Name: げっ歯類の脳サンプルの単一のセットで脳卒中後脳浮腫、梗塞ゾーンおよび血液脳関門破壊を測定する (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-10-23T13:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 32 s
Description: 学ぶ 脳卒中後の脳浮腫、梗塞ゾーン、血液脳関門破壊をげっ歯類の単一脳サンプルで測定する手法。倫理的・経済的効率を高めつつ虚血性脳損傷の病態生理を包括的に解析できる。

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マリナ・クシェリアヴァ、マクシム・クリヴォノソフ、ダリーナ・ヤクメンコ、エフゲニア・ゴンチャリク生物学・生態学・医学部、オレス・ホンチャリク、ドニプロ大学、ドニプロ、ウクライナの皆様のご支援、そして私たちの議論への貢献に感謝します。得られたデータは、ルスラン・クッツ博士課程の一部です。

以下の手順は、ヘルシンキ宣言及び東京宣言及び欧州共同体の実験動物使用に関するガイドラインに従って行われた。実験はまた、ネゲブのベングリオン大学で動物ケア委員会によって承認されました.
実験手順のための1.ラットの準備
<ol><li>成人オスのスプレイグ・ドーリーラットを、あから過ぎの病理を伴わず、それぞれ300〜350gの重さを選択する。</li>
	<li>実験前に12時間の明暗サイクルで、室温で全てのラットを22°Cで維持します。</li>
	<li>食べ物と水がアドリビタムで利用できることを確認してください。</li>
	<li>6:00 a. .m~ 2:00 p.m の間ですべての手順を実行します。</li>
</ol>2. 手術用のラットの準備
<ol><li>イオブルラン(誘導で4%、維持のために2%)と24%の酸素(1.5 L /分)でラットを30分間麻酔します。<ol>
<li>彼らはペダル離脱反射を持っていないことを確認することにより、ラットの麻酔のレベルをテストします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>24ゲージのカテーテルを尾静脈に挿入します。 注意:血管拡張のための尾の温暖化は行われません。<ol>
<li>テーブルの上にネズミを置いて、上の位置に置きます。医療テープを使用して、ラットの四肢4本すべてを貼り付けます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>温度測定のためのプローブを手術前にラット直腸に入れる。</li>
	<li>手順の間、37°Cのコア体温を支える加熱プレートを維持する。</li>
	<li>保護のためにラットの目の両方に軟膏を追加します。</li>
	<li>手術領域を剃り、10%ポビドネヨウ素の3つのアプリケーションで消毒し、続いて70%イソプロピルアルコールを行います。</li>
</ol>3. 右側中大脳動脈閉塞
注:MCAOは、以前に説明した16、22、23のように、マクガリーら24およびUluçら.25によって記述された楽器を使用して、修正された技術によって行われる。
<ol><li>外科的ピンセットと湾曲した刃のはさみで首の腹側の正中線で皮膚および表面性筋膜を解剖する。</li>
	<li>筋肉三角形を識別します, ICAからなります, 外耳頸動脈 (ECA) と一般的な頸動脈 (CCA).</li>
	<li>血管手術用のマイクロ鉗子で、右のCCAとICAを迷走神経から慎重に分離します。</li>
	<li>正しい CCA と ICA を公開します。血管手術用のマイクロクリップまたは特別な止血帯を使用して、CCAからICAへの血流を遮断します。血管手術用マイクロシザーを使用してICAを切開(約1mm)します。</li>
	<li>モノフィラメントカテーテル(4-0ナイロン)をICAを介して直接挿入し、右CCAの分岐点から約18.5〜19mmをウィリスの円に入れ、軽度の抵抗に達するまで、MCA26を閉塞させる。</li>
	<li>CCAの分岐の上のICAの周りにリゲート。</li>
	<li>シャム操作制御グループの場合、手順 3.5 および 3.616、22の代わりにナイロンスレッドの挿入を実行します。</li>
	<li>腹腔内注射により0.9%塩化ナトリウムの5mLを投与する。</li>
	<li>縫合によって創傷を閉じ、ラットを回復領域に連れて行く。 注:麻酔が終わる数分後、ラットは目を覚まし、ケージの周りを独立して移動します。</li>
	<li>MCAOの後23時間で、2%のエバンスブルーを生理食アルカリ(4mL/kg)23、26をカニューレ27を介して両方の操作されたグループの尾静脈に注入する。 注:これは、血液脳透過性トレーサーとして使用されます。60分間循環させます。</li>
</ol>4. 梗塞領域の決定
<ol><li>前述の9、15、18、19、26のように MCAO の後の24時間で IZを測定します。 注:体重の20%以上を失った、または発作や片麻痺を発症したラットは、実験から除外されます。</li>
	<li>ラットが自然呼吸を停止するまで、インスピレーションを受けたガス混合物を20%の酸素と80%の二酸化炭素に置き換えることによってラットを安楽死させる。</li>
	<li>はさみと外科用鉗子を使用して、肋骨ケージの下の腹壁を通して5〜6センチメートルの横切開で胸を開きます。</li>
