-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

JA

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ja

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
3Dスフェロイドモデルにおける時間分解蛍光イメージングとがん細胞浸潤解析
3Dスフェロイドモデルにおける時間分解蛍光イメージングとがん細胞浸潤解析
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Time-Resolved Fluorescence Imaging and Analysis of Cancer Cell Invasion in the 3D Spheroid Model

3Dスフェロイドモデルにおける時間分解蛍光イメージングとがん細胞浸潤解析

Full Text
6,895 Views
07:42 min
January 30, 2021

DOI: 10.3791/61902-v

Louisiane Perrin1, Theodore Tucker1, Bojana Gligorijevic1,2

1Bioengineering Department,Temple University, 2Cancer Biology Program,Fox Chase Cancer Center

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for the fabrication of a spheroid imaging device, enabling dynamic and longitudinal fluorescence imaging of cancer cell spheroids to investigate mechanisms of cell invasion in real-time. The technique demonstrates enhanced efficiency and cost-effectiveness for modeling solid tumor invasiveness.

Key Study Components

Research Area

  • Cancer biology
  • Cell invasion dynamics
  • Imaging techniques

Background

  • Invasion of cancer cells into the extracellular matrix is crucial for understanding metastasis.
  • Current methods often lack efficiency and scalability for high-throughput applications.
  • Imaging spheroids can provide insights into cellular behaviors in a more biologically relevant context.

Methods Used

  • 3D printing and PDMS fabrication for spheroid imaging device
  • Cancer cell spheroids of mammary carcinoma
  • Longitudinal fluorescence imaging

Main Results

  • The protocol successfully enables real-time imaging of cancer cell invasion.
  • Embedding spheroids in collagen facilitated longitudinal studies of invasion over six days.
  • Image processing procedures were validated for analyzing spheroid area and morphology over time.

Conclusions

  • This study validates a novel spheroid imaging technique with potential applications in cancer research.
  • The findings emphasize the importance of real-time monitoring in understanding cancer cell dynamics.

Frequently Asked Questions

What is a spheroid imaging device?
A device designed to enable dynamic imaging of cancer cell spheroids, facilitating studies of invasion and cellular dynamics.
How is the device built?
It involves 3D printing a spacer, mixing PDMS, and curing it between glass plates to create the imaging inserts.
What types of cells can be studied?
While demonstrated with mammary carcinoma, the assay is adaptable for various solid tumors.
What are the main benefits of this method?
It improves experimental efficiency, reduces costs, and allows for enhanced real-time monitoring of cell behavior.
How long can spheroids be imaged?
Spheroids can be imaged longitudinally over an extended period, as tested over six days in this study.
Can the technique be used for other biological applications?
Yes, the method can be adapted for various research applications focused on cell invasion and behavior.
Is image processing required?
Yes, the protocol includes a simple image processing procedure to analyze spheroid invasion quantitatively.

ここで提示される、スフェロイドイメージング装置の製造のためのプロトコルである。この装置は癌細胞スフェロイドの動的または縦方向の蛍光のイメージ投射を可能にする。プロトコルはまた癌細胞の浸潤の分析のための簡単な画像処理手順を提供する。

このプロトコルは、がん細胞の細胞外マトリックスへの侵入をリアルタイムで制御するメカニズムを研究するために使用することができます。この技術の主な利点は、単純なスフェロイドイメージングデバイスを使用して、スフェロイドの侵入アッセイをセットアップしやすくし、その効率とコストを向上させることです。我々は、乳腺癌をモデル化するためにスフェロイド浸潤アッセイを使用して実証するが、このアッセイは、周囲の健康な組織への任意の固形腫瘍の侵入のための優れたモデルである。

スペーサーの3Dプリント後、プラスチックカップでクロスリンカーにベースポリマーの10:1比を重み出し、使い捨てのピペットを使用して、得られたPDMS溶液をカップに完全に混合します。カップを真空チャンバーに入れ、真空圧を素早く放出して、混合物の表面に閉じ込められた空気を除去し、残りの気泡を消散させます。3Dプリントスペーサーを摂氏100度で5分間インキュベートし、柔軟性を高め、100%イソプロパノールで2枚のガラス板をきれいにします。

スペーサーを置き、クリーニングした 2 つのプレートの間にフラッシュし、下端に 2 つの大きなバインダー クリップを配置し、上隅に 1 つの大きなバインダー クリップを配置して、プレートの外側の端にモールドをシールします。モールドの上部を調べて、スペーサーがガラス板でフラッシュされていることを確認し、先端から約2センチメートルカットされた使い捨てピペットを使用して、ゆっくりとPDMS混合物を金型の左上隅に連続的に追加します。金型全体が充填されたら、100°CでPDMSを1時間硬化させる前に、形成された気泡を除去するために、真空チャンバーに金型を入れます。

インキュベーションの終わりに、金型を室温に置きます。タッチに冷やすときは、硬化したPDMSを含むスペーサーからバインダークリップとガラスプレートを取り出し、カミソリの刃を使用して、スペーサーとガラス板の間の金型の4つの側面すべてに作成されたシールを切断します。モールドを引き離してスペーサーのPDMSシートを明らかにし、ピンセットを使用して慎重にスペーサーのPDMSシートを剥がします。

シートをカッティングマットの上に置き、生検パンチを使用して直径17.5ミリメートルのPDMSディスクをパンチアウトし、均等に分配された3つの5.5ミリメートルの穴をディスクにパンチします。テープを使用して各インサートからほこりを取り除き、洗浄したインサートを両面テープに貼り付けます。10センチメートルのペトリ皿の蓋の周りにテープを包み、開いた35ミリメートルのガラス底皿と一緒にプラズママシンに蓋を置きます。

