Name: マウスの不感性リンパ管を縫合することによりリンパ流を遮断する (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 59 s
Description: 学ぶマウスの不感性リンパ管縫合によるリンパ流遮断法。リンパ管内皮細胞への損傷を最小限に抑え、遮断タイミングを精密に制御することで、恒常性と免疫応答におけるリンパ流の役割を詳細に研究できます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

著者らは、原稿の校正をアヴァ・ザルディネズハドに感謝する。この研究は、カナダ保健研究所(CIHR、PJT-156035)、カナダSLイノベーション財団(32930)、中国国立自然科学財団(81901576)によって支援されています。

すべての動物の仕事は、制度的および政府の倫理と動物の取り扱い委員会によって承認される必要があります。 これは非生存手術です。
1. 材料の準備
<ol><li>70mLのエタノール70mLを30mLの無菌水と混合して、70%エタノールの100mLを調製します。手術前にすべての手術ツールをオートクレーブし、殺菌を維持するために手術前と手術中に70%エタノールでツールを維持します。</li>
	<li>注射装置を準備します。<ol>
<li>ポリエチレンチューブ(直径0.28mm)を30cmカット。30 G x 1/2 針の先端 (針 A) をポリエチレンチューブの一端に接続します。慎重に別の30 G x 1/2針(針B)を取り外し、壊れた側をポリエチレンチューブのもう一方の端に接続します。</li>
		<li>1 mL 結核シリンに針Aを取り付けます。 注:このポリエチレンチューブの場合、チューブ内の1.6 cmの流体は1 μL20に相当します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>10:1ケタミン/キシラジン混合物(10 mg/mLケタミンと1mg/mLキシラジン)を塩分(静菌0.9%[w/v]塩化ナトリウム)で調製します。使用前にソリューションを新たに準備してください。</li>
</ol>2. 手術のための動物の準備
注:6-10週齢のマウスを使用してください。雌マウスと雄マウスの両方を使用できます。本研究では、生後6−10週齢のC57BL/6雌マウスを使用した。この方法は、他のマウス株に適合させることができる。
<ol><li>腹腔内に250μLのケタミン/キシラジン混合物を注入してマウスを麻酔します。マウスが完全に眠るまで待ちます。マウスがつま先のピンチに反応せず、完全な麻酔を検出しないようにします。</li>
	<li>髪の毛のバリカンで脚の周りに毛皮を剃ります。</li>
	<li>脚の周りに脱毛クリームを塗布し、5分待ちます。湿った組織を使用して残留ファーと脱毛クリームを拭き取り、滅菌水で脚をきれいにします。脚の周りに70%エタノールをスプレーして、手術領域を殺菌します。エタノールは、切開部位に制限されています.</li>
</ol>3. 不発性リンパ管の外科的縫合
注: 右脚が縫合され、左脚がシャムコントロールとして使用されます。リンパ縫合プロトコル(ステップ3.1-3.8)は20〜30分かかります。
<ol><li>マウスを起こしやすい位置に保ち、外科用テープで固定して右足の手術領域を露出させます。</li>
