Name: 軟骨外植木における移動と取り込みモニタリングのための細胞外小胞の標識 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-10-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: 学ぶ細胞外小胞の標識法と軟骨外植木における移動・取り込みモニタリング技術。共焦点顕微鏡を用いて変形性関節症治療におけるEV分布を可視化し、研究者の治療評価に貢献します。

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この研究は、ESF欧州社会基金とERDF欧州地域開発基金(MS16/00124)が共同出資する、インスティトゥート・デ・サルド・カルロス3世、エコノミア・イ・コンペティビビダード大臣(MS16/00124;CP16/00124);プログラムによってジュニアデルプロイエクトタレントプラス,コンストラクションイェルドSALUD, ジェネランドヴァロル (JUNIOR01/18), バレアレス諸島の持続可能な観光税によって資金調達;ディレッキオ・ジェネラル・デインベスティガシオ、コンセラーリア・デ・インベスティガシオ、ガリア統治(FPI/2046/2017);FUTURMed内のFOLIUMポスダリックプログラム(FOLIUM 17/01)によって、バレアレス諸島の持続可能な観光税によって50%、ESFによって50%で賄われた。そして、コミシオ・デ・ドチェンシア・イ・インベスティガシオ・デ・ラ・フンダシオ・バンク・デ・サン・イ・テイシッツ・デ・レ・イレス・バリアーズ(CDI21/03)。

