Name: レーザーフリーヒドロキシルラジカルタンパク質フットプリントによるタンパク質の高次構造解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-06-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 59 s
Description: 学ぶレーザーフリーのヒドロキシルラジカルタンパク質フットプリンティング法。プラズマ光源とインラインラジカル線量計測を用いて、タンパク質の相互作用部位と高次構造を解析する安全で再現性の高い手法です。

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この研究は、国立一般医学研究所(R43GM125420およびR44GM125420)によって資金提供されました。

1. キャピラリーチューブの取り付け
<ol><li>シリカ切断石を使用して、250 μm 内径(ID)シリカ毛管を27インチに切断します。毛細管の端部がきれいな、まっすぐな切り傷を点検しなさい。</li>
	<li>ポリイミドコーティングを焼き払って、長さ約15mmの2つの窓を作成します。「下端」から始めて、最初の光起点窓を「下端」から90mm離れ、「下端」から225mm離れた場所に向けて行います。 注:コーティングが燃え尽きると、毛細管は非常に壊れやすいです。</li>
	<li>ポート 5 でナットとフェルールを外し、フェルールの円錐の端のすぐ向こうにキャピラリーの「下端」を挿入します(図 1A)。</li>
	<li>光起こしモジュールで、光起細胞キャップをまっすぐ引き出して取り外し、キャピラリーを所定の位置に保持する磁気的に取り付けられた金属マスクを取り外します。 注意:光起こセルキャップの内側は湾曲したミラーであり、ミラーに触れるものは何も許可しないでください。</li>
	<li>ドーシメータモジュールで、左側のタブを押して、ドーシメーターセルを開き、右に開いて、その後、その細胞を振ります。キャピラリーを所定の位置に保持する磁気マウントクリップを取り外します。</li>
	<li>毛細管を、光起細胞の基部の溝付きチャネルに入れる。毛細血管ウィンドウを、光度セルウィンドウで中央に配置します。片方の手でキャピラリーを所定の位置に持ち、マグネットマスクを加えてキャピラリーを所定の位置に保持します。光のキャップを元の位置に戻します。</li>
	<li>毛細管を、ドーシメータセルの基部の溝溝に入れる。第2のキャピラリーウィンドウを、線量計細胞の基部の中央にある小さな開口部の上に中央に配置します。片方の手でキャピラリーを所定の位置に持ち、キャピラリーを所定の位置に保持する位置に2つの磁気クリップを置きます。クリックが閉じるまで、ドーシメータ セルを閉じます。</li>
	<li>製品コレクターのキャピラリーリフトの上に、ひざ付きナットを通して毛細管を挿入します(図1B)。キャピラリーをバイアルの底のすぐ上まで伸ばします。 注: 実験中にキャピラリーが急流溶液に沈み込むには、キャピラリーがバイアルの底に到達することが重要です。</li>
</ol>2. インジェクションループの取り付け
<ol><li>外径1/16インチ、内径0.015インチ(381μm)のテフロンチューブを使用してください。式 1 に従って、目的の体積に必要なチューブの長さを計算します。 <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/61861/61861equ01.jpg"> ここでLは管の長さをミリメートルで、Vはマイクロリットルで所望の容積、dは管内径をミリメートル単位で表します。射出体積が25μL、内径が381μmの場合、チューブ長さは約219.3mmである必要があります。 注:20 μL 未満のボリュームの場合は、内径 0.01 インチの PTFE チューブを使用してください。</li>
	<li>チューブカッターを使用して、テフロンチューブを必要な長さにカットします。チューブの端部がきれいなストレートカットを確認します。</li>
	<li>ナットの 1 つを通して新しい射出ループの一端を挿入し、チューブの端に新しいフェルールを配置します。フェルールとナットを所定の位置に保持し、チューブを注入バルブのポート 3 に挿入して、バルブに底を付けます。チューブをしっかりと保持し、ナットフィンガーをしっかりと締めます。レンチを使用して、ナットを1/4ターンさらに締めます。アセンブリを削除して検査します。 メモ:フェルールの位置が固定されていない場合は、再インストールして1/8ターンを締め付けます。ループの反対側で繰り返します。</li>
	<li>両端にナットと固定フェルールが付いたら、一方の端をポート 3 に緩やかにねじ込み、もう一方の端をポート 6 にねじ込みます (図 1C)。一度位置に両側を引き締めて指を締め、1/4はレンチで指を締めます。</li>
</ol>3. 光度システムを初期化する
<ol><li>次の順序で光の起動モジュールをオンにする:(1)流体モジュール(2)光起合モジュール(3)ドシメトリーモジュール(4)製品コレクタ、最後に(5)システムコンピュータを起動し、制御ソフトウェアを起動します メモ:ドーシメータモジュールを最低30分はコールドスタートからウォームアップしてください。</li>
