Name: 生きた哺乳類聴覚毛細胞におけるナノスケール分解能によるステレオシリアバンドルイメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-01-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 47 s
Description: 学ぶ 生きた哺乳類聴覚毛細胞のステレオシリアバンドルをナノスケール分解能でイメージングする方法。HPICMを用いて非接触で高解像度のタイムラプス観察を行い、機械電気変換機構の動的構造変化を損傷なく解析できる革新的技術です。

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プロジェクトの全段階で、長期にわたる支援と助言を得て、コルチェフ氏(英国・インペリアル・カレッジ)に感謝します。また、パヴェル・ノバク博士とアンドリュー・シェフチュク博士(英国インペリアル・カレッジ)、オレグ・ベロフ(ロシア国立聴覚研究センター)のソフトウェア開発に対する支援に感謝します。この研究は、NIDCD/NIH(R01 DC008861およびR01 DC014658からG.I.F.まで)によって支えられた。

<ol><li>Beurg, M., Fettiplace, R., Nam, J. H., Ricci, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization+of+inner+hair+cell+mechanotransducer+channels+using+high-speed+calcium+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Localization of inner hair cell mechanotransducer channels using high-speed calcium imaging.</a> Nature Neuroscience. 12 (5), 553-558 (2009).</li>
<li>Effertz, T., Becker, L., Peng, A. W., Ricci, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phosphoinositol-4%2C5-bisphosphate+regulates+auditory+hair-cell+mechanotransduction-channel+pore+properties+and+fast+adaptation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience+the+Official+Journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Phosphoinositol-4,5-bisphosphate regulates auditory hair-cell mechanotransduction-channel pore properties and fast adaptation.</a> The Journal of Neuroscience the Official Journal of the Society for Neuroscience. 37 (48), 11632-11646 (2017).</li>
<li>Peng, A. W., Gnanasambandam, R., Sachs, F., Ricci, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptation+independent+modulation+of+auditory+hair+cell+mechanotransduction+channel+open+probability+implicates+a+role+for+the+lipid+bilayer%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience+the+Official+Journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Adaptation independent modulation of auditory hair cell mechanotransduction channel open probability implicates a role for the lipid bilayer.</a> The Journal of Neuroscience the Official Journal of the Society for Neuroscience. 36 (10), 2945-2956 (2016).</li>
<li>Engström, H., Engström, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+of+the+hairs+on+cochlear+sensory+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Hearing+research%22%5BJournal%5D)">Structure of the hairs on cochlear sensory cells.</a> Hearing research. 1 (1), 49-66 (1978).</li>
<li>Conchello, J. A., Lichtman, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+sectioning+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Optical sectioning microscopy.</a> Nature Methods. 2 (12), 920-931 (2005).</li>
<li>Sigal, Y. M., Zhou, R., Zhuang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+and+discovering+cellular+structures+with+super-resolution+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Visualizing and discovering cellular structures with super-resolution microscopy.</a> Science. 361 (6405), 880-887 (2018).</li>
<li>Wäldchen, S., Lehmann, J., Klein, T., van de Linde, S., Sauer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-induced+cell+damage+in+live-cell+super-resolution+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Light-induced cell damage in live-cell super-resolution microscopy.</a> Scientific Reports. 5, 15348(2015).</li>
<li>Pickles, J. O., Comis, S. D., Osborne, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-links+between+stereocilia+in+the+guinea+pig+organ+of+Corti%2C+and+their+possible+relation+to+sensory+transduction%5BTitle%5D)+AND+%22Hearing+Research%22%5BJournal%5D)">Cross-links between stereocilia in the guinea pig organ of Corti, and their possible relation to sensory transduction.</a> Hearing Research. 15 (2), 103-112 (1984).</li>
<li>Furness, D. N., Hackney, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-links+between+stereocilia+in+the+guinea+pig+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22Hearing+Research%22%5BJournal%5D)">Cross-links between stereocilia in the guinea pig cochlea.</a> Hearing Research. 18 (2), 177-188 (1985).</li>
<li>Jacobs, R. A., Hudspeth, A. J. Ultrastructural correlates of mechanoelectrical transduction in hair cells of the bullfrog’s internal ear. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aJacobs%2C+RA+%22Cold+Spring+Harbor+Symposia+on+Quantitative+Biology%22">Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology</a>. 55, 547-561 (1990).</li>
