Name: 新生児ウサギにおける盲目の気管内挿管 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 4 s
Description: 学ぶ新生児ウサギの盲目気管内挿管法。食道閉塞により直接視認なしで気道にチューブを挿入する技術で、複雑な気道構造を持つ小型動物モデルでの気道管理を改善し、成功率90%を達成する信頼性の高い方法です。

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この作品は、ソシエダ・エスパニョーラ・デ・クイダドス・インテンシボス・ペディアトリコスとヴァンダービルト医社プログラムの「PFIS2017-0224」、ソシエダ・エスパニョーラの「ベカ・ルザ」からの助成金によって支えられました。 
スポンサーはデータの収集、分析、または解釈に関与していなかった。
動物研究所内で提供されたイザベル・サラス氏、サン・ジョアン・デ・デウ病院のオーディオビジュアルテキンカルチームのカルレス・ファブレガ氏とジェンマ・フェルナンデス・アセンシオ氏のビデオ録画と制作に関する技術サポートに感謝します。

以下に概説する挿管手順は、バルセロナ大学の施設動物のケアと使用委員会(CEEA 180/19)によって承認されました
1. 実験準備
<ol><li>以下の材料を得る:直径2mmのポリ塩化ビニル(PVC)気管チューブ、6フレンチ(Fr)ポリウレタン給電管、平らで広い先端解離鉗子および無菌潤滑剤(図1)。</li>
	<li>挿管および手術プロセス中に、無菌状態を維持する。</li>
</ol>2. 麻酔
<ol><li>5 mg/kg キシラジンと25mg/kgケタミンで動物を麻酔し、大腿四頭筋の 広大な側面 に筋肉内に適用します。デクスメデトミジンなどのα-2アゴニストは、キシラジンの代わりに使用することもできる。</li>
	<li>薬が効果を発揮するまで3〜5分かかります。</li>
	<li>深い麻酔が達成されるまで同じ用量を読み取る(陰性ペダル、パルペブラルおよび角膜反射)。理想的には、ウサギは挿管まで自発的な呼吸を維持します。</li>
</ol>3. 気管内挿管
<ol><li>ウサギを37°Cの熱毛布の上に置きます。 過伸展の頭部との後尻の不用に動物を置く。ヘッドを直線にして、できるだけ正線にします。首の後部領域に置かれた滅菌ガーゼで作られた4センチメートルのロールは、少なくとも45°の延長を達成するのに役立つかもしれない(図2)。</li>
	<li>平らで広い先端解離鉗子を使用して、幅約1センチメートルの口腔を開きます。口の外傷を避けるために鈍いと広い端と鉗子を使用してください。</li>
	<li>口と胃の領域(最初の肋骨)との間の距離を測定します。潤滑6フランス語(Fr)ポリウレタン胃管を事前測定されたマークに導入する(図3-4)。</li>
	<li>給餌管を左に動かし、粘着テープで外科分野に固定します。</li>
	<li>3 cmマークに滅菌潤滑剤で覆われた直径2mmのPVC気管チューブを導入します。<ol>
<li>チューブを進めるのに問題がある場合は、チューブを完全に移動し、滑らかな滑空が達成されるまで再試行してください。喉頭および喉頭蓋炎に対する外傷のリスクは、複数の挿管の試みで有意である。粘着テープでチューブを外科分野に固定します(図5-6)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>気管内チューブを換気装置に接続するには、次の設定を行います: 潮の容積 - 10 mL/kg;呼吸数:40呼吸/分;FiO2 100%、ピープ6。</li>
	<li>吐き出し空気中のCO2(ETCO2)の検出、管の胸部膨張と曇りの直接可視化により、管の正しい位置を確認します。パルスオキシメトリーや肺の血液のモニタリングも役立ちます (図7)。</li>
	<li>実験の終わりに、ペントバルビタール120-240mg/kgの静脈内投与から成る標準化された安楽死議定書を使用する。呼吸停止、反射欠勤および収縮期が達成されるまで用量を繰り返す。 注意:手術実験では、動物は換気プロセス中に生きていて、最終的に安楽死させられます。</li>
</ol>