	<li>シリンジポンプの「バルブ」位置(図1D)から10 mLのバッファに完全に沈入管。「廃棄物」位置(図1D)からチューブを配置し、注射器ポートのポート2(図1C)から空の容器にチューブを置いて廃棄物を回収します。 注:タンパク質が中断されるバッファを使用してください。推奨されるバッファは 10 mM NaPO4 です。</li>
	<li>製品コレクターカルーセルで、Hと6のマークの位置に1.5 mLマイクロ遠心チューブを配置します。</li>
	<li>250 μm ID キャピラリーを使用する場合は、負荷流量を 500 μL/min、処理流量を 7.5 μL/min に、廃棄物流量を 500 μL/min に設定します。</li>
	<li>式 2 を使用して半自動モードを使用するフラッシュ遅延、製品時間、および無駄な時間を計算します。 <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/61861/61861equ02.jpg"> ここで、t は分単位の時間、s は毛管距離をミリメートル単位、d は毛管の内径をミリメートル、f は μL/min の流量です。<ol>
<li>フラッシュ遅延の場合、キャピラリーの「下端」から最初のウィンドウまでの距離は、およそ90mmでなければなりません。250 μm ID キャピラリーと処理流量 7.5 μL/m を使用すると、サンプルは約 35 秒で光度のウィンドウに到着します。サンプルが到着する前に 1 Hz で 2 回のフラッシュが発生するので、フラッシュ遅延を 33 秒に設定します。</li>
		<li>製品時間については、注入液が射出弁から毛細管の端まで流れるのにかかる時間を入力します。27インチ長い250 μm IDキャピラリーの場合、製品時間を4.5分に設定します。</li>
		<li>無駄な時間については、注入された溶液の総量が収集される時間を入力します。このとき、製品コレクターは製品位置から廃棄物バイアルに移動します。噴射量が25μL、流量が7.5μL/minの場合は、無駄な時間を7.8分に設定します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>注入弁を負荷位置に設定して、25 μLのHPLC級水を注入口に注入して、注入ループを5回リンスアウトします。</li>
	<li>システムの残りの部分をフラッシュするために手動で「射出位置」に注入弁を回します。制御ソフトウェアの [プロセス(アウト)]を 選択して、水の流れを開始します。流れている間、製品コレクタの下にある 「上」 を選択して、キャピラリーの終わりを見ることができるように、製品コレクターのキャピラリーリフトを上げます。液滴が形成されるまで毛細血管を通って水を流す。 メモ:液滴が形成されない場合は、インジェクタバルブに漏れが発生していないか確認してください。漏れがある場合は、ナットを緩め、キャピラリーを取り付け直し、締め直します。</li>
</ol>4. 実際 の▪OH収量を決定し、バッファーからのラジカル清掃効果をテストします。
<ol><li>コントロールソフトウェアで、[ プロセス (Out)]を選択してフローを開始します。設定タブで、フラッシュ電圧を0 Vに設定します。[データ量]セクションの[ 手動制御 ]タブで、[ データの開始 + オートゼロ]を選択します。</li>
	<li>製品バイアル(H)と廃棄物バイアル(6)の位置を選択します。</li>
	<li>[Ready]を選択し、手動でインジェクションバルブを負荷位置まで下げ、100 mM H 2 O 2の25 μLを1mMH2O2で注入ポートに注入します。注入したら、注入弁を注入位置まで手動で回す。 注: これは自動的にシステムが流れを開始し、プラズマ源をオンにして、線量測定データを取得するようにトリガします。</li>
	<li>設定タブに移動し、フラッシュ電圧を変更して、電圧を上げます。500 V、750 V、1000 V、および 1250 V を使用してステップ 4.2 および 4.3 を繰り返します。</li>
	<li>計算タブを選択して、各サンプルの平均吸光度を決定します。まず、[ 選択] をクリックし、ピーク吸光度の始点と終点を手動で選択します。使用可能なスペースに、サンプルの説明を書きます。取得したすべてのデータに対して繰り返します。 注意:気泡が形成され、ドーシメータの読み取り値が急上昇する可能性があります。平均吸光度を決定するデータを選択する場合は、気泡のある領域を省略します。</li>
	<li>Excelでデータをコピーして貼り付けて、各電圧のアデニン吸光度の平均変化を計算し、したがって、OH収量 ▪有効を決定する。</li>
	<li>各条件の有効な ▪OH 歩留まりを正規化するために複数のサンプル条件(異なるバッファ/添加剤)が使用されている場合は、手順 4.1 ~ 4.6 を繰り返します。</li>
</ol>5. 高次構造の変化を検出するタンパク質の改変。
