Name: 体外における感覚神経と運動神経からの線維芽細胞およびシュワン細胞の精製 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 16 s
Description: 学ぶ 感覚神経と運動神経から線維芽細胞およびシュワン細胞を精製する方法。差分解離と接着法により90%以上の高純度で分離でき、神経再生や神経系疾患の研究に応用可能です。

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この研究は、中国国家主要研究開発プログラム(グラント2017YFA0104703)、中国国立自然財団(グラント31500927)によって支援されました。

本研究は南通大学の施設動物ケアガイドラインに従って実施された。動物の被験者を含むすべての手順は、中国江蘇省実験動物管理委員会によって倫理的に承認されました。
1. 運動・感覚神経線維芽細胞とSCの分離と培養
<ol><li>中国南通大学実験動物センターが提供する7日前のスプレイグ・ドーリー(SD)ラット(n=4)を使用してください。ラットを5%のイオブルランを含むタンクに2〜3分間入れ、動物がゆっくりと呼吸し、独立した活性を持たなかった後、切断する前に75%エタノールを使用して消毒する。</li>
	<li>はさみを使って背中の皮膚を約3cm切り、脊柱を取り除きます。脊髄を露出させるために、椎管を慎重に開きます。</li>
	<li>2~3 mLの氷冷D-ハンクスのバランス塩溶液(HBSS)を使用して、60mmペトリ皿に脊髄を維持します。</li>
	<li>解剖学的構造に基づいて、弁当根(運動神経)を切除し、次に、解剖顕微鏡下で側側根(感覚神経)を切除する。次に、氷冷D-ハンクスのバランス塩溶液(HBSS)に入れます。</li>
	<li>HBSSを取り外した後、はさみで神経を3〜5mmにスライスし、18〜20分間37°Cで0.25%(w/v)トリプシンの1mLで消化します。次に、10%のウシ胎児血清(FBS)を含むDMEMの3〜4 mLを補って消化を止める。</li>
	<li>混合物を約10回上下にピペットし、遠心分離機を800xggで5分間ピペットします。その後、上清を捨て、10%FBSを添加したDMEMの2〜3mLで沈殿を中断します。</li>
	<li>400メッシュフィルターを用いて細胞懸濁液を濾過し、5%CO2の存在下で37°Cで60mmペトリ皿および培養中の細胞2を接種する。培養4~5日後、90%合流に達した後に、0(p0)線維芽細胞およびSCの通路を分離する。</li>
	<li>SCの分離と文化 (図 1)<ol>
<li>1x PBSを使用して細胞を1回洗います。0.25%(w/v)トリプシン(37°C)の1 mLを60mmペトリ皿あたり1 mL加え、室温で8〜10秒の細胞を消化します。その後、消化を止めるために10%FBSを添加したDMEMの3mLを加えます。</li>
		<li>混合物を軽く吹き飛ばして、ピペットでSCを取り外します。その後、SCを800 x gで5分間遠心します。</li>
		<li>上澄みを捨て、10%FBS、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、2 μMフォルスコリン、10 ng/mL HRGでDMEMの3mLで沈殿物を中断し、コーティングされていない60mmペトリ皿で細胞を接種します。30〜45分間37°Cで培養した後、線維芽細胞(数個の線維芽細胞はSCで消化される)が皿の底に付着する。</li>
		<li>上清(SCを含む)を別のポリL-リジン(PLL)コーティングされた培地皿に移し、37°Cで2日間培養します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>線維芽細胞の分離と培養(図1)<ol>
<li>SCを取り除いた後(ステップ1.8に示すように)、残りの線維芽細胞を1x PBSで皿に洗い、0.25%(w/v)のトリプシンの1 mLを加えて37°Cで2分間線維芽細胞を消化します。</li>
		<li>DMEMを10%FBSで補って消化を終わらせます。ピペットを使用して繊維芽細胞を吹き、800 x gで5分間遠心分離します。</li>
