Name: 癌切除手術時の静脈内麻酔の in vivo マウスモデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-06-08T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: 学ぶプロポフォールを用いたマウスにおける全静脈内麻酔法。癌切除手術時の麻酔技術が再発に与える影響を評価し、術後の短期・長期転帰を解析する信頼性の高いin vivoモデルを確立する方法です。

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著者らは、パークビルのモナッシュ大学モナッシュ薬学研究所の癌神経免疫研究所のメンバーとキャメロン・ノーウェル博士に感謝したいと思います。この研究は、National Health and Medical Research Council 1147498、National Breast Cancer Foundation IIRS-20-025、Australian and New Zealand College of Anaestistics(ANZCA)、Perpetual and CTC for Cancer Therapeuticsからの助成金によって支援された。

すべての動物実験は、モナッシュ大学の施設内動物管理および使用委員会の承認の下で実施されました。この研究では、6〜8週齢の雌のBalb / cマウスを使用しました。
1.がん細胞を準備する
<ol><li>腫瘍細胞を培地で培養する。66cl4マウス乳がん細胞を、10%FBSと200 mMグルタミンを含むα-MEMで培養します。細胞はマイコプラズマに対して陰性のテキストを送るべきです。オプション:生物発光イメージングにホタルルシフェラーゼを発現するように安定に形質導入された細胞を使用して、切除手術後の癌再発モニタリングを可能にします11 (ステップ4を参照)。 注:上記の細胞株と培地は、この研究で使用されました。</li>
	<li>5%CO2で37°Cで細胞を増殖させる。細胞をフード内で<80%のコンフルエントで無菌的に継代する。最適な in vivo 結果を得るために、対数増殖期に低継代細胞を使用してください。</li>
	<li>接着細胞を 10 mM EDTA を含む PBS 中の 0.5 mg/mL トリプシンで持ち上げます。T75フラスコの場合は2 mL。持ち上げたら、トリプシンを不活性化する培地を加え、PBSで細胞を洗浄します。</li>
	<li>血球計算盤を使用して細胞をカウントします。注射のために細胞をPBSで希釈する。66cl4乳がん細胞の場合、マウスあたり20 μLのPBSに1 x 105 細胞を注入します。</li>
	<li>注射の前に細胞を氷の上に置きます。</li>
</ol>2. 乳がんのマウスモデルを生成する
<ol><li>4%イソフルランを使用して、誘導チャンバーでマウスを麻酔します。その後、ノーズコーンを使用して2%〜3%イソフルランで麻酔を維持します。つま先のつまみに対する反応の欠如による適切な麻酔を確認します。</li>
	<li>使い捨てアルコール綿棒を使用して4番目の左乳腺脂肪パッド領域を拭いて注射部位を準備します。</li>
	<li>腫瘍細胞(ステップ1.4を参照)を、滅菌27 G皮下注射針に取り付けられた25 μLのハミルトンシリンジに描画します。</li>
	<li>細胞を4番目の左乳腺脂肪パッドに注入します。鉗子を使用して皮膚を固定し、持ち上げます。乳首から約1mm注入します。</li>
	<li>オプション:細胞がルシフェラーゼでタグ付けされている場合は、生物発光イメージングによって腫瘍細胞の注入が成功したことを確認します。30 Gの皮下注射針を備えた0.5 mLインスリン注射器を使用して、麻酔をかけたマウスの外側尾静脈に100 μLの150 mg / kgD-ルシフェリンを注射します。</li>
	<li>オプション:乳腺脂肪パッドを上に向けて、マウスを生物発光イメージングシステムに置きます。ルシフェリンの最適な組織取り込みのためにルシフェリン注射から2分間待ってから、10秒間画像化します。</li>
	<li>マウスを清潔なケージに入れ、麻酔から回復させます。</li>
	<li>施設の動物倫理ガイドラインに従って、動物福祉の監視を継続します。</li>
</ol>3.プロポフォールの静脈内投与で安定した麻酔を誘発する
<ol><li>ノギス測定を用いて原発腫瘍の成長を監視し、体積(mm3)=(長さx(幅)2 ÷2)の式を用いて腫瘍体積を計算する。</li>