	<li>イント皮下にフットパッドにチューブ注入装置の1%エバンスブルー染料または9cmの流体の5μLを注入します。静かにエバンスブルーがリンパ管に入るのを助けるためにフットパッドをマッサージします。 注:インスリン注射器は、少量注入のために制御することは容易ではありません。この容積は、注入装置を用いてより正確に制御することができる。リンパ管は皮膚下の青色染料によって可視化される。広範な訓練により、両方の眼下リンパ管は、サペヌス動脈と平行な脂肪組織の透明な血管として肉眼で見ることができる。広範な訓練によって、染料からの潜在的な妨害の懸念がある場合にエバンスブルー染料を注入せずに容器を縫合することが可能である。</li>
	<li>解剖顕微鏡下で、卵子の下端から5mmの切開部位を選択します。皮膚に小さな切開(約5mm)をはさみで作ります。微細な操作鉗子を用いて、切開を伸ばし、採取したリンパ管を露出させる(図1A)。 注:必要に応じて、小さな皮膚断片を取り除き、リンパ管を露出させることができます。</li>
	<li>pRNに至る両方の異性リンパ管を解剖顕微鏡で同定する(図1B)。 注:フットパッドからpLNまで、2つの感性リンパ管があります。両方ともリンパの流れを完全に遮断するために縫合される必要がある。</li>
	<li>針ホルダーを使用して、眼下リンパ管とサフェヌス動脈の間に縫合針(0.7メートル以下)を慎重に挿入し、眼球リンパ管の周りに針をそっと引き出す。縫合糸ストリングをそっと引っ張り、縫合糸の約2cmを後ろに残します。針ホルダーを使用して、ひもをしっかりと縫合して、外科医の結び目を持つ1つのリンパ節を縫合するのに役立ちます(図1C)。 注:切開部の下の組織は、空気への長時間の暴露で乾燥する可能性があります。切開をできるだけ小さくし、縫合を速やかに行う(すなわち5分以内)組織が乾燥するのを防ぎます。綿棒で少量の生理食水を塗布することで、組織の水分を維持します。</li>
	<li>フットパッドを穏やかにマッサージして、エバンスブルー染料が縫合部位を通過しないようにしてから、余分なひもをはさみで切ります。</li>
	<li>他の不感なリンパ血管に同じ縫合ステップ(すなわち、ステップ3.5および3.6)を行う(図1D)。ステップ3.5で血管を縫合するために使用したのと同じ縫合糸で皮膚切開を閉じる(図1E)。</li>
	<li>シャムコントロールのために、皮内に左フットパッドに1%のエバンスブルー染料の5μLを注入し、リンパ管を視覚化するためにフットパッドをマッサージする。切除で皮膚を開き、血管を縫合せずに傷口を閉じる(図1F)。</li>
	<li>必要に応じて、操作されたマウスを2-4時間監視します。脚の縫合線側は、エバンスブルーが太ももに広がった浮腫を示し、コントロールレッグはフットパッドに制限されたエバンスブルー染料を示すはずです。マウスが目覚めた場合、追加のケタミン/キシラジンミックスが注入され、安楽死するまで麻酔を維持する。</li>
</ol>4. リンパ流の追跡
<ol><li>手術直後、皮内に2%フルオレセインイソチオシアネート(FITC)の10μLをコントロールとリンパ球縫合脚の両方のフットパッドに注入する。</li>
	<li>ケタミン/キシラジン混合物の400 μLでマウスを安楽死させ、マウスを完全に麻酔をしたとき、子宮頸部転位を行います。</li>
	<li>POPLITEフォッサからpRNを収集し、FITC注入後2、6、12時間で解剖顕微鏡の下でpRNの周りのペリノダル脂肪組織を慎重に除去します。</li>
	<li>最適な切断温度(OCT)化合物で、クリオブオールの側面に向いた髄質洞領域をpRNに埋め込む(図1G,H)。</li>
	<li>凍結煙を使用して20μmの凍結セクションを準備します。</li>
	<li>共焦点顕微鏡の下でクライオセクションを画像化してFITC分布を決定します。</li>
</ol>