注意:軟骨外植は、CEI-IB(IB 3656118 PI)によるプロジェクトの倫理的承認後、機関ガイドラインに準拠したIdISBaバイオバンク(IB 1995/12 BIO)から取得されました。
1. カラムの準備
<ol><li>製造元の指示に従って、または次のように列を平衡化します。<ol>
<li>列のキャップを取り外し、列を平衡にします。溶出によってストレージバッファを取り外します。</li>
		<li>リン酸緩衝生理食塩分(PBS)の2.5mLでカラムを3回洗浄します。各洗浄中に、カラムが全容を吸収するのを待ちます。 メモ:カラムを乾かしてはなりません。</li>
		<li>最後の洗浄後、サンプル調製まで、キャップでカラムを覆います。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. EVラベリング
注: この EV ラベリング プロトコルは、以前に説明した条件21,22のサイズ除外クロマトグラフィー (SEC) によって分離された PL-EV サンプルを使用します。ただし、任意のソースからの EV サンプルは、このプロトコルで使用できます。
<ol><li>濃縮チューブを使用してEVサンプルとコントロール(PBS)を濃縮します。<ol>
<li>EVサンプル開始の開始量に応じて、サンプルを15mLまたは500 μLの濃縮チューブに入れます。ほとんど乾燥したサンプルが得られるまで、製造業者の指示に従ってチューブを遠心分離します。 メモ:制御サンプルは、色素の背景を確認するために必要です。この方法は特定の初期体積を必要としませんが、精製工程で粒子の約10%が失われると考えるべきです。</li>
	</ol>
</li>
	<li>濃縮サンプルを希釈C.200 μLで再懸濁し、100 μLのコントロールグループを新しい1.5 mL遠心管に移します。</li>
	<li>EVサンプルを100 μLの2つのアリコートに分け、1つを染料でマークし、治療として使用します(PKH-PL-EV)。他のマークは無いままにしますが、それを処理します (NTA-PL-EV) EVサンプルのような EV サンプルとNTAによってEV濃度を定量化するためにそれを使用します。</li>
	<li>2x色素溶液を調製し、8μM PKH26溶液を希釈Cに調製した。</li>
	<li>サンプル中の希釈液Cの125 μLあたり1 mM PKH26リンカーの1 μLを混ぜます。サンプルに追加するのに必要なボリュームを 1:1 の比率で準備します。</li>
	<li>PKH-PL-EVに2x色素溶液を加え、1:1比でサンプルを制御し、1x色素濃度と4μM PKH26濃度を達成します。同じ量のPBSをNTA-PL-EVサンプルに追加します。室温で5分間インキュベートします。</li>
	<li>5%のウシ血清アルブミン-PBS溶液を1:1の比率でサンプルに加え、最終容積が〜400 μLであることを確認します。 注:このステップでは、非特異的な色素相互作用または非結合色素を除去することができます。</li>
	<li>ラベル付きの EV と、非バインド色素と非特異的な色素と列の相互作用を分離します。</li>
</ol>3. ラベル付きEVアイソレーション
<ol><li>カラムからキャップを取り出し、サンプル(PKH-PL-EV、NTA-PL-EV、またはコントロール)を400 μL加え、溶出した液体をすべて捨てます。</li>
	<li>次の手順に進む前に、サンプルが列に完全に入るのを待ちます。600 μLのPBSを加え、溶出した液体をすべて捨てます。</li>
	<li>次の手順に進む前に、PBS が列に完全に入るのを待ちます。600 μL の PBS を加え、1.5 で 600 μL の分数を集める。mL遠心チューブ(EVまたはコントロール)。 注: これらの手順は、サンプルから余分な染料を除去するために必要です。より純粋なEVを得るためには、カラムによる別の分離が必要です。したがって、新規の平衡カラム(ステップ4.1)または初期洗浄ステップ(ステップ4.2)の後の同じカラムで以下のステップを実行する必要があります。</li>
	<li>新しい EV 分離ステップの列を準備して、より純粋な EV を取得します。新しい列の場合は、手順 2.1 を繰り返します。2.2.同じカラムの場合は、2.5 mLの20%イソプロパノールで洗浄し、ステップ2.1と2.2を繰り返します。</li>
	<li>ステップ2.5で取得した600μLのEVをカラムに追加し、溶出したボリュームを廃棄します。次のステップに進む前に、液体が列に入るのを待ちます。</li>
	<li>400 μL の PBS を追加し、溶出したボリュームをすべて捨てます。次のステップに進む前に、液体が列に入るのを待ちます。</li>
	<li>600 μL の PBS を加え、1.5 mL 遠心チューブに600 μLの分画を集める。EVと制御サンプルを使用してさらに解析を行うか、4°Cで一晩保管します。</li>
	<li>使用する列を後で使用するために保存します。<ol>
<li>20%イソプロパノールの25 mLでカラムを洗い、溶出したボリュームを捨てます。2.5mLのPBSで3回洗浄してください。</li>
		<li>ステップ 1.1.1 で取り外したストレージ・バッファーを追加し、バッファーが列に入るのを待ちます。列をキャップで覆い、その後使用するまで4oCで保管します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. EV定量化
<ol><li>NTA-PL-EVサンプルの1:1,000希釈液と初期PL-EVサンプルを、以下の2つのステップで説明するとおり準備します。<ol>
<li>1:10希釈NTA-PL-EVの1 mLと1:10希釈初期PL-EVの1 mLを、PBSを0.2 μmフィルターで濾過して準備します。</li>
		<li>0.2 μmフィルターを通してPBSを濾過した前の希釈サンプルの1:100希釈液の1 mLを準備しなさい。</li>
	</ol>
</li>
	<li>1:1,000希釈NTA-PL-EVサンプルまたは初期PL-EVサンプルを無菌シリンジを使用してNTAポンプに注入します。粒子濃度とサイズ分布の決定に関するメーカーの指示と推奨事項に従ってください。 注: EV濃度はサンプルスターターの体積に依存するため、中間希釈液を読み取り、正しいNTA判定を行うために調整が必要な場合があります。</li>
</ol>5. 炎症を起こすOAの治療薬として使用されるEV
<ol><li>PBSで軟骨を2回洗浄し、滅菌条件下で3mmの直径の生検パンチを使用して切除します。 メモ:細胞培養フードで手順5.1から5.6までの手順を実行します。</li>
	<li>37 oC、5%CO2、および湿度80%で1%ペニシリンストレプトマイシンを添加したDMEM-F12培地を用いて96ウェル培養プレートに外植を入れる。<ol>
<li>炎症駆動型OAモデルを確立するには、細胞培養培地に10 ng/mLオンコスタチンMおよび2ng/mL腫瘍壊死因子α(TNFα)を添加する。</li>
	</ol>
</li>
	<li>1×119の標識EV(PKH-PL-EV)の粒子/ ウェルを有する外植物を治療するか、またはオンコスタチンMおよびTNFαを添加した細胞培養培地で制御する。 注: 109 パーティクル/ウェル×含むサンプルの体積を測定し、コントロールに同じボリュームを使用します。</li>
	<li>軟骨外植を含む96ウェル細胞培養プレートから培地を取り除きます。ステップ5.3で説明した細胞培養培地の200μLを各ウェルに加える。 注:96ウェルプレートが牛胎児血清(FBS)と接触している場合は、200 μLのPBSで各井戸を3回洗浄して、FBSからEVを取り除きます。</li>
	<li>異なる時間 にインビトロ アッセイを停止します: 0,1,2,3,4,および5時間。</li>
	<li>軟骨外植を含む細胞培養井戸を200μLのPBSで2回洗浄します。</li>
	<li>4%パラホルムアルデヒド(PFA)の100 μLを組織に加え、4 oCで3時間固定します。 注: PFA に関する手順は、安全データシートの推奨事項に従ってヒュームフードで実行する必要があります。</li>
	<li>PFAを取り出し、PBSを100μL加え、固定組織を4°Cに保存し、48時間以内にサンプルを処理します。</li>
</ol>6. 顕微鏡の準備と可視化
注:この組織学的手順は、脱水、パラフィン埋め込み、および水分補給ステップで構成されています。これらのステップは、全体的な色素蛍光を低減する可能性があります (PKH26 のデータシートに記載されている制限)。したがって、凍結断面化などの他の手順は、共焦点顕微鏡によるEV可視化に適している可能性がある。
<ol><li>固定組織をパラフィンブロックに埋め込みます。組織を6μmの厚い切片に切り取ります。</li>
	<li>組織切片を分離します。 注:キシレンを使用するすべてのステップは、ヒュームフードで行う必要があります。<ol>
<li>組織切片を30分間キシレンに、100%エタノールを2分間、96%エタノールで2分間、75%エタノールで1分間、最後に蒸留水で30分間浸します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>組織切片を透過させる。<ol>
<li>0.1%トリトン-0.1%クエン酸ナトリウム溶液を調製し、組織を透過させます。各組織セクションに20μLの滴を加え、室温で10分間インキュベートします。各セクションを20μLのPBSで2回洗浄します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>顕微鏡スライド上に、4′,6-ジミジノ-2-フェニリンドール(DAPI)を含む取り付け媒体の滴を加え、蛍光を保存するための水性取り付け媒体を付けます。ステップ6.3.1の3つの組織セクションを含むスライドを覆います。</li>
	<li>スライドを室温で一晩インキュベートし、光から保護します。</li>
	<li>4 °Cで保存し、光から共焦点顕微鏡まで保護します。</li>
</ol>