<ol><li>4 mM アデニンと 20 μM のタンパク質を 1 対 1 の比率で混合し、2 mM アデニンと 10 μM タンパク質を含む溶液を作ります。</li>
	<li>0.3 mg/mLカタラーゼを使用して余分な過酸化水素を分解し、残りのラジカルをクエンチするために35 mMメチオニンアミドを作ります。アリコート25 μLのクエンチ溶液を200 μLマイクロチューブに入れ、同量のクエンチとラベル付けされた製品が混合されるようにします。</li>
	<li>H2O2~200mMを薄め、氷の上に置いてください。</li>
	<li>設定タブのコントロールソフトウェアで、フラッシュ電圧を0Vで開始して、バックグラウンドでの酸化を決定します。</li>
	<li>手動制御タブで、[ データの開始 + オートゼロ] を選択し、[ プロセス (アウト)]、次に [準備完了] を選択し、最後に射出バルブを負荷位置まで下にします。</li>
	<li>製品のコレクトカルーセルの位置 1 にクエンチ溶液を配置します。システムコントロールソフトウェアで、製品バイアルを1に変更します。</li>
	<li>注射の直前に、12.5 μLのアデニンとタンパク質混合物を12.5 μLのH2O2と混合して、1 mM アデニン、5 μMタンパク質、および100 mM H 2 O2の最終濃度を作ります。ピペットを上下に軽く混ぜ、素早くスピンダウンし、混合後10秒以内に注入ポートを使用して25μLを注入します。</li>
	<li>注入弁を注入位置に切り替え、サンプルが処理されている間待ちます。</li>
	<li>500 V、750 V、1000 V、および1250 Vで取得を繰り返し、各電圧測定を三重で行います。</li>
	<li>ステップ4.5で説明したように平均吸光度を計算する。すべてのデータをコピーして Excel に貼り付けます。</li>
</ol>6. システムをシャットダウンする
<ol><li>すべてのサンプルを採取した後、注入バルブを負荷位置に下げて注射器ポートとサンプルループを洗い流し、25 μLのHPLC水を5回注入します。</li>
	<li>注入弁を注入位置まで回し、残りのシステムをHPLC水で洗い流します。</li>
	<li>フローを停止し、システム制御ソフトウェアを閉じ、製品コレクタ、ドーシメータモジュール、光起調モジュール、最後に流体モジュールから始まるモジュールをオフにします。</li>
</ol>7. 試料調製および液体クロマトグラフィー質量分析
<ol><li>50 mMトリスと1 mM CaCl 2の存在下で、サンプルを80°Cで20分間インキュベートしてタンパク質を変性させる。室温にサンプルを冷却し、タンパク質に1:20トリプシンを加えます。サンプル混合で37°Cで一晩タンパク質を消化する。翌朝、サンプルを95°Cに10分間加熱してトリプシン消化を終了する。</li>
	<li>UPLCシステムに接続された高解像度LC-MS/MSシステムを使用してペプチドを検出します。</li>
	<li>サンプルをトラップカラム(300 μm ID X 5 mm 100 Å孔サイズ、5 μm粒径)にロードし、5.0 μL/mLで3分間、2%溶媒B(アセトニトリルと0.1%ギ酸)を含む水で洗浄します。</li>
	<li>C18ナノカラム(0.75mm x 150mm、2μm粒径、100Å孔径)のペプチドを、溶媒A(0.1%のギ酸を含む水)と溶媒Bの間の勾配で300 nL/minの流量で分離します。ペプチド溶出の勾配は、22分間で2〜35%Bに線形増加し、5分間で95%Bに上昇し、3分間保持して3分間保持し、3分間にわたって2%Bに戻し、9分間保持してカラムを再平衡化します。</li>
	<li>正のイオンモードでデータを取得します。噴霧電圧を2400Vに設定し、イオン転写管の温度を300°Cに設定します。</li>
	<li>250~2000 m/zの完全MSスキャンを取得し、その後、最も豊富なペプチドイオンの上位8個に対して8回のデータ依存MS/MSスキャンを行います。35%正規化されたエネルギーで衝突誘発解離を使用して、ペプチドをフラグメント化します。</li>
	<li>タンパク質配列と関連するタンパク質分解酵素を含む必要なFASTAファイルに対して利用可能なタンパク質分析ソフトウェアを使用してMS/MS分析から検出されたすべての未修飾ペプチドを同定します。</li>
	<li>HRPFデータ処理ソフトウェアを使用して、修飾ペプチドを検索および定量化します。同定されたペプチドごとに酸化の程度は、修飾ペプチドの合計クロマトグラフィーピーク面積を式3を用いて改変されたペプチドの総クロマトグラフィーピーク面積で割ることによって計算される。 P = [I( 一酸化) X 1 + I (二重酸化 ) X 2 + I(三重酸化 ) X 3 + ../I ( 1酸化性 ) + I (二重酸化) + I( 三重酸化 ) + I(三酸化型 ) ここでPはペプチド分子あたりの平均酸化事象数を示し、Iは非酸化ペプチド(Iunoxキシ化)とn酸化事象を有するペプチドのピーク面積を表す。</li>
</ol>8. 差動分析の場合は、2番目の条件でステップ 5 から 7 を繰り返します。
注:再現性を確認するために、各条件の技術的な三重化に加えて、2つの生物学的複製が推奨されます。

