr><td>ビオチン化ロバ 抗ウサギ</td><td>JacksonImmuno</td><td>711-066-152</td><td>1:500 希釈</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>BioLegend</td><td>422801</td><td>2 &mu;g/mL 蒸留水中</td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>ECHO</td><td>Revolve 4</td><td></td></tr><tr><td>西洋わさびペルオキシダーゼ共役ストレプトアビジン</td><td>JacksonImmuno</td><td>016-030-084</td><td>1:1,000 希釈</td></tr><tr><td>電子レンジ、700 W</td><td>ゼネラル・エレクトリック</td><td>JEM3072DH1BB</td><td></td></tr><tr><td>マウス 抗CYP2F2</td><td>サンタクルーズ</td><td>SC-374540</td><td>1:250 希釈</td></tr><tr><td>マウス 抗 TH</td><td>サンタクルス</td><td>SC-25269</td><td>1:1,000 希釈</td></tr><tr><td>正常ロバ血清</td><td>JacksonImmuno</td><td>017-000-121</td> PBST <td></td></tr><tr><td>ウサギ抗 20&alpha の 2% 血清;HSD</td><td>Kerafast</td><td>EB4002</td><td>1:500希釈ウサギ</td></tr><tr><td>抗-3&β;HSD</td><td>TransGenic</td><td>KO607</td><td>1:250 希釈</td></tr><tr><td>Rabbit anti-TH</td><td>NOVUS</td><td>NB300-109</td><td>1:1,000 希釈</td></tr><tr><td>Rabbit anti-&β;-catenin</td><td></td><td>Abcam ab32572</td><td>1:500 希釈</td></tr><tr><td>ストレプトアビジン 西洋わさびペルオキシダーゼ (SA-HRP)</td><td>JacksonImmuno</td><td>016-303-084</td><td>1:1,000 希釈</td></tr><tr><td>TSA Cy3 チラミド</td><td>パーキンエルマー</td><td>SAT704B001EA</td><td>1:100希釈</td></tr><tr><td>TSAフルオレセインチラミド</td><td>PerkinElmer</td><td>SAT701001EA</td><td>1:100</td></tr></tbody></table>希釈

マウス副腎のマルチプレックス免疫染色のためのマイクロウェーブおよび蛍光色素-tyramide - 同じ宿主種からの非共役一次抗体を使用

Microwaving and Fluorophore-Tyramide for Multiplex Immunostaining on Mouse Adrenals &#8722; Using Unconjugated Primary Antibodies from the Same Host Species

免疫染色は、与えられたタンパク質の細胞発現パターンを示す生物医学研究で広く使用されている。多重免疫染色は、複数の一次抗体を使用して標識を可能にします。抗体の交差反応性を最小限に抑えるために、間接染色を用いた多重免疫染色には、異なる宿主種からの標識されていない一次抗体が必要です。しかしながら、異なる種抗体の適切な組合せは、必ずしも利用可能とは限らない。ここでは、ホルマリン固定パラフィン埋め込み(FFPE)マウス副腎切片に対する多重免疫蛍光に対して、同じ宿主種からの非標識一次抗体(例えば、この場合は両方の抗体がウサギ由来)を用いる方法を説明する。この方法は、抗原検索ステップで使用された同じ手順と試薬を用いて、前染色された一次抗体複合体の活性を取り除く。スライドは、一般的な免疫染色プロトコルを使用して第1一次抗体を染色し、その後にビオチン化二次抗体との結合ステップを行った。次に、フッ素動素を基質として、アビジン-ビオチンペルオキシダーゼシグナル現像法を用いた。第1次抗体複合体の免疫活性を、8分間のマイクロ波沸騰クエン酸ナトリウム溶液に浸漬して剥ぎ取った。不溶性の蛍光素体の沈着はサンプル上に残り、スライドを他の一次抗体で染色することができた。この方法は、ほとんどの偽陽性シグナルを排除しますが、抗体の交差反応性の背景が残る可能性があります。サンプルが内因性ビオチンで濃縮される場合、ペルオキシダーゼ結合二次抗体を使用してビオチン化二次抗体を置換し、回収された内因性ビオチンからの偽陽性を回避することができる。

その結果は、抗原検索ステップ1.2を含む記載の全工程で処理されたサンプルから得られた。ここで使用した全二次抗体はビオチン化された。フルオロフォア・チラミドは、第1および第2の一次抗体からのシグナルを開発するために使用された。画像は、FITCキューブ(緑色蛍光用)、TxREDキューブ(Cy3用)、およびDAPIキューブ(DAPI用)を備えた蛍光顕微鏡を使用して撮影した。
マイクロウェーブ媒介型ストリッピングにより、クロスリアクティブ性を排除します。 マウスFFPE副腎切片は、2つの一次ウサギ抗体を用いて染色した。ストリッピングなし (図 1A-C),TH のための二次抗体は 3βHSD(+) 部位をピックアップし、副腎皮質に赤信号を与えました (図1<strong...

同じ宿主種からの一次抗体を用いた多重免疫染色に対して、いくつかの異なる方法が確立されている。ここでは、ホルマリン固定パラフィン組み込みマウス副腎切片でのマルチプレックス免疫染色中の抗体クロス反応性を遮断するためのマイクロ波媒介抗体ストリッピングおよびフルオロフォア・チラミドの使用について説明する。

マウス副腎のマルチプレックス免疫染色のためのマイクロウェーブおよび蛍光色素-Tyramide - 同じ宿主種からの非共役一次抗体を使用

Immunostaining is widely used in biomedical research to show the cellular expression pattern of a given protein. Multiplex immunostaining allows labeling ...

