Name: 自動イメージングシステムを用いたiPS細胞の合流点の測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-06-10T13:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 39 s
Description: 学ぶ自動イメージングシステムを用いたiPS細胞の合流点測定法。細胞外マトリックス被覆条件の違いが幹細胞の増殖に与える影響を非侵襲的に評価し、再生医療研究における最適培養条件の確立に貢献する。

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この研究は、Fondazione Bambino GesùおよびRicerca Corrente(イタリア保健省)からC.C.への助成金によって支援されました。 エンリコ・ベルティーニ博士(バンビーノ・ジェズ小児研究病院分子医学研究所神経筋・神経変性疾患ユニット神経科学部)、ステファニア・ペトリーニ博士(バンビーノ・ジェズ小児研究病院研究所共焦点顕微鏡中核施設)、ジュリア・ペリコリ博士(バンビーノ・ジェズ小児研究病院腫瘍血液学・遺伝子・細胞治療科) ロベルタ・フェレッティ(腫瘍血液学、遺伝子および細胞療法、小児研究病院バンビーノジェズ)の 科学的議論と技術的支援。マリアヴィンチは、「小児がん英国フェローシップ」の受賞者です。

1. 96ウェルプレートのコーティング
注:異なるコーティングは同じプレートでテストされましたが、別々のウェルでテストされました(補足ファイルを参照)。
<ol><li>マトリゲルをDMEMで1:100に希釈します。96ウェルプレートに1ウェルあたり100 μLを加え、室温で1時間インキュベートします。これに続いて、溶液を取り出し、100 μLのDMEMでウェルを2回洗浄します。</li>
	<li>ラミニン(20 μg/mL、LN-521)をPBS(カルシウムおよびマグネシウムを含む)で希釈します。ウェルに100 μLを加え、4°Cで一晩インキュベートします。翌日、細胞を播種する前にDMEMで2回の洗浄を行う。</li>
	<li>ビトロネクチン(10 μg/mL)を希釈バッファーで希釈します。ウェルあたり100 μLを96ウェルプレートに加え、室温で1時間インキュベートします。細胞をプレーティングする前に、PBS(カルシウムとマグネシウムを含まない)でウェルを洗浄します。</li>
	<li>HU-フィブロネクチン (30 μg/mL) を ddH2O で希釈し、100 μL をウェルに加え、室温で 45 分間インキュベートします。これに続いて、細胞を播種する前に培地でウェルを洗浄する。</li>
</ol>2. 培養におけるiPS細胞の維持
注:iPS細胞は商業的に購入されました。iPS細胞は健康なヒト線維芽細胞に由来し、エピソーム技術を使用して再プログラムされました。
<ol><li>-80°Cの冷凍庫または液体窒素から、凍結保存されたiPS細胞を37°Cの水浴中で解凍します。細胞を含むバイアルを70%エタノールで洗浄してから、生物学的安全キャビネットに移します。</li>
	<li>細胞懸濁液を、15 mL滅菌コニカルチューブ内の1000 μLピペットで、事前に温めた5 mLの細胞培養培地(mTeSR1など)に一滴ずつ加えます。</li>
	<li>細胞を304 x g で室温(RT)で5分間遠心分離します。</li>
	<li>培地を取り出し、細胞ペレットを4 mLの細胞培養培地に再懸濁します。</li>
	<li>細胞懸濁液を6ウェルプレートの2つのウェル(6ウェル細胞培養皿あたり10個の5 iPS細胞)にプレートし、マウス胚性線維芽細胞(MEF)が以前に播種されています。iPS細胞を2.4 x 104/cm 2の密度でDMEM(10%ウシ胎児血清、1%L-グルタミン、1%ペニシリン-ストレプトマイシンを含む)で播種する2 日前にMEFを播種します。</li>
	<li>播種後、細胞培地に10 μMのROCK阻害剤Y-27632を補充します。</li>
	<li>最初の4〜5週間はMEF上でiPS細胞を増殖させ、その後、mTeSR1の目的のコーティングの1つ(ステップ1および 表1を参照)を使用して、フィーダーフリー条件(MEFフリー条件)で成長させます。</li>
	<li>iPS細胞が70〜80%コンフルエントな場合は、0.5 mM EDTA処理を用いてRTで3〜5分間1:4で継代し、6ウェルプレートに0.5 mM EDTAを1 mL加えます(他のタイプのプレートの場合は比例量)。フィーダーフリーの条件で新しいウェルに移し、37°C、5%CO2、20%O2でインキュベートします。</li>
	<li>毎日新鮮なmTeSR1で培地を交換し、2日ごとに細胞を分割します。</li>
</ol>3. 細胞コンフルエンスの特性評価
<ol><li>実験には96ウェルプレートを使用してください。</li>
	<li>MEFが継代されなかったことを確認するために、フィーダーフリー条件で少なくとも1ヶ月培養した後、ウェル当たり10,000個の細胞を播種する。使い捨ての計数スライドを使用して、光学顕微鏡で細胞を数えます。</li>
	<li>3連で実験を行います。したがって、3つのウェルで各播種条件をテストします。</li>
	<li>播種後1日目から明視野モードでサイトメーターを使用して自動画像取得を実行します。24時間ごとに5日間、自動画像取得を実行します。実験パラメータの詳細については、 補足ファイルを参照してください。</li>
	<li>自動コントラストと自動露出を使用して、細胞をより適切に視覚化します。</li>