	<li>はさみと外科用鉗子で肋骨のケージの全長に沿って横隔膜切開を行う。</li>
	<li>慎重に肺を置き換え、リブケージを左右28の鎖骨まで切り取る。</li>
	<li>心臓の左心室を通って正常な生理液の200 mLとパーフューズ。</li>
	<li>穿刺またははさみで心臓の右心房を切開します。</li>
	<li>ギロチンを使用して切断を行い、脳組織を収集します。</li>
	<li>虹彩はさみを使用して、両側の後頭蓋表面の遠位縁に前部マグナムからカットします。</li>
	<li>嗅球、腹側表面に沿った神経質なつながり、頭蓋骨の側側表面を脳から分離する。</li>
	<li>頭から脳を取り除きます。</li>
	<li>.009"ステンレススチール、コーティングされていない、単一エッジカミソリブレードを備えた2mm厚い水平セクションを作成することで、6つの脳スライスを作成します。</li>
	<li>37°Cで30分間インキュベートして0.05%TTCで行います。</li>
	<li>顕微鏡スライド上に脳組織を配置し、1600x1600 dpiの解像度でこれらの6脳スライスの光学スキャンを実行します(例えば 、補足1 を参照してください)。</li>
	<li>チャンネルミキサー機能(画像/調整/チャンネルミキサー)を使用して、フォトエディタ(例えばアドビフォトショップCS2)で青いフィルタを追加し、画像をJPEGファイル形式で保存します。 注: 青いフィルターを適用すると、イメージはグレースケールで表示されます。</li>
	<li>保存したイメージを ImageJ 1.37v29,30で開きます。 注 : このコンピュータ プログラムでは、しきい値機能を使用して、黒または白のピクセルを分離して計算します ( 図 1を参照)。</li>
	<li>画像の6つの脳のスライスのそれぞれについて、メインメニューから「ポリゴン選択」ツールを使用して、各半球(右の負傷したイプシララルと左の傷のない矛盾)を別々の画像ファイルとして選択して保存します。</li>
	<li>ImageJ ソフトウェアのメイン メニューから自動しきい値関数を使用して、 イメージ/調整/しきい値を選択して IZ を決定するためのカットオフを設定し、1 つの脳セットの各半球のピクセル数を測定します。 メモ:マクロは、ImageJソフトウェアのこの手順で使用することができます(コードについては 補足2 を参照してください)。カットオフは、白に変換するピクセルと、グレーの陰影に応じて黒に変換するピクセルを決定するための重要なパラメータです(例として 、補足 3 と 補足 4 を 参照)。次に、ImageJ は白と黒のピクセルを比較して IZ を決定します。染色プロトコルとスキャナの設定に基づいて、一定のカットオフ値0.220を使用しました。</li>
	<li>イプシ側および逆側大脳半球(RICH)法13,23を用いて組織膨潤のIZ補正の測定を行う(補足5の例を参照)。 <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/61309/61309equ01.jpg"> 注: 梗塞のサイズは、対側半球の割合として評価されます。</li>
</ol>5. 脳浮腫の測定31
注意:BE32、33の測定にはImageJ1.37vを使用してください。
<ol><li>MCAOの後に24時間を測定してください。BE の計算には、左と右半球の体積のデータを使用します (単位)。</li>
	<li>1600x1600 dpi の解像度で光学スキャンを実行します( 例えば、補足 1 を 参照)。</li>
	<li>脳半球を選択し、上記のセクション 4.17-4.19 で説明したように、ImageJ 1.37v で BE を決定するためのカットオフを設定します。</li>
	<li>次の式を使用してRICH法によって計算される、影響を受けない対側半球の標準面積の割合としてBE領域を表現する(補足5の例を参照して、23,34。 <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/61309/61309equ02v2.jpg"> 注: BE の範囲は、対側半球の割合として評価されます。</li>
</ol>6. BBBの中断の決定
<ol><li>MCAO の後で BBB の中断を測定します。</li>
	<li>左右半球を6つのスライスに分け、それぞれをマイクロ遠心分離チューブに入れます。</li>
	<li>50%トリクロロ酢酸の4 mLにおける脳組織の1gの計算に基づいて、トリクロロ酢酸で脳組織の各スライスを均質化する。</li>
	<li>20分間10,000 x g で遠心分離機。</li>
	<li>上清液を1:3に96%エタノールで希釈する。</li>
	<li>分光光度測定ソフトウェアを利用して発光分光度測定を行い、プレートを設置し、次のパラメータを用いてサンプル読み取りを行います:蛍光強度励起波長620nm(帯域幅10nm)および発光波長680nm(帯域幅10nm)23,35;モッドトップ;数肉25;マニュアル100;1秒、1mm振る。 注: 励起波長は 620 nm (帯域幅 10 nm) で、発光波長は 680 nm (帯域幅 10 nm) を使用してください。23,35
</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