	<li>原発腫瘍が必要な体積(ここでは80〜90mm3)に達したときにマウスに腫瘍切除手術を行う。</li>
	<li>プロポフォール製剤(2%リプロプロポフォール)を含む30 G 1 mLインスリンシリンジを備えた自動シリンジポンプをセットアップします(図1A)。</li>
	<li>3%セボフルランまたはイソフルランを含む誘導チャンバーでマウスの麻酔を誘発する。 注:ここでは、セボフルランが臨床的に使用される主な揮発性物質であるため、使用されました。</li>
	<li>手術期間中、マウスを37°Cの加温パッドに移します。ノーズコーンを使用して2%〜3%のセボフルランで麻酔を短時間維持する。</li>
	<li>乾燥を防ぐために、目に水性潤滑剤を塗布します。</li>
	<li>鎮痛のために0.05 mg / kgのブプレノルフィンを皮下注射します。.</li>
	<li>手術の準備をするには、腹部を剃り、ヨウ素 - ポビドン溶液で手術のために皮膚を準備します。アルコールまたは滅菌ワイプを使用して皮膚を拭きます。</li>
	<li>プロポフォールベースのTIVAを送達するには、滅菌ポリウレタンカテーテルに取り付けられた滅菌30G皮下注射針を使用して外側尾静脈をカニューレ挿入します。カテーテルへの血液フラッシュバックによって正しい配置を確認します(図1B)。静脈内カニューレ挿入中に必要に応じてセボフルランの送達を調整して、角膜およびペダル反射の喪失によって示される安定した麻酔深度を維持し、呼吸数を毎分100呼吸<。</li>
	<li>2%プロポフォールを27 mg / kgの初期ボーラスとして1分間以上投与することにより、プロポフォール-TIVAを開始します。.セボフルラン投与を中止する。</li>
	<li>手術期間中、安定した麻酔深度を維持するために、2.2〜4.0 mg / kg / minの維持速度でプロポフォールの注入を継続します(図1C)。</li>
</ol>4.原発腫瘍を切除します
<ol><li>左4番目の乳腺脂肪パッドの領域の腫瘍より下にまっすぐな1 cmの切開を行います。鈍い鉗子による解剖を使用して、腫瘍と左鼠径リンパ節を慎重に切除します。</li>
	<li>オプション:ルシフェラーゼタグ付き腫瘍細胞を使用する場合は、生物発光イメージングを使用して明確な外科的マージンを確認します。150 mg / kgのD-ルシフェリンを外側尾静脈に注射し、2分間待ってから、生物発光イメージングシステムを使用して60秒間画像化します。残存腫瘍が確認された場合は、乳腺脂肪パッドから追加の組織を切除し、再画像化して明確なマージンを実現します。</li>
	<li>手術部位の止血を確実にし、5-0ナイロン縫合糸を使用して皮膚を閉じます。毛皮が手術部位に入らないようにしてください。</li>
	<li>切除手術の終わりに、麻酔をやめます。マウスを37°Cの加熱パッド上の清潔なケージに入れ、麻酔から回復させます。</li>
	<li>マウスが通常の覚醒に戻るまで、麻酔後15分ごとに監視します。.次に、手術後48時間、12時間ごとにマウスを監視します。</li>
	<li>手術後、0.05 mg / kgのブプレノルフィンを12時間ごとに48時間皮下投与します。.</li>
	<li>7〜10日後、短時間のセボフルランまたはイソフルラン麻酔下で滅菌湾曲ステッチカッターを使用して縫合糸を取り除きます。</li>
</ol>5. in vivo イメージングによるがんの再発追跡
<ol><li>生物発光イメージングを使用して、切除手術後のがんの再発を非侵襲的に追跡します。生物発光イメージングシステムを使用して、手術の翌週から原発腫瘍の再発または遠隔再発の証拠がないか、週に1回マウスを監視します。</li>
	<li>4%イソフルランを含む誘導チャンバーでマウスの麻酔を誘発する。次に、マウスを麻酔期間中37°Cの加熱パッドに移し、ノーズコーンを使用して2%〜4%イソフルランで麻酔を維持します。</li>
	<li>乾燥を防ぐために、目に水性潤滑剤を塗布します。</li>
	<li>D-ルシフェリン150 mg / kgを外側尾静脈に注射します。.2分間待ってから、60秒間の曝露で生物発光を測定し、原発腫瘍の再発または遠隔転移を検出します。</li>
	<li>原発腫瘍が再発して触知可能になった場合は、ノギス測定を使用して腫瘍増殖のモニタリングを開始します。</li>
	<li>実験の終わりに、承認されたプロトコルに従ってマウスを人道的に殺します。ここでは、CO2 を使用し、続いて頸部脱臼を行った。</li>
</ol>