		<li>上清を捨て、10%FBSを含むDMEMの2mLで沈殿を懸濁し、次いでコーティングされていない60mmペトリ皿に細胞を接種する。培養後の繊維芽細胞を30〜45分間、37°Cで培養し、皿の底部に付着する。上清を捨てます(数個のSCを含む)。その後、37°Cで37°Cで10%FBSを添加したDMEMの3mLを2日間加え、培養します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>p1細胞を90%合流に達するまで通過する。その後、セクション1.8と1.9に記載されているように、差動消化と差付着によって再びそれらを浄化します。</li>
	<li>2日間培養した後にp2線維芽細胞とSCを消化し、免疫細胞化学(ICC)用PLLコーティングスライド上の1 x 105個の数/ウェルで細胞を数え、接種します。</li>
</ol>2. 細胞純度の同定のためのICC
<ol><li>細胞を37°Cで24時間培養し、運動と感覚線維芽細胞およびSCの差動消化および差動付着後にICC染色を行う。</li>
	<li>1x PBSでモーターと感覚線維芽細胞とSCを洗浄し、4%パラホルムアルデヒド(pH 7.4)の200 μL/ウェルで室温で18分間固定します。</li>
	<li>ブロッキングバッファー(5%ヤギ血清を含む0.01 M PBSで0.1%トリトンX-100)でサンプルSCをブロックし、PBS 3thで洗浄した後、37°Cで45分間ブロッキングバッファー(0.01 M PBS)でサンプル線維芽細胞をブロックします。</li>
	<li>ブロッキングバッファーを除去し、次の一次抗体でインキュベートする:マウスモノクローナル抗CD90抗体(線維芽細胞の特定マーカー)(1:1000)線維芽細胞およびマウス抗S100抗体(SC用の特定マーカー)(1:400)のSCの夜間の一晩。</li>
	<li>一次抗体を捨て、PBS 3thriceで洗浄し、次の二次抗体でインキュベートする:アレクサFluor 594ヤギ抗マウスIgG(1:400)線維芽細胞用、488結合ヤギ抗マウスIgG(1:400)を室温でSC用に1.5時間。</li>
	<li>サンプルをPBSで3回洗浄し、5 μg/mL Hoechst 33342 色素で核を室温で10分間染色します。サンプルを1x PBSで洗い、ガラススライドの取り付け媒体(20 μL/スライド)を使用して取り付けます。</li>
	<li>各ウェルの3つのランダムなフィールドで共焦点レーザー走査顕微鏡によって細胞写真を撮ります。核細胞とCD90陽性細胞の総数を評価し、S100陽性細胞をそれぞれ算出し、それぞれCD90陽性細胞とS100陽性細胞の割合を計算します。三重で染色を行います。</li>
</ol>3. 細胞純度の同定のためのフローサイトメトリー分析(FCA)
<ol><li>FCA16で前述したように、モータおよび感覚線維芽細胞およびSCの純度を評価する。簡単に言えば、0.25%(w/v)トリプシンでp2モーターと感覚線維芽細胞とSCを消化し、細胞ペレットを再懸濁し、室温で固定媒体に15分間インキュベートします。</li>
	<li>線維芽細胞およびマウス抗S100抗体(1:400、200μL)のマウスモノクローナル抗CD90抗体(0.1μg/106細胞、200μL)を用いて、透過性培地とプローブを用いて細胞をインキュベートし、それぞれ30分間室温でSCに用いる。</li>
	<li>488結合ヤギ抗マウスIgGを30分間インキュベートし、FACSキャリバーを使用してフローサイトメトリーを実行し、Cell Questソフトウェアを使用してデータを分析します。</li>
	<li>488結合ヤギ抗マウスIgG(線維芽細胞群)およびマウスIgG1カッパ[MOPC-21](FITC)-アイソタイプコントロール(SCs群)のみで細胞をインキュベートし、負の対照として機能します。</li>
</ol>4. 統計分析
<ol><li>すべてのデータを手段として提示する±SEM.GraphPad Prism 6.0を使用して非対t-testによってデータの統計的差を評価する。p<0.05 で統計的有意性を設定します。三重ですべてのアッセイを実行します。</li>
</ol>