本プロトコルの主な目標は、虚血性損傷の3つの主要なパラメータの一貫した測定を実証することであった:IZ、BEおよびBBB透過性。この分野の以前の研究は、同じサンプルでこれらのパラメータの1つまたは2つを一緒に実行する可能性を実証しました。この3部構成の方法が提供するコスト削減に加えて、手術とその後の安楽死化しなければならない動物の数を制限するより望ましい生物倫理モデルも提供します。すべての組織学的手法と同様に、この方法は虚血性傷害を動的に観察できないことによって制限される。
画像分析では、イメージ解析に 4 つのコンピュータ プログラムが使用されました: イメージ J 1.37v、アドビフォトショップ CS2、マイクロソフト Excel 365、および IBM SPSS 統計 22.ImageJは梗塞帯と脳浮腫の拡張を測定するために使用された。アドビフォトショップは、青色がBBBの内訳を示すため、脳組織に対するエバンスブルーの影響を制限するために使用されました。梗塞領域を計算する前に、画像から青色を除去する必要があるが、その色は梗塞帯の正確な測定を認めないので( <strong c...

世界的に罹患率と死亡率の最も一般的な原因の1つは脳卒中です。世界的に、虚血性脳卒中は全脳卒中症例の68%を占め、米国では虚血性脳卒中が脳卒中症例1,2の87%を占める。脳卒中の経済的負担は、米国では240億ドル、欧州連合(EU)では450億ユーロに達すると推定されています。脳卒中の動物モデルは、その病態生理学を研究し、評価のための新しい方法を開発し、新しい治療オプションを提案するために必要です4.
虚血性脳卒中は、大脳動脈の閉塞で起こり、通常は中大脳動脈またはその枝の1つである5。したがって、虚血性脳卒中のモデルは、歴史的に中大脳動脈閉塞(MCAO)6、7、8、9、10、11、12を含む。MCAOに続いて、 神経損傷は、2,3,5トリフェニルテトラゾリウムクロリド(TTC)染色法13、脳浮腫(BE)を乾燥または半球量14、15、16、および血液脳関門(BBB)透過性を、エバンスブルー17を用いた透過性を測定することによって最も一般的に評価される。
従来のMCAO法は、3つの脳の測定のそれぞれのために別々の脳のセットを使用しています。サンプルサイズが大きい場合、これは、倫理的および財政的な考慮事項を追加して、安楽死させた動物のかなりの数になります。これらのコストを軽減する別の方法は、MCAO後げっ歯類の脳の単一のセットで3つのパラメータすべての測定を含むであろう。
以前の試みは、同じ脳サンプル内のパラメータの組み合わせを測定するために行われています.同時免疫蛍光染色法20 は、他の分子及び生化学的分析21 と同様に、同じ脳試料中でTTC染色後に記載されている。我々は以前に脳浮腫を評価するために脳半球の体積を計算し、同じ脳セット15で梗塞領域を計算するためにTTC染色を行った。
本プロトコルでは、同じ齧歯類脳の中でIZ、BE、BBB透過性を判定することで虚血性脳損傷を測定する改変MCAO技術を提示する。IZはTTC染色法により測定され、BEは半球体積を算出して求められ、BBB透過性は分光法19により得られる。このプロトコルでは、内部頸動脈(ICA)へのモノフィラメントカテーテルの直接挿入および固定に基づく改変MCAOモデルを用いた、および中大脳動脈(MCA)22への血流のさらなる遮断を用いた。この修飾方法は、従来のMCAO法16,22と比較して死亡率および罹患率の低下率を示す。
この新しいアプローチは、MCAO後の神経損傷を測定するための財政的に健全で倫理的なモデルを提供します。虚血性脳損傷の主なパラメータのこの評価は、その病態生理学を包括的に調査するのに役立ちます。

<table><tbody><tr><td>2 mL シリンジ</td><td>ブラウン</td><td>4606027V</td><td></td></tr><tr><td>2% クロルヘキシジン 70% アルコール溶液</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>500 cc</td><td>手術室で皮膚の一般的な消毒を提供します</td></tr><tr><td>27 G シリンジ付き針</td><td>ブラウン</td><td>305620</td><td></td></tr><tr><td>3-0 シルク縫合糸</td><td>ヘンリー・シャイン</td><td>1007842</td><td></td></tr><tr><td>4-0 ナイロン縫合糸</td><td>4-00</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ブレイン&ティッシュマトリックス</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>15013</td><td></td></tr><tr><td>カニューレ ベンフロン 22 G</td><td>KD-FIX</td><td></td><td></td></tr> 183603985447 <tr><td>遠心分離機 Sigma 2-16P</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Sigma 2-16P</td><td></td></tr><tr><td>コンパクト分析天びん</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HR-AZ/HR-A</td><td></td></tr><tr><td>デジタル体重計</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Rs 4,000</td><td></td></tr><tr><td>解剖ハサミ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z265969</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorfピペット</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z683884</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf tube</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>EP0030119460</td><td></td></tr><tr><td>蛍光検出器</td><td>Tecan, M&auml;nnedorfスイス</td><td>モデル:Infinite 200 PROマルチモードリーダー</td><td>オプション。