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<li>Misra, S. K., Sharp, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enabling+Real-Time+Compensation+in+Fast+Photochemical+Oxidations+of+Proteins+for+the+Determination+of+Protein+Topography+Changes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Enabling Real-Time Compensation in Fast Photochemical Oxidations of Proteins for the Determination of Protein Topography Changes.</a> Journal of Visualized Experiments. 163, (2020).</li>
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<li>Jones, L. M., Sperry, B. J., Carroll, A. J., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+photochemical+oxidation+of+proteins+for+epitope+mapping%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+chemistry%22%5BJournal%5D)">Fast photochemical oxidation of proteins for epitope mapping.</a> Analytical chemistry. 83 (20), 7657-7661 (2011).</li>
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<li>Liu, X. R., Zhang, M. M., Rempel, D. L., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Single+Approach+Reveals+the+Composite+Conformational+Changes%2C+Order+of+Binding%2C+and+Affinities+for+Calcium+Binding+to+Calmodulin%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">A Single Approach Reveals the Composite Conformational Changes, Order of Binding, and Affinities for Calcium Binding to Calmodulin.</a> Analytical Chemistry. 91 (9), 5508-5512 (2019).</li>
<li>Kiselar, J. G., Janmey, P. A., Almo, S. C., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+analysis+of+gelsolin+using+synchrotron+protein+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Structural analysis of gelsolin using synchrotron protein footprinting.</a> Molecular and Cellular Proteomics. 2 (10), 1120-1132 (2003).</li>
<li>Chea, E. E., Deredge, D. J., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+on+the+Conformational+Ensemble+of+Cyt+C+Reveal+a+Compact+State+during+Peroxidase+Activity%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Insights on the Conformational Ensemble of Cyt C Reveal a Compact State during Peroxidase Activity.</a> Biophysical Journal. 118 (1), 128-137 (2020).</li>
<li>Poor, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+the+paramyxovirus+fusion+%28F%29+protein-refolding+event+from+pre-+to+postfusion+by+oxidative+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Probing the paramyxovirus fusion (F) protein-refolding event from pre- to postfusion by oxidative footprinting.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 111 (25), 2596-2605 (2014).</li>
<li>Roush, A. E., Riaz, M., Misra, S. K., Weinberger, S. R., Sharp, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrinsic+Buffer+Hydroxyl+Radical+Dosimetry+Using+Tris%28hydroxymethyl%29aminomethane%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+American+Society+of+Mass+Spectrometry%22%5BJournal%5D)">Intrinsic Buffer Hydroxyl Radical Dosimetry Using Tris(hydroxymethyl)aminomethane.</a> Journal of American Society of Mass Spectrometry. 31 (2), 169-172 (2020).</li>
<li>Everett, E. A., Falick, A. M., Reich, N. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+critical+cysteine+in+EcoRI+DNA+methyltransferase+by+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Identification of a critical cysteine in EcoRI DNA methyltransferase by mass spectrometry.</a> Journal of Biological Chemistry. 265 (29), 17713-17719 (1990).</li>
<li>Sanderson, R. J., Mosbaugh, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+specific+carboxyl+groups+on+uracil-DNA+glycosylase+inhibitor+protein+that+are+required+for+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Identification of specific carboxyl groups on uracil-DNA glycosylase inhibitor protein that are required for activity.</a> Journal of Biological Chemistry. 271 (46), 29170-29181 (1996).</li>
</ol>