<ol><li>Stierli, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+regulation+of+the+homeostasis+and+regeneration+of+peripheral+nerve+is+distinct+from+the+CNS+and+independent+of+a+stem+cell+population%5BTitle%5D)+AND+%22Development+%28The+Company+of+Biologists%29%22%5BJournal%5D)">The regulation of the homeostasis and regeneration of peripheral nerve is distinct from the CNS and independent of a stem cell population.</a> Development (The Company of Biologists). , (2018).</li>
<li>Schubert, T., Friede, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+endoneurial+fibroblasts+in+myelin+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuropathology+and+Experimental+Neurology%22%5BJournal%5D)">The role of endoneurial fibroblasts in myelin degradation.</a> Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 40 (2), 134-154 (1981).</li>
<li>Dreesmann, L., Mittnacht, U., Lietz, M., Schlosshauer, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+fibroblast+impact+on+Schwann+cell+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Nerve fibroblast impact on Schwann cell behavior.</a> European Journal of Cell Biology. 88 (5), 285-300 (2009).</li>
<li>Lavdas, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Schwann+cells+engineered+to+express+the+cell+adhesion+molecule+L1+accelerate+myelination+and+motor+recovery+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Neurology%22%5BJournal%5D)">Schwann cells engineered to express the cell adhesion molecule L1 accelerate myelination and motor recovery after spinal cord injury.</a> Experimental Neurology. 221 (1), 206-216 (2010).</li>
<li>Parrinello, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EphB+signaling+directs+peripheral+nerve+regeneration+through+Sox2-dependent+Schwann+cell+sorting%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">EphB signaling directs peripheral nerve regeneration through Sox2-dependent Schwann cell sorting.</a> Cell. 143 (1), 145-155 (2010).</li>
<li>Benito, C., Davis, C. M., Gomez-Sanchez, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((STAT3+Controls+the+Long-Term+Survival+and+Phenotype+of+Repair+Schwann+Cells+during+Nerve+Regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Research%22%5BJournal%5D)">STAT3 Controls the Long-Term Survival and Phenotype of Repair Schwann Cells during Nerve Regeneration.</a> Journal of Neuroscience Research. 37 (16), 4255-4269 (2017).</li>
<li>Zhang, Z. J., Jiang, B. C., Gao, Y. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemokines+in+neuron-glial+cell+interaction+and+pathogenesis+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Cellular+and+Molecular+Life+Sciences%22%5BJournal%5D)">Chemokines in neuron-glial cell interaction and pathogenesis of neuropathic pain.</a> Cellular and Molecular Life Sciences. 74 (18), 3275-3291 (2017).</li>
<li>Hoke, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Schwann+cells+express+motor+and+sensory+phenotypes+that+regulate+axon+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Schwann cells express motor and sensory phenotypes that regulate axon regeneration.</a> Journal of Neuroscience. 26 (38), 9646-9655 (2006).</li>
<li>Brushart, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Schwann+cell+phenotype+is+regulated+by+axon+modality+and+central-peripheral+location%2C+and+persists+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Experiment+Neurology%22%5BJournal%5D)">Schwann cell phenotype is regulated by axon modality and central-peripheral location, and persists in vitro.</a> Experiment Neurology. 247, 272-281 (2013).</li>
<li>He, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+Gene+Expression+in+Primary+Cultured+Sensory+and+Motor+Nerve+Fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Differential Gene Expression in Primary Cultured Sensory and Motor Nerve Fibroblasts.</a> Frontiers in Neuroscience. 12, 1016(2018).</li>
<li>Weinstein, D. E., Wu, R. Chapter 3, Unit 17: Isolation and purification of primary Schwann cells. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWeinstein%2C+DE+%22Current+Protocols+in+Neuroscience%22">Current Protocols in Neuroscience</a>. , (2001).</li>
<li>Palomo Irigoyen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+Purification+of+Primary+Rodent+Schwann+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Isolation and Purification of Primary Rodent Schwann Cells.</a> Methods in Molecular Biology. 1791, 81-93 (2018).</li>
<li>Cheng, L., Khan, M., Mudge, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcitonin+gene-related+peptide+promotes+Schwann+cell+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Calcitonin gene-related peptide promotes Schwann cell proliferation.</a> Journal of Cell Biology. 129 (3), 789-796 (1995).</li>
<li>Pannunzio, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+method+of+selecting+Schwann+cells+from+adult+mouse+sciatic+nerve%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">A new method of selecting Schwann cells from adult mouse sciatic nerve.</a> Journal of Neuroscience Methods. 149 (1), 74-81 (2005).</li>
<li>Shen, M., Tang, W., Cao, Z., Cao, X., Ding, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+rat+Schwann+cells+based+on+cell+sorting%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Medicine+Reports%22%5BJournal%5D)">Isolation of rat Schwann cells based on cell sorting.</a> Molecular Medicine Reports. 16 (2), 1747-1752 (2017).</li>
<li>He, Q., Man, L., Ji, Y., Ding, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+in+the+biological+characteristics+between+primary+cultured+sensory+and+motor+Schwann+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience+Letters%22%5BJournal%5D)">Comparison in the biological characteristics between primary cultured sensory and motor Schwann cells.</a> Neuroscience Letters. 521 (1), 57-61 (2012).</li>
<li>Weiss, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteomics+and+transcriptomics+of+peripheral+nerve+tissue+and+cells+unravel+new+aspects+of+the+human+Schwann+cell+repair+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Proteomics and transcriptomics of peripheral nerve tissue and cells unravel new aspects of the human Schwann cell repair phenotype.</a> Glia. 64 (12), 2133-2153 (2016).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