</td></tr><tr><td>蛍光検出器</td><td>Molecular Devices LLC</td><td>VWR cat. # 10822 512 SpectraMax Paradigm マルチモードマイクロプレートリーダー ベース機器</td><td>オプション。</td></tr><tr><td>ガーゼスポンジ</td><td>フィッシャー</td><td>22-362-178</td><td></td></tr><tr><td>ヒーター(温度計付き)</td><td>Heatingpad-1</td><td>モデル:HEATINGPAD-1/2</td><td></td></tr><tr><td>止血マイクロクリップ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Horizon-XL</td><td>Mennen Medical Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>輸液カフ</td><td>ABN</td><td>IC-500</td><td></td></tr><tr><td>マイクロ鉗子</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マイクロハサミ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マルチセット</td><td>Teva Medical</td><td>の998702</td><td></td></tr><tr><td>オリンパスBX 40顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>手術用鉗子</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>手術用ハサミ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>光学スキャナー</td><td>キヤノン</td><td>カノスキャン 4200F</td><td>解像度3200 x 6400 dpi</td></tr><tr><td>ペトリ皿</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5606</td><td></td></tr><tr><td>Purina Chow</td><td>Purina</td><td>5001</td><td>ラット、マウス、ハムスターに与えられるげっ歯類の実験室用チャウは、50年以上にわたって生物医学研究で使用されてきたライフサイクル栄養です。この実験では、ラットに自由自在に提供されます。</td></tr><tr><td>ラットケージ</td><td>Techniplast</td><td>2000P</td><td>げっ歯類用の従来のハウジング。実験全体を通してラットを収容するためにケージが使用されました</td></tr><tr><td>メスの刃 #11</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S2771</td><td></td></tr><tr><td>Software</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adobe Photoshop CS2 for Windows</td><td>Adobe</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ImageJ 1.37v</td><td>NIH</td><td></td><td>ソースコードは無料で入手できます。著者のウェイン・ラズバンド(wayne@codon.nih.gov)は、米国メリーランド州ベセスダにある国立精神衛生研究所の研究サービス部門にいます</td></tr><tr><td>SPSS Statistics 22</td><td>IBM</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Office 365 ProPlus</td><td></td> <td>Microsoft-Microsoft</td> <td>Office Excel</td></tr><tr><td>Windows 10</td><td>Microsoft</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2,3,5-トリフェニルテトラゾリウム塩化</td>物 <td>Sigma-Aldrich</td><td>298-96-4</td><td></td></tr><tr><td>50% トリクロロ酢酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>76-03-9</td><td></td></tr><tr><td>エタノール 96 %</td> <td>ロミカル</td><td></td><td>可燃性液体</td></tr><tr><td>エバンス ブルー 2%</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>314-13-6</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン、USP 100%</td><td>Piramamal Critical Care, Inc</td><td>NDC 66794-017</td><td></td></tr></tbody></table>

