Name: 磁気測定を用いて細胞の組み込みとそれに続く化学的合成酸化鉄ナノ粒子の生分解をモニタリングする (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-27T13:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 13 s
Description: 学ぶ酸化鉄ナノ粒子の化学的合成法と磁気測定を用いたヒト幹細胞内での組み込み・生分解モニタリング手法。医学生物学的応用におけるナノ粒子の挙動評価に有用です。

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この作業は、欧州連合(EU)(ERC-2014-CoGプロジェクトMaTissE#648779によってサポートされました)。著者らは、パリ大学13のCNanoMat物理化学的特徴付けプラットフォームを認めたいと考えています。

1. 磁性ナノ粒子の合成
<ol><li>コア合成 – マイクロ波アシスト<ol>
<li>400mgの鉄(III)アセチルアセトネートを溶解する(>99.9%)ベンジルアルコール10mL(BA、99.8%)30 mLモノウェーブガラスバイアル内。</li>
		<li>サスペンションの温度を20分間(11.25°C/minの速度で)25〜250°Cに上げ、マイクロ波反応器を使用して30分間250°Cで維持します。</li>
		<li>得られたナノ粒子をベンジルアルコールに懸濁してガラスバイアルに移し、ネオジム磁石を用いてナノ粒子を30分間分離する。</li>
		<li>前の100 mLガラスバイアルでジクロロメタン10mL、1M水酸化ナトリウム、エタノール、pH7水(3回)を各ステップで5分間ネオジム磁石を使用して沈殿物を洗浄し、ナノ粒子をペレット化し、上清を除去します。</li>
		<li>1 M塩酸を使用してpH2に水中のナノ粒子懸濁液を調整し、100kDa超遠心フィルターで10分間2,200xgで遠心分離機を調整します。</li>
		<li>濾液を取り除き、10-2Mの塩酸の12mLをナノ粒子溶液に加え、遠心分離機を100kDaの超遠心フィルターで100mgで10分間(3回)加える。次に、ナノ粒子溶液を10-2M塩酸の10 mL以内で希釈してからコーティングします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>コーティング<ol>
<li>100 mLガラスバイアルでpH2の水中で175mgのクエン酸とポリアクリル酸を希釈し、1M塩酸溶液でpHを2に調整した。</li>
		<li>10 mLナノ粒子をコーティング分子溶液に加え、被覆分子とナノ粒子との間の質量比5に対応する。室温で磁気撹拌を行う場合は2時間撹拌する。</li>
		<li>反応後、1M水酸化ナトリウムでpHを7に調整します。</li>
		<li>ナノ粒子溶液を100kDa超遠心フィルターで100kDaの脱イオン(DI)水で3回遠心分離し、10分間2,200 x g; 濾液を取り除き、ナノ粒子溶液を12mLのDI水で希釈してください。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 幹細胞の培養・磁気標識
<ol><li>ヒト間葉系幹細胞(MSC)を37°Cおよび5%CO2で完全な間葉系幹細胞増殖培地(MSCGM)で培養する。細胞が合流率90%のとき、トリプシン-EDTAの10 mLを150 cm²フラスコあたり37°Cであらかじめ加え、2〜3分間放置して細胞を取り外します。<ol>
<li>細胞が剥離するタイミングを知るために、明視野顕微鏡でそれらを観察します。MSCGMで剥離した細胞を再懸濁し、4つの150 cm²フラスコに分けます。この方法で細胞を4~5の範囲まで増幅する。</li>
	</ol>
</li>
	<li>細胞標識用の磁性ナノ粒子の溶液を調製:グルタミンなしで血清遊離ロズウェルパーク記念研究所培地(RMPI-1640)中に酸化鉄ナノ粒子の選択濃度を分散させる。RPMIは、DMEMよりもイオン強度が低く、ナノ粒子凝集事象を防ぐため、ナノ粒子インキュベーション(および関連するリンスステップ)に使用されます。</li>