<li>Goodyear, R. J., Marcotti, W., Kros, C. J., Richardson, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+properties+of+stereociliary+link+types+in+hair+cells+of+the+mouse+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Development and properties of stereociliary link types in hair cells of the mouse cochlea.</a> The Journal of Comparative Neurology. 485 (1), 75-85 (2005).</li>
<li>Kachar, B., Parakkal, M., Kurc, M., Zhao, Y., Gillespie, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+structure+of+hair-cell+tip+links%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">High-resolution structure of hair-cell tip links.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (24), 13336-13341 (2000).</li>
<li>Vélez-Ortega, A. C., Freeman, M. J., Indzhykulian, A. A., Grossheim, J. M., Frolenkov, G. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+current+is+essential+for+stability+of+the+transducing+stereocilia+in+mammalian+auditory+hair+cells%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction current is essential for stability of the transducing stereocilia in mammalian auditory hair cells.</a> eLife. 6, 1-22 (2017).</li>
<li>Ivanchenko, M. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serial+scanning+electron+microscopy+of+anti-PKHD1L1+immuno-gold+labeled+mouse+hair+cell+stereocilia+bundles%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Data%22%5BJournal%5D)">Serial scanning electron microscopy of anti-PKHD1L1 immuno-gold labeled mouse hair cell stereocilia bundles.</a> Scientific Data. 7 (1), 182(2020).</li>
<li>Hadi, S., Alexander, A. J., Vélez-Ortega, A. C., Frolenkov, G. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myosin-XVa+controls+both+staircase+architecture+and+diameter+gradation+of+stereocilia+rows+in+the+auditory+hair+cell+bundles%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Association+for+Research+in+Otolaryngology+JARO%22%5BJournal%5D)">Myosin-XVa controls both staircase architecture and diameter gradation of stereocilia rows in the auditory hair cell bundles.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology JARO. 21 (2), 121-135 (2020).</li>
<li>Metlagel, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+cryo-tomography+of+vestibular+hair-cell+stereocilia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Structural+Biology%22%5BJournal%5D)">Electron cryo-tomography of vestibular hair-cell stereocilia.</a> Journal of Structural Biology. 206 (2), 149-155 (2019).</li>
<li>Langer, M. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+stimulation+of+individual+stereocilia+of+living+cochlear+hair+cells+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Ultramicroscopy%22%5BJournal%5D)">Mechanical stimulation of individual stereocilia of living cochlear hair cells by atomic force microscopy.</a> Ultramicroscopy. 82 (1-4), 269-278 (2000).</li>
<li>Dufrêne, Y. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Towards+nanomicrobiology+using+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Towards nanomicrobiology using atomic force microscopy.</a> Nature Reviews Microbiology. 6 (9), 674-680 (2008).</li>
<li>Putman, C. A., van der Werf, K. O., de Grooth, B. G., van Hulst, N. F., Greve, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viscoelasticity+of+living+cells+allows+high+resolution+imaging+by+tapping+mode+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+journal%22%5BJournal%5D)">Viscoelasticity of living cells allows high resolution imaging by tapping mode atomic force microscopy.</a> Biophysical journal. 67 (4), 1749-1753 (1994).</li>
<li>Gavara, N., Chadwick, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noncontact+microrheology+at+acoustic+frequencies+using+frequency-modulated+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Noncontact microrheology at acoustic frequencies using frequency-modulated atomic force microscopy.</a> Nature Methods. 7 (8), 650-654 (2010).</li>
<li>Cartagena-Rivera, A. X., Van Itallie, C. M., Anderson, J. M., Chadwick, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apical+surface+supracellular+mechanical+properties+in+polarized+epithelium+using+noninvasive+acoustic+force+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Apical surface supracellular mechanical properties in polarized epithelium using noninvasive acoustic force spectroscopy.</a> Nature Communications. 8 (1), 1030(2017).</li>
<li>Katsuno, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TRIOBP-5+sculpts+stereocilia+rootlets+and+stiffens+supporting+cells+enabling+hearing%5BTitle%5D)+AND+%22JCI+Insight%22%5BJournal%5D)">TRIOBP-5 sculpts stereocilia rootlets and stiffens supporting cells enabling hearing.</a> JCI Insight. 4 (12), (2019).</li>