E.E.C.、J.S.S.、S.R.W.は、高次タンパク質構造解析のための技術の製品化を目指す初期段階のGenNext Technologies, Inc.に対する大きな財政的関心を開示しています。提供された代表的なデータは、金銭的な利益相反を持たないS.K..M.によってレビューされています。

HRPF実験中にタンパク質の適切な標識を確実に行うためには、いくつかの重要なステップがあります。まず、適切な流量とソースフラッシュレートが、試料の各ボーラスが一度照射されるのを確実にするために選択される。これにより、タンパク質が新たに形成された ▪OHの単一のボーラスにさらされることが保証されます。タンパク質が酸化されると、より高次のタンパク質構造を変化させることができます。ネイティブタンパク質構造がプローブされていることを確信するためには、各タンパク質分子を1回の瞬間に修飾する必要があります。ドシメトリーは、天然のタンパク質構造がプローブされているかどうかをテストするために使用することができます。ヒドロキシルラジカルの濃度が増加するにつれて、天然タンパク質構造がプローブされると、酸化の程度が直線的に増加する。しかし、ヒドロキシルラジカルの濃度が高い場合、標識中にタンパク質が部分的に展開し、酸化の程度が著しく増加し、天然のタンパク質構造を確実にプローブする有効な手段を提供する。
反応が適切に消光されるようにすることも重要です。これには、標識プロセス中にタンパク...

タンパク質の立体構造および関連する高次構造(HOS)は、適切な生物学的機能および異常な挙動1の主要な決定因子である。同じことが、その構造と機能活性が生産と環境の様々な側面に依存しているバイオ医薬品にも当てはまります。HOSのバイオ医薬品の変化は、望ましくない薬理学的および患者免疫学的応答2、3に起因する有害薬物反応(ADR)に関連している。ADRの出現は、タンパク質HOSがバイオ医薬品の安全性と有効性において果たす重要な役割をバイオ医薬品業界に警告し、HOS分析4を新しく改良する必要性を確立しました。
ヒドロキシルラジカルプロテインフットプリント(HRPF)は、タンパク質HOSの変化を追跡する有望な技術です。HRPFは、OH▪を伴うタンパク質の外装の不可逆的な標識を伴い、続いて質量分析(MS)分析を行い、タンパク質5、6、7の溶媒アクセス可能表面を同定する。HRPFは、タンパク質HOSとその機能8、9の欠陥の検出に成功し、モノクローナル抗体(mAb)10、11、12、13のHOSを特徴付け、リガンド14の結合Kdを決定し、さらに多くの15、16、17、18、19を検出する。HRPF用の▪OHを生成する一般的な方法は、タンパク質の高速光化学酸化(FPOP)であり、H2O2の光起こしから▪OHを生成するために高エネルギー、高速UVレーザーを採用している。ほとんどの場合、FPOPは、呼吸および眼の損傷を避けるために相当な保護手段を要求する危険ガス(KrF)を採用した高価なエキシマレーザーを使用する20。吸入の危険を避けるために、他の人は、有毒ガスの使用を排除するが、依然として高価であり、重要な運用上の専門知識を必要とし、目の怪我からユーザーを保護するために広範な迷子光制御を要求する周波数四足数ネオジムイットリウムアルミニウムガーネット(Nd:YAG)レーザー21を使用しています。
HRPFを用いて十分な情報を得ることができるが、バイオ医薬品の幅広い採用は満たされていない。限られたHRPFの採用のための2つの障壁は、1)実質的な安全対策20を必要とする危険で高価なレーザーの使用を含む;2)比較研究を制限する ▪OHのバックグラウンド清掃によって引き起こされるHRPFの再現性を22.レーザー使用に取って代わる高速、高エネルギープラズマフラッシュ光度ユニットは、FPOPを安全に簡単に行うために開発されました。HRPF実験の再現性を向上させるために、リアルタイムラジカルドジメトリーが実施される。
HRPFの実践は、▪OH22のバックグラウンド清掃に起因する再現性の不足によって制限されている。▪OHはタンパク質トポグラフィーの優れたプローブですが、調製物に見られる多くの成分と反応するため、標的タンパク質を酸化するために利用可能なラジカルの有効濃度を測定する必要があります。バッファー調製、過酸化水素濃度、リガンド特性、または光分解の変動は、HOS微分試験において曖昧さを生み出す対照群と実験群の間に酸化的な違いをもたらす可能性がある。リアルタイムラジカル・ドジメトリーの追加により、OH負荷▪効果の調整が可能になり、HRPF実験中の信頼性と再現性が向上します。FPOPにおけるラジカル・ドシメトリーの使用は、他の場所で説明されている23,24,25、最近の刊行26で詳しく論じられています。ここでは、新しいフラッシュ光反応系とリアルタイムの量体系を用いて、エキシマレーザーを用いた場合のFPOP実験におけるペプチド酸化のレベルを比較して、馬のアポミオグロビン(aMb)を標識する。