	<li>細胞が4または5および90%コンフルエントの通路にある場合、MSCGM培地を取り除き、血清を含まないRPMI(グルタミンなし)で細胞をすすいで、150cm2培養フラスコあたり10mLの酸化鉄ナノ粒子溶液を加え、すべての細胞をカバーするのに必要な最小体積である。</li>
	<li>37°Cおよび5%CO2で30分間インキュベートし、ナノ粒子溶液を廃棄する。血清フリーRPMI-1640(グルタミンなし)で1回洗浄し、ダルベックコの修正イーグルミディアム(DMEM)でインキュベートし、10%FBSと1%ペニシリンストレプトマイシン(15mL/150 cm2フラスコ)を一晩で37°Cで、5%CO2でインキュベートして内部ナノ粒子の内部を完成させます。</li>
</ol>3. 幹細胞スフェロイドの形成
<ol><li>DMEM高グルコースで構成された新しい細胞スフェロイド培地を、L-グルタミンを50 μM L-アスコルビン酸2リン酸、0.1 μMデキサメタゾン、1 mMナトリウムピルビン酸、0.35 mM L-プロリン、インスリン、ヒトトランスフェリンおよびセレン酸(ITS-PREmix)を含む1%のユニバーサル培養サプリメントを添加した。</li>
	<li>150 cm2 フラスコあたり 37 °C で 0.05% トリプシン EDTA の 10 mL を 2~3 分間加えて、磁気 CS を取り外します。細胞が剥離したら、10%FBSを添加したDMEMの体積の1/3を加え、37°Cで予め加温したペニシリン・ストレプトマイシンを1%添加して、すぐにトリプシンを不活性化する。</li>
	<li>解約細胞を5分間260xgで遠心分離し、培地を吸引し、約50μLの培地で20万個の細胞を有するなどの細胞スフェロイド培地の少量(150cm²フラスコあたり1mL未満)で細胞を再懸濁する。ヘモサイトメーターを使用してセル数をカウントし、必要に応じて音量を調整します。</li>
	<li>15 mLの無菌円錐形遠心分離機チューブに作りたての細胞スフェロイド培地を1 mL加え、200,000個の細胞に対応する再懸濁液の体積を加えます。</li>
	<li>これらの磁気標識細胞は、チューブの底部に細胞ペレットを形成する等の3分間180xgで遠心分離し、上清、細胞培養培地である上清を保つ。</li>
	<li>チューブをわずかに開けて空気交換を可能にし、5%CO2で37°Cで最大21日間インキュベートし、細胞が凝集した3D構造を形成する培養時間で完全に形成されたスフェロイドを生じる。週に2回メディアを変更します。</li>
	<li>特定の日に、脱塩水で希釈した0.2Mカコチル酸カコジレートバッファーでスフェロイドを2回洗浄し、2%グルタルアルデヒドを0.1Mのカコチル化緩衝液で0.1Mのカコチル化緩衝液を室温で30分間希釈して固定します。VSM測定またはTEMイメージングに使用されるまで、固定されたスフェロイドをPBSに保管してください。この固定ステップは、すべての生物学的プロセスを停止し、長期的な保全を可能にします。</li>
</ol>4. 振動サンプル磁力計(VSM)を用いた溶液中およびセルロ中の磁気ナノ粒子の定量化
<ol><li>特定の体積の磁気ナノ粒子溶液(最大10 μL)または単一のセルスフェロイドを、VSMに収まるように特別に設計されたサンプルホルダーに配置します。</li>
	<li>サンプルを VSM に挿入し、サンプル オフセットをスキャンします。サンプルを最大磁化に対応する位置に配置します。</li>
	<li>低磁場(-1500 Oe~+1500 Oe)で、最初の測定を20 Oe/sのレートで行います。</li>
	<li>200 Oe/sの速度で高磁場(-30 000 Oeと+30 000 Oeの間)で2回目の測定を行います。</li>
</ol>5. 透過電子顕微鏡(TEM)解析
<ol><li>ナノ粒子溶液の場合、水溶液の10μLをカーボンコーティングされた銅グリッドに堆積させ、室温で乾燥させます。</li>
	<li>細胞内に内在化したナノ粒子については、0.1Mカコジレート緩衝液で希釈した0.5%のウーロン茶抽出物(OTE)と固定セルスフェロイドを対比し、1.5%のシアノフェレートカリウムを含む1%オスミウム四酸化1%で後固定し、等級エタノール浴中で脱水し、エポンに含まれる。70 nmの超断面をスライスし、クーパーグリッドに堆積させます。</li>
	<li>80kVの電子顕微鏡を使用して、細胞全体を観察するために1kから40kまでの拡大で、内視鏡コンパートメントの観察のために画像を撮ります。</li>
</ol>