<li>Hansma, P. K., Drake, B., Marti, O., Gould, S. A., Prater, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+scanning+ion-conductance+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The scanning ion-conductance microscope.</a> Science. 243 (4891), 641-643 (1989).</li>
<li>Korchev, Y. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specialized+scanning+ion-conductance+microscope+for+imaging+of+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microscopy%22%5BJournal%5D)">Specialized scanning ion-conductance microscope for imaging of living cells.</a> Journal of Microscopy. 188 (Pt 1), 17-23 (1997).</li>
<li>Shevchuk, A. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+proteins+in+membranes+of+living+cells+by+high-resolution+scanning+ion+conductance+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+%28International+ed+in+English%22%5BJournal%5D)">Imaging proteins in membranes of living cells by high-resolution scanning ion conductance microscopy.</a> Angewandte Chemie (International ed in English. 45 (14), 2212-2216 (2006).</li>
<li>Novak, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoscale+live-cell+imaging+using+hopping+probe+ion+conductance+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Nanoscale live-cell imaging using hopping probe ion conductance microscopy.</a> Nature Methods. 6 (4), 279-281 (2009).</li>
<li>Vélez-Ortega, A. C., Frolenkov, G. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+live+cochlear+stereocilia+at+a+nanoscale+resolution+using+hopping+probe+ion+conductance+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Visualization of live cochlear stereocilia at a nanoscale resolution using hopping probe ion conductance microscopy.</a> Methods in Molecular Biology. 1427, 203-221 (2016).</li>
<li>Gu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+scanning+patch-clamp%3A+new+insights+into+cell+function%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+Journal+Official+Publication+of+the+Federation+of+American+Societies+for+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">High-resolution scanning patch-clamp: new insights into cell function.</a> FASEB Journal Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 16 (7), 748-750 (2002).</li>
<li>Frolenkov, G. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-channel+recordings+from+the+apical+surface+of+outer+hair+cells+with+a+scanning+ion+conductance+probe%5BTitle%5D)+AND+%22Association+for+Research+in+Otolaryngology%22%5BJournal%5D)">Single-channel recordings from the apical surface of outer hair cells with a scanning ion conductance probe.</a> Association for Research in Otolaryngology. Abs. 444, (2004).</li>
<li>Sánchez, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noncontact+measurement+of+the+local+mechanical+properties+of+living+cells+using+pressure+applied+via+a+pipette%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Noncontact measurement of the local mechanical properties of living cells using pressure applied via a pipette.</a> Biophysical Journal. 95 (6), 3017-3027 (2008).</li>
<li>Korchev, Y. E., Negulyaev, Y. A., Edwards, C. R., Vodyanoy, I., Lab, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+localization+of+single+active+ion+channels+on+the+surface+of+a+living+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Functional localization of single active ion channels on the surface of a living cell.</a> Nature Cell Biology. 2 (9), 616-619 (2000).</li>
<li>Shevchuk, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angular+approach+scanning+ion+conductance+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Angular approach scanning ion conductance microscopy.</a> Biophysical Journal. 110 (10), 2252-2265 (2016).</li>
<li>Furness, D. N., Katori, Y., Nirmal Kumar, B., Hackney, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dimensions+and+structural+attachments+of+tip+links+in+mammalian+cochlear+hair+cells+and+the+effects+of+exposure+to+different+levels+of+extracellular+calcium%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">The dimensions and structural attachments of tip links in mammalian cochlear hair cells and the effects of exposure to different levels of extracellular calcium.</a> Neuroscience. 154 (1), 10-21 (2008).</li>
</ol>

著者には競合する利害関係はない。

HPICM画像を正常に取得するには、低ノイズと低振動システムを確立し、適切なピペットを製造する必要があります。ライブセルイメージングを実行する前に、AFMキャリブレーション標準を使用してシステムの安定性をテストすることを強くお勧めします。システムの解像度をテストしたら、ユーザーは、ライブセルイメージングを試みる前に、画像処理の設定に精通するためにCortiサンプルの固定臓器をイメージングすることを検討することができます。
イメージングの最適な設定点は、チップの個々の形状(電子顕微鏡で調べるまで不明)と先端に付着した汚れの量によって異なりますが、これは予測不可能です。0.7%を超える最適な設定点を持つナノピペットは廃棄する必要があります。
生きた細胞のイメージング中に、細胞外溶液中のほこりや破片の量は時間の経過とともに増加します。これらの粒子はすべてピペットの先端で終わり、電流の減少を引き起こし、組織のスキャンを続けることを不可能にする可能性があります - フィードバックはナノピペットが常にサンプルの近くにあることを「考える」の...