<ol><li>Pflicke, H., Sixt, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preformed+portals+facilitate+dendritic+cell+entry+into+afferent+lymphatic+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Preformed portals facilitate dendritic cell entry into afferent lymphatic vessels.</a> The Journal of Experimental Medicine. 206, 2925-2935 (2009).</li>
<li>Schmid-Schonbein, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microlymphatics+and+lymph+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reviews%22%5BJournal%5D)">Microlymphatics and lymph flow.</a> Physiological Reviews. 70, 987-1028 (1990).</li>
<li>Skalak, T. C., Schmid-Schonbein, G. W., Zweifach, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+morphological+evidence+for+a+mechanism+of+lymph+formation+in+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+Research%22%5BJournal%5D)">New morphological evidence for a mechanism of lymph formation in skeletal muscle.</a> Microvascular Research. 28, 95-112 (1984).</li>
<li>Johnston, M. G., Hay, J. B., Movat, H. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetics+of+prostaglandin+production+in+various+inflammatory+lesions%2C+measured+in+draining+lymph%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Kinetics of prostaglandin production in various inflammatory lesions, measured in draining lymph.</a> The American Journal of Pathology. 95, 225-238 (1979).</li>
<li>Eisenhoffer, J., Yuan, Z. Y., Johnston, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+that+the+L-arginine+pathway+plays+a+role+in+the+regulation+of+pumping+activity+in+bovine+mesenteric+lymphatic+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+Research%22%5BJournal%5D)">Evidence that the L-arginine pathway plays a role in the regulation of pumping activity in bovine mesenteric lymphatic vessels.</a> Microvascular Research. 50, 249-259 (1995).</li>
<li>Gasheva, O. Y., Zawieja, D. C., Gashev, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contraction-initiated+NO-dependent+lymphatic+relaxation%3A+a+self-regulatory+mechanism+in+rat+thoracic+duct%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Contraction-initiated NO-dependent lymphatic relaxation: a self-regulatory mechanism in rat thoracic duct.</a> Journal of Physiology. 575, 821-832 (2006).</li>
<li>Breslin, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+endothelial+growth+factor-C+stimulates+the+lymphatic+pump+by+a+VEGF+receptor-3-dependent+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-+Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Vascular endothelial growth factor-C stimulates the lymphatic pump by a VEGF receptor-3-dependent mechanism.</a> American Journal of Physiology- Heart and Circulatory Physiology. 293, 709-718 (2007).</li>
<li>Randolph, G. J., Angeli, V., Swartz, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic-cell+trafficking+to+lymph+nodes+through+lymphatic+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Immunology%22%5BJournal%5D)">Dendritic-cell trafficking to lymph nodes through lymphatic vessels.</a> Nature Reviews. Immunology. 5, 617-628 (2005).</li>
<li>Mempel, T. R., Henrickson, S. E., Von Andrian, U. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T-cell+priming+by+dendritic+cells+in+lymph+nodes+occurs+in+three+distinct+phases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">T-cell priming by dendritic cells in lymph nodes occurs in three distinct phases.</a> Nature. 427, 154-159 (2004).</li>
<li>Gerner, M. Y., Casey, K. A., Kastenmuller, W., Germain, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cell+and+antigen+dispersal+landscapes+regulate+T+cell+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Dendritic cell and antigen dispersal landscapes regulate T cell immunity.</a> The Journal of Experimental Medicine. 214, 3105-3122 (2017).</li>
<li>Kastenmuller, W., Torabi-Parizi, P., Subramanian, N., Lammermann, T., Germain, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+spatially-organized+multicellular+innate+immune+response+in+lymph+nodes+limits+systemic+pathogen+spread%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A spatially-organized multicellular innate immune response in lymph nodes limits systemic pathogen spread.</a> Cell. 150, 1235-1248 (2012).</li>