<ol><li>Azevedo-Pereira, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superparamagnetic+iron+oxide+nanoparticles+as+a+tool+to+track+mouse+neural+stem+cells+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Biology+Reports%22%5BJournal%5D)">Superparamagnetic iron oxide nanoparticles as a tool to track mouse neural stem cells in vivo.</a> Molecular Biology Reports. 46 (1), 191-198 (2019).</li>
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<li>Yamamoto, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+artificial+skeletal+muscle+tissues+by+a+magnetic+force-based+tissue+engineering+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Bioscience+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Preparation of artificial skeletal muscle tissues by a magnetic force-based tissue engineering technique.</a> Journal of Bioscience and Bioengineering. 108 (6), 538-543 (2009).</li>
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<li>Amiri, M., Salavati-Niasari, M., Pardakhty, A., Ahmadi, M., Akbari, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caffeine%3A+A+novel+green+precursor+for+synthesis+of+magnetic+CoFe2O4+nanoparticles+and+pH-sensitive+magnetic+alginate+beads+for+drug+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Materials+Science+and+Engineering%3A+C%22%5BJournal%5D)">Caffeine: A novel green precursor for synthesis of magnetic CoFe2O4 nanoparticles and pH-sensitive magnetic alginate beads for drug delivery.</a> Materials Science and Engineering: C. 76, 1085-1093 (2017).</li>
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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

高速かつ効率的なマイクロ波ベースの合成を使用して、磁気ナノ粒子は、制御されたサイズで、容易に合成することができ、さらに与えられた分子でコーティングされています。重要なステップは、鉄塩とベンジルアルコールを真空下でストックし、小さな分散液を小さく保つことです。ベンジルアルコールは溶媒とリガンドの両方として作用すると同時に、追加のリガンドを必要とせずに直接較正されたベア酸化鉄を得ることができます。ナノ粒子が水中に移動した後、裸の磁性ナノ粒子は、多種多様なリガンドで容易にコーティングすることができる。このコーティングは、細胞内在化に影響を与えることができるナノ粒子間およびナノ粒子細胞相互作用特性を与え、生物医学的用途には最低限の内在化として厳しく制御する必要があるパラメータが必要であり、高い内在化は細胞に損傷を与え、細胞傷害事象31を引き起こす可能性がある。磁気測定は、セルロ内の磁気ナノ粒子の運命と同様に、この内在化を評価するための強力なツールです。幹細胞に磁気ナノ粒子を組み込む際に、単純遠心分離を経て、細胞の増殖を停止し、細胞外マトリックス産生を促進する培地で培養を行って、スフェロイドを形成す...