末梢神経の2つの主要な細胞集団には、SCおよび線維芽細胞が含まれていた。主に培養された線維芽細胞およびSCは、末梢神経の発達および再生の間に線維芽細胞およびSCの生理学を正確にモデル化するのを助けることができる。この研究は、P7ラット坐骨神経細胞がS100陽性SCの約85%、OX7陽性線維芽細胞の13%、OX42陽性マクロファージ13の1.5%しか含まれていないことを示した。線維芽細胞の数はSCより少ないが、線維芽細胞の初期増殖速度はSCよりも速い。したがって、Ara-Cは、多くの研究で線維芽細胞を除去するための最も一般的に使用される抗ミトキシス薬である。しかし、Ara-Cは細胞の有糸分裂に特異的ではなく、分裂の活発な段階でのSCの増殖を阻害することもできる。抗体媒介性細胞化または免疫パンニング法では、線維芽細胞は失われたか死んだ。フローサイトメトリー選別技術は、高純度の線維芽細胞とSCを同時に得るために使用できるが、大量の細胞を必要とし、細胞獲得率は低いままであった。私たちの知る限りでは、これは感覚と運動SCと線維芽細胞の浄化方法を示す最初の研究でした。
<p class="jo...

末梢神経系において、神経線維は主に軸索、シュワン細胞(SC)、および線維芽細胞から成り、また、少数のマクロファージ、微小血管内皮細胞、および免疫細胞1を含む。SCは軸索を1:1の比率で包み、エンドニウリウムと呼ばれる結合組織層で囲まれている。その後、軸索を束ねて、ファシクルと呼ばれるグループを形成し、各魅惑は、ペリネリウムとして知られている結合組織層に包まれます。最後に、神経線維全体が、上気圧と呼ばれる結合組織の層に包まれる。このエンドヌリウムでは、全細胞集団は48%のSCで構成され、残りの細胞の大部分は線維芽細胞2を含む。さらに、線維芽細胞は、上聴神経、会陰、および末端3を含むすべての神経区画の重要な構成要素である。多くの研究は、SCおよび線維芽細胞が末梢神経損傷44、5、65後の再生プロセスにおいて重要な役割を果たすことを6示している。末梢神経の切除後、胸部線維芽細胞は、SCと線維芽細胞との間のシグナル伝達経路を介して細胞の並べ替えを調節し、さらに創傷5を通して軸索再成長を導く。末梢神経線維芽細胞は、テナシン-Cタンパク質を分泌し、β1-インテグリンシグナル伝達経路7を介して神経再生中のSCの移動を増強する。しかし、上記の研究で使用されたSCおよび線維芽細胞は、感覚神経と運動神経の両方を含む坐骨神経に由来した。
末梢神経系では、感覚神経(知覚神経)は受容体から中枢神経系(CNS)への感覚シグナル伝達を行い、運動神経(神経)はCNSから筋肉への信号を行う。これまでの研究では、SCは、末梢神経再生,8,9を支持する明確な運動および感覚表現型および分泌神経栄養因子を発現することが示されている。最近の研究によると、線維芽細胞はまた、異なる運動および感覚表現型を発現し、SCs10の移動に影響を与える。このように、運動神経線維芽細胞と感覚神経線維芽細胞/SCの違いを探ると、末梢神経特異的再生の複雑な分子機構を研究することができます。
現在のところ、SCおよび線維芽細胞を精製する方法は多数あり、抗ミトキ薬の適用、抗体媒介性細胞分解11、12、,12シーケンシャルイムノパンニング13およびラミニン皮層14を含む14。しかし、上記の方法はすべて線維芽細胞を除去し、SCのみを保存する。高度に精製されたSCおよび線維芽細胞は、フローサイトメトリー選別技術15によって得ることができるが、それは時間とコストのかかる技術である。そこで本研究では、多数の線維芽細胞やSCをより迅速に得るために、感覚および運動神経線維芽細胞およびSCを精製・単離するための単純な微分消化および微分付着法が開発された。