300ミリトールで1分間のプラズマ処理でインサートとガラスをアクティブにし、ピンセットを使用して各インサートの処理側を1つの処理ガラス底皿のガラス部分に素早く取り付けます。すべてのインサートが適用されたら、ポインターの指と親指を使用して各インサートに均等な圧力を加えながら、皿を回転させ、挿入物を皿にしっかりと取り付けます。すべてのインサートが固定されたら、得られたスフェロイドイメージングデバイスを摂氏60度で20分間インキュベートしてから、実証したように2回目のプラズマ処理を行う。

2回目の処理の後、各挿入穴に35マイクロリットルの作製コーティング液を加えます。室温で1時間後、コーティング液を取り出し、蒸留水で装置を3回洗い流します。最後の洗浄後、各穴に35マイクロリットルの架橋液を加え、室温で30分間のインキュベーションを行います。

インキュベーションの最後に、示されているように、デバイスを蒸留水で3回リンスしてから、各デバイスに70%エタノールを充填してUV光下で30分間インキュベーションします。滅菌の最後に、蒸留水で装置を3回リンスし、各デバイスに2.5ミリリットルの貯蔵溶液を加えます。コラーゲンにスフェロイドを埋め込むには、洗浄ごとに3ミリリットルのPBSでデバイスを3回洗浄します。

最後の洗浄の後、装置を完全に乾燥させ、30マイクロリットルの新しく準備された大学1溶液を挿入物の1つの穴に加え、タイマーを開始する。穴にスフェロイドが存在することを確認した後、示されているように他の2つの穴に回転楕円体を追加します。10 マイクロリットルのピペットチップを使用して、PDMS 境界の近くに位置するスフェロイドを再センタ化するか、複数のスフェロイドが分配されている場合はスフェロイドを分離してタイマーを停止します。

コラーゲン層内のスフェロイドを垂直に中央に合わせます, 播種後, 逆さまにデバイスを反転させ、コラーゲンが重合するまで、デバイスを 37 度でインキュベート, 合計 30 分間 2 分ごとにデバイスの向きを反転, デバイスあたりの媒体の 2.5 ミリリットルを追加し、0 時間の時点で回転楕円体の画像を取得します。スフェロイド画像装置を用い、コラーゲン内または縦画像を介した癌細胞浸潤の効率的な埋め込みおよびタイムラプス記録を容易にする。このスフェロイドは、細胞質および核蛍光タンパク質の安定した発現を必要とする6日間にわたって縦方向に画像化されたが、同様の縦断イメージングは、色素標識を用いてより短い期間で行うことができる。

スフェロイドはまた、固定および免疫標識することができる。例えば、これらのスフェロイドは上皮カドヘリン、コルタクチン、およびF-アクチンについて免疫標識した。これらの画像では、フィジーマクロを使用して時間の経過に伴う回転楕円体の面積を測定する画像処理手順のステップバイステップの図が観察できる。

回転楕円体撮像装置の各穴に単一のスフェロイドを分配し、XY方向とZ方向の両方で孔の中心に回転楕円体を配置するようにしてください。装置の設計は高い回転楕円の効率に対応するために穴、挿入物およびガラス底の皿のサイズおよび配置を変えることによって容易に変えることができる。

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

生物学 課題167 癌の回転楕円体 浸潤 蛍光標識 縦方向の画像化 経度顕微鏡 微細加工

Related Videos

TGF -β誘発性浸潤を測定する回転楕円体アッセイ

09:18

TGF -β誘発性浸潤を測定する回転楕円体アッセイ

Related Videos

22.4K Views

モデリングとイメージング、3次元の集団細胞浸潤

07:08

モデリングとイメージング、3次元の集団細胞浸潤

Related Videos

17.3K Views

腫瘍細胞浸潤の3次元スフェロイドモデルの生成

03:18

腫瘍細胞浸潤の3次元スフェロイドモデルの生成

Related Videos

622 Views

三次元(3D)腫瘍スフェロイド浸潤アッセイ

12:19

三次元(3D)腫瘍スフェロイド浸潤アッセイ

Related Videos

59.3K Views

3Dの設定で侵略を評価するために、癌細胞スフェロイドアッセイ

05:34

3Dの設定で侵略を評価するために、癌細胞スフェロイドアッセイ

Related Videos

33.7K Views

侵略を勉強し、膀胱癌の治療を評価するための 3次元細胞培養システム

09:24

侵略を勉強し、膀胱癌の治療を評価するための 3次元細胞培養システム

Related Videos

9.5K Views

三次元スフェロイド浸潤アッセイにおける完全ヒト腫瘍ベースマトリクス

08:15

三次元スフェロイド浸潤アッセイにおける完全ヒト腫瘍ベースマトリクス

Related Videos

16.2K Views

がん関連線維芽細胞分化とインビトロ研究における侵入のためのより生理学的システムとしての3Dスフェロイドモデル

06:27

がん関連線維芽細胞分化とインビトロ研究における侵入のためのより生理学的システムとしての3Dスフェロイドモデル

Related Videos

9.5K Views

高分解能共焦点顕微鏡による3D腫瘍スフェロイド侵入に対する移動性阻害剤の効果の特徴

09:17

高分解能共焦点顕微鏡による3D腫瘍スフェロイド侵入に対する移動性阻害剤の効果の特徴

Related Videos

7.2K Views

3D培養におけるがん細胞浸潤とT細胞毒性のモニタリング

07:44

3D培養におけるがん細胞浸潤とT細胞毒性のモニタリング

Related Videos

12.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code