	<li>ウェルの境界での光の屈折による焦点の変化を評価するために、ウェルあたり60%、80%、および100%のマスクを適用するように、合流点解析の解析設定(「 補足ファイル」を参照)を設定します。上記の異なるマスク解析設定を使用して、各時点での細胞コンフルエンスを解析します。</li>
</ol>4. 統計分析
<ol><li>定量的結果を平均の標準誤差±平均(SEM)として報告します。</li>
	<li>異なるコーティング条件の全体的な違いを比較するには、同じサンプルを使用してデータを取得し、スチューデントの対応のあるサンプルのt検定を実行します。 0.05未満のp値は統計的に有意であると見なされ、報告されたすべての p値は両側です。</li>
</ol>5. 細胞骨格マイクロフィラメントの特性評価
<ol><li>細胞をPBS中の4%パラホルムアルデヒド(4%PFA)でRTで10分間固定した後、PBSで2回洗浄します(合計10分)。</li>
	<li>100 μLのブロッキング溶液(5%BSA、PBS中の0.1%トリトンで構成)を各ウェルに添加し、RTで1時間行います。</li>
	<li>ブロッキング溶液を除去し、サンプルをPBSで10分間2回洗浄します。</li>
	<li>サンプルあたり100 μLのファロイジンコンジュゲート作業溶液を加え、RTで1時間インキュベートします。</li>
	<li>細胞をPBSで2回洗浄します(RTで10分)。</li>
	<li>PBSで1:10000に希釈したHoechst 33342で核をRTで10分間染色します。</li>
	<li>ヘキスト溶液を取り除き、毎回10分間PBSで細胞を2回洗浄します。</li>
	<li>サンプルをH2Oで洗浄し、化学フードの下で乾燥させます。</li>
	<li>100 μLの封入培地(PBS:グリセロール、1:1など)を加えて細胞を覆い、サンプルの蛍光を維持します。</li>
	<li>白色光レーザー(WLL)光源と405 nmダイオードレーザーを備えたレーザー走査型共焦点顕微鏡で、Ex/Em 493/517 nmの細胞を観察します。HC PLAPO 40倍油浸対物レンズを使用して、連続した共焦点画像を取得します。検査するすべてのサンプルに同じレーザー出力、ビームスプリッター、フィルター設定、ピンホール直径、スキャンモードを使用します。</li>
</ol>

<ol><li>Masotti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aged+iPSCs+display+an+uncommon+mitochondrial+appearance+and+fail+to+undergo+in+vitro+neurogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+%28Albany+NY%29%22%5BJournal%5D)">Aged iPSCs display an uncommon mitochondrial appearance and fail to undergo in vitro neurogenesis.</a> Aging (Albany NY). 6 (12), 1094-1108 (2014).</li>
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<li>Zhang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Niche-derived+laminin-511+promotes+midbrain+dopaminergic+neuron+survival+and+differentiation+through+YAP%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Signaling%22%5BJournal%5D)">Niche-derived laminin-511 promotes midbrain dopaminergic neuron survival and differentiation through YAP.</a> Science Signaling. 10 (493), (2017).</li>
<li>Lu, H. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+defined+xeno-free+and+feeder-free+culture+system+for+the+derivation%2C+expansion+and+direct+differentiation+of+transgene-free+patient-specific+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A defined xeno-free and feeder-free culture system for the derivation, expansion and direct differentiation of transgene-free patient-specific induced pluripotent stem cells.</a> Biomaterials. 35 (9), 2816-2826 (2015).</li>
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</ol>