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 <a target="_blank" href="https://www.sigmaaldrich.com/technical-documents/protocols/biology/cell-culture/exosome-labeling-pkh.html">https://www.sigmaaldrich.com/technical-documents/protocols/biology/cell-culture/exosome-labeling-pkh.html</a> (2021).</li>
<li>Dehghani, M., Gulvin, S. M., Flax, J., Gaborski, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+evaluation+of+PKH+labelling+on+extracellular+vesicle+size+by+nanoparticle+tracking+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Systematic evaluation of PKH labelling on extracellular vesicle size by nanoparticle tracking analysis.</a> Scientific Reports. 10 (1), 1-10 (2020).</li>
<li>Morales-Kastresana, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Labeling+extracellular+vesicles+for+nanoscale+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Labeling extracellular vesicles for nanoscale flow cytometry.</a> Scientific Reports. 7 (1), 1-10 (2017).</li>
<li>Takov, K., Yellon, D. M., Davidson, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confounding+factors+in+vesicle+uptake+studies+using+fluorescent+lipophilic+membrane+dyes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Extracellular+Vesicles%22%5BJournal%5D)">Confounding factors in vesicle uptake studies using fluorescent lipophilic membrane dyes.</a> Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1388731(2017).</li>
<li>Mortati, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+study+of+extracellular+vesicles+migration+in+cartilage-derived+osteoarthritis+samples+using+real-time+quantitative+multimodal+nonlinear+optics+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmaceutics%22%5BJournal%5D)">In vitro study of extracellular vesicles migration in cartilage-derived osteoarthritis samples using real-time quantitative multimodal nonlinear optics imaging.</a> Pharmaceutics. 12 (8), 1-18 (2020).</li>
</ol>