<table><tbody><tr><td>Alexa Fluor 594 ヤギ 抗マウス IgG(H+L)</td><td>Life Technologies</td><td>A11005</td><td>希釈率: 1:400</td></tr><tr><td>CoraLite488-conjugated Affinipure ヤギ 抗マウス IgG(H+L)</td><td>プロテインテック</td><td>SA00013-1</td><td>希釈率: 1:400</td></tr><tr><td>共焦点レーザー走査顕微鏡</td><td>ライカマイクロシステムズ</td><td>TCS SP5</td><td></td></tr><tr><td>Cell Quest ソフトウェア</td><td>ベクトン・ディキンソン・バイオサイエンス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>D-ハンクの平衡塩溶液</td><td>Gibco</td><td>14170112</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Corning</td><td>10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td>SZ2-ILST</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>Gibco</td><td>10099-141C</td><td></td></tr><tr><td>Forskolin</td><td>Sigma</td><td>F6886-10MG</td><td></td></tr><tr><td>フルオロシールド 封入剤</td><td>アブカム</td><td>ab104135</td><td></td></tr><tr><td>固定培地/透過化培地</td><td>Multi Sciences (LIANKE) Biotech, Co., Ltd</td><td>GAS005</td><td></td></tr><tr><td>フローサイトメトリー</td><td>Becton Dickinson Biosciences</td><td>FACS Calibur</td><td></td></tr><tr><td>Mouse IgG1 κ [MOPC-21] (FITC) - アイソタイプコントロール</td><td>Abcam</td><td>ab106163</td><td>希釈率:1:400</td></tr><tr><td>マウスモノクローナル抗CD90抗体</td><td>Abcam</td><td>ab225</td><td>希釈率:ICCの場合は1:1000、0.1&micro;106細胞用、Flow Cyt</td></tr><tr><td>Mouse抗S100抗体</td><td>Abcam</td><td>ab212816</td><td>希釈率:1:400</td></tr><tr><td>ポリリジン(PLL)</td><td>Sigma</td><td>P4832</td><td></td></tr><tr><td>組換えヒトNRG1-β 1/HRG1-β 1 EGFドメインタンパク質</td><td>R&Dシステム</td><td>ズ396-HB-050</td><td></td></tr><tr><td>0.25%(w / v)トリプシン</td><td>Gibco</td><td>25200-072</td><td></td></tr></tbody></table>

体外における感覚神経と運動神経からの線維芽細胞およびシュワン細胞の精製

Purification of Fibroblasts and Schwann Cells from Sensory and Motor Nerves in Vitro

末梢神経系の主な細胞は、シュワン細胞(SC)および線維芽細胞である。これらの細胞は、神経栄養因子遺伝子発現および他の生物学的プロセスの異なるパターンに関与する感覚および運動表現型を明確に発現し、神経再生に影響を与える。本研究は、高度に精製されたラット感覚および運動SCおよび線維芽細胞をより迅速に得るためのプロトコルを確立した。新生児ラットの腹根(運動神経)と後根(感覚神経)を解離し、細胞を4〜5日間培養し、続いて分化消化と微分付着法を組み合わせて感覚と運動線維芽細胞とSCを分離した。免疫細胞化学とフローサイトメトリー分析の結果、感覚および運動SCおよび線維芽細胞の純度は90%であった。このプロトコルは、多数の感覚および運動線維芽細胞/SCをより迅速に得るために使用することができ、感覚神経および運動神経再生の探索に寄与する。