<table><tbody><tr><td>15 mLの円錐形の遠心分離機の管フィ</td><td>ッシャー科学</td><td>14-959-53A</td><td>はどのブランドでも十分である</td></tr><tr><td>50 &micro;L SGEガスタイトシリンジ</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>SG-00723</td><td></td></tr><tr><td>Acclaim PepMap 100 C18ナノコラム(0.75 mm X 150 mm、2 & micro;m)</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>アセトニトリル、0.1% ギ酸 (v/v)、LC/MS グレード</td><td>Fisher Scientific</td><td>LS120-500</td><td></td></tr><tr><td>アポミオグロビン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Catalase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C9322</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>Eppendorf</td><td>022625501</td><td></td></tr><tr><td>Delicate Task Wipers</td><td>Fisher Scientific</td><td>06-666A</td><td></td></tr><tr><td>過酸化水素</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>H325-100</td><td>任意の30%過酸化水素で十分</td></tr><tr><td>メチオニンアミド</td><td>Chem-Impex</td><td>03109</td><td></td></tr><tr><td>微量遠心分離機</td><td>Thermo Scientific</td><td>75002436</td><td></td></tr><tr><td>Orbitrap Fusion Lumos Tribrid 質量分析計</td><td>Thermo Scientific</td><td>Orbitrap Fusion Lumos Tribrid 質量分析計</td><td>その他の高分解能装置(Q exactive Orbitrap や Orbitrap Fusion など)は、</td></tr><tr><td>Pierce Trypsin Protease、MS</td><td>Grade Thermo Scientific</td><td>90058</td><td></td></tr><tr><td>Polymicro Cleaving Stone、1" x 1" x 1/32"</td> で使用できます。<td>Molex</td><td>1068680064</td><td>任意のキャピラリーチューブカッターは、</td></tr><tr><td>0.1% ギ酸 (v/v)、LC/MS グレード</td><td>Fisher Scientific</td><td>LS118-500</td><td></td></tr><tr><td>水、LC/MS グレード</td><td>Fisher Scientific</td><td>W6-4</td><td></td></tr> を含む <tr><td>UPLC</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr> Water で十分です</tbody></table>

レーザーフリーヒドロキシルラジカルタンパク質フットプリントによるタンパク質の高次構造解析

Laser-free Hydroxyl Radical Protein Footprinting to Perform Higher Order Structural Analysis of Proteins

Hydroxylラジカルプロテインフットプリント(HRPF)は、タンパク質構造の変化、タンパク質とタンパク質の相互作用、またはタンパクリガンド相互作用に関する情報を提供する、新たな有望な高次構造解析技術です。HRPFは、ヒドロキシルラジカル(▪OH)を利用して、タンパク質の溶媒アクセス可能な表面を不可逆的に標識します。HRPFを実行する本質的な複雑さ、コスト、および危険な性質は、バイオ医薬品における広範な採用を実質的に制限しています。これらの要因には、1)実質的な安全対策を必要とする複雑で危険で高価なレーザーの使用が含まれます。2)比較研究を制限する ▪OHのバックグラウンド清掃によって引き起こされるHRPFの再現性。本書は、レーザーフリーHRPFシステムの動作プロトコルを提供します。このレーザーフリーHRPFシステムは、インラインラジカル線量測定を用いた高エネルギー、高圧プラズマ光源フラッシュ酸化技術を利用しています。プラズマ光源は、レーザーベースのHRPFシステムよりも安全で使いやすく、ヒドロキシルラジカルの生成効率が高く、インラインラジカル線量計は研究の再現性を高めます。レーザーフリーHRPFシステムを組み合わせることで、レーザーベースの技術の欠点と限界に対処し、克服します。