著者は開示するものは何もありません。

iPS細胞は、疾患モデリングや将来の創薬スクリーニングに利用され、精密医療への応用も視野に入れており、胚性幹細胞の生理的状況により近いin vitro培養条件を明確に理解する必要があると考えています。これに関連して、細胞が健康で未分化な状態を維持できる条件を理解するために、野生型iPS細胞を使用してさまざまなECMコーティングをテストしました。これに加えて、重要な点は、MEFとマトリゲルの異種成分でのiPS細胞の培養であり、これは三重の実験的変動性を説明する可能性があり、これは機構研究を行う能力を妨げます26。
本研究では、異種フリー基質(LN-521、ビトロネクチン、Hu-フィブロネクチン)上でのiPS細胞のコンフルエントを、ハイコンテント画像解析サイトメーターを用いて試験しました。自動画像解析システムを使用する理由は、細胞をカウントし、トリパンブルー排除法を使用すると、単一細胞懸濁液を作成する必要があり、iPS細胞を操作する場合は、細胞死を避けるために細胞クラスター内で増殖する必要があるため、推奨されないためです。ハイコンテント画...

人工多能性幹細胞(iPSC)は体細胞から得られ、異なる細胞型に分化することができる。それらは、疾患の病因をモデル化したり、薬物スクリーニングを実行したりするためのシステムとしてよく使用され、個別化医療のコンテキストで使用される可能性も提供します。iPS細胞は大きな可能性を秘めているため、信頼性の高いモデルシステムとして使用するために、iPS細胞を完全に特徴付けることが重要です。我々は以前、低酸素環境でiPS細胞を増殖させることの重要性を示しましたが、これらの細胞は解糖に依存しており、好気性環境は酸化還元の不均衡を引き起こす可能性があるためです1。iPS細胞は、他の培養条件、特に細胞外環境に対しても脆弱です。培養条件の最適化は、それらを健康で増殖させるための重要な問題です。健康なiPS細胞培養は、特定のヒト疾患または細胞プロセスの分子、細胞および機能的特徴を理解するために使用されるモデルのエンドポイントである健康な分化細胞につながります。
この研究では、簡単なプロトコルを使用して、別々のウェルで異なるコーティング条件を使用してiPS細胞の合流点をテストしました。iPS細胞は、マウス胚性線維芽細胞(MEF)を適切に付着させるためにフィーダー層を必要としますが、iPS細胞とMEFが共存しているため、2つの細胞集団が存在するため、RNAやタンパク質抽出などの解析が困難です。フィーダー層を回避するために、細胞外マトリックス(ECM)に属するさまざまなタンパク質を使用して、天然の細胞ニッチを再現し、フィーダーフリーのiPS細胞培養を行ってきました。特に、マトリゲルは、エンゲルブレス・ホルム・スウォーム(EHS)マウス肉腫から抽出された可溶化基底膜製剤であり、細胞外マトリックスタンパク質(ラミニン、IV型コラーゲン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、エンタクチン/ニドゲン、成長因子)が豊富に含まれています2,3。他の使用されるコーティング条件は、代わりにECMの構築に既知の関連性を有する精製タンパク質である:ラミニン-521は、ヒト多能性幹細胞(hPSC)によって胚の内部細胞塊に分泌されることが知られており、出生後の体内で最も一般的なラミニンの1つである4,5,6,7,8,9、10,11;ビトロネクチンは、hPSC 12,13,14,15,16の増殖と分化をサポートすることが知られているゼノフリー細胞培養マトリックスです。フィブロネクチンは、脊椎動物の発生および多能性状態の胚性幹細胞の付着および維持に重要なECMタンパク質である17、18、19、20、21、22、23、24、25。異なるコーティング条件が利用できるため、iPS細胞の合流性への影響の観点からそれらを比較します。