<li>Gerner, M. Y., Torabi-Parizi, P., Germain, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategically+localized+dendritic+cells+promote+rapid+T+cell+responses+to+lymph-borne+particulate+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Strategically localized dendritic cells promote rapid T cell responses to lymph-borne particulate antigens.</a> Immunity. 42, 172-185 (2015).</li>
<li>Moussion, C., Girard, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+control+lymphocyte+entry+to+lymph+nodes+through+high+endothelial+venules%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells control lymphocyte entry to lymph nodes through high endothelial venules.</a> Nature. 479, 542-546 (2011).</li>
<li>Gretz, J. E., Norbury, C. C., Anderson, A. O., Proudfoot, A. E., Shaw, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymph-borne+chemokines+and+other+low+molecular+weight+molecules+reach+high+endothelial+venules+via+specialized+conduits+while+a+functional+barrier+limits+access+to+the+lymphocyte+microenvironments+in+lymph+node+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Lymph-borne chemokines and other low molecular weight molecules reach high endothelial venules via specialized conduits while a functional barrier limits access to the lymphocyte microenvironments in lymph node cortex.</a> The Journal of Experimental Medicine. 192, 1425-1440 (2000).</li>
<li>Mebius, R. E., Breve, J., Duijvestijn, A. M., Kraal, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+function+of+high+endothelial+venules+in+mouse+lymph+nodes+stimulated+by+oxazolone%5BTitle%5D)+AND+%22Immunology%22%5BJournal%5D)">The function of high endothelial venules in mouse lymph nodes stimulated by oxazolone.</a> Immunology. 71, 423-427 (1990).</li>
<li>Mebius, R. E., Streeter, P. R., Breve, J., Duijvestijn, A. M., Kraal, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+afferent+lymphatic+vessel+interruption+on+vascular+addressin+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">The influence of afferent lymphatic vessel interruption on vascular addressin expression.</a> Journal of Cell Biology. 115, 85-95 (1991).</li>
<li>Mebius, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+GlyCAM-1%2C+an+endothelial+ligand+for+L-selectin%2C+is+affected+by+afferent+lymphatic+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Expression of GlyCAM-1, an endothelial ligand for L-selectin, is affected by afferent lymphatic flow.</a> Journal of Immunology. 151, 6769-6776 (1993).</li>
<li>Drayton, D. L., Liao, S., Mounzer, R. H., Ruddle, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphoid+organ+development%3A+from+ontogeny+to+neogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Immunology%22%5BJournal%5D)">Lymphoid organ development: from ontogeny to neogenesis.</a> Nature Immunology. 7, 344-353 (2006).</li>
<li>Tomei, A. A., Siegert, S., Britschgi, M. R., Luther, S. A., Swartz, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluid+flow+regulates+stromal+cell+organization+and+CCL21+expression+in+a+tissue-engineered+lymph+node+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Fluid flow regulates stromal cell organization and CCL21 expression in a tissue-engineered lymph node microenvironment.</a> Journal of Immunology. 183, 4273-4283 (2009).</li>
<li>Liao, S., Jones, D., Cheng, G., Padera, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Method+for+the+quantitative+measurement+of+collecting+lymphatic+vessel+contraction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Methods%22%5BJournal%5D)">Method for the quantitative measurement of collecting lymphatic vessel contraction in mice.</a> Journal of Biological Methods. 1, 6(2014).</li>
<li>Lin, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perinodal+Adipose+Tissue+Participates+in+Immune+Protection+through+a+Lymphatic+Vessel-Independent+Route%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Perinodal Adipose Tissue Participates in Immune Protection through a Lymphatic Vessel-Independent Route.</a> Journal of Immunology. 201, 296-305 (2018).</li>
<li>Gardenier, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diphtheria+toxin-mediated+ablation+of+lymphatic+endothelial+cells+results+in+progressive+lymphedema%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation+Insight%22%5BJournal%5D)">Diphtheria toxin-mediated ablation of lymphatic endothelial cells results in progressive lymphedema.</a> Journal of Clinical Investigation Insight. 1, 84095(2016).</li>
</ol>