著者らは開示する利益相反はない。

EVイメージングは、EVの放出や取り込みメカニズムなどのEV特性を理解するのに役立ちます。彼らのイメージングは、彼らの生体分布の監視と薬物動態特性の薬剤車としての特徴を可能にする。しかし、EVイメージングおよび追跡は、そのサイズが小さいため困難である可能性がありますが、多くのイメージングデバイスおよびラベリング技術は、研究者がin vitroおよびin vivo条件23、24、25の下でEVを監視するのを助けるために開発されています。
光顕微鏡でEVを追跡する場合、生物発光と蛍光イメージングの2つの可能性があります。どちらも可視光スペクトル(390~700 nm)内のEVを検出するために使用されます。生物発光は、ルシファーゼがその基質の酸化を触媒した後に生成される化学発光の一種です。この信号は検出のために超高感度電荷結合デバイス(CCD)カメラを必要とするが、信...

変形性関節症(OA)は、関節軟骨1の細胞外マトリックスの進行性および不可逆的な炎症および破壊を意味する関節変性疾患である。関節炎の様々な形態は、多数の治療法を持っていますが2,3,4,これらは、その副作用と限られた有効性によって制限されています.自家軟骨細胞移植を用いた組織工学技術は、OA初期の軟骨病変における負傷軟骨の再生治療のために日常的に適用される。細胞ベースの治療法は、主に、軟骨3を効果的に修復することができる限られた数の平種安定な軟骨細胞またはチョンドロゲニターのために制限される。したがって、疾患の進行を予防し、大きな軟骨病変を再生するための新しい治療戦略の開発が最も重要である。
細胞外小胞(EV)は、異なる著者5,6によってOAの治療法として提案されている。EVは、細胞型の大部分によって分泌される膜状体であり、細胞間シグナル伝達に関与しており、そして、それらは最近再生医療への関心を引き出した幹細胞の治療効果7、8、9を発揮することが示されている。間葉間質細胞(MSC)に由来するEVは、OAに関して調査された主な治療用EVであり、他の関節関連細胞はEV源として使用されているが、例えば、チョンドロゲニタまたは免疫細胞11、12。
血小板リサート(PLs)などの血小板濃縮物は、角膜潰瘍13、14、15、腱組織再生16などの異なる傷害における創傷治癒を増強するために使用され、血小板濃縮物のEV成分がこれらの効果に関与する可能性があるという仮説のため17 .関節関連疾患に関連するいくつかの研究は、骨関節炎の状態を改善するための治療法として血小板由来のEV(PL-EV)を使用しています。PL-EVは、Wnt/β-カテニン経路18を活性化することによって軟骨細胞増殖および細胞遊行を改善し、変形性関節症軟骨球19における軟骨形成マーカーの発現を促進し、または、軟骨原性タンパク質のより高いレベルを示し、PL-EV18で治療した骨関節症ウサギの骨関節異常を少なく示す。
EVは、標的細胞に遊離されるタンパク質、脂質、および核酸を含み、それらの治療用途20に関連する主な特徴である細胞間通信を確立する。EVの効果は、その到達セルとその後の貨物放出に依存します。この効果は、代謝活性や遺伝子発現修飾などの細胞内で引き起こされる変化によって間接的に確認することができる。ただし、これらのメソッドでは、EV がセルに到達する方法を視覚化して機能を発揮することはできません。このように、本論文は、これらのPL由来EVを、炎症駆動OA軟骨外植の治療薬として用いる方法を提示する。共焦点顕微鏡は、5時間のタイムラプスで、外植に存在する軟骨細胞へのEV取り込みおよび進行を監視するために使用された。

