2020年4月23日
このプロトコルの目標は、直接腹側テグメンタル領域受容体を操作して、第二次ドーパミン放出への寄与を研究することです。
このアプローチは、側坐核における特定の腹側被蓋領域、体性樹状突起受容体、および位相性ドーパミン放出の役割を解明するのに役立ちます。このアプローチの主な利点は、位相性ドーパミン放出に対する受容体機能制御に関する疑問を無傷の脳で解決できることです。炭素繊維微小電極とバイポーラ刺激装置の位置を最適化することは困難な場合があり、初心者へのアドバイスとして、背側線条体での記録を開始することがいくつかあります。
記録電極、参照電極、刺激電極など、複数のタイプの電極を使用および操作するため、これらの電極がいつ、どこに埋め込まれるかを視覚的にガイドすると役立ちます。ペダル反射に対する反応の欠如を確認した後、麻酔をかけたラットの頭皮を3つの連続したヨードポビドンと70%エタノールスクラブで洗浄します。.最後のスクラブの後、滅菌したニードルノーズピンセットと手術用ハサミを使用して、埋め込まれた電極のためのスペースを確保するのに十分な頭皮組織を切り取ります。
露出した頭蓋骨の表面を滅菌した綿の先端アプリケーターで優しく洗浄してから、3%過酸化水素を2〜3滴塗布して、ラムダとブレグマを特定します。次に、毎分約20, 000回転に設定された1ミリメートルのドリルビットを使用して、直径1.5ミリメートル、ブレグマの前方2.5ミリメートル、横方向に3.5ミリメートルの穴を開けます。外径1.59ミリメートル、長さ3.2ミリメートルのネジを穴の約半分まで埋め込み、ネジがしっかりと固定されるまで
埋め込みます。次に、左半球、ブレグマの前方1.5ミリメートル、およびブレグマの横方向に直径1ミリメートルの参照電極穴を開けます。埋め込みネジの頭の周りと下にワイヤーを巻き付けながら、約2mmの基準ワイヤーを穴に挿入します。次に、ネジを完全に埋め込み、参照電極を所定の位置に固定します。
右半球に、ブレグマに対して直径1.5ミリメートル、前方1.2ミリメートル、横方向に1.4ミリメートルの穴を開け、ピンセットを使用して硬膜を慎重に取り除きます。刺激電極については、ブレグマの後方5.2ミリメートルと外側1ミリメートルを中心に、前後2ミリメートルと内側外側5ミリメートルの正方形の穴を開けます。定位アームバーを使用して、バイポーラ刺激電極ガイドカニューレを硬膜から5mm下に下げます。
定位アームバーを使用して、炭素繊維微小電極を線条体の最も背側の硬膜から4mm下に下げ、基準ワイヤーと炭素繊維をポテンショスタットに接続します。次に、マイナス0.4〜1.4ボルト、毎秒400ボルトの三角波を60ヘルツで15分間印加し、続いて10ヘルツで10分間の刺激を加えます。刺激電極の位置を最適化するには、60ヘルツの周波数、24パルス、300マイクロアンペアの電流、および位相あたり2ミリ秒のパルス幅のバイポーラ電気波形を生成するように刺激装置を設定します。
刺激装置を硬膜の5mmから7.8mmまで0.2mm刻みでゆっくりと下げ、VTAを1回ずつ刺激します。刺激が背側線条体内の炭素繊維微小電極で位相性ドーパミン放出を生成するまで、バイポーラ刺激電極ガイドカニューレを下げ続けます。ドーパミンの放出が観察されたら、炭素繊維微小電極を硬膜から少なくとも6ミリメートル下まで下げて、側坐核の最も背側部分に下げます。
電極が所定の位置にあるとき、VTAを刺激し、ドーパミンピークのピーク振幅を記録し、次に炭素繊維微小電極を最大のドーパミン放出を生成する部位まで下げたり上げたりして、ドーパミン応答のピークが0.6ボルトの明確な酸化ピークとマイナス0.2ボルトの減少ピークとして表されることを確認します。カーボンファイバーと刺激電極ガイドカニューレの位置が最適化されたら、3分ごとに20〜30分間動物を刺激します。安定したベースラインを達成した後、バイポーラ刺激装置にあらかじめ装着されたガイドカニューレに手で内部カニューレを静かに下げ、さらに2〜3回のベースライン記録を取得して、カニューレの挿入が誘発信号の変化を引き起こさなかったことを確認します。
ベースライン反応が確立されたら、シリンジポンプとマイクロシリンジを使用して、0.5マイクロリットルの目的の薬物溶液を2分間かけてVTAに注入します。.注入後、除去する前に少なくとも1分間内部カニューレを所定の位置に置き、注入後の影響を測定するために3分ごとに応答を記録し続けます。これらの代表的なカラープロットで示されているように、生理食塩水の注入は刺激された相性ドーパミン放出を変化させません。
NMDAの注入は、刺激された位相性ドーパミン放出の強力な増加をもたらしますが、NMDA受容体の競合的拮抗薬であるAP5は、強力な減少をもたらします。非競合的ニコチン性アセチルコリン受容体 ?? 抗薬メカミラミンと非選択的競合ムスカリン性アセチルコリン受容体 ?? 抗薬スコポラミンの両方が、刺激された位相ドーパミン放出の大幅な減少を引き起こします。.このグラフでは、試験した薬剤の経時的な影響をまとめたものです。
注入カニューレは、バイポーラ刺激電極に注意深く挿入する必要があります。そうしないと、過度の損傷が発生し、位相性ドーパミン放出の人工的な変化につながる可能性があります。このアプローチにより、研究者は、位相性ドーパミン放出がin vivoで制御される特定の受容体メカニズムにより詳細に取り組むことができました。
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本研究では、サブ秒単位のドーパミン放出における受容体の役割を調べるため、腹側被蓋野(VTA)の受容体を操作するプロトコルを提示します。特に、特定の細胞体樹状突起受容体と、それが側坐核における位相性ドーパミン放出に及ぼす影響の解明に焦点を当てています。本アプローチにより、無傷の脳モデルにおける受容体機能の検討が可能となります。
この手法により、生体内(in vivo)における受容体介在性の位相性ドパミン放出制御を直接的に解析することが可能となり、神経精神疾患治療薬の探索におけるターゲットバリデーションのメカニズム的なリスク低減が図れます。VTA受容体機能と側坐核における定量可能なドパミンダイナミクスを関連付けることで、初期段階の治療仮説検証における予測の信頼性が向上します。本アプローチは、in vitroの受容体薬理学と無傷の脳生理学を橋渡しし、報酬系ターゲットにおけるトランスレーショナルな連続性を改善します。
本手法は、ドーパミン放出に対する受容体活性の機能的なリードアウトを提供することで、ターゲットバリデーションからリード化合物の特定に至る創薬の連続的なプロセスに統合されます。