<ol><li>Gilroy, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+of+rabbits+and+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Veterinary+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation of rabbits and rodents.</a> Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).</li>
<li>Graham, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+procedures+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Common procedures in rabbits.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).</li>
<li>Fick, T. E., Schalm, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+technique+for+endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">A simple technique for endotracheal intubation in rabbits.</a> Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).</li>
<li>Conlon, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atraumatic+endotracheal+intubation+in+small+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits.</a> Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).</li>
<li>Johnson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoscopic+intubation+of+exotic+companion+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Endoscopic intubation of exotic companion mammals.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).</li>
<li>Falcão, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+blind+tracheal+intubation+in+rabbits+%28Oryctolagus+cuniculi%29+supported+by+previous+maneuver+of+esophageal+cannulization%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cirurgica+Brasileira%22%5BJournal%5D)">Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization.</a> Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).</li>
<li>Miura, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Japanese+Journal+of+Veterinary+Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation in rabbits.</a> The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).</li>
<li>Thompson, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+Intubation+of+Rabbits+Using+a+Polypropylene+Guide+Catheter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter.</a> Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).</li>
<li>Comolli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+endoscopic+endotracheal+intubation+and+the+v-gel+supraglottic+airway+device+for+spontaneously+ventilating+New+Zealand+white+rabbits+undergoing+ovariohysterectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Record%22%5BJournal%5D)">Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy.</a> Veterinary Record. , 1-8 (2020).</li>
<li>Hua, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+different+ventilation+strategies+on+lung+injury+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Pulmonology%22%5BJournal%5D)">Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits.</a> Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).</li>
<li>Kitchen, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+lung+inflation+and+sodium+transport+in+airway+liquid+clearance+during+lung+aeration+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Research%22%5BJournal%5D)">The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits.</a> Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).</li>
<li>Boon, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tubeless+tracheotomy+for+survival+airway+surgery+in+the+leporine+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model.</a> The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).</li>
<li>Dion, G. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morbidity+and+mortality+associated+with+preclinical+tracheostomy+models%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models.</a> The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).</li>
<li>Phaneuf, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+injury+after+endotracheal+intubation+and+anesthesia+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ウサギは、その可用性、短い世代間時間での高い再生速度、および容易な取り扱い2のために動物実験に広く使用されています。私たちのセンターでは、5-7日齢のニュージーランドウサギ(Oryctolagus cuniculus)を新生児モデルとして使用し、発達中の脳の体外手術の神経学的影響を研究しています。その結果、深い麻酔を必要とし、1時間までの期間、気管内挿管を使用しなければならない手順を利用します。
成体ウサギでは、いくつかの気道管理技術が記載されているが、通常は外科的な文脈において。これらの技術をウサギのキットに推定しようとすると、いくつかの問題が発生しました。ウサギの重量は110と210グラムの間で、1cmの最大口の開始範囲を有する。これらの特性は、喉頭の直接可視化を困難にし、内視鏡的な材料を十分に小さく見つけることは複雑です。文献に記載されている別の選択肢は、口腔内にオトスコープを配置し、それをPVCチューブ7を導入するためのガイドとして使用することです。新生児ウサギ...

ウサギの呼吸器系の独特の解剖学は、気管内挿管を複雑にする。口腔は口口の開口部の限られた範囲および比較的大きい舌と深く狭く、喉頭鏡1,2を用いても喉頭の直接可視化を困難にする。さらに、新生児ウサギの挿管は、成人より10〜20倍小さいが、さらに困難な処置である。これらの解剖学的特徴に加えて、ウサギは気道の操作に二次的に喉頭痙攣を起こしやすい。
いくつかの挿管技術は、喉頭鏡気管挿管、ブラインド挿管、耳鼻管挿管、逆行挿管、内視鏡挿管、気管切開および中頭蓋装置換気3、4、5、6、7、8、9などの文献に記載されている。これらの技術はすべて、成虫ウサギで成功して行われています。しかし、新生児ウサギ10の高度な気道管理に関する出版物はほとんどありません。ある研究では、呼吸力学と肺量を評価するためにこの年齢の動物に気管切開を行うことを記述していますが、これは積極的で不可逆的な技術である11です。気管内挿管のためのこの方法は、新生児ウサギの気道管理の効果的かつ低コストの方法であることが証明されています。