<table><tbody><tr><td>Material</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1.5 mL 遠心分離管</td><td>SPL ライフサイエンス</td><td>PLC60015</td><td></td></tr><tr><td>1 mL シリンジ BD Plastipak</td><td>BD</td><td>303174</td><td></td></tr><tr><td>2-プロパノール (イソプロパノール)</td><td>Panreac AppliChem</td><td>1.310.901.211</td><td>Milli-Q 水</td></tr><tr><td>96 ウェル培養プレート</td><td>SPL ライフサイエンスで</td> <td>20% で調製</td><td></td>PLC30096</tr><tr><td>無水エタノール Pharmpur</td><td>Scharlab</td><td>ET0006005P</td> Milli-Q 水 プランジャー付き Biopsy Punch 3 mm Scandidact MTP-33-32 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清で 96% および 75% エタノールを調製するために使用されます。アルブミン(BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7030</td><td>PBS</td></tr><tr><td>軟骨外植片</td>で5%調製 <td>IdISBa バイオバンク</td><td></td><td></td></tr><tr><td>濃縮チューブ 15 mL ナノセップ 100 kD オメガ</td><td>ポール</td><td>MCP100C41</td><td></td></tr><tr><td>濃縮チューブ 500 &micro;L Nanosep 100 kD オメガ</td><td>ポール</td><td>OD003C33</td><td></td></tr><tr><td>カバーガラス 24 x 60 mm</td><td>Deltalab</td><td>D102460</td><td></td></tr><tr><td>DMEM-F12 -GlutaMAX medium</td><td>Biowest</td><td>L0092</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's PBS (1x)</td><td>Capricorn Scientific</td><td>PBS-1A</td><td></td></tr><tr><td>埋め込みパラフィン組織ブロック</td><td>IdISBa Biobank</td><td></td><td>サービス料金</td></tr><tr><td>Exo-spin mini-HD カラム</td><td>細胞誘導システム</td><td>EX05</td><td></td></tr><tr><td>フェザー S35 ミクロトームブレード</td><td>フェザー</td><td>43037</td><td></td></tr><tr><td>フィルトロプール S 0.2 &マイクロ;mシリンジ</td><td>フィルターSarstedt</td><td>83.1826.001</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>F-6057</td><td></td></tr><tr><td>オンコスタチンMヒューマン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>O9635-10UG</td>とフルオロシールド <td>0.1 & マイクロの最終濃度にストック溶液を準備します。g/&micro;L PBS-0.1% BSA</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td>で希釈 <td>Sigma-Aldrich</td><td>8.18715.1000</td><td>PBS で 4% で調製し、4 °Cで保存。C</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン溶液 100x</td><td>Biowest</td><td>L0022</td><td></td></tr><tr><td>PKH26 一般細胞膜標識用赤色蛍光セルリンカーキット</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>MINI26</td><td>PKH26 および Dliuent C 付属</td></tr><tr><td>クエン酸ナトリウム二水和物</td><td>Scharlab</td><td>SO019911000</td><td></td></tr><tr><td>Superfrost Plus 顕微鏡スライド</td><td>Thermo Scientific</td><td>J1800AMNZ</td><td></td></tr><tr><td>TNF&アルファ;</td><td>R&Dシステム</td><td>210-TA-005</td>最終<td>濃度0.01&microのストック溶液を準備します。g/&micro;PBS-0.1% BSA</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>Milli-Q 水</td></tr><tr><td>Xylene</td><td>Scharlab</td><td>XI0050005P</td><td></td></tr><tr><td>EquipmentCentrifuge</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>5430 R</td><td>Eppendorf</td><td>5428000210</td><td>F-45-48-11 ローター</td></tr><tr><td>NanoSight NS300</td><td>マルバーン</td><td>NS300</td><td>デバイス&ラムダ;= 532 nmおよびカメラsCMOS</td></tr><tr><td>Shandon Finesse 325マニュアルミクロトーム</td><td>Thermo Scientific&tradeに</td>埋め込まれたレーザー。<td></td><td></td>A78100101</tr><tr><td>TCS-SPE 共焦点顕微鏡</td><td>ライカマイクロシステムズ</td><td>5200000271</td><td></td></tr></tbody></table>