光顕微鏡観察 SCおよび線維芽細胞は、神経組織から一次細胞培養で得られた2つの主要な細胞集団である。1時間の接種後、ほとんどの細胞は皿の底に付着し、細胞形態は円形から楕円形に変化した。24時間培養後、SCは双極形態または三極形態を呈し、その長さは100~200μmの範囲となった。48時間後、細胞の凝集と増殖が起こり、多くの細胞がエンドツーエンド、肩から肩、渦またはフェンスのような配置で凝集した。SCよりも大きい他の線維芽細胞は、平坦で不規則な形状を示した。培養時間が長くなると、SCや線維芽細胞の数は徐々に増加しました。SCは、線維芽細胞の空間間に集結していたか、または線維芽細胞の表面に位置した(図2A、2B)。細胞は、分離線維芽細胞およびSCに対する差分化および微分付着を受ける。8-10sの消化後、SCは丸く現れ、容易に吹き飛ばされ、線維芽細胞は平らで皿の底に付着している(図2<s...

ここでは、インビトロで感覚神経および運動神経から線維芽細胞およびシュワン細胞を精製する方法を提示する。

The principal cells in the peripheral nervous system are the Schwann cells (SCs) and the fibroblasts. Both these cells distinctly express the sensory and ...

このプロトコルは、多数のセンサーと、モータ線維芽細胞およびシュワン細胞を迅速に得るために使用することができる。このメッセージを通して得られた細胞は、神経再生および神経系疾患の研究に使用することができる。我々は、微分消化ステップの時間をより良く制御し、実験ステップを理解しやすくする実験を表すことができる実証を示す。背中の皮膚に3センチの切開を行うためにはさみをバーストする。脊柱を取り外します。脊髄を露出させるために椎管を慎重に開きます。60ミリメートルのペトリ皿で脊髄をレースし、3〜4ミリリットルの氷冷Dハンクスバランス塩溶液を解剖顕微鏡の下でバランスよく、腹側根と側側根を切除する。氷冷Dハンクスバランス塩溶液にそれらを置きます。HBSSを取り外した後、神経をハサミで3~5ミリメートルにスライスします。0.25%トリプシンの1ミリリットルを追加し、5ミリリットル遠心管に神経片を移します。摂氏37度で18~20分インキュベートします。次に、消化を停止するには、10%のウシ胎児血清を含むDMEMの3〜4ミリリットルで追加する。混合物を上下に約10回ピペットします。800倍Gで5分間遠心分離機。遠心後上清を捨てる。そして、10%FBSを補充したDMEMの2〜3ミリリットルで沈殿物を再中断する。400メッシュフィルターを通して細胞懸濁液を濾過し、その後、60ミリメートルペトリ皿を接種するために懸濁液を使用します。5%の二酸化炭素の存在下で、摂氏37度で4〜5日間ペトリ料理をインキュベートします。培養が90%合流した場合は、1XPBSを使用して細胞を1回洗浄します。次に、シュワン細胞を消化し、60ミリメートル皿あたり37°Cで0.25%トリプシンの1ミリリットルを加えます。室温で8〜10秒後、消化を停止し、10%FBSを添加したDMEMの3ミリリットルを添加する。シュワン細胞を取り外すには、ピペットで細胞を軽く吹きます。細胞が剥離していることを顕微鏡で確認します。その後、白鳥の細胞を含む培地を収集し、遠心分離機を800倍Gで5分間回収する。上清を捨て、沈殿物を3ミリリットルの培地で再懸濁する。この懸濁液を使用して、コーティングされていない60ミリメートルのペトリ料理を接種し、30〜45分間摂氏37度で調理します。ポリLリジンコーティングされたミディアムディッシュにシュワン細胞を含み、2日間摂氏37度でインキュベートする培地のブランド。シュワン細胞を含む培地を除去した後、線維芽細胞を洗浄し、1XPBSでペトリ皿に付着する。線維芽細胞を消化するには、摂氏37度で0.25%トリプシンの1ミリリットルを加えます。37°Cで2分間進行する消化に続いた後、10%FBSを添加したDMEMを加えることによって消化を終了します。線維芽細胞を取り外すには、ピペットを使用して皿の底を吹きます

purification-fibroblasts-schwann-cells-from-sensory-motor-nerves

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

このビデオは、ラットの胚から後根神経節(DRG)ニューロンを分離し、それらをシュワン細胞前駆体と共培養して成熟したシュワン細胞を生成する手順を示しています。単離されたDRGは、ニューロンとグリア細胞を単離するために処理されます。単離された細胞を培養してニューロンを精製し、ニューロンを共培養培地でシュワン細胞様細胞(SCLC)と共培養します。DRGニューロンとの相互作用は、SCLCのシュワン細胞への成熟につながります。...