著者らは開示する利益相反を持っていません。

リンパ流を遮断することは、健康で病気の状態でLNへの抗原送達を操作する広範な用途を有するであろう。この方法を用い、連続リンパ流がリンゲンの流出における免疫応答を調節する方法を研究するために、抗原送達のタイミングを制御することができる。リンパ流中断のこの方法は、リンパがLNにおける細胞区画化、細胞活性化、細胞移動、および細胞間相互作用に与える影響を研究するためにも使用することができる。
ヒトジフテリア毒素受容体(DTR)をリンパ管内皮細胞(Flt4-cre-dtr)で特異的に発現するマウスが開発されている。これらは、リンパ管を特異的に枯渇させるためにリンパ管を枯渇させるためにリンパ管機能22を研究するために使用することができる。DTの投与は、リンパ管に沿って、LNでリンパ内皮細胞を殺す。リンパ性内皮細胞の枯渇は、リンパ機能を研究するために、局所的または全身的にリンパ流を完全に消耗させることができる。この方法は、組織に重要な流体蓄積を引き起こし、リンパ浮腫およびリンパ機能を研究するための素晴らしいモデルとして機能します。...

リンパ系の空間組織は、細胞外液を効率的に除去し、抗原および抗原提示細胞(APC)を排出するLNsに輸送するための構造的および機能的なサポートを提供する。初期リンパ管(リンパ管管とも呼ばれる)は、細胞間の不連続な接合により透過性が高く、周囲の細胞外空間から液体、細胞、および他の物質を効果的に収集しやすくする1。最初のリンパ管は、細胞間の接合が緊密で、連続的な基盤膜、リンパ筋のカバレッジを有するリンパ管を採取する。リンパ管の採取は、採取したリンパを排水中のLUNに輸送し、最終的にリンパを循環2,3に戻す役割を担う。リンパを排水LNに推進する集水性リンパ管は、不発泡リンパ管4、5、6、7である。発泡性リンパ管の閉塞は、リンパ流の機能を研究する際に有用な技術であるLNsへのリンパ流を遮断する可能性がある。
これまでの研究では、リンパ流は抗原およびAPCを輸送するだけでなく、LN恒常性を維持する上で重要な役割を果たしていることを示している。組織由来のAPCは、典型的には活性化された回遊樹状細胞(DC)が、不透過性リンパ管を通過してLNに移動し、T細胞8を活性化することがよく理解されている。微生物や可溶性抗原などの自由形抗原が、LNにリンパを持って受動的に流れ、LN居住APcを活性化するという考え方は、過去10年間で9、10、11、12で受け入れられています。リンパを伴って移動する自由形抗原は、感染後数分でLNに移動し、LN常駐細胞活性化は刺激後20分以内に起こり得る。これは、ドレイン LN9に入るのに 8 時間以上かかる DC の移行のアクティブ化よりもはるかに高速です。免疫保護を開始するために抗原を輸送することに加えて、リンパはまた、その微小環境を維持するためにサイトカインおよびDCをLNに運び、免疫細胞恒常性13、14をサポートする。以前は、アフェレントリンパ管を縫合することによりリンパ流を遮断し、LN15、16、17にホメオスタティックT細胞およびB細胞ホーミングをサポートするために必要なHEV表現型を維持するために必要なリンパが必要であることを実証した。CCL21は、LN8、18におけるDCおよびT細胞の位置を指示する重要なケモカインである。リンパ流を遮断すると、LNにおけるCCL21発現が中断し、LN19におけるDCおよびT細胞の位置決めおよび/または相互作用を中断する可能性がある。したがって、リンパ流を遮断すると、LN内の免疫応答を調節するLN微小環境を破壊することによって、抗原/DCのドレインLNへの直接または間接的なアクセスを遮断することができる。リンパ流の機能をより的調するために、フットパッドからpLNに対して、マウスのリンパ流を遮断する実験プロトコル(図1)を提示する。この方法は、健康で病気の状態でリンパ機能に関する将来の研究のための重要な技術となり得る。