<table><tbody><tr><td>直径2mmのポリ塩化ビニル(PVC)気管内チューブ</td><td>Vygon</td><td>520.20</td><td></td></tr><tr><td>6 フランス製ポリウレタン栄養チューブ</td><td>Vygon</td><td>310.06</td><td></td></tr><tr><td>麻酔(ケタミンとキシラジン)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>マルチパラメータモニター Intellivue MP5</td><td>フィリップス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>プレーンでワイドチップの解剖鉗子</td><td>LensforVision</td><td>AK005</td><td></td></tr><tr><td>滅菌潤滑剤(シルコスプレー)</td><td>ラッシュ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ベンチレーター サーボ900c</td><td>Maquet</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

新生児ウサギにおける盲目の気管内挿管

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

新生児ウサギは、様々な病理や手順に有用な動物モデルです。ウサギの気道管理は、その解剖学的特性のために複雑であり、新生児の場合はさらに複雑である。高度な気道管理の異なる方法のうち、気管内挿管は気管切開術よりも積極的ではなく、そのような小さなサイズの中隔デバイスの欠如を考えると、上陸性管理よりも実現可能である。このサイズの動物では直接グロティスの可視化が非常に困難であるため、このブラインド挿管モデルは、特に長期麻酔を必要とする実験に対して効果的な代替手段として提示される。この方法を使用して、90%の成功率でブラインド挿管を行いました。

この技術は、ニュージーランドウサギの実験経験と小児気道管理の専門知識を持つ医療従事者によって行われます。この処置は、10匹の動物の1人の研究者によって行われ、世界的な成功率は90%である。以前は、別の研究者が動物の位置と正しいチューブ固定長の両方を最適化する練習をしていました。いずれの動物も食道に挿管されなかった。1 回の試行のみ (10%)動物のサイズが極端に小さいために失敗しました (表1)。ブラインド挿管が実施されると、たとえ以前にウサギの気道管理で訓練されていない人員によって処置が行われたとしても、ほとんどの場合、最初の試みで成功が達成される。120g以上の体重を量る動物の1回または2回の試みで100%の挿管成功率を達成しました。
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胃管を用いた食道カテーテル後の新生児ウサギにおける気管内挿管の技術について述べている。

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

はじめに.新生児ウサギは様々な病理や手順の動物モデルとして有用である。これらの手順のいくつかは、いくつかの高度な気道管理を必要とし、それは複雑な気道の特性と動物の小さなサイズのために困難な場合があります。食道の閉塞と管の気道への導入によって行われる気管内挿管の新しい技術を直接可視化せずに提示する。材料。直径2ミリメートルのPVC気管チューブ、6つのフランスのポリウレタン給餌チューブ、プレーンで広いチップの解剖鉗子が必要です。また、滅菌潤滑剤を使用することができます。麻酔。キシラジン1キロ当たり5ミリグラム、ケタミン25ミリグラム/キログラムで動物を鎮静します。大腿四頭筋の広大な側面に筋肉内に一緒に適用します。薬が効果を発揮するまでに3~5分かかります。負のペダル反射が達成されるまで、それらを繰り返します。評価ウサギは挿管まで自発的な呼吸を維持します。気管内挿管。過伸展の頭部との後尻の不用に動物を置く。滅菌ガーゼで作られ、首の後部領域に置かれたロールが役に立つかもしれません。広い広い部分の解剖鉗子を使用して、幅約1センチメートルの口腔を開きます。その進行の停止まで6つのフランスのポリウレタン胃管を導入します。給餌管を動かして固定します。3センチのマークに達するまで、無菌潤滑剤を含浸させた直径2ミリメートルのPVC気管チューブを導入します。チューブを進めるのに問題がある場合は、滑らかな滑空が達成されるまで完全に取り除き、再試行する必要があります。管はまた固定されている。結果。手順は10匹の動物で行われている。彼らの体重範囲は、生活の日とその栄養状態に応じて110〜210グラムの間でした。世界の成功率は90%で、唯一の失敗は、その狭い気道のために最小のウサギで発生しました。結論。私たちがここで説明する新生児ウサギの挿管のモデルは、特殊な機器の使用を必要とせず、習得しやすく、アシスタントを必要とせずに単一の個人によって実行することができます。すべての盲目の気道アクセス技術はある程度のリスクを提示しますが、この技術は、ガイド付き可視化が非常に小さな動物のように困難な場合のオプションであると考えています。

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Medicine

医学

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