2020年12月14日
緑膿菌のバイオフィルム構造に対する抗菌薬による変化は、嚢胞性線維症および慢性肺感染症の患者から培養された臨床分離株によって異なります。共焦点顕微鏡法に続いて、COMSTATソフトウェアを使用して、個々の分離株のバイオフィルム構造(表面積、厚さ、バイオマスなど)の変動を定量化し、抗感染剤の有効性を評価できます。
このプロトコールの重要性は、さまざまな抗菌条件下でin vitroバイオフィルム構造を定量するためのシンプルで再現性のあるフレームワークを提供することです。この手法の主な利点は、COMSTATの手動操作に関連する主観的なばらつきを排除するのに役立ち、最終的に研究センター間での実験の標準化と透明性を促進することです。緑膿菌の培養物をイメージングするには、適切なレーザー励起波長とフィルターセットを備えた共焦点顕微鏡のステージにプレートを置きます。
また、20〜25倍の水浸レンズを使用して、基層から各バイオフィルムセグメントの上部まで、0.3マイクロメートル刻みで少なくとも6つの層状のzスタック画像をキャプチャします。次に、COMSTAT 解析のためにイメージを OME-TIFF として保存します。すべての画像を取得したら、ImageJでCOMSTAT2パッケージを開き、デスクトップ上にソースフォルダを作成します。
フォルダに OME-TIFF を 1 つ追加し、ソース フォルダから OME-TIFF を開きます。バイオマスを含まない空のレイヤーをすべて削除します。「ファイル」、「インポート」、および「イメージシーケンス」を選択して、ファイルを ImageJ にインポートします。
ソースフォルダを開かずに検索して強調表示し、[選択]をクリックします。シーケンスオプションウィンドウが表示されたら、[OK]をクリックします。「イメージ」、「変換」、および「Z を反転」を選択して、バイオフィルムの向きを反転し、基層がスタックの一番上になるようにします。画像のプロパティを定義するには、[画像とプロパティ]を選択すると、ソースウィンドウが表示されます。
長さの単位をミクロンに指定し、ボクセルの深さを 0.3 に定義して、[OK] をクリックします。「イメージ」、「調整」、および「しきい値」を選択します。しきい値ウィンドウで画像のしきい値を調整するには、下側のスライダーを右端に置いて最大しきい値を手動で設定し、上のスライダーを使用して最小しきい値を設定します。次に、画像ウィンドウのスライダーを使用して各レイヤーをスクロールし、スタック全体でバックグラウンドノイズが十分に除去されていることを確認し、[設定]を選択して下限しきい値を固定します。
[しきい値レベルの設定] ウィンドウで [OK] を選択し、同様に最大しきい値を設定および固定します。[適用] を選択し、表示される [スタックをバイナリに変換] ウィンドウで [OK] をクリックし、しきい値ウィンドウを終了します。「Plugins」、「Bio-Formats」、および「Bio-Formats Exporter」を選択して、ソースフォルダに新しいファイル名でファイルを保存します。
Bio-Formats Exporter multiple filesウィンドウが表示されたら、OKを選択します。Bio-Formats Exporterオプションウィンドウが表示されたら、再度OKを選択します。COMSTATを実行するには、プラグインとCOMSTAT2を選択すると、バージョン情報ウィンドウが表示され、[Observed Directories]ウィンドウで選択 OK.In、[Add]を選択し、ソースフォルダを見つけて強調表示し、[Choose]を強調表示してクリックします。「Images in Directories」ウィンドウが表示され、分析対象のOME-TIFFがリストされます。
COMSTAT2.1 ウィンドウで、[Automatic Thresholding Otsu's Method] と [Connected Volume Filtering] の選択を解除して、ソフトウェアが個々の OME-TIFF にプリセットしきい値を使用するようにします。COMSTAT2.1ウィンドウで、[バイオマス]、[厚さ分布]、および[表面積]を選択し、[実行]をクリックしてプログラムを実行します。出力データはログウィンドウに表示されます。
測定値は、ソースフォルダにTXTファイルとして自動的に保存されます。この代表的な解析では、感染した嚢胞性線維症患者から培養した緑膿菌分離株を使用して、このアプローチの長所を実証し、in vitroバイオフィルム構造の抗菌薬による変化を不正確に定量化しました。ライブセルイメージングは、バイオフィルム特異的モノクローナルおよびトブラマイシン処理の前後の緑膿菌バイオフィルム構造の変化を視覚化することもできます。
COMSTATのデータ解析により、処理されたバイオフィルム構造と対照培養物の間に有意差があることが明らかになりました。トブラマイシン処理した培養物では、平均厚さとバイオマスの明らかな減少が観察されました。しかし、抗体の存在下では、緑膿菌のバイオフィルムはこれらのトブラマイシンによる構造変化に対して抵抗性を示しました。
表面とバイオボリュームの比率を調べると、トブラマイシンに曝露したバイオフィルムと非曝露したバイオフィルムの両方で抗体の存在下で有意な減少が観察され、抗体処理培養物における凝集体の形成が示されました。この手順は、バイオフィルムマトリックスを破壊するために使用されるさまざまな抗菌剤の効果を定量的に評価または比較するために実行できます。この手法を一般的なフレームワークとして使用することで、研究者は、バイオフィルムの不均一性をよりよく表現するために、新しい数学的モデルやアルゴリズムプラグインをImageJに含めるために、プロトコルを改良するさまざまな方法を模索することができます。
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本研究では、さまざまな抗菌条件下におけるPseudomonas aeruginosaのバイオフィルム構造を定量化するための再現可能なフレームワークを提示します。このプロトコルは、バイオフィルム構築の評価を標準化し、研究センター間での透明性を高めることを目的としています。
バイオフィルム構造に対する抗菌効果を標準化して定量化することは、抗感染症薬開発におけるターゲットバリデーションを後押しします。バイオフィルムの客観的な指標を用いることで、化合物の曝露と構造的な結果を関連付け、治療候補物質のメカニズム的なリスク低減が可能になります。このアプローチは、研究室間でのバイオフィルム表現型の評価におけるばらつきを抑えることで、前臨床スクリーニングにおける予測の信頼性を向上させます。
本手法は、ターゲット検証からリード最適化に至る創薬の連続的なプロセスに適合し、構造活性相関を明らかにするための定量的なバイオフィルム表現型解析を提供します。