<table><tbody><tr><td>0.9%塩化ナトリウム生理食塩水</td><td>Baxter</td><td>JB1323</td><td></td></tr><tr><td>100%エタノール</td><td>グリーンフィールドグローバル</td><td>カルガリーのカルガリー大学流通</td><td></td>サービスUN1170。</tr><tr><td>脱毛クリーム</td><td>Nair</td><td></td><td>Nairセンシティブフォーミュラ脱毛cr&egrave;スウィートアーモンドオイルとベビーオイル、200mlで私。または同様の製品。</td></tr><tr><td>エバンスブルー染料</td><td>Sigma Life Science</td><td>E2129-10G</td><td>エバンスブルー染料1mlに対して、0.1gのエバンスブルーを10mlPBSに加えます。Evens Blue 溶液は 0.22 mm フィルターでろ過され、1 ml アリコートで滅菌保たれます。</td></tr><tr><td><ストロング>フルオレセインイソチオシアネート異性体I.(FITC)</ストロング></td><td>シグマライフサイエンス</td><td>F7250-1G</td><td></td></tr><tr><td><ストロング>プス・フォーセプス・デュモン #3</ストロング></td><td></td>プス・デュモン <<td>500337</td>#5</ストロング>プセプス・デュモン #<td></td></tr><tr><td>5/ストロング></td><td>WPI</td><td>500233</td><td></td></tr><tr><td><ストロング>インジェクション装置</ストロング></td><td></td><td></td><td>ポリエチレンチューブの一端を30G&timesに接続します。&frac12;針。1mlのTB注射器を針に取り付けます。針軸を別の30Gから外します。&frac12;針。30Gの鈍い端を挿入します&times;&frac12;ニードルシャフトをチューブのもう一方の端に差し込みます。このチューブの内径は0.28mmです。したがって、チューブ内の1.6cmの流体は1&mu;lです。</td></tr><tr><td>インスリン注射器</td><td>Becton Dickinson and Company(BD)</td><td>329461</td><td></td></tr><tr><td>IRIS鉗子ストレート</strong</td><td>>WPI</td><td>15914</td><td></td></tr><tr><td>IRISはさみ</td><td>WPI</td><td>14218-G</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine</td><td>Narketan</td><td>DIN 02374994</td><td>ケタミンとキシラジンの供給者は、通常、制度的および政府の規制下にあります。</td></tr><tr><td><強い>針(26Gx3/8)</強い></td><td>ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー(BD)</td><td>305110</td><td></td></tr><tr><td><強い>針(30Gx1/2)</強い></td><td>ベクトン・ディッキンソン・アンド・カンパニー(BD)</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td><強い>パトン・ニードルホルダー</強い></td><td>ROBOZ</td><td>RS6403</td><td>ストレート、ロックなし;鋸歯状</td></tr><tr><td><強>リン酸緩衝生理食塩水(PBS)</強力></td><td>シグマライフサイエンス</td><td>P4417-100TAB</td><td></td></tr><tr><td><強力>ポリエチレンチューブ</強力></td><td>ベクトンディキンソンアンドカンパニー(BD)</td><td>427401</td><td></td></tr><tr><td><強力>サージカルテープ(1.25cmx9.1m)</強力></td><td>トランスポア</td><td>1527-0</td><td></td></tr><tr><td><強力>サージカルテープ(2.5cmx9.1m)</強力></td><td>トランスポア</td><td>1527-1</td><td></td></tr><tr><td><ストロング>縫合糸</ストロング></td><td>デイビス&ゲック シアナミド カナダ</td><td>11/04</td><td>0.7 メートル モノフィラメント ポリプロピレン</td></tr><tr><td><ストロング>シリンジ (1ml)</ストロング></td><td>ベクトン ディキンソン アンド カンパニー (BD)</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td><ストロング>バンナス ハサミ</ストロング></td><td>ワールド プレシジョンズ (WPI)</td><td>14122-G</td><td></td></tr><tr><td>キシラジン</td><td>Rompun</td><td>DIN02169606</td><td>ケタミンおよびキシラジンの供給者は、通常、制度的および政府の規制下にあります。</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><強力>装置</強力></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><強力>解剖顕微鏡</強力></td><td>オリンパス</td><td></td>オ<td>リンパスS261(522-STS OH141791)光源付き:オリンパスハイライト3100</td></tr><tr><td><強力>共焦点顕微鏡</強力></td><td>ライカ</td><td></td><td>SP8</td></tr></tbody></table>

マウスの不感性リンパ管を縫合することによりリンパ流を遮断する

Blocking Lymph Flow by Suturing Afferent Lymphatic Vessels in Mice

リンパ管は、組織液バランスを維持し、抗原、サイトカイン、細胞をリンパ節(LNs)に輸送することで免疫保護を最適化する上で重要です。リンパ管の機能を研究する際のリンパ流の中断は重要な方法である。マウスフットパッドからポピトリリンパ節(pRN)までの不浸透性リンパ管は、リンパがpRNに排出される唯一の経路として明確に定義されている。これらの不透過性リンパ管を縫合すると、リンパのリンパ流を選択的に防ぐことができます。この方法は、排水pLN、気泡性リンパ管、ならびに領域の周りの他のリンパ管におけるリンパ内皮細胞への損傷を最小限に抑えてリンパ流の干渉を可能にする。この方法は、LNにおける高内皮小胞(HEV)およびケモカイン発現にリンパ管がどのように影響し、機能的なリンパ管がない場合にLNを取り巻く脂肪組織をリンパがどのように流れるかを研究するために使用されてきた。リンパ機能の重要性の認識が高まる中、この方法は、LN微小環境および免疫応答を調節するリンパ管の機能をさらに解明するためのより広範な応用を有するであろう。

リンパ管縫合は、リンパ管の分子生物学が理解される前にリンパ流の機能を研究する重要なツールとして役立った以前の研究15、16、17、19で使用されてきた。リンパ流を遮断するとLN恒常性が遮断され、これは、LN15、16、17への最適なリンパ球ホーミングに必要な臨界遺伝子発現を失うことにつながる。それ以来、リンパを持って移動するDCがLN13にホーミングHEV遺伝子発現プロファイルおよびリンパ球を維持する上で重要であることを実証するのにさらに20年かかりました。リンパ流によって提供されるせん断応力は、LNにおけるケモカイン発現を刺激するために重要である。リ...