<table><tbody><tr><td>10 mL ストリペット 血清ピペット、ポリスチレン、個別紙/プラスチック包装、滅菌済み</td><td>Corning</td><td>4488</td><td>ツール</td></tr><tr><td>15 mL 高透明度ポリプロピレン (PP) 円錐形遠心分離管</td><td>ファルコン</td><td>352097</td><td>ツール</td></tr><tr><td>1x PBS (Ca2+;Mg2+)</td><td>サーモフィッシャー</td><td>14040133</td><td>中型</td></tr><tr><td>1x PBS(Ca2+なし);Mg2+)</td><td>ユーロクロン</td><td>ECB4004L</td><td>ミディアム</td></tr><tr><td>5 mL ストリペット 血清ピペット、ポリスチレン、個別紙/プラスチック包装、滅菌</td><td>Corning</td><td>4487</td><td>ツール</td></tr><tr><td>細胞培養マイクロプレート、96 WELL、PS、F-BOTTOM</td><td>Greiner Bio One</td><td>655090</td><td>サポート</td></tr><tr><td>細胞培養プレート、6 well</td><td>Costar</td><td>3516</td><td>サポート</td></tr><tr><td>DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's Medium- high glucose)</td><td>Sigma</td><td>D5671</td><td>Medium</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma</td><td>ED4SS-500g</td><td>試薬</td></tr><tr><td>Epi Episomal iPSC Reprogramming Kit</td><td>Invitrogen</td><td>A15960</td><td>Reagent</td></tr><tr><td>FAST - READ 102</td><td>Biosigma</td><td>BVS100</td><td>Tool</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td><td>Gibco</td><td>10270106</td><td>Medium</td></tr><tr><td>フィブロネクチン</td><td>メルク</td><td>FC010</td><td>コーティング</td></tr><tr><td>グリセロール</td><td>Sigma</td><td>G5516</td><td>試薬</td></tr><tr><td>H2O</td><td></td><td>MILLIQ</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst</td><td>Thermofisher</td><td>33342</td><td>試薬</td></tr><tr><td>Laminin 521</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>77003</td><td>コーティング</td></tr><tr><td>L-グルタミン (200 mM)</td><td>Gibco</td><td>LS25030081</td><td>試薬</td></tr><tr><td>マトリゲル</td><td>コーニング マトリゲルhESC認定マトリックス</td><td>354277</td><td>コーティング</td></tr><tr><td>マウス胚性線維芽細胞(MEF)</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ A24903</td><td>コーティング</td></tr><tr><td>MTESR1 中型</td><td>幹細胞技術</td><td>85851</td><td>中型</td></tr><tr><td>MTESR1</td>サプリメント幹<td>細胞技術</td><td>85852</td><td>中型</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン (10,000 U/mL)</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td>試薬</td></tr><tr><td>ファロイジン Σ</td><td></td><td>P1951</td><td>試薬</td></tr><tr><td>ビトロネクチン</td><td>幹細胞技術</td><td>7180</td><td>コーティング</td></tr><tr><td>Y-27632</td><td>シグマ</td><td>Y0503</td><td>試薬</td></tr></tbody></table>

自動イメージングシステムを用いたips細胞の合流点の測定

Measuring the Confluence of iPSCs Using an Automated Imaging System

この研究は、異なるECMコーティング基板上でiPS細胞を増殖させることが細胞のコンフルエントにどのように影響するかを理解することに焦点を当てています。iPS細胞コンフルエンスをリアルタイムで評価するプロトコルが確立されており、増殖の摂動を避けるために単一細胞懸濁液中の細胞をカウントする必要はありません。ハイコンテント画像解析システムを使用して、4つの異なるECMのiPCS合流を経時的に自動的に評価しました。接着性iPS細胞の細胞コンフルエンスを評価するために異なる分析設定が使用され、60、80、または100%のマスクが適用されたかどうかは、わずかな違い(ラミニンで24時間および48時間)のみが観察されました。また、ラミニンがマトリゲル、ビトロネクチン、フィブロネクチンと比較して最良のコンフルエントにつながることも示しています。

本研究では、異なるコーティング条件で成長させた場合のiPS細胞コンフルエントを調査しました。サイトメーターを使用すると、5日間で3回ですぐに有益な結果を得ることができました。iPS細胞はプラスチック容器に付着しにくく、増殖をサポートするためにコーティングが必要であるため、ヒトiPS細胞の合流性は細胞培養の健全性を示し、分化能を反映する可能性があるため、モニタリングすることにしました。in vitro増殖後、iPS細胞を異なるECM基板上に播種し、明視野で取得したサンプル画像を観察し、ファロイジン染色(アクチンフィラメントの染色に使用、F-アクチンとも呼ばれる)を使用して細胞を分析し、血管への接着を理解しました(図1)。実際、ファロイジン染色により、血管の表面、したがって血管に使用される特定のコーティングへの細胞接着の程度を視覚化できます。コーティングに接着している細胞は、崩壊したマイクロフィラメントの代わりにはっきりと見える細胞骨格マイクロフィラメントを示した。ファロイジン染色と組み合わせた明視野の観察は、コーティングされた表面へのiPS細胞の良好なレベルの接着を文書化します。...