軟骨外植木における移動と取り込みモニタリングのための細胞外小胞の標識

Labeling of Extracellular Vesicles for Monitoring Migration and Uptake in Cartilage Explants

細胞外小胞(EV)は、血小板リセート(PL)などの細胞源に由来する貨物による無細胞治療としての可能性を証明するために、異なる研究で使用されています。治療として使用すると、EVは標的細胞に入り、これらからの応答に影響を与える見込みです。本研究では、変形性関節症(OA)の無細胞治療としてPL由来のEVが研究されている。したがって、EVにラベルを付け、軟骨の外植木への取り込みをテストする方法を設定しました。PL誘導EVは、親油性色素PKH26で標識され、カラムを通して2回洗浄され、ナノ粒子追跡分析(NTA)による粒子定量後5時間 のインビトロ 炎症駆動OAモデルで試験される。毎時、軟骨の外植は固定され、パラフィングされ、6μmのセクションに切断されてスライドに取り付けられ、共焦点顕微鏡で観察されます。これにより、この期間中にEVが標的細胞(軟骨細胞)に入るかどうかの検証と、その直接的な効果の分析が可能になります。

図 1に、EV ラベリングと取り込み監視の概略図の概要を示します。 表1 においてNTAによって検出された粒子濃度およびEVサイズは、カラムで標識した後に2回行った精製工程によるプロセス中にEV濃度が低下することを示す。しかし、得られる量は、処理に使用する粒子数の最適な範囲にある。この粒子濃度は、変形性関節症軟骨外植の治療に使用されるPKH-PL-EVおよび制御の体積を計算するために使用されます。
軟骨外植は、EVまたは対照群で処理されると、異なる期間(0、1、2、3、4、および5時間)に固定されます。各グループは、パラフィン化、スライス、DAPIを含む取り付け媒体と共焦点顕微鏡のために調製されます。各時点の各グループの代表的な画像を 図2に示し、EVが軟骨細胞に到達し、時間の経過とともにそれらを入力するまで、EVがどのように組織に入るかを示しています。
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ここでは、変形性関節症のモデルとして使用される軟骨外植の移動および取り込みをモニタリングするために、血小板リセート由来の細胞外小胞にラベルを付けるプロトコルを提示する。

Extracellular vesicles (EVs) are used in different studies to prove their potential as a cell-free treatment due to their cargo derived from their ...