尿管性リンパ管の外科的縫合によってリンパの流れを遮断するプロトコルが提示される。

Lymphatic vessels are critical in maintaining tissue fluid balance and optimizing immune protection by transporting antigens, cytokines, and cells to ...

この方法は、リンパ内皮細胞への損傷を最小限に抑えてリンパ流を遮断し、遮断タイミングを正確に制御することで、リンパ流がリンパ節における恒常性および免疫応答にどのような影響を与えるかを調べることができる。この手順のデモンストレーションを手伝うのが、私の研究室の大学院生である景納徐さんです。注入装置を準備するために、ポリエチレンチューブのおよそ30センチメートルを切断する。針Aの先端をチューブの一端に接続します。別の針を慎重に取り外し、壊れた側をポリエチレンチューブのもう一方の端に接続します。その後、針Aを1ミリリットルの結核注射器に取り付けます。使用直前に、10:1ケタミンキシラジン混合物を生理食前に調製する。腹腔内にケタミン/キシラジン混合物を250マイクロリットル注入してマウスを麻酔した後、つま先ピンチで完全な麻酔を確実にする。毛のバリカンで脚の周りの毛皮を剃り、脚の周りに脱毛クリームを適用します。5分後、湿った組織を使用して残留ファーと脱毛クリームを拭き取り、滅菌水で脚をきれいにします。脚の周りに70%エタノールをスプレーして、手術領域を殺菌します。マウスを起こしやすい位置に置き、外科用テープを使用して右脚の手術領域を露出させます。皮内に1%エバンスブルー染料の5マイクロリットル、または注射装置から9センチメートルの液体をマウスの右足パッドに注入する。静かにリンパ管に入る流体を助けるためにフットパッドをマッサージします。解剖顕微鏡の下で、大窩窩の下端から5ミリメートルの切開部位を見つける。はさみを使用して、長さ約5ミリメートルの小さな切開を行います。その後、細かい操作鉗子を使用して切開を伸ばし、採取したリンパ管を露出させます。大窩リンパ節に至る両血管の同定。針ホルダーを使用して、眼下リンパ管と伏状動脈の間に縫合針を慎重に挿入する。軽く、尿管のリンパ管の周りに針を引き出します。縫合糸弦を慎重に引っ張り、縫合糸の約2センチメートルを後ろに残します。針ホルダーを使用して、外科医の結び目を結ぶのに役立ちます。エバンスブルー染料が縫合部位を通過しないようにフットパッドを穏やかにマッサージし、余分なひもをはさみで切ります。他の不フェレンチン性リンパ管を縫合し、リンパ管に使用したのと同じ縫合糸で皮膚切開部を閉じる。シャムコントロールのために、皮内に左足パッドに1%エバンスブルー染料の5マイクロリットルを注入し、フットパッドをマッサージする。切開で皮膚を開き、血管を縫合せずに傷口を閉じます。マウスの手術後にマウスを監視する場合、右足は浮腫を示し、エバンスブルー染料は太ももに広がり、コントロールレッグにはエバンスブルーの染料がフットパッドに制限されていることが示されます。手術直後、右足パッドと左パッドの両方に2%FITCの10マイクロリットルを皮内に注入する。FITC注射の2、6、および12時間後に、安楽死させたマウスの窩から亜大リンパ節を採取する。pRNの周りには、ペリノダル脂肪組織を慎重に取り除いてください。pRNを最適な切断温度化合物に埋め込み、髄質洞領域をクライオモールドの側面に向けます。凍結煙を使用して、20ミクロンの凍結したセクションを準備します。pRN 内の FITC 分布を決定するには、共焦点顕微鏡の下でクライオセクションを画像化します。FITC注射の2、6、および12時間後に撮影された共焦点画像は、不同性リンパ管を縫合した後の、大小リンパ節におけるFITC蓄積を大幅に減少させた。pRN中の残留FITCは、リンパ節副鼻腔に優先的に蓄積された。リンパ管が縫合によって閉塞されると、リンパ節脂肪組織の共焦点画像が示され、リンパ節が副鼻腔化するとFITCが組織に入るが、リンパ節全体に効果的に分布していない。この方法を試みるとき、血管とリンパ血管の間に縫合針を挿入することが重要であることを覚えておくことが重要です。このステップの失敗は、船舶を壊す可能性があります。この方法を行った後、感染または他の免疫刺激を有するマウスを免疫し、リンパ流が免疫保護を調節する方法を研究することが可能である。リンパ流の機能はよく理解されていない。この方法は、リンパ流がない場合のリンパ節における細胞の移動を研究するために使用することができる。