<ol><li>Sullivan, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+cancer+surgery%3A+delivering+safe%2C+affordable%2C+and+timely+cancer+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Oncology%22%5BJournal%5D)">Global cancer surgery: delivering safe, affordable, and timely cancer surgery.</a> Lancet Oncology. 16 (11), 1193-1224 (2015).</li>
<li>Lim, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+propofol+and+sevoflurane+on+cancer+cell%2C+natural+killer+cell%2C+and+cytotoxic+T+lymphocyte+function+in+patients+undergoing+breast+cancer+surgery%3A+an+in+vitro+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cancer%22%5BJournal%5D)">The effect of propofol and sevoflurane on cancer cell, natural killer cell, and cytotoxic T lymphocyte function in patients undergoing breast cancer surgery: an in vitro analysis.</a> BMC Cancer. 18 (1), 159(2018).</li>
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<li>Lai, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Propofol-based+total+intravenous+anesthesia+is+associated+with+better+survival+than+desflurane+anesthesia+in+hepatectomy+for+hepatocellular+carcinoma%3A+a+retrospective+cohort+study%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Propofol-based total intravenous anesthesia is associated with better survival than desflurane anesthesia in hepatectomy for hepatocellular carcinoma: a retrospective cohort study.</a> British Journal of Anaesthesia. 123 (2), 151-160 (2019).</li>
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<li>Al-Hashimi, M., Scott, S. W. M., Thompson, J. P., Lambert, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Opioids+and+immune+modulation%3A+more+questions+than+answers%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Opioids and immune modulation: more questions than answers.</a> British Journal of Anaesthesia. 111 (1), 80-88 (2013).</li>
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<li>Hiller, J. G., Perry, N. J., Poulogiannis, G., Riedel, B., Sloan, E. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perioperative+events+influence+cancer+recurrence+risk+after+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Clinical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Perioperative events influence cancer recurrence risk after surgery.</a> Nature Reviews Clinical Oncology. 15 (4), 205-218 (2018).</li>
</ol>

著者は、競合する金銭的利益を宣言していません。

この研究では、全静脈麻酔(TIVA)を投与するためのプロトコルについて報告します 乳がんのマウスモデルでプロポフォールを使用して、がん手術を必要とする患者におけるTIVAの臨床診療の重要な側面を再現します。このプロトコルにより、サイトカインレベルとがん再発の測定を含む、がん進行のマウスモデルにおけるがん手術後の短期および長期の両方の臨床的に関連する転帰の調査が可能になります(図2および 図3)。この方法論は、がん関連転帰に対するTIVAの効果の評価や、揮発性麻酔などの他の麻酔技術との比較に役立ちます。
採血送達10などの軽度の介入中に鎮静のためにプロポフォールの単一の腹腔内ボーラスを送達する既存のプロトコルとは対照的に、このプロトコルは、手術などの主要な介入中の麻酔の維持のためのプロポフォールの長期静脈内送達を可能にする。プロポフォールの誘導用量と維持用量の両方を注意深く滴定して、低血圧または心停止による死亡率を最小...

がん患者の60%以上が外科的切除のために麻酔を受けています1。現在、癌患者に使用される麻酔の選択を決定する特定の臨床ガイドラインはありません。麻酔科医の調査では、がん手術中を含め、揮発性ベースの麻酔を好むことが示されています2,3。しかし、がん手術中にプロポフォールベースの全静脈麻酔(TIVA)を使用すると、揮発性麻酔と比較して術後転帰(無増悪生存期間、全生存期間)の改善と関連している可能性があるという証拠が増えています4。その後の臨床試験では、矛盾する結果を報告し続けています5、6、7、8。これらの知見は、がん関連アウトカムに対するさまざまな麻酔薬の機構的効果をよりよく理解するための前臨床試験の必要性を裏付けている。
ただし、がん手術をモデル化した in vivo 研究では、麻酔が手順の付随的な部分であることがよくあります。麻酔の選択の理論的根拠は、多くの場合、実験デザインの焦点ではなく、がん関連のエンドポイントへの影響は評価されない可能性があります。例えば、癌手術のために麻酔の維持を必要とする in vivo 研究では、最も一般的に吸入揮発性麻酔が使用されます9。プロポフォールが in vivo 研究で使用されてきた場合、それは腹腔内送達を伴う単回ボーラス投与によって送達されており、これは臨床腫瘍麻酔プロトコルを複製しない10。プロポフォール投与のそのアプローチは、迅速な手順に適した軽い麻酔を誘発します。ただし、長期化する可能性のあるがん切除手術に必要な麻酔の維持はできません。さらに、腹腔内送達の吸収動態は、臨床投与方法とは異なる。
このニーズに対応するために、がん切除手術のためのプロポフォールベースのTIVAのモデルが開発されました。外科的刺激への応答を可能にするために麻酔薬の滴定による麻酔の持続的な維持のためのプロトコルが、癌手術を受けている患者への麻酔薬送達の重要な側面を再現するために開発されました。得られたプロトコルは、癌切除手術中にTIVAを提供するために癌のマウスモデルと共に使用される。短期および長期のがん関連転帰への影響が評価されます。