聴覚毛髪細胞の立体束は、光学顕微鏡で視覚化するのに十分な大きさであり、パッチクランプ実験で生細胞で偏向するという事実にもかかわらず、先端リンクなどの伝達機構の必須の構造成分は、死細胞の電子顕微鏡検査でのみ画像化することができた。哺乳類聴覚毛細胞において、伝達機械は先端リンクの下端に位置し、すなわち、短い列立体1の先端に位置し、立体2,3の先端で信号を通して局所的に調節される。しかし、生きた毛髪細胞のこの場所での表面構造のラベルフリーイメージングは、立体の小さなサイズのために不可能です。
哺乳類の内毛細胞には、内毛細胞と外毛細胞の2種類の聴覚感覚細胞があります。内側の毛細胞では、立体は外毛細胞4に比べて長く、より厚い。立体の第1および第2列は、マウスまたはラットの内側の毛細胞の直径300〜500 nmを有する。光の回折により、ラベルフリー光学顕微鏡で達成可能な最大解像度は約200nmです。したがって、内側の毛細胞束の第1および第2列内の個々の立体の可視化は、光学顕微鏡検査で比較的容易である。対照的に、内側の毛細胞および外髪細胞のすべての立体体の短い立体は、100〜200nmの周りに直径を有し、光学顕微鏡5では視覚化できない。超解像イメージングの最近の進歩にもかかわらず、この基本的な制限は、任意の光学ラベルフリーイメージングに残っています。現在市販されているすべての超分解能技術は、その用途を制限する蛍光分子6のいくつかの並べ替えを必要とします。特定の蛍光的にタグ付けされた分子の必要性による制限に加えて、強烈な光照射への暴露は細胞損傷を誘発し、細胞プロセスに影響を与える可能性が示されているが、これは生細胞7を研究する際に大きな欠点である。
毛髪細胞立体線の超構造詳細に関する我々の現在の知識は、主に走査型電子顕微鏡(SEM)、透過電子顕微鏡(TEM)、凍結破壊EM、および最近ではイオンビームまたはクライオEMトモグラフィーまたはクライオEMトモグラフィーを用いたシリアル断面化などの3D技術を用いて、様々な電子顕微鏡(EM)技術で得られた。 14、15、16.残念ながら、これらのすべてのEM技術は、サンプルの化学的または凍結を必要とします。現象の時間スケールに応じて、この要件は、ステレオ繊毛の先端での動的プロセスの研究を不可能または非常に労働集約的に行います。
原子間力顕微鏡(AFM)17,18を用いた生毛細胞の毛束の画像化に限られた努力がなされている。AFMは生理学的な溶液で動作するので、理論的には、時間の経過とともに生きた毛髪細胞の立体束の動的変化を視覚化することができる。問題は、AFMプローブとサンプルの間の特定の物理的接触を意味する高解像度AFMの原理にあります。AFMプローブがステレオシリウムに遭遇すると、通常はクラッシュし、毛束の構造を損傷します。その結果、この技術は、生きている、あるいは固定された、毛細胞束17、18を視覚化するのに適していない。この問題は、試料20の表面に流体力のみを加える大きなボール型AFMプローブを用いることで部分的に緩和され得る。しかし、このようなプローブはサンプル21の機械的特性をテストするのに理想的であるが、コルティ22の器官を撮像する場合にはサブマイクロメートルの解像度しか提供せず、依然として高感度の立体束に対して実質的な力をサンプルに適用する。
走査イオン伝導顕微鏡(SICM)は、導電性溶液23を充填したガラスピペットプローブを用いた走査プローブ顕微鏡のバージョンである。SICMは、ピペットが細胞に近づくと表面を検出し、ピペットを通して電流が減少します。これは細胞に触れる前によく起こっているので、SICMは生理学的溶液24中の生細胞の非接触イメージングに理想的に適している。SICMの最良の解像度は、単一ナノメートルの順序で、生細胞25の形質膜で個々のタンパク質複合体を解決することができます。しかし、他の走査プローブ技術と同様に、SICMは比較的平坦な表面のみを画像化することができます。この限界を克服するために、ホッピングプローブイオン伝導顕微鏡(HPICM)26、ナノピペットが各イメージングポイントでサンプルに近づく(図1A)。HPICMを用いて、ナノスケール分解能27の生きた聴覚毛細胞の立体束を画像化することができた。
この技術のもう一つの基本的な利点は、HPICMが単なるイメージングツールではないということです。他の走査プローブ技術とは対照的に、HPICM/SICMプローブは、様々な刺激の電気記録および局所送達のために細胞生理学で広く使用されている電極である。イオンチャネル活性は、通常、HPICMイメージングを妨げないが、HPICMプローブを介した総電流は、最大のイオンチャネル25によって生成された細胞外電流より数桁大きいからである。しかし、HPICMは、この構造28からの目的の構造とその後の単一チャネルパッチクランプ記録に対するナノピペットの正確な位置決めを可能にする。このようにして、外毛細胞ステレオ繊毛29の先端で単一チャネル活動の最初の予備記録を得た。ナノピペットを通る大電流でさえ、細胞外媒体の膨大な電気シャントのために、形質膜全体の電位の有意な変化を生じることができないことは言及する価値があります。しかし、個々のイオンチャネルは、アゴニスト31の局所的な適用によってナノピペット30を通る液体の流れによって機械的に活性化することができる。