blocking-lymph-flow-by-suturing-afferent-lymphatic-vessels-in-mice

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

同じマウス内で時間をかけて免疫応答の進行を追跡するには、リンパ節は、順次手術によって除去することができる。ここでは、この手法を実行する方法について説明します。...

マウスの表在性リンパ節手術

このビデオでは、間質組織空間に異常な体液が蓄積し、尾の腫れを引き起こすマウス尾部リンパ浮腫をin...

マウス尾部リンパ浮腫モデル:マウス尾部に持続性リンパ浮腫を作製するためのIn vivo技術

このビデオは、マウスモデルからの鼠径部ドレナージリンパ節の外科的分離手順を示しています。腹部を切開すると、鼠径リンパ節へのアクセスが可能になり、これは外科的に採取されます。採取した半透明の鼠径リンパ節は、免疫学的研究に使用できます。...

マウスモデルからの鼠径部ドレナージリンパ節の採取

このビデオは、ラットの腸間膜リンパ管をカニューレ挿入する技術を示しています。この方法により、リンパ液中に存在する全量の成分に直接アクセスできます。...

リンパ液を採取するためのラットモデルにおける腸間膜リンパ管カニューレ挿入

ここでは、我々 は生体内の白血球、炎症、ナイーブから出口の定量化とマウス皮膚の悪性の方法を示します。我々 は 2 つのモデルの比較を実行: 経皮 FITC...

マウスの皮膚腫瘍からリンパ管を介して白血球出口の定量化

この動物モデルは、研究者がマウスの後肢で統計的に有意な二次リンパ浮腫を誘導することを可能にし、少なくとも8週間持続する。モデルはリンパ浮腫の病態生理学を研究し、新しい処置の選択を調査するために使用することができる。...

マウスの後肢における二次リンパ浮腫を誘導する改訂方法

リンパ浮腫はリンパ機能障害によって引き起こされる四肢腫脹である。リンパ浮腫の慢性マウステールモデルと、尾部への遺伝的貨物輸送のための組織ナノトランスフェクション技術(TNT)の新しい使用について述べています。...

ネズミ尾リンパ浮腫モデル

このプロトコルは、腸系膜リンパ節鎖上の4つのステーションそれぞれで安全かつ良好に耐容性のあるマウスの腸系膜リンパ腺摘出術の生存手順を記述しています。この手術は、遠位大腸、近位大腸、および/または小腸とのリンパ伝達の選択的障害を可能にするよう適応可能です。...

領域特異的腸管とのリンパ伝達の選択的障害のためのマウス腸系膜リンパ節摘出術

ここでは、ラットの深部頸部リンパ節またはその求心性リンパ管を顔面後静脈と吻合する手順を明確に定義し、他の変数の影響を最小限に抑え、手術ベースの研究の実施を標準化するためのプロトコルを提示します。...

ラットモデルにおける頸部深部リンパ静脈吻合のための外科的プロトコル:リンパ節およびリンパ管吻合

本論文は、マウスにおける頸部リンパ管およびリンパ流の収縮性を 体内で研究...

マウスの頸部リンパ管およびリンパ流の収縮率を生 体内 で2光子イメージングするための再現可能なセットアップ

学ぶマウスの不感性リンパ管縫合によるリンパ流遮断法。リンパ管内皮細胞への損傷を最小限に抑え、遮断タイミングを精密に制御することで、恒常性と免疫応答におけるリンパ流の役割を詳細に研究できます。

マウスの不感性リンパ管を縫合することによりリンパ流を遮断する

さらに動画を探す