免疫染色は、目的のタンパク質の位置を特定するために生物医学研究で広く使用されています。マルチプレックス免疫染色は、異なる一次抗体を使用して同じサンプル上の複数の標的を検出することができます。この方法の利点は、同じ宿主種からの2つ以上の非標識一次抗体を使用して免疫染色を可能にする抗体交差反応性を排除するために一般的に利用可能な緩衝液を使用することです。この手順のデモンストレーションは、大学院生のソフィア・ジェンと、私の研究室の客員研究員であるQiongxia Lyuです。染色前に、示されているように、各溶液に5分間浸漬したホルマリン固定パラフィン埋め込みスライドを脱ワックスし、水分補給します。2回目の蒸留水浸漬後、蓋付きピペットチップボックスの底に275ミリリットルのクエン酸ナトリウム溶液をスライドに入れ、700ワットの電子レンジに75%の電力で8分間置きます。処理の最後に蓋を開け、コップリン瓶に新鮮なPBSTを5分間洗浄してスライドを洗浄する前に、溶液を室温まで冷却します。非特異的結合部位を遮断するには、最後の洗浄後、各スライドから余分なPBSTを振り、適切なブロッキング溶液の十分な体積でスライドを覆う。加湿チャンバ内の室温で30分後、各スライドから過剰なブロッキング溶液を振り、各サンプルに目的の第1一次抗体の250マイクロリットルを加える。サンプルが乾燥するのを防ぐために、スライドはパラフィンフィルムの一部で覆われてもよい。加湿室で摂氏4度で一晩インキュベーションした後、スライドを新鮮なPBSTで3回洗浄して1回5分間洗浄します。余分なPBSTを振り払い、室温で加湿したチャンバーで1時間のインキュベーションのために適切な二次抗体溶液の250マイクロリットルで各スライドを素早く覆います。インキュベーションの最後に、スライドを示すように新鮮なPBSTで3回洗浄し、各スライドに250マイクロリットルの新鮮なレンサビジンワサビのペルオキシダーゼを加えます。室温で30分後、スライドを新鮮なPBSTで3回洗います。その後、余分なPBSTを振り払い、各スライドを250マイクロリットルの新鮮なフルオロフォア-チラミド溶液で覆います。1分後、新鮮なPBSTでスライドを沈下し、続いて新鮮なPBSTで3回の2分間の打ちを行います。最後の洗浄後、1対1のグリセロールからPBSへの溶液を数滴塗布し、蛍光顕微鏡による蛍光シグナルの有無を確認します。第1抗体複合体を取り除くために、抗体標識スライドを少なくとも8分間、クエン酸ナトリウム溶液を沸騰させる275ミリリットルに入れる。処理の最後に蓋を開け、溶液を室温まで冷たませてから、PBSTで3回PBSTで洗浄を5分間洗浄します。目的の第2の標的タンパク質を染色するには、示されているように非特異的結合を遮断した後、各サンプルを摂氏4度で250マイクロリットルの目的の第2一次抗体で標識する。翌朝、各スライドを適切な二次抗体溶液250マイクロリットルで覆う前に、1回の洗浄ごとに新鮮なPBSTでスライドを5分間5分間洗浄し、室温で1時間インキュベーションします。インキュベーションの最後に、スライドを示すように新鮮なPBSTで3回洗浄し、各スライドに250マイクロリットルの新鮮なレンサビジンワサビのペルオキシダーゼを加えます。目的の第2の標的タンパク質のシグナルを開発するために、3回のPBSTの使用後、異なる蛍光スペクトルでジラミドを結合したフルオロフォアでスライドを治療する。チラミド信号の発達を止めるには、スライドをPBSTに沈下する。その後、適切な核染料でサンプルを染色します。蛍光顕微鏡によるイメージングの場合、各核色素標識スライドをカバースリップに適切な取り付け媒体の滴で取り付けます。4Xの目的を使用して、スライド上の組織を見つけます。イメージングの目的を10Xに切り替え、光光源で100~400ミリ秒に調整します。その後、ステージを移動せずに各チャンネルの画像を取得します。各チャンネルの画像を結合して、多重蛍光画像を形成することができます。第1および二次抗体染色の間に剥がれなければ、チロシンヒドロキシラーゼの第2染色は、目的の第1標的タンパク質からのシグナルを拾い上げ、例えば副腎皮質内のこのサンプルで偽陽性のチロシンヒドロキシラーゼ染色を生じる。第1の免疫染色からワサビペルオキシダーゼ中の抗体交差反応性を除去するために、1分間および8分間のマイクロ波介在ストリッピングを行い、クリーンな二重染色結果をもたらす。陰性制御サンプルでは、有意な信号は拾われません。沸騰クエン酸バッファーでの 8 分間のストリッピングは、副腎で一般的に使用される多くの抗体に対する抗体交差反応性を排除するのにも十分です。いくつかのケースでは、弱い偽陽性シグナルはまだ検出可能であり、マイクロ波治療に20分の増加はまだ完全に抗体交差反応性を除去しない可能性があります。蛍光イメージングの間、チャネルを切り替える際にステージを動かさないことが重要です。ただし、各チャンネルの鮮明な画像を得るためにフォーカスを再取り付けする必要があるかもしれません。各チャンネルについて、露光時間を調整して、画像内の露出過大なピクセルや領域が存在しない信号が適切に露出されるようにしてください。染色手順の間、脱ワックスからスライドを水分補給し続けることが重要であり、スライドは同じストリッピング方法を数回使用して剥がして多重染色を可能にする。

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