広範囲の生物医学用途に対する酸化鉄ナノ粒子の磁気的特徴に対する関心が高まっている。磁気共鳴に対する応答は、磁気共鳴画像法(MRI)の信頼性の高い造影剤を作り、磁気ナノ粒子で標識された細胞を移植1後に生体内で追跡できる再生医療における利点である。磁場を使用すると、距離でセルを誘導することもできます。このように、セルラーススフェロイド2、3、リング4、またはシート5は、磁気的に設計され、また足場のない組織の開発における資産である6を遠隔刺激することができる。これらのナノ粒子の可能性の範囲はまた、薬物送達システム7、8および癌細胞9、10、11を殺すために磁気および光誘導性高熱治療を含む。これらすべての用途に対して、ナノ粒子は、静脈内注射または細胞内の直接の内在化によって生物学的環境に統合され、その後、その中に残され、細胞内の運命に疑問をもたらします。
生体内分析は、生体内のナノ粒子の運命の一般的な理解を伝えた:血流中の注入時に、それらは最初に肝臓(クファー細胞)、脾臓および骨髄のマクロファージによって主に捕捉され、徐々に分解され、生物12、13、14、15、16、17、18、18の鉄プールに結合する。定性的な観察は、生物全体のナノ粒子の循環のためにのみ可能です。典型的には、透過電子顕微鏡(TEM)を使用して、ナノ粒子を直接観察することができ、器官中の鉄の存在は、投与量を介して決定することができる。最近では、それらの運命は細胞のプールで直接評価されており、鉄分けのない近い回路では、細胞レベル20、21、22での生体変換の定量的測定が可能である。このような測定は、構造の完全性に密接に関連しているナノ粒子の磁気特性の分析によって可能である。振動サンプル磁気測定(VSM)は、誘導されたフラックスのコイル測定が適用された磁場でのサンプルの磁気モーメントを提供するようにサンプルを周期的に振動させる技術です。このような同期検出は、多数のサンプル20、21、22、23の磁気モーメントを決定するための資産である迅速な測定を可能にする。VSMによって得られた巨視的磁気シグネチャは、ナノ粒子のサイズと構造に直接相関する生物学的サンプル全体の定量的な概要を与える。特に、サンプルの飽和時の磁気モーメント(emuで表す)を提供し、これはサンプル中に存在する磁気ナノ粒子の数をそれぞれ特異的な磁気特性に直接定量するものである。
磁気ナノ粒子の細胞内処理は、その構造特徴20と密接に結びついていることが示されている。これらの機能は、最適な合成プロトコルを介して制御することができます。各プロトコルには利点と制限があります。酸化鉄ナノ粒子は、一般的に、鉄イオン24の共沈を介して水溶液中で合成される。ナノ粒子サイズの多分散性の限界を克服するために、ポリオール媒介ゾルゲル法などの他の合成方法が25に開発されている。熱分解による非水性アプローチは、非常によく較正された酸化鉄ナノ粒子26の製造につながる。しかし、オレイラミンやオレイン酸のような大量の界面活性剤を使用すると、生物医学の用途のために機能化と水の移動が複雑になります。このため、このような磁性ナノ粒子を、高い結晶性、純度、再現性27に至る非水性ゾルゲル経路を介して合成する。このプロトコルは、温度変動28によって調整することができる十分に制御されたサイズのナノ粒子を生成する。それにもかかわらず、マイクロ波支援非水性ゾルゲル経路は、12nm前後の得られたナノ粒子の上限サイズ制限を有する。この手順は、室温で強磁性粒子を使用するアプリケーションには適合しません。コア合成に加えて、検討されるもう一つの主な特徴はコーティングである。ナノ粒子の表面に横たわって、コーティングはアンカー分子として機能し、ナノ粒子の標的化された内在化を助ける、またはナノ粒子を分解から保護することができる。ベンジルアルコールは酸素源とリガンドとして同時に作用するため、追加の界面活性剤やリガンドを必要とせずに裸ナノ粒子が生成されます。ナノ粒子は、界面活性剤交換プロセスなしで合成後に容易に機能する表面化される。
本明細書において、2種類のナノ粒子が同じコアを有し、コーティングにおいて異なると評価される。コアは高速かつ高効率のマイクロ波ベースの技術を使用して合成されます。比較した2つのコーティングは、バイオメディカルアプリケーションで最も使用されるクエン酸、29、30、およびポリアクリル酸(PAA)、キレート機能の高いポリマーコーティングで構成されています。VSM磁気測定は、まず細胞のナノ粒子取り込みの定量を行い、次に幹細胞内在化時のナノ粒子構造の完全性を直接評価するために使用されます。結果は、インキュベーション濃度がナノ粒子の取り込みに影響を与え、コーティングが劣化に影響を与えることを示し、PAAのアンカー分子の数が多く、コアを劣化から保護する。