HPICMでは、ナノピペットがサンプルを順次に近づいてサンプルを一点で進み、後退し、横方向に移動してアプローチを繰り返すと、画像が生成されます(図1A)。パッチクランプアンプは、ピペット(図1B)のAgClワイヤーに常に電圧を適用し、浴液中に〜1nAの電流を発生させます。ピペットがセルの表面から離れている場合のこの電流の値は、参照電流として決定されます(Iref,図1C)。次に、ピペットはZ軸内を移動して、電流がユーザによって事前定義された量(設定点)によって減少するまでサンプルに近づくため、通常はIrefの0.2%-1%(図1C、上トレース)を示す。システムは、この時点での Z 値をサンプルの高さとして、このイメージング ポイントの X 座標と Y 座標と共に保存します。次に、ピペットは、ユーザーが定義する速度(通常は700-900 nm/ms)で表面(図1C、下のトレース)から引き込まれる。引き込み後、ピペット(または、我々の場合、サンプル-図1Bを参照)が次のイメージングポイントに横に移動し、新しい基準電流値が得られ、ピペットが再びサンプルに近づき、プロセスを繰り返します。ピペットのX-Y運動は、毛細胞メカノトランスダクション電流の記録に通常使用される直立顕微鏡セットアップで好ましい。この設定では、HPICM プローブは、上からではなく、角度32でヘア セル バンドルに近づきます。しかし、HPICMイメージングの最良の解像度は、反転顕微鏡のセットアップ(図1A、B)で達成され、X-Y方向のサンプルの動きはナノピペットのZ運動から結合され、潜在的な機械的アーティファクトを排除します。
HPICMを用いて、マウスおよびラットの内毛および外毛細胞の立体構造束の地形画像を得て、直径26、27の約5nmの立体間のリンクを視覚化した。この技術によるヘアセルバンドルイメージングの成功は、いくつかの要因に依存します。まず、ナノピペット電流のノイズ(分散)は、HPICMイメージングの可能な限り低い設定点を可能にする限り小さくする必要があります。低い設定値を設定すると、HPICMプローブは、より大きな距離で、プローブアプローチに対して任意の角度で立体表面を「感知」することができ、驚くべきことに、HPICMイメージングのX-Y解像度が向上します(説明を参照)。第二に、システム内の振動とドリフトは、イメージングアーティファクトに直接寄与するため、10nm未満に減少する必要があります。最後に、HPICMプローブと試料ステージは、単一ナノメートル以上の精度を有する較正されたフィードバック制御圧電器によってZ軸とX-Y軸で移動する場合でも、ナノピペット先端の直径は電流(感知量)の広がりとそれゆえに分解能(図1A)を決定する。したがって、生きた毛細胞をイメージングする前に、適切なピペットを引っ張り、キャリブレーションサンプルで所望の解像度に到達し、記録システムで低ノイズを達成することが重要です。
少なくとも数十年の間、SICM技術は商業的に入手可能ではなく、インペリアル・カレッジ(英国)のコルチェフ教授の主要な研究室で世界のいくつかの研究室によって開発されています。最近では、いくつかのSICMシステムが市販されるようになった( 材料表を参照)、そのすべてが元のHPICM原則に基づいています。しかし、ヘアセル内のステレオシリアバンドルをイメージングするには、クローズドの「すぐに使える」システムでは技術的に困難な(あるいは不可能な)いくつかのカスタム修正が必要です。そのため、コンポーネントの統合が必要になります。HPICMのセットアップはより厳しい振動および漂流の条件およびHPICMの調査およびサンプル(図1D)の圧造によって動く動きを有するパッチクランプ装置を表すので(図1D)、この統合は、パッチクランプに熟練している研究者にとって比較的容易である。しかし、適切な背景を持たない科学者は、間違いなく最初に電気生理学のいくつかの訓練を必要とします。イメージングの速度を上げるなどの課題が残っていますが( 議論参照)、私たちは生きた毛髪細胞の立体束をナノスケールの解像度で損傷を与えることなく画像化することができました。
本論文では、当社のカスタムシステムを用いて、若い出生後ラットまたはマウス人工内葉植物の生聴覚毛細胞束のHPICMイメージングを成功させるための詳細なプロトコルを提示する。統合されたコンポーネントは、 の一覧を参照してください。また、発生する可能性のある一般的な問題とそのトラブルシューティング方法についても説明します。

<table><tbody><tr><td>アナログオシロスコープB</td><td>&K Precision</td><td>2160C</td><td>アナログオシロスコープ ナノピペット電流およびZ軸アプローチ</td></tr><tr><td>AFM校正標準</td>液のリアルタイムモニタリング用 <td>TED PELLA Inc</td><td>HS-100MG;HS-20MG</td><td>これらの100および20 nmの校正標準は、HPICMシステムの性能をテストするために使用されます</td></tr><tr><td>ベンチトップ振動アイソレータ</td><td>AMETEK/TMC</td><td>Everstill K-400</td><td>アクティブ振動絶縁</td></tr><tr><td>ホウケイ酸ガラスキャピラリー</td><td>World Precision Instruments (WPI)</td><td>1B100F-4</td> ナノピペットD-(+)-グルコースシグマ-アルドリッチG8270<td>用ホウケイ酸ガラスキャピラリー</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>浸透圧を調整するためにバスソリューションに追加する</td></tr><tr><td>デジタイザー</td><td>ナショナルインスツルメンツコーポレーション</td><td>PCI-6221</td><td>マルチチャンネル入出力デジタイザ</td></tr><tr><td>Z移動のための高速アナログ比例積分微分(PID)制御</td><td>スタンフォードリサーチシステムズ</td><td>SIM900、SIM960、SIM980</td><td>Z移動用の外部PIDコントローラに統合された計装モジュール。これには、通常、市販のピエゾアンプには実装されていない高速応答が必要です。</td></tr><tr><td>ファラデーケージ</td><td>AMETEK/TMC</td><td>Type II</td><td>電磁干渉のシールドが必要</td></tr><tr><td>ガラス底皿</td><td>ワールド・プレシジョン・インスツルメンツ(WPI)</td><td>FD5040-100</td><td>組織用チャンバーの皿として使用</td></tr><tr><td>ハンクス平衡塩溶液(HBSS)</td><td>Gibco, Thermo Fisher Scientific</td><td>14025092</td><td>細胞外(浴)溶液</td></tr><tr><td>計装アンプ</td><td>ブラウンリーPrecision</td><td>Model 440</td><td>Instrumentationアンプは、必要なオフセット、フィルタリング、および二次倍率または減衰を提供します</td></tr><tr><td>レーザーベースのマイクロピペットプーラー</td><td>Sutter Instrument</td><td>P-2000/G</td><td>ナノピペットを作製するためのマイクロピペットプーラー。シャープなクォーツピペットにはレーザーが必要です。</td></tr><tr><td>レボビッツのL-15、フェノールレッドなし</td><td>ギブコ、サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>21083027</td><td>細胞外(バス)溶液マイクロ</td></tr><tr><td>マニピュレーター</td><td>サイエンティフィカパッチ</td><td>スターZ</td><td>ピエゾアクチュエータの「コース」位置決めに使用</td></tr><tr><td>顕微鏡</td>ニ<td>コン</td><td>エクリプTS100</td><td>倒立光学顕微鏡</td></tr>パッチ<tr><td>アンプ</td><td>分子デバイス Axopatch</td><td>200B</td><td>パッチクランプアンプは、ナノピ</td></tr><tr><td>ペットピエゾアンプ(XY軸)</td><td>Physik Instrumente(PI)</td><td>E-500.00、E-505.00、E-509を流れる電流を測定します。</td><td>XYピエゾ変換ステージのC2A増幅とPID制御</td></tr><tr><td>ピエゾアンプ(Z軸)</td><td>ピエゾシステムイエナ</td><td>ENT 400 & 800</td><td>カスタムアンプ ENT 400 電源と 2 つの ENT 800 アンプを並列に構成し、最大電流 1.6 nA</td></tr><tr><td>プラスチック カバースリップ</td><td>TED PELLA Inc</td><td>26028</td><td>組織用チャンバーの製造に使用されます&nbsp;</td></tr><tr><td>SICMコントローラー&ソフトウェア*</td><td>Ionscope、英国(ionscope.com)</td><td>N / A</td><td>Innovative Integration LtdのSBC6711デジタル信号処理ボードに基づくカスタムコントローラー</td></tr><tr><td>シリコーンエラストマー(Sylgard)</td><td>World Precision Instruments(WPI)</td><td>SYLG184</td><td>柔軟なガラス繊維を組織シリコン接着剤のチャンバーに取り付けるために使用されます</td></tr> ダ<tr><td></td><td>ウケミカル</td><td>カンパニー734</td><td>組織のためのチャンバの異なる部分を接着するために使用</td></tr><tr><td>タングステンロッド</td><td>A-M システム</td><td>717500</td><td>組織</td></tr><tr><td>XYピエゾナノポジショナー</td><td>Physik Instrumente (PI)</td> <td>P-733.2DD</td><td>XY変換ステージ 静電容量センサー付き</td></tr><tr><td>Zピエゾナノポジショナー</td><td>ピエゾシステムイエナ</td><td>RA 12/24 SG</td><td>リング ひずみゲージセンサー付きピエゾアクチュエータ</td></tr><tr><td>※イオンスコープでは、SICMコントローラーの単品販売は行っておりません。