DRGニューロンの単離とシュワン細胞前駆体との共培養によるシュワン細胞の生成

このビデオは、ヒト真皮組織からシュワン細胞を分離し、培養するためのプロトコルを示しています。ヒトの真皮には、線維芽細胞やシュワン細胞など、さまざまな種類の細胞が含まれています。単離後、細胞を抗有糸分裂剤で処理して増殖する線維芽細胞を排除し、シュワン細胞を純粋に培養します。...

ヒト真皮からの初代シュワン細胞の単離と培養

このビデオでは、マウスの脊髄根からのシュワン細胞の単離と培養について概説しています。その後、単離された細胞を特定の培地で培養します。シュワン細胞は、分裂的消化と接着によって単離されます。その後、細胞外マトリックスでコーティングされたカバースリップに移され、付着と増殖が行われます。...

マウス脊髄根からのシュワン細胞の単離

このビデオは、後根神経節外植片とシュワン細胞の共培養モデルを示しています。共培養条件では、アスコルビン酸はシュワン細胞の髄鞘形成型への分化を促進します。ミエリン化シュワン細胞は、軸索を複数回包み込み、神経機能に不可欠なミエリン鞘を形成します。...

ニューロン髄鞘形成のための背根神経節外植片とシュワン細胞の共培養

このビデオでは、マウスの坐骨神経線維からシュワン細胞を単離する方法を実演しています。...

マウス坐骨神経からのシュワン細胞の磁気分離

出典: Han, J., et.al.in vitroでの末梢神経再生のためのナノ秒パルス電場によるSchwann細胞増殖の調節J. Vis. 経験。(2024年)このビデオでは、シュワン細胞(SC)の成長を調節するためのナノ秒パルス電場(nsPEF)技術の応用を示します。急速な電気パルスは、SC 膜に一過性のナノ細孔を誘導し、SC の増殖、脱分化、および神経栄養因子分泌を促進するシグナル伝達経路を活性化するカルシウムの流入を促進します。これらの細胞応答は、軸索サポート、ニューロンの生存、および潜在的な髄鞘形成を強化し、nsPEF...

ナノ秒パルス電場技術を使用したin vitroでのシュワン細胞増殖の調節

この記事は、生化学的および免疫細胞化学的分析のための純粋な軸索サンプルを大量に取得するために使用できるニューロン培養システムについて説明しています。この技術により、正常な軸索生理学と神経変性につながるシグナル伝達経路の理解を深めることができます。...

多孔質フィルタを使用した生化学分析のための感覚ニューロンからの軸索の産生および単離

骨髄内には、神経ポテンシャルを有する骨髄間質細胞（MSC）が存在する。我々のプロトコルは、低酸素プレコンディショニングを介してこの細胞集団を濃縮し、その後それらを成熟シュワン細胞にするよう指示する。...

成熟シュワン細胞の発生源としての骨髄由来前駆細胞の低酸素プレコンディショニング

筋骨格損傷に関連する創傷治癒の研究は、しばしば、シュワン細胞(SC)、ケラチノサイト、および線維芽細胞間の インビトロ 相互作用の評価を必要とする。このプロトコルは、ヒト包皮からのこれらの初代細胞の単離、培養、および特性評価を記述している。...

ヒト包皮からの初代シュワン細胞、ケラチノサイト、および線維芽細胞の単離、培養、および特性評価

後根神経節とシュワン細胞の共培養系では、末梢神経系の髄鞘形成を研究することができます。このモデルは、末梢髄鞘形成を観察および定量化し、ミエリン鞘に対する目的の化合物の影響を研究するための実験的機会を提供します。...

ラット背根神経節外植片とシュワン細胞の共培養における末梢軸索のin vitro髄鞘形成

ここでは、ナノ秒パルス電場(nsPEF)を印加してin...

ナノ秒パルス電場によるシュワン細胞増殖の制御による末梢神経再生のためのin vitro

学ぶ 感覚神経と運動神経から線維芽細胞およびシュワン細胞を精製する方法。差分解離と接着法により90%以上の高純度で分離でき、神経再生や神経系疾患の研究に応用可能です。

体外における感覚神経と運動神経からの線維芽細胞およびシュワン細胞の精製

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