<table><tbody><tr><td>0.05% トリプシン-EDTA (1x)</td><td>Life Technologies</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>合成用ベンジルアルコール</td><td>Sigma Aldrich</td><td>8.22259</td><td></td></tr><tr><td>デキサメタゾン</td><td>Sigma</td><td>D4902</td><td>エタノール100%で希釈した1 mMストック溶液を調製し、-20°Cで保存します。C</td></tr><tr><td>ジクロロメタン &ge;99%安定、GPR RECTAPUR</td><td>VWR 化学物質</td><td>23367</td><td></td></tr><tr><td>DMEM と Glutamax I</td><td>Life Technologies</td><td>31966-021</td><td>ピルビン酸ナトリウムなし、HEPES</td></tr><tr><td>エタノール絶対</td><td>VWR</td><td>20821.310</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Life Technologies</td><td>10270-106</td><td></td></tr><tr><td>ホルマリン溶液 10% 中性緩衝シ</td><td>グマ</td><td>HT5012</td><td></td></tr><tr><td>塩酸、1.0N標準化溶液</td><td>Alfa Aesar</td><td>35640</td><td></td></tr><tr><td>アセチルアセトン酸鉄(III) (> 99.9%)</td> <td>Sigma Aldrich</td><td>517003</td><td></td></tr><tr><td>ITS Premix Universal Culture Supplement (20x)</td><td>Corning</td><td>354352</td><td></td></tr><tr><td>L-アスコルビン酸 2-リン酸</td><td>Sigma</td><td>A8960</td><td>蒸留水で希釈した新鮮な濃縮溶液(25 mM)を調製します</td></tr> L<tr><td>-プロリン</td><td>Sigma</td><td>P5607</td><td>蒸留水で希釈した175 mMのストック溶液を調製し、4°Cで保存します。C</td></tr><tr><td>間葉系幹細胞 (MSC)</td> <td>ロンザ</td><td>PT-2501</td><td></td></tr><tr><td>モノウェーブガラスバイアル</td><td>アントンパール</td>社 <td>82723_us</td><td></td></tr><tr><td>マイクロ波反応器</td><td>アントンパール</td>社 <td>モノウェーブ 300</td><td></td></tr><tr><td>MSCGM BulletKit 培地</td><td>ロンザ</td><td>PT-3001</td><td>完全な培地として、付属の BulletKit (血清、グルタミン、抗生物質を含む) を MSCGM 培地</td></tr><tr><td>PBS w/o CaCl2 w/ に加えます。o MgCl2</td><td>Life Technologies</td><td>14190-094</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン (10.000U/mL)/ストレプトマイシン (10.000&micro;g / mL)</td><td>Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr>ポリ<tr><td>(アクリル酸、ナトリウム塩)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>416010</td><td>MW = 1200 g / mol</td></tr><tr><td>RPMI中1640、グルタミンなし</td><td>Life Technologies</td><td>31870-025</td><td>ピルビン酸ナトリウム、HEPES</td></tr>水<tr><td>酸化ナトリウム、1.0N標準化溶液</td><td>Alfa Aesar</td><td>35629</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム溶液 100mM</td><td>Sigma</td><td>S8636</td><td></td></tr><tr><td>滅菌円錐形遠心分離管</td><td>ファルコン</td><td>352097</td><td>15 mL チューブ</td></tr><tr><td>トリプシン-EDTA (0.05%)、フェノールレッド</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>25300054</td><td></td></tr><tr><td>クエン酸三ナトリウム</td><td>VWR</td><td>33615.268</td><td>蒸留水で希釈した 1 M ストック溶液を調製し、4>C</td></tr><tr><td>クエン酸三ナトリウム二水和物、分析用認定 AR</td><td>Sigma Aldrich</td><td>10396430</td><td></td></tr><tr><td>Ultra 遠心フィルター</td><td>Amicon</td><td>AC S510024</td><td></td></tr></tbody></table>

磁気測定を用いて細胞の組み込みとそれに続く化学的合成酸化鉄ナノ粒子の生分解をモニタリングする

Using Magnetometry to Monitor Cellular Incorporation and Subsequent Biodegradation of Chemically Synthetized Iron Oxide Nanoparticles