げっ歯類の脳サンプルの単一のセットで脳卒中後脳浮腫、梗塞ゾーンおよび血液脳関門破壊を測定する

Measuring Post-Stroke Cerebral Edema, Infarct Zone and Blood-Brain Barrier Breakdown in a Single Set of Rodent Brain Samples

世界的に罹患率と死亡率の最も一般的な原因の1つは虚血性脳卒中である。歴史的に、虚血性脳卒中を刺激するために使用される動物モデルは、中大脳動脈閉塞(MCAO)を含む。梗塞領域、脳浮腫および血液脳関門(BBB)の内訳は、MCAO後の脳損傷の程度を反映するパラメータとして測定される。この方法の重要な制限は、これらの測定は通常、異なるラットの脳サンプルで得られ、適切なサンプルサイズのために安楽死させられる必要がある多数のラットのために倫理的および財政的負担を引き起こします。ここでは、同じラット脳の中で梗塞領域、脳浮腫およびBBB透過性を測定することによってMCAOに続く脳損傷を正確に評価する方法を提示する。この新しい技術は、脳卒中の病態生理を評価するより効率的な方法を提供する。

梗塞ゾーン測定
独立サンプルt-テストでは、永久的MCAOを受けた19匹のラットが、3.57ラット対シャム=0.31%± ±1.9、t(28.49)=7.56、p&lt;0.01(図2)と比較して脳梗塞容積が有意に増加したことを示した(図2A)。データは、SDの反側半球±平均パーセントとして表されます。
脳浮腫測定
独立サンプルt検定は、永久的なMCAOを受けた19匹のラットが16匹のシャム作動ラットと比較して24時間後に脳浮腫の程度の有意な増加を示したことを示した(MCAO=12.31%± 8.6対シャム=0.64%±10.2、t(29.37)=3.61、p=0.011、2Bを参照)。 データ...

このプロトコルは、げっ歯類の脳サンプルの同じセット上の虚血性脳損傷の3つの最も重要なパラメータを測定する新しい技術を記述する。1つの脳サンプルのみを使用することは、倫理的および経済的コストの面で非常に有利である。

One of the most common causes of morbidity and mortality worldwide is ischemic stroke. Historically, an animal model used to stimulate ischemic stroke ...

