2020年7月10日
ここでは、cDNA中間体を使用せずに短いRNA(ランあたり<35 nt)をシーケンシングする直接的な方法として、また、単一の研究で異なるヌクレオチド修飾を単一塩基の精度でシーケンシングする一般的な方法として使用できるLC-MSベースのシーケンシング法の詳細なプロトコールについて説明します。
このプロトコルは、RNAサンプルが一本鎖、混合、または修飾されているかどうかに関係なく、RNAを直接シーケンシングするために開発された新しい方法を使用する際に必要なすべての重要なステップをカバーしています。この方法は、酵素エラーや塩基相補性の影響を受けません。これは、一度に1つの特定の修飾ではなく、異なるRNA修飾を同時に配列決定することを可能にする直接的なワークフローと一般的なソリューションを提供します。
この技術は、シグネチャーRNAセグメントを決定してヒトの疾患に関連付ける診断ツールや、エピトランスクリプトームレベルでのRNA修飾を研究するための正確なツールに発展させることができます。この方法は、以前のシーケンシング法に依存しません。むしろ、これはまったく新しいアプローチであり、あらゆる修飾RNAのシーケンシングに有効な方法にすることを目指している。
このプロトコールの一部には、RNA LC-MSデータ取得の3'末端のラベリングやMassHunterソフトウェアによるデータ解析など、視覚的なデモンストレーションによってより正確に伝えることができる重要な側面が含まれています。この手順を実演し、LC-MS をセットアップして RNA サンプルを測定します。ワンステップ標識反応を行うには、2マイクロリットルの150マイクロモルAppCp-ビオチン、3マイクロリットルの10xリガーゼ反応バッファー、1.5マイクロリットルの100マイクロモルRNAサンプル、3マイクロリットルの無水DMSO、10ユニットのT4 RNAリガーゼ、および19.5マイクロリットルのDEPC処理水を組み合わせて、総容量30マイクロリットルにします。
反応液を摂氏16度で一晩インキュベートし、原稿の指示に従ってカラム精製を行います。RNAを3つのアリコートに分割し、等量のギ酸を加えた後、反応を摂氏40度でインキュベートします。各反応が終了したら、すぐにサンプルをドライアイスで凍結して酸分解を急冷します。
遠心真空濃縮器を使用して、サンプルを約30分間乾燥させます。乾燥したサンプルを20マイクロリットルのDEPC処理水に再懸濁し、それらを混合します。LC-MS測定までサンプルを摂氏20度で保存します。
移動相を調製した後、RNAサンプルをLC-MSサンプルバイアルに移します。各注射には、100〜400ピコモルのRNAと20マイクロリットルが含まれている必要があります。.データを取得した後、分子特徴抽出ワークフローを使用して、質量、保持時間、容量、品質スコアなどの化合物情報を抽出します。
低分子の設定では、重心データ形式を使用します。ピークの高さを100以上1, 000未満に設定し、品質スコアを50以上に設定します。最後に、データをExcelファイルとしてエクスポートします。
5'ラダーおよびその他の望ましくないフラグメントからの3'ラダーの分離は、ここでは2D質量保持時間プロットに示されています。また、長さの異なる2本のRNA鎖を含む混合サンプルを、各RNAに5'ビオチン標識でシーケンシングすることも可能です。ウリジンとシュードウリジンを区別するために、RNAをCMCで処理し、シュードウリジンをCMC-シュードウリジン付加物に変換します。
付加物はウリジン中で異なる質量を持ち、2D-HELS MS Seqで区別することができます。シュードウリジンをCMC付加物に変換する反応の粗生成物のHPLCプロファイルを使用して、5つの異なるRNA鎖の混合物である42%Aの変換率を計算し、3'末端標識による2D-HELS MS Seqアプローチによって配列決定され、複数のRNA配列のより良い視覚化のために正規化されました。正規化を行わなければ、5つのRNAの配列の文字コードは密集してしまいます。
この手順を試行する際には、標識反応を慎重にセットアップして、標識RNAサンプルを高収率で取得してください。また、分解時間を注意深く監視して、信頼性の高いマスラダーを作成し、20マイクロリットルの水で最大量の乾燥サンプルを収集します。このプロトコルを実行した後に問われる可能性のある問題は、シーケンシング法の幅、長さ、およびスループットをどのように増やすかです。
より優れたアルゴリズムと、より高い分解能と感度を備えたより高度な機器が役立ちます。このプロトコルの開発後、CDAベースのRNAシーケンシングに関連するエラーなしに、標準ヌクレオチドと修飾ヌクレオチドの両方を含むより広範なRNAサンプルを直接シーケンシングすることが可能になりました。
完全なトランスクリプトを表示し、数千本の科学動画にアクセス
本記事では、cDNA中間体を必要としない、短鎖RNAのための新しいLC-MSベースのシーケンシング方法を紹介します。このプロトコルにより、さまざまなRNA修飾を1塩基精度の解像度で同時にシーケンシングすることが可能になります。
このLC-MSベースのRNAシーケンシング法は、cDNA合成を行うことなく、修飾RNA混合物の直接的なde novoシーケンシングを可能にし、エピトランスクリプトームのターゲット検証における主要なボトルネックを解消します。定量的で修飾を識別したシーケンシングデータを提供することで、RNAベースのバイオマーカーの早期発見や、治療用オリゴヌクレオチドのメカニズム的なリスク低減を支援します。このアプローチは、スクリーニングやアッセイ開発ワークフローに直接適用可能な、配列確認済みで修飾特異的なアウトプットを提供することにより、リード同定における予測信頼性を向上させます。
本手法は、仮説駆動型のRNA解析のためのフロントエンド・シーケンシングツールとして、早期の創薬ワークフローに統合されます。これにより、機能スクリーニングに先立って、合成または内因性RNAターゲットの配列および修飾状態を確認し、リード化合物の同定へと繋げることが可能になります。