このプロトコルの目的は、さまざまな細胞外マトリックス(ECM)コーティング条件を比較して、差動コーティングが人工多能性幹細胞(iPSC)の増殖速度にどのように影響するかを評価することです。特に、iPS細胞培養の最適な増殖を得るための条件設定を目指しています。

自動イメージングシステムを用いたiPS細胞の合流点の測定

This study focuses on understanding how growing iPSCs on different ECM coating substrates can affect cell confluence. A protocol to assess iPSC confluence ...

このプロトコールは、さまざまな細胞外マトリックスコーティング基質上の人工多能性幹細胞のコンフルエンスをリアルタイムで迅速に評価できるという点で重要です。このプロトコールの主な利点は、シングルセル懸濁液の計数を必要としないため、継代に敏感なiPS細胞への増殖摂動を防ぐことです。その手順を実演するのは、私の研究室のポスドクであるValentina Maglioccaです。基底膜マトリックスコーティングプレートをセットするには、基底膜マトリックスを希釈し、DMEMで1:100の比率を設定し、得られた溶液を96ウェルプレートの各ウェルに100マイクロリットル加えます。すべてのウェルをコード化したら、プレートを細胞培養インキュベーターに1時間入れます。インキュベーションの終了時に、基底膜マトリックス溶液を廃棄し、ウェルあたり100マイクロリットルの新鮮なDMEMで各ウェルを2回洗浄します。ラミニン被覆プレートをセットするには、PBS中のラミニン1ミリリットルあたり20マイクログラムをカルシウムとマグネシウムで希釈し、新しい96ウェルプレートの各ウェルに100マイクロリットルのラミニン溶液を加えます。次に、プレートを摂氏4度で一晩インキュベートしてから、示されているように新しいDMEMでウェルを2回洗浄します。ビトロネクチンコーティングプレートをセットするには、ビトロネクチン1ミリリットルあたり10マイクログラムを希釈バッファーで希釈し、新しい96ウェルプレートの各ウェルに100マイクロリットルのバッファーを追加します。室温で1時間のインキュベーション後、ウェルごとにカルシウムとマグネシウムを含まない100マイクロリットルのPBSでウェルを洗浄します。ヒトフィブロネクチン被覆プレートを調製するには、フィブロネクチン1ミリリットルあたり30マイクログラムを二重蒸留水で希釈し、新しい96ウェルプレートの各ウェルに100マイクロリットルのフィブロネクチン溶液を加えます。室温で45分間インキュベートした後、示されているように新しいDMEMでウェルを洗浄します。iPS細胞培養をセットする2日前に、完全な細胞培養培地で2.4×10×10から4平方センチメートルの密度でマウス胚性線維芽細胞を6ウェルの細胞培養プレートの2つのウェルのそれぞれに播種し、プレートを細胞培養インキュベーターに入れます。iPS細胞の培養液を調製するには、凍結保存したiPS細胞のストック溶液を摂氏37度の水浴で温めます。細胞が解凍したばかりのら、バイアルを70%エタノールで洗浄し、細胞を生物学的安全キャビネットに入れます。1000マイクロリットルのピペットを使用して、5ミリリットルの温めた細胞培養培地が入った滅菌済みの15ミリリットルの円錐管に細胞を一滴ずつ移します。遠心分離により細胞を回収し、ペレットを4ミリリットルの新鮮細胞培養培地に再懸濁します。次いで、1×10を5番目の細胞に5個ずつ、マウス胚性線維芽細胞播種した6ウェルプレートの2つのウェルのそれぞれに入れる。播種後、細胞培養物にROCK阻害剤Y-27632の10マイクロモルを補充し、プレートを細胞培養インキュベーターに4〜5週間置きます。細胞が70〜80%の密度に達したら、各培養物を1ミリリットルの0.5ミリモルEDTAで室温で3〜5分間処理します。細胞が分離したら、新鮮な細胞培養培地で細胞を1対4の比率で分割し、フィーダーフリー条件下で6ウェルプレートの残りの4つのウェルのそれぞれに細胞をプレートします。その後、プレートを細胞培養インキュベーターに戻します。フィーダーフリー条件下で少なくとも1ヶ月間の培養後に、さまざまなコーティングが細胞のコンフルエンスに及ぼす影響を評価するには、使い捨ての計数スライドを使用して、計数チャンバーを使用して各培養の細胞を計数します。