酸化鉄で作られた磁性ナノ粒子は、細胞内にしばしば内在し、その後内部に残される生物医学的用途の広い範囲に独特の関心を提示する。1つの課題は、信頼性の高い正確な方法論で細胞内環境における彼らの運命を評価することです。ここでは、振動サンプル磁力計(VSM)を用いて、磁気モーメントを測定することで、細胞内の磁性ナノ粒子の完全性を正確に定量化する。幹細胞は、まず2種類の磁性ナノ粒子で標識されます。ナノ粒子は、迅速かつ効率的なマイクロ波ベースの非水溶液ゾルゲル合成を介して生成される同じコアを有し、そのコーティングにおいて異なる:一般的に使用されるクエン酸分子は、ポリアクリル酸と比較される。3Dセルスフェロイドの形成は遠心分離によって達成され、これらの回転楕円体の磁気モーメントはVSMと異なる時間に測定される。得られた瞬間は、ナノ粒子の完全性の直接の指紋であり、ナノ粒子の分解を示す値が減少する。両方のナノ粒子について、磁気モーメントは培養時間の経過とともに減少し、その生分解を明らかにする。クエン酸と比較した場合、ポリアクリル酸コーティングの保護効果も示される。

マイクロ波支援合成を用いて、単分散8.8±2.5nmコアサイズの磁性ナノ粒子が製造され、クエン酸またはPAAのいずれかでコーティングされる(図1A)。次いで、これらのナノ粒子を一定の濃度で培養培地に分散させて培養し、細胞内エンドソーム内でエンドサイトーシスと閉じ込めを行う(図1B)。次いで磁気幹細胞を培地に懸濁し、遠心分離し、形成された細胞ペレットを最大21日間培養する(図1C)。得られたスフェロイドは、生物学的プロセスを停止するなどの固定され、VSMを介して測定されるまでPBSに保管する。
まず、ナノ粒子溶液の磁気モーメントを、7μgの鉄を含むナノ粒子水分散液の10μLを測定して、得られた曲線を図2Aに示したVSMを用いて測定する。この溶液中の水の存在、およびサンプルホルダーに、ナノ粒子の超常磁性信号に加えて、対磁性信号が捕捉される。<stro...

酸化鉄ナノ粒子は、非水性ゾルゲル法を介して合成され、アニオン性短分子またはポリマーでコーティングされる。ヒト幹細胞内部の磁気ナノ粒子の組み込みや生体変換をモニタリングするための磁気測定の使用は、振動試料磁力計(VSM)を用いて実証されています。

Magnetic nanoparticles, made of iron oxide, present a peculiar interest for a wide range of biomedical applications for which they are often internalized ...