他の商用システムはほとんどありません:&nbsp;NX12-BioおよびNX10 SICMおよび&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Park Systems(韓国)とICAPPIC Limited(英国)(icappic.com)のSICMモジュール。これらのシステムはすべてオリジナルに基づいています&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>HPICMの原則。ただし、有毛細胞の立体繊毛束をイメージングするには、技術的に&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>閉じた場所で挑戦する(または不可能でさえある)」すぐに使える"IonscopeやNX12-Bio/NX10などのシステム。現在、1つだけです&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>モジュラーシステム(ICAPPIC)は、SICM/HPICMのあらゆる実験に適した柔軟性を備えていますが、何らかのコンポーネントの統合が必要です。&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

生きた哺乳類聴覚毛細胞におけるナノスケール分解能によるステレオシリアバンドルイメージング

Stereocilia Bundle Imaging with Nanoscale Resolution in Live Mammalian Auditory Hair Cells

内耳の毛髪細胞は、音によって引き起こされる変位を検出し、高さが増加する列に配置された立体からなる毛束の電気信号にこれらの刺激を変換します。ステレオ繊毛が偏向すると、それらは、メカノイ感受性の伝達チャネルに力を伝達するステレオチリアを相互接続する小さな(直径5nm)の細胞外先端リンクを引っ張る。メカノトランスダクションは何十年もの間、生毛細胞で研究されてきましたが、立体(チップリンクダイナミクスや伝達依存ステレオシリアリモデリングなど)の先端におけるメカノトランスダクション機構の機能的に重要な超構造的詳細は、電子顕微鏡を用いた死細胞でのみ研究することができます。理論的には、原子間力顕微鏡のような走査プローブ技術は、立体の表面を視覚化するのに十分な解像度を有する。しかし、撮像モードとは無関係に、立体束との原子間力顕微鏡プローブのわずかな接触であっても、通常はバンドルに損傷を与える。ここでは、生げ歯類聴覚毛細胞のホッピングプローブイオン伝導顕微鏡(HPICM)イメージングの詳細なプロトコルを提示する。この非接触スキャンプローブ技術は、単一のナノメートルの解像度で、サンプルと物理的に接触することなく、髪の細胞のような複雑な地形を有する生細胞の表面のタイムラプスイメージングを可能にする。HPICMはガラスナノピペットを通過する電流を使用してピペットに近い近くの細胞表面を検出し、3Dポジショニング圧電システムは表面をスキャンしてその画像を生成します。HPICMを使用すると、立体束とライブ聴覚ヘアセルの立体を相互接続するリンクを、目立った損傷なしに数時間画像化することができました。HPICMの使用により、生きた毛髪細胞の立体構造の超構造変化を直接探索し、その機能をより深く理解できるようになると予想されます。

本稿で紹介するプロトコルは、複雑な地形を持つあらゆる生細胞を可視化するために使用することができる。これらの手順に従って、我々は日常的に生きたラット聴覚毛細胞束の画像を取得します(図6B,D)。SEM画像と比較するとX-Y解像度が低いにもかかわらず、私たちのHPICM画像は、ステレオチリアの異なる列、立体先端の形状、さらには隣接するステレオチリアを結ぶ小さなリンク(直径5nm)を解決することができます(図6F)。さらに、HPICM 画像には、SEM 画像に不足している情報が 3D に含まれます。この種のイメージング技術の非接触性を考えると、バンドルの凝集性を損なうことなく、同じヘアセルバンドルの連続的なタイムラプスHPICMイメージングを数時間(すなわち、5〜6時間定期的に)行うこともできた(図7)。このように、HPICMは、時間の経過とともに毛細胞束の動的構造変化の研究のための大きな可能性を示す。
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ここでは、ホッピングプローブイオン伝導顕微鏡(HPICM)、ライブ聴覚ヘアセルの立体束のナノスケールイメージングを可能にする非接触スキャンプローブ技術のプロトコルを提示します。

Inner ear hair cells detect sound-induced displacements and transduce these stimuli into electrical signals in a hair bundle that consists of stereocilia ...