細胞を中濃度の200マイクロリットルあたり10〜4番目の細胞に希釈し、条件ごとに1つのカバーコーティングされた96ウェルプレートの3つのウェルのそれぞれに細胞を三重に播種します。すべての細胞を播種したら、プレートを細胞培養インキュベーターに24時間置きます。翌日とその後の5日間は毎日、自動コントラストと自動露出の設定を使用して細胞の自動イメージングを実行し、最適な視覚化を実現します。ウェルの境界での光の屈折による焦点の変化を評価するには、解析設定をコンフルエンス解析に設定してウェルあたり60、80、または100%のマスクを適用し、異なるマスク解析設定を使用して各時点での細胞コンフルエンスを解析します。異なるコーディング条件の全体的な違いを比較するには、サンプルデータを使用してスチューデントの対応のあるサンプルのT検定を実行し、コンフルエンスの平均変化として定量的結果を報告します。これは、平均の標準誤差をプラスまたはマイナスします。細胞骨格マイクロフィラメントの特性評価のために、まず、ウェルあたり100マイクロリットルの4%パラホルムアルデヒドをPBS中のPBS溶液に室温で10分間細胞を固定し、続いて1回の洗浄につき200マイクロリットルのPBSで10分間の洗浄を2回行います。前に置いたカバースリップをプレートから顕微鏡スライドに移します。100マイクロリットルの5%ウシ血清と0.1%トリトン含有PBS溶液を各ウェルに室温で1時間加えて非特異的結合をブロックし、示されているように10分間のPBS洗浄を2回行い、サンプルを洗浄します。2回目の洗浄後、サンプルあたり100マイクロリットルのファロイジンコンジュゲートワーキング溶液を室温で1時間のインキュベーションに添加し、続いてPBSで10分間の洗浄を2回行います。次に、PBSで1:10, 000濃度に希釈したHoechst 33342で核を室温で10分間染色し、続いてPBSを2回洗浄します。2回目の洗浄後、細胞を水ですすぎ、プレートを化学フードの下で乾燥させます。ガラスカバースリップが乾燥したら、ウェルあたり100マイクロリットルの適切な封入剤で細胞を覆い、白色光レーザー光源と405ナノメートルのダイオードレーザーを備えたレーザー走査型共焦点顕微鏡で細胞を適切な励起波長と発光波長で配置します。次に、63倍油浸対物レンズを選択し、細胞の逐次共焦点画像を取得します。ファロイジン染色は、容器の表面、特に容器に使用されているコーティングへの細胞接着の程度を視覚化することを可能にします。コーティングに接着している細胞は、崩壊したマイクロフィラメントの代わりに、はっきりと見える細胞骨格マイクロフィラメントを示します。明視野イメージングでは、コーティングされた表面へのiPS細胞の接着レベルをイメージングすることもできます。ラミニン上に播種されたiPS細胞は、他のコーティングと比較して、時間の経過とともに高い細胞増殖速度を示します。対照的に、基底膜マトリックス、ビトロネクチンおよびヒトフィブロネクチン上に播種された細胞は、最初の96時間で線形増殖速度を示し、使用したマスクとは無関係に、最後の24時間で合流曲線の傾きが増加します。異なるコーティングの24時間後の初期差は細胞接着の違いによるものであるため、細胞増殖は後の時点の24時間データに正規化できます。観察されたように、異なるコーティング間の合流点に違いは存在せず、ラミニンコーティングされた培養物内で観察された違いは、継代時にこのコーティングに付着するiPS細胞の能力の増加によるものである可能性が最も高いことを示唆しています。この研究は、iPS細胞の培養のための標準化された方法論の開発に貢献し、将来の臨床での使用に役立つ可能性があります。私たちは現在、細胞とECMの接触を媒介し、その自己複製能力の維持に関与している可能性のある主要な細胞表面受容体の生物学を調査しています。

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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自動イメージングシステムを用いたiPS細胞の合流点の測定

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