このシンプルなプロトコルは、1つのラベルを持って、共焦点顕微鏡を介してそれらを監視することができます。例えば、EVイメージングは、治療薬で使用する場合のEV分布の評価に役立つ可能性があります。この技術により、EV移動と軟骨外植の取り込みが、特別な機能を持たない共焦点顕微鏡で容易にモニタリングできます。同じプロトコルを、in vitroまたはin vivo実験用のEVに使用できます。列が事前に用意されていること、および EV の初期量が、精製工程で粒子の約 10% が失われることを考慮して、目的の最終粒子濃度に達するのに十分であることを確認してください。細胞外小胞、またはEV、サンプルおよびコントロールを濃縮することから始めます。EVサンプルの開始容積に応じて、サンプルを15ミリリットルまたは500マイクロリットルの濃縮チューブに入れます。ほとんど乾燥したサンプルが得られるまで、製造業者の指示に従ってチューブを遠心分離します。濃縮されたEVサンプルを200マイクロリットル、対照群に100マイクロリットルの希釈Cを再中断し、新しい1.5ミリリットル遠心管に移します。EVサンプルをそれぞれ100マイクロリットルの2つのアリコートに分ける。染料でアリコートの1つをマークし、治療としてそれを使用します。もう一方は無印のままにして、EVサンプルのように処理し、ナノ粒子追跡解析によりEV濃度を定量化する。2x色素溶液を調製し、希釈C中のPKH26溶液の濃度が8マイクロモルになるようにした。1ミリモルPKH26リンカーの1マイクロリットルを、サンプル中の希釈剤Cの125マイクロリットルにつき混合します。サンプルに追加するために必要なボリュームを 1:1 の比率で準備します。PKH血小板溶解物由来のEVと対照試料に2x色素溶液を1:1比で添加し、1x色素濃度、および4マイクロモルPKH26濃度を達成します。同じ量のPBSをNTA血小板溶地由来EVサンプルに加えます。室温で5分間インキュベートします。5%ウシ血清アルブミン-PBS溶液を1:1の比率でサンプルに加え、最終体積が約400マイクロリットルであることを確認します。ラベル付きの EV と、非バウンド色素と非特異的な色素の相互作用を列と分離します。カラムからキャップを取り出し、PKH血小板溶菌由来のEV、NTA血小板溶菌由来のEVを400マイクロリットル加えるか、溶出した液体をすべて制御して廃棄します。次の手順に進む前に、サンプルが列に完全に入るのを待ちます。600マイクロリットルのPBSを加え、溶出した液体をすべて捨てます。次の手順に進む前に、PBS が列に完全に入るのを待ちます。PBSの600マイクロリットルを追加し、1.5ミリリットル遠心管に600マイクロリットルの分画を収集します。新しい列の場合は、プロトコルの最初に言及されているサンプルの濃度に関する手順を繰り返します。600マイクロリットルの以前に溶出したEVをカラムに加え、溶出したボリュームを捨てます。その後、PBSの400マイクロリットルを追加し、すべての溶出ボリュームを捨てます。600マイクロリットルのPBSをカラムに加え、1.5ミリリットルの遠心管に600マイクロリットルの分画を集めます。PBSで軟骨を2回洗浄し、無菌条件下で直径3ミリの生検パンチを使用して切除します。エクスプラントをDMEM-F12培地付きの96ウェル培養プレートに入れ、摂氏37度、5%CO2、湿度80%で1%ペニシリンレンストレプトマイシンを補います。炎症駆動型OAモデルを確立するには、オンコスタチンMの1ミリリットル当たり10ナノグラムと腫瘍壊死因子アルファの1ミリリットル当たり2ナノグラムで細胞培養培地を補う。PKH血小板ライセート由来のEVのウェル当たり10〜9番目の粒子で外植を治療し、またはコントロールして、オンコスタチンMおよび腫瘍壊死因子αを添加した細胞培養培地で治療する。軟骨外植を含む96ウェル細胞培養プレートから培地を取り除きます。200マイクロリットルの細胞培養培地を、原稿に記載した各々に加える。1時間ごとにインビトロアッセイをゼロから5時間に停止します。200マイクロリットルのPBSで軟骨外植を含む細胞培養井戸を2回洗浄する。4%パラホルムアルデヒドの100マイクロリットルを組織に加え、摂氏4度で3時間固定します。PFAを取り出し、PBSを100マイクロリットル加え、固定組織を摂氏4度で保存し、48時間以内にサンプルを処理します。異なる時点で撮影された画像は、EVが軟骨細胞に到達するまで組織に入り、時間の経過とともに軟骨細胞に入る様子を示しています。ラベル付きのEVは、1時間のインキュベーションの後、既に軟骨細胞の周りに局在していた。EV の初期ボリュームが、目的の最終パーティクル濃度に達するのに十分であることを確認します。覚えておかなもう1つの重要なことは、次の24時間以内にラベル付きのEVを使用することです。24時間以内に使用しないと、蛍光の低下が起こることがある。この技術は、研究者がEVイメージングを改善し、生物学や治療のEVを研究するのに役立ちます。