この実用的な研究は、ヘアセルステレオチリアバンドルの表面における機械的電気伝達機構のナノ構造成分の動的変化を研究するのに役立ちます。この技術の主な利点は、単一のナノメートル解像度で、サンプルと物理的に接触することなく、複雑な地形を有する生細胞の表面のタイムラプスイメージングである。この技術は、ほぼすべての生きた細胞に適用することができます。私たちは以前、ウイルス、筋肉細胞に感染した肺上皮細胞株の表面を私のイメージバクテリアススーンで一致させた。各イメージングセッションの開始時にナノピペットをテストします。ナノピペットを製造した後、気泡を確認し、存在する場合は気泡を取り除き、ホッピングプローブイオン伝導顕微鏡ピペットホルダーにナノピペットを取り付けます。チャンバーに4ミリリットルの浴液で、チャンバーをHPICMステージに置きます。グランド電極を浴室の溶液に導入し、パッチクランプアンプを通してピペットに印加される電圧がゼロであることを確認します。マイクロマニピュレータを垂直位置に配置した後、ピペットをZに移動して液体に触れ、アンプのオフセットをゼロに設定してから、ピペット電流を確認するためにプラス100ミリボルトを追加します。シリコン接着剤を使用して、AFMキャリブレーション標準をチャンバに取り付け、サンプルを4ミリリットルのHBSSで覆います。HPICMセットアップのX Y段階にチャンバを固定するために両面テープを使用し、実証したようにホルダーに新しいナノピペットをロードします。ナノピペットの抵抗と直径をテストした後、電流を1ナノアンプに設定します。粗いパッチクランプマニピュレータを使用して、ナノピペットをキャリブレーション標準の中心より上に配置し、セットポイントを大きくして、オシロスコープ上のZピエゾアクチュエータのセンサーからの信号をリアルタイムで監視します。安定した反復可能なZアプローチサイクルを確立した後、セットポイントを不安定な点のすぐ上の値まで下げ、ピペットを1秒あたり約5ミクロンの速度で下に移動させ、サンプルに到達するまで下に移動します。リアルタイムZポジショニング信号の底面レベルが上昇し、試料表面を感知してナノピペットが抜け出すことを示す。AFM規格に不均一なマウントがあるため、対象領域の最高点は不明である可能性があります。したがって、ピペットの引き込みの振幅を少なくとも200〜500ナノメートルに設定する。Zピエゾアクチュエータ運動の上限を超えないように注意し、低解像度で撮像を開始する。一度、イメージング領域内のサンプルの最高点が特定されたら、ホップ振幅を減少させ、ピペットをZ軸に沿って約200ミクロン引き込み、サンプルとの望ましくない衝突を防いでから新しいX Y位置に移動します。対象領域が見つかったら、より高い解像度でイメージングを開始します。聴覚ヘアセルイメージングの場合、歯科フロスまたはフレキシブルガラスピペットを使用して、コルティの新たに単離された器官をチャンバーにしっかりと固定します。両面テープを使用して、チャンバーをX Yピエゾステージにしっかりと固定し、デモンストレーションしたようにホルダーに新しいナノピペットを積み込みます。ナノピペット耐性を確認した後、パッチクランプマイクロマニピュレータを使用して、逆顕微鏡でCorti X植物の器官を観察しながら、ナノピペットを毛細胞領域の上に配置します。記録、オシロスコープ上のリアルタイム電流とZ位置信号は、システムが0.5%6または低い設定点で安定しているかどうかを確認し、最適な設定点を決定し、サンプルにアプローチする例示のように。少なくとも6~8ミクロンのホップ振幅を使用して示されているように、サンプルの低解像度イメージングを実行します。ナノピペットを新しいX Y位置に移動する必要がある場合は、ピペットを約500ナノメートル引き込んで組織内の高い特徴との衝突を避け、毛髪細胞が配置される対象領域まで低解像度のHPICMイメージングを繰り返します。その後、15分以内に高い解像度で対象領域を画像化します。HPICM プロトコルは、ラットの聴覚毛細胞バンドルなどの複雑な地形を持つ任意の生細胞を視覚化するために使用できます。走査型電子顕微鏡画像と比較して低いXY解像度を示しているにもかかわらず、HPICM画像は異なる立体線を正常に解決することができます。立体の先端の形状、さらには隣接する立体を結ぶ小さい5ナノメートルリンク。HPICMイメージングの非接触性を考えると、同じヘアセルバンドルの連続的なタイムラプスイメージングは、バンドルの凝集性を損なうことなく数時間行うことができる。設定点が非常に低い場合、システムは電流の小さな変動をセル表面に遭遇すると解釈し、画像内のホワイトドットノイズにつながる可能性があることに注意してください。同様に、ホップの振幅が大きいとピペットの横共鳴が増加し、また、騒々しいピクセルの生成をもたらす。これに対し、ホップの振幅が小さすぎる場合、または設定点が高すぎる場合、ナノピペットがサンプルと衝突して、画像のアーティファクトやヘアバンドルの損傷を引き起こします。この手順を試みる際に覚えておくべきことは、生細胞を使用する際に、1つのヘアセルバンドルあたり15分未満を費やしていくことです。毛束の画像を取得した後、ステレオシリアの表面の特定の場所から単一のチャンネル録音を取得して、メカノトランスダクションチャネルの特性に関する質問に答えようとすることができます。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

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生きた哺乳類聴覚毛細胞におけるナノスケール分解能によるステレオシリアバンドルイメージング

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