<table><tbody><tr><td>0.9%生理食塩水</td><td>フレズニウス・カビ</td><td>AUST R 197198</td><td></td></tr><tr><td>動脈鉗子</td><td>Proscitech</td><td>TS1322-140</td><td></td></tr><tr><td>ブプレノルフィン</td><td>テムゲシック</td><td>TEMG I</td><td></td></tr><tr><td>加熱式手術マット</td><td>カスタム</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>皮下注射針 (30 G, 1 mL インスリン注射器)</td><td>テルモ</td><td>NN3013R</td><td></td></tr><tr><td>IVIS ルミナ</td><td>パーキンエルマー</td><td></td><td></td>126274</tr><tr><td>ルシフェリン</td><td>プロメガ</td><td>P1041/2/3</td><td></td></tr><tr><td>ポリウレタン カテーテル</td><td>イントラメディック</td><td>427401</td><td></td></tr><tr><td>ポビドン ヨウ素</td><td>ベタジン</td><td>AUST R 29562</td><td></td></tr><tr><td>プロポフォール リプロ、2%</td> <td>ブラウン</td><td>3521490</td><td></td></tr><tr><td>セボフルラン</td><td>バクスター</td><td>ANZ2L9117</td><td></td></tr><tr><td>セボフルラン 気化器</td><td>Vetquip</td><td>VQ1334</td><td></td></tr><tr><td>滅菌ガーゼ</td><td>マルチゲート 医療製品</td><td>11-600A</td><td></td></tr><tr><td>手術用ハサミ</td><td>Proscitech</td><td>TS1044</td><td></td></tr><tr><td>縫合糸、5-0 ナイロン</td><td>Dynek</td><td>V504</td><td></td></tr><tr><td>シリンジポンプ</td><td>ハーバード 装置</td><td>: 70-4500</td><td></td></tr><tr><td>シリンジ (1 mL)</td><td>テルモ</td><td>SS+01T</td><td></td></tr></tbody></table>

癌切除手術時の静脈内麻酔の in vivo マウスモデル

An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

麻酔は、診断および治療手順に使用される癌治療の日常的な要素です。麻酔技術は最近、おそらく癌細胞の挙動と免疫細胞機能に影響を与えるアドレナリン作動性炎症反応の調節を通じて、長期的な癌転帰に影響を与えることに関与しています。新たな証拠は、プロポフォールベースの全静脈麻酔(TIVA)が、吸入揮発性麻酔と比較した場合、長期的な癌転帰に有益である可能性があることを示唆しています。ただし、入手可能な臨床所見には一貫性がありません。関与する根本的なメカニズムを特定する前臨床試験は、洞察を促進する臨床試験の設計を導くために非常に重要です。麻酔のほとんどの前臨床モデルは、 in vivo 研究における麻酔の使用から外挿されており、主要評価項目としての麻酔自体の影響を研究するように最適に設計されていません。.この論文では、がん患者における臨床送達の重要な側面を再現する乳がん切除のマウスモデルでプロポフォール-TIVA麻酔を送達する方法について説明しています。このモデルは、さまざまな種類のがんのがん転帰に対する麻酔の作用機序を研究するために使用でき、前臨床麻酔研究の他の非がん領域に外挿することができます。

この方法は、マウスにおける癌切除手術中のプロポフォールによる全静脈麻酔(TIVA)のモデルを記載する。このマウスモデルでは、シリンジポンプ(図1A、B)を使用して静脈内カテーテルを介してプロポフォールを送達し、癌手術の麻酔の臨床現場でTIVAの送達を再現します。シリンジポンプの使用は、吸入麻酔による最初の誘導から静脈内送達への迅速な変換を可能にすることにより、揮発性麻酔への曝露を最小限に抑えます。
プロポフォールベースのTIVAにより安定した麻酔が達成された後、原発性乳腺腫瘍を切除しました。原発腫瘍の完全切除を確認するために in vivo 生物発光イメージングを使用しました(図2)。非侵襲的な in vivo 生物発光イメージングによるマウスの定期的なモニタリングにより、肺のルシフェラーゼタグ付き腫瘍細胞による遠隔再発が確認されました(図2</stro...