現在のプロトコルでは、虚血性脳損傷を測定して、梗塞ゾーン、脳浮腫、およびBBB透過性を測定する修正中大脳動脈閉塞技術を提示します げっ歯類の脳のセットで。倫理的および経済的コストの観点から、この手法の主な利点は、3つの測定すべてに必要な脳サンプルが1つだけであることです。虚血性脳損傷の主なパラメーターのこの評価は、虚血性脳卒中の病態生理学を包括的に調査するのに役立ちます。まず、ラットの脳を取り出し、0.009インチのステンレス鋼のコーティングされていない片刃のかみそりの刃で2ミリメートルの厚さの水平部分を切り取ります。切片を0.005%TTCに置き、摂氏37度で30分間インキュベートした後、脳組織を顕微鏡スライド上に置き、1600×1600DPIの解像度で6つの脳スライスの光学スキャンを行います。フォトエディタを使用して、画像に青いフィルターを追加します。ソフトウェアを開いた後、画像、調整、チャンネルミキサーに移動します。出力チャンネルとして青を選択し、モノクロをチェックしてから、[OK]をクリックします。画像をJPEGファイル形式で保存します。ImageJ バージョン 1.37 のポリゴン選択ツールを使用して、6 つの脳スライスの各半球を選択し、個別の画像ファイルとして保存します。梗塞の体積と脳浮腫を計算するには、マクロを使用して、しきい値に基づいて画像内のピクセルを白または黒に変換します。次に、すべてのファイルを閉じ、2番目のマクロを使用して白と黒のピクセルの数を比較し、梗塞の体積と脳の浮腫を決定します。生データをスプレッドシートにコピーします。梗塞容積を計算するときは、同側大脳半球と対側大脳半球の比率を使用して組織の腫れを補正します。脳浮腫領域を、影響を受けていない対側半球の標準領域のパーセンテージとして表します。閉塞後24時間で血液脳関門の破壊を特定します。左右の半球を6つのスライスに分割し、各スライスを微量遠心チューブに入れます。脳組織の各スライスをトリクロロ酢酸で均質化し、脳組織の1グラムあたり4ミリリットルの50%トリクロロ酢酸を使用します。サンプルを 10, 000 倍 G で 20 分間遠心分離し、上清を新しいチューブに移し、96% エタノールで 1:3 に希釈します。プレートリーダーで発光分光光度計を行います。独立したサンプルのt検定では、永久的な中大脳動脈閉塞術(MCAO)を受けた19匹のラットは、偽手術を受けたラット16匹と比較して脳梗塞量の有意な増加を示したことが示されました。また、恒久的なMCAOを受けたラットは、偽の手術を受けた動物と比較して、24時間後の脳浮腫および血液脳関門の破壊の程度が有意に増加したことを示しました。この手順を試みるときは、化学物質の濃度がプロトコルに準拠していることを確認することが重要です。このプロトコルにより、脳の 1 つのサンプルで虚血性損傷の 3 つのパラメーターすべてを評価することができます。

measuring-post-stroke-cerebral-edema-infarct-zone-blood-brain-barrier

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JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

このビデオは、中大脳動脈閉塞を受けたラットの脳切片における梗塞帯と脳浮腫の評価を示しています。梗塞領域は酸化還元染色を使用して特定されますが、画像解析ソフトウェアのブルーフィルターと閾値機能により、影響を受けた半球の梗塞領域と浮腫が定量化されます。...

中大脳動脈閉塞後のラット脳の梗塞帯と脳浮腫の測定

出典: Zeynalov, E. et al.、脳卒中誘発性脳浮腫を研究するためのマウスにおけるアルギニン-バソプレシン受容体遮断薬コニバプタンの選択治療経路は、持続IV注入です。J. Vis. 経験。 (2016年)このビデオは、マウスモデルにおけるアルギニン-バソプレシン(AVP)受容体拮抗薬の静脈内送達を示しています。一過性の中大脳動脈閉塞は脳浮腫を誘発するAVP...

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