リアルタイムのドサイメトリーと組み合わせた高圧血漿源により、高次タンパク質構造の変化をより正確に観察するために、▪OH収量をより適切に制御できます。アデニンの添加は有効なリアルタイムラジカルのドシメータを可能にする。酸化の際、アデニンは265nmでUV吸光度を失う(図2A)。アデニン吸光度の変化は、HRPFに利用可能なラジカルの濃度に直接関係しており、バッファー、賦形剤、リガンドなどのラジカルスカベンジャーの存在下でラジカル濃度の変化を効果的に監視する手段を提供する(図2B)。
アポミオグロビン(aMb)は、4つの増加プラズマ電圧で100mM H2O2および1mMアデニンの存在下で改変した(図3)。6個のペプチドを、アデニンUV265nm吸光度の変化に伴う酸化の直線的増加で検出した。アデニンUV吸光度は、OH濃度を有効▪</sup...

このプロトコルは、インラインラジカル線測定とプラズマ光源を使用して、フラッシュ酸化タンパク質のフットプリントを実行する方法を提示する。この方法は、タンパク質研究の高速光化学酸化の再現性を簡素化し、改善するために、危険なUVレーザーを置き換えます。

Hydroxyl Radical Protein Footprinting (HRPF) is an emerging and promising higher order structural analysis technique that provides information on changes ...

レーザーフリーのヒドロキシルラジカルタンパク質のフットプリントにより、タンパク質相互作用部位および確認変化の領域の同定が容易になり、タンパク質凝集、構造、安定性の研究が加速します。インラインラジカル線量測定により、有効なヒドロキシルラジカル負荷をリアルタイムで調整でき、リアルタイムラジカル線量測定により、実験時間と貴重なサンプルを節約しながら、ラベル再現性を向上させることができます。まず、250マイクロメートルの内径シリカキャピラリーをシリカ切断石で27インチに切断し、毛細管の端部にきれいなストレートカットを確認します。長さ約15ミリの2つの窓を作成します。毛細管の下端から、ポリイミドコーティング90ミリメートルを焼き払い、線分解窓を作成し、225ミリメートルの線虫窓を作成します。ナットとフェルールの円錐の端のすぐ先に毛細管の下端を挿入します。キャピラリーをポート5に加え、レンチで指をしっかりと向こう側に締めます。光起こしモジュールの光起細胞キャップをまっすぐ引き出して取り外し、キャピラリーを所定の位置に保持する磁気的に取り付けられた金属マスクを取り外します。左側のタブを押して、ドーシメーターセルを開き、右に開いて、行量計セルをスイングします。キャピラリーを所定の位置に保持する磁気マウントクリップを取り外します。次に、毛細管を光度細胞の基部にある溝付きチャネルに配置し、毛細管のウィンドウを光度セルウィンドウで中央に配置します。キャピラリーを置き、磁気マスクを追加します。光のキャップを元の位置に戻します。線量計セルの基部にある溝付きチャネルに毛細管を配置し、2番目のキャピラリーウィンドウを線量計セルの中央にある小さな開口部の中央に配置します。片方の手でキャピラリーを所定の位置に持ち、キャピラリーを所定の位置に保持する位置に2つの磁気クリップを置きます。クリックが閉じるまで、ドーシメータ セルを閉じます。最後に、製品コレクターのキャピラリーリフトの上にナールノブを通して毛細管を挿入し、キャピラリーをバイアルの底のすぐ上まで伸ばします。カッターを使用してテフロンチューブの所望の長さをカットし、きれいなストレートカットのために端を確認します。ナットの 1 つを通して新しい射出ループの一方の端を挿入し、チューブの端に新しいフェルールを配置します。ナットとフェルールを所定の位置に保持し、チューブを注入バルブのポート6に挿入して、底を打つまで押し出します。ナットをレンチで締め、ナットとフェルールがしっかりと配置されていることを確認します。両端にナットと固定フェルールが付いたら、一方の端をポート3に緩やかにねじ込み、もう一方の端をポート6にねじ込みます。一度位置に入ったら、両側をしっかりと引き締め、4分の1がレンチで指をしっかりと回します。流体モジュールを起動してレーザーフ

laser-free-hydroxyl-radical-protein-footprinting-to-perform-higher

Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

このプロトコルは、Mg（II）依存性ヒドロキシルラジカルフットプリンティングの2つの方法でRNA三次構造の形成を定量化する方法について説明します。...