本稿では、マウスの癌切除手術中の全静脈麻酔(TIVA)をモデル化する方法について説明しています。目標は、がん患者への麻酔送達の重要な特徴を再現することです。本手法により、切除術後のがん再発に麻酔技術がどのように影響するかを調べることができます。

Anesthesia is a routine component of cancer care that is used for diagnostic and therapeutic procedures. The anesthetic technique has recently been ...

この新しいプロトコルは、プロポフォール麻酔を使用したマウスの外科的麻酔について説明しています。この方法は、疾患のマウスモデルにおけるプロポフォール麻酔の研究を可能にします。このプロトコルは、全静脈内麻酔の評価を可能にし、揮発性麻酔の使用を回避します。このプロトコルは、プロポフォール麻酔が疾患関連の結果にどのように影響するかを調べるために使用できます。たとえば、ここでは、腫瘍を切除するための手術後の短期および長期の癌転帰を評価します。はじめに、10%FBSおよび200ミリモルグルタミンを含むαMEM培地でホタルルシフェラーゼを発現するように安定に形質導入されたCL4みらい乳癌細胞を66個培養する。摂氏37度で細胞をインキュベートしますが、5%二酸化炭素。細胞が約80%コンフルエントに達したときに細胞を継代培養します。細胞がEDTA溶液中に2ミリリットルの滴下を伴う対数増殖期にあるとき、接着細胞を持ち上げ、血球計算盤を使用して細胞をカウントする。次に、細胞をPBSで希釈し、マウスが注射の準備ができるまで希釈した細胞懸濁液を氷上に置いておきます。マウスが完全に麻酔をかけられたら、4番目の左乳腺脂肪パッド領域を使い捨てアルコール綿棒で拭き取り、注射部位を準備します。滅菌25ゲージの皮下注射針に取り付けられた27マイクロリットルのハミルトン注射器に癌細胞懸濁液を入れます。鉗子を使用して皮膚を持ち上げて固定します。5番目の細胞に10回、乳首から約1ミリメートル離れた4番目の左乳脂肪パッドに20マイクロリットルのPBSを注入します。細胞がルシフェラーゼでタグ付けされている場合は、30ゲージの皮下注射針を備えた0.5ミリリットルのインスリン注射器を使用して、麻酔をかけたマウスの外側尾静脈に100マイクロリットルのD-ルシフェリンを注射します。注射の2分後、マウスを乳腺脂肪パッドを上に向けて生物発光イメージングシステムに入れ、10秒間画像をキャプチャします。イメージング後、マウスを清潔なケージに入れ、麻酔から回復させます。キャリパーを使用して原発腫瘍の成長を監視します。腫瘍の体積を計算し、原発腫瘍が80〜90立方ミリメートルの体積に達したら腫瘍を切除します。2%プロポフォール製剤を含む30ゲージの1ミリリットルインスリンシリンジで自動シリンジポンプをセットアップします。3%のセボフルランまたはイソフルランを含む誘導チャンバーで麻酔を誘発します。次に、麻酔をかけたマウスを摂氏37度の加熱パッドに移し、ノーズコーンを使用して2〜3%のセボフルランまたはイソフルランで麻酔を維持します。静脈内カニューレ挿入中に必要に応じてセボフルランの送達を調整して、ペダル反射の喪失と毎分100呼吸未満の呼吸数によって示される安定した麻酔深度を維持します。.角膜の乾燥を防ぐために水性潤滑剤を目に塗り

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我々は、腹側から成虫マウスの脳幹を暴露するプロトコルを提示する。ミニチュア顕微鏡で傾斜屈折率レンズを用いることで、インビボでのオリーブ神経ソマタの活性を調べるためにカルシウムイメージングを用いることができる。...

インビボ マウス劣オリーブにおけるカルシウムイメージング

本プロトコルは、統合された組織保存システムを用いた低侵襲アプローチによるげっ歯類の脳腫瘍の標準化された切除を記載する。この技術は、げっ歯類や他の動物モデルにおける標準治療を正確に反映するための意味を持ちます。...

高生存率組織採取のためのげっ歯類における低侵襲脳腫瘍切除術の実施

学ぶプロポフォールを用いたマウスにおける全静脈内麻酔法。癌切除手術時の麻酔技術が再発に与える影響を評価し、術後の短期・長期転帰を解析する信頼性の高いin vivoモデルを確立する方法です。

癌切除手術時の静脈内麻酔の in vivo マウスモデル

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