labeling-extracellular-vesicles-for-monitoring-migration-uptake

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

プレゼンテーションの目的は、MRイメージングで可視化することができます軟骨欠損におけるマトリックス関連する幹細胞移植を、生成するために高度に再現可能な方法を示すことです。幹細胞は、アガロースと混合のFDA承認されたFerumoxides、、軟骨欠損に移植し、7T...

軟骨欠損のヒト間葉系幹細胞を標識Ferumoxidesの注入

このビデオでは、細胞外小胞またはEVの細胞内取り込みを視覚化し定量化するアッセイを実演します。このアッセイは、共焦点顕微鏡を用いた3D蛍光イメージングを利用し、細胞表面に付着したEVと内在するEVを区別することができます。...

細胞外小胞取り込みアッセイ:3D蛍光イメージング技術を使用して細胞外小胞の細胞取り込みを可視化および定量化する方法

このプロトコルでは、効率的に遠赤色蛍光 (IA) の関節内注入によるラット膝変形性関節症 (KOA) モデルで、セルの永続性とひと脂肪由来間葉系幹細胞 (haMSCs)...

生体内でひと脂肪由来間葉系幹細胞が脂溶性膜の蛍光色素をラット膝関節変形性関節症モデルでの追跡

このプロトコルでは蛍光を用いたナノ粒子追跡によるひと全血から細胞小胞の迅速な分離と特定のマーカーの特性の完全なワークフローを説明します。結果が発表される高レベルの再現性を示し細胞培養上清に調整することができます。...

ナノ粒子追跡によるひと血中の細胞小胞単一の急速な蛍光特性評価

ここでは、3Dバイオリアクターを用いて滑液間葉系幹細胞から多数のGMPグレードのエキソソームを作製するためのプロトコールを提示する。...

3次元バイオリアクター培養による滑液間葉系幹細胞由来エクソソームの大規模調製

マクロファージ由来の小細胞外小胞にPKH色素を標識し、髄腔内送達後の インビトロ...

蛍光標識小細胞小胞の取り込み と 脊髄における

細胞外小胞(EV)は細胞生物学と細胞間コミュニケーションに貢献します。細胞の取り込みEVを可視化・定量化するための実用的なアッセイが必要です。現在のプロトコルは、ナノ濾過ベースのマイクロ流体デバイスによるEV単離に続く共焦点顕微鏡 による 3次元蛍光イメージングを利用してEV取り込みアッセイを提案している。...

共焦点顕微鏡イメージング解析による細胞外小胞取り込みアッセイ

本プロトコルは、末梢血および固体組織から細胞外小胞を抽出し、その後表面抗原およびタンパク質カーゴのプロファイリングを行う方法を記載している。...

血漿および固体組織からのトレーサブルおよび機能化された細胞外小胞の単離と分析

本プロトコルは、培養ヒト間葉系幹細胞から代表的なEV(エキソソームおよびマイクロベシクル)を単離および特性評価するための差動遠心分離について説明しています。これらのEVのさらなる用途についても、本稿で解説しています。...

培養ヒト間葉系幹細胞からの細胞外小胞の単離、特性評価、および治療応用

このプロトコルは、間葉系間質細胞によって放出される細胞外小胞(EV)の選別について詳細に説明しています。特に、機器の設定と選別条件の最適化に焦点を当てています。目標は、細胞外小胞の特性を維持しながら選別することです。...

細胞外小胞単離のための適切なソーティングの設定

学ぶ細胞外小胞の標識法と軟骨外植木における移動・取り込みモニタリング技術。共焦点顕微鏡を用いて変形性関節症治療におけるEV分布を可視化し、研究者の治療評価に貢献します。

軟骨外植木における移動と取り込みモニタリングのための細胞外小胞の標識

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