&quot;過酸化&quot;と&quot;酸化&quot;ヒドロキシルラジカルフットプリントにより、RNAの構造における均衡の変化を監視する

精密質量測定は、タンパク質の研究における重要なステップである。マトリックス支援レーザー脱離イオン化（MALDI）質量分析法（MS）は、そのような決定のために使用することができ、その主要な利点は、塩、界面活性剤および汚染に対する耐性である。ここでは、MALDI-MSによって100kDaのより大きなタンパク質の分析のためにアクセス可能なアプローチを示している。...

フライトのマトリックス支援レーザー脱離/イオン化飛行時間（MALDI-TOF）100kDaのより大きなインタクトタンパク質の質量分析

タンパク質の立体構造とダイナミクスは、タンパク質の構造と機能の関係を理解するための鍵となります。高分解能質量分析と組み合わせた水素の交換は、タンパク質のコンフォメーションのダイナミクスを研究だけでなく、接触インタフェースおよびアロステリック効果を含むタンパク質 - リガンドとタンパク質 - タンパク質相互作用を特徴付けるための汎用的な方法である。...

水素交換質量分析法を用いてタンパク質のダイナミクスを分析する

タンパク質複合体の建築はその機能は欠かせません。様々...

化学架橋と複合体タンパク質複合体の建築を学びそのまま蛋白質の複合体の質量分析法を組み合わせた

ここでは、単一分子レベルの複雑な蛋白質のサンプルのそれぞれのタンパク質種のラベリングの均質性を評価するためのプロトコルを提案する.

プロテオーム的分類の単一分子レベルでの均一性の定量化

マイクロトームを用いて汎用性の高い解起性BN-MSプロトコルを高解像度の複合プロファイリング用に提示する。...

クライオスライシングBN-MS解析による高解像度複合プロファイリング

インビボでタンパク質の高速光化学酸化(IV-FPOP)は、天然環境でタンパク質構造のマッピングを可能にするヒドロキシルラジカルタンパク質フットプリント技術です。このプロトコルは、IV-FPOPマイクロ流体流動システムの組立とセットアップについて説明します。...

イン・ビボヒドロキシルラジカルプロテインフットプリントにおけるカエノハブディティス・エレガンスにおけるタンパク質相互作用の研究

ここでは、細胞内でのタンパク質の高速光化学酸化(IC-FPOP)と呼ぶタンパク質フットプリント技術を用いて、生細胞におけるタンパク質構造および相互作用部位を特徴付ける。...

細胞内高速光化学タンパク質による細胞タンパク質の特性分析

タンパク質の高速光化学酸化は、タンパク質の構造特性を示す新たな手法です。異なる溶媒添加剤およびリガンドは、ヒドロキシルラジカル清掃特性を多様に有している。異なる条件でタンパク質構造を比較するために、反応で生成されたヒドロキシルラジカルのリアルタイム補償が反応条件を正常化するために必要である。...

タンパク質トポグラフィ変化の測定のためのタンパク質の高速光化学酸化におけるリアルタイム補正の実現

質量分析検出を用いてジエチルピロカーボネートベースの共有標識を行うための実験的手順について説明する。ジエチルピロカーボネートは、単に目的のタンパク質またはタンパク質複合体と混合され、溶媒にアクセス可能なアミノ酸残基の修飾につながる。修飾残基は、タンパク質分解と液体クロマトグラフィー/質量分析分析の後に同定することができる。...

質量分析によるタンパク質高次構造の研究のためのジエチルピロカーボネートとの共有結合標識

新しい静的プラットフォームは、タンパク質の細胞内高速光化学酸化(IC-FPOP)と呼ばれるタンパク質フットプリント技術を利用して、ネイティブ細胞環境におけるタンパク質構造および相互作用部位を特徴付けるために使用されます。...

可動XYステージを用いてプラットフォームインキュベーター:タンパク質の細胞内高速光化学酸化を実装するための新しいプラットフォーム

学ぶレーザーフリーのヒドロキシルラジカルタンパク質フットプリンティング法。プラズマ光源とインラインラジカル線量計測を用いて、タンパク質の相互作用部位と高次構造を解析する安全で再現性の高い手法です。

レーザーフリーヒドロキシルラジカルタンパク質フットプリントによるタンパク質の高次構造解析

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