磁気ナノ粒子の合成や磁気測定を用いた、生物環境の変化を撮影するための高速かつ効率的な方法を紹介します。磁気ナノ粒子は、生物医学の応用のために注目を集めています, そして、それは細胞内で一度内在化した運命を理解することが重要です.これは、セルラー磁気を測定することによって、ここで達成されます。磁気ナノ粒子の合成と測定の両方で、結果は汚染の影響を受ける可能性があります。よく洗浄された化学バイアルを使用し、磁力計装置が汚染のないようにしてください。磁気測定サンプルホルダーは、通常、粉末サンプルに使用されます。ホルダーの使用を液体または生物学的サンプルに適合させる方法を示す。30ミリリットルマナ波ガラスバイアルでは、ベンジルアルコールの10ミリリットルに鉄3アセチルアセトネートの400ミリグラムを溶解します。マイクロ波反応器を使用して、1分間に摂氏11.25度の速度で摂氏25度から250度まで懸濁液を加熱し、摂氏250度に保ちます。ナノ粒子を分離するには、ネオジム磁石を30分間塗布します。ナノ粒子をペレット化するには、指定された洗浄液の10ミリリットルを用いて一連の洗浄を行い、ネオジム磁石を5分間塗布する。濾液を取り除き、10の12ミリリットルをマイナス2モル塩酸に加えます。懸濁液を100キロダルトンフィルターと2、200回Gで10分間遠心分離する。その後、ナノ粒子を10ミリリットルの10ミリリットルからマイナス2モル塩酸に再懸濁させる。原稿に記載されているとおりにコーティング分子溶液を調製する。コーティング分子とナノ粒子との間に5対1の質量比で10ミリリットルナノ粒子水分散液をコーティング分子溶液に加えます。次いで、磁気攪拌機を使用して室温で2時間混合物を攪拌します。反応が完了したら、1モルの水酸化ナトリウムを用いて混合物のpHを7に調整する。ヒト間葉系幹細胞の培養が5%と90%コンフルエントの経過にある場合、培地を取り除き、グルタミンを含まない無血清RPMIで細胞をすすい洗う。各150平方センチメートルの培養フラスコに、ナノ粒子懸濁液の10ミリリットルを加える。フラスコを摂氏37度、炭酸ガス5%で30分間インキュベートします。次にナノ粒子懸濁液を含む培地を廃棄し、細胞を無血清RPMI 1640で1回洗浄する。10%FBSと1%ペニシリンストレプトマイシンを添加したDMEMを追加します。一晩摂氏37度と5%の二酸化炭素でインキュベートし、ナノ粒子の完全な内部化を可能にします。磁気標識されたMSCの各フラスコに摂氏37度を予感させた0.05%トリプシンEDTAの10ミリリットルを加えます。2〜3分後、細胞が剥離されると、すぐに事前に警告された補足DMEMの体積の3分の1を加えることによってトリプシンを不活性化する。260倍Gで5分間分離した細胞を遠心分離する。培地を吸引し、50マイクロリットル当たり約200,000個の細胞濃度で少量の細胞スフェロイド培地中の細胞を再懸濁する。15ミリリットルの無菌の円錐形遠心分離チューブに作りたての細胞スフェロイド培地を1ミリリットル加えます。その後、200,000個の細胞に相当する細胞懸濁液の体積を加える。これらの磁気標識細胞を180倍Gで3分間遠心分離し、チューブの底部に細胞ペレットを形成した。その後、チューブを摂氏37度、炭酸ガス5%に入れ、キャップをガス交換のためにわずかに開いたままにします。特定の体積の磁気ナノ粒子または固定単一セル回転楕円ストールを、振動サンプル磁力計(VSM)サンプルホルダーに入れます。必要に応じて、PTFEテープを使用して漏れを防ぐことができます。サンプルホルダーを VSM に挿入し、サンプルオフセットをスキャンします。サンプルを最大磁化に対応する位置に配置します。負の1,500エルステッドと正の1,500のエルステッドの間の低磁場で最初の測定を1秒あたり20のエルステッドの速度で行います。ゼロエルステッドと正の30,000エルステッドの間の高磁場で毎秒200のエルステッドの速度で2回目の測定を行います。水溶液中に分散したナノ粒子の10マイクロリットルを、振動試料磁力計で測定した。曲線の第2の部分の傾きは、水とサンプルホルダーからの対磁性信号を表す、対磁性定数である。この対磁性定数は、溶液の磁気モーメントから差し引き、ナノ粒子の磁気モーメントのみを得た。その後、飽和時の磁気モーメントが決定されました。コーティングされたナノ粒子を幹細胞に内在化した。電子顕微鏡画像は、エンドーソームに閉じ込められたクエン酸被覆ナノ粒子とPAAコーティングナノ粒子を示す。遠心分離によって細胞をペレット化した後、長期間培養中に保つことができる細胞スフェロイドを形成した。個々の細胞回転楕円体もVSMを用いて測定し、飽和磁気モーメントを使用して細胞サンプル中のナノ粒子の量を計算した。ナノ粒子の取り込みは、そのインキュベーション濃度に依存することが判明した。時間の経過に伴う細胞回転楕円体の磁性の低下は、ナノ粒子の生分解を示し、これは電子顕微鏡で確認された。分解は、PAAコーティングされたナノ粒子よりもクエン酸被覆ナノ粒子においてより実質的であった。磁気測定を用いることにより、細胞内の磁性ナノ粒子の分解を正確に定量化することができ、ナノ粒子の将来が生の挙動に関心を持つ場合の影響を評価することができます。このプロトコルでは、磁気測定測定は細胞回転楕円体で行われましたが、細胞を懸濁液または臓器に拡張することができます。説明した方法を使用すると、興味のある異なる細胞系で新しく設計された磁気ナノ粒子の相互作用を探索することができますが、生体内の生体分布と運命に従うこともできます。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

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