Name: インビボ 脾臓T細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-09-23T14:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 2 s
Description: 学ぶ 腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング法。フローサイトメトリーを用いてインビボで脾臓T細胞応答を評価し、オキサリプラチン処理による免疫原性EVの同定とがん免疫療法への応用可能性を探索する。

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この研究は、ドイツ研究財団(DFG、ドイツ研究財団)-Projektnummer 360372040 - SFB 1335およびProjektnummer 395357507 - SFB 1371(H.P.へ)、DKMS Foundation for Giving Life(H.P.)からのMechtild Harf研究助成金、Melanoma Research Allianceによる若手研究者賞(S.H.へ)、Else-Kröner-Fresenius-Stiftung(F.S.への奨学金)の支援を受けました。 ミュンヘン工科大学によるシードファンド(S.H.へ)とヴィルヘルム・サンダー財団による研究助成金(2021.041.1、S.H.へ)。H. P. は EMBO Young Investigator Program の支援を受けています。
著者の貢献:
F.S.、H.P.、S.H.は研究を設計し、分析し、その結果を解釈しました。F.S.とS.H.が原稿を書いた。H.P.とS.H.は研究を指導した。

実験の開始時に、マウスは少なくとも6週齢であり、特定の病原体を含まない条件下で維持された。現在の議定書は、制度的倫理基準および一般的な地方規則に準拠しています。動物実験は、地元の規制当局(ドイツ、ミュンヘンのRegierung von Oberbayern)によって承認されました。これらの研究では、性に関連するバイアスの可能性は調査されなかった。
1. 化学療法暴露後の腫瘍細胞由来のEVの生成と単離
<ol><li>オボアルブミン(B16-OVA)を発現するマウスB16メラノーマ細胞を、FCS(10% v/v)、ペニシリン(100 Units/mL)、ストレプトマイシン(100 μg/mL)を添加したDMEM(4 mM L-グルタミンおよび4.5 g/L D-グルコースを含む)中で、37°Cで培養し、細胞が安定して約90%コンフルエンになるまで培養した。 メモ: プロトコルのこのセクションは、細胞培養フードを使用して完全に滅菌条件下で実行してください。他のがん実体の分析のために、強力な抗原を発現する細胞株は、特異的 なエクスビボ 抗原再刺激を可能にするため、抗原特異的T細胞応答を評価するのに好ましい。</li>
	<li>EV生成に必要な細胞培養培地を調製するには、FCS内のウシEVを100,000 x g で4°Cで24時間超遠心分離して枯渇させ、ペレットを廃棄する。あるいは、動物のEVが少ない市販の製剤を事前に選択してください。</li>
	<li>B16-OVA細胞を回収し、PBSで2回洗浄した後、EV枯渇培地に400,000細胞/mLの濃度で播種する。 注: 細胞が過剰増殖しないように、調査中の細胞株の増殖動態に細胞濃度を適合させます。</li>
	<li>B16-OVA細胞を1mLあたり30μgのオキサリプラチンを加えて処理し、37°Cで24時間インキュベートする。 制御条件は未処理のままにします。遺伝毒性物質の最初の使用時に、トリパンブルー排除などの細胞生存率アッセイを使用して所望の細胞傷害性有効性を滴定する18。 注:このアッセイは、化学療法剤以外の他の免疫調節物質または電離放射線で処理された細胞培養物で生成されたEVを評価することもできる。 警告:オキサリプラチンは、皮膚および重度の眼の刺激を引き起こし、アレルギー性皮膚反応および呼吸刺激を引き起こす可能性がある。オキサリプラチンは癌を引き起こす疑いがある。予防措置として、適切な手袋、ゴーグル、マスク、衣類などの個人用保護具を清潔にしてから再利用してください。吸入を避け、取り扱い後はよく手を洗ってください。環境への放出を避け、一般的な規制に従ってオキサリプラチンを処分してください。安全データシートから詳細情報を入手してください。</li>
	<li>細胞培養上清を回収する。まず400 x gで4°Cで5分間遠心分離し、次に2,000 x gで4°Cで30分間遠心分離し、毎回ペレットを廃棄する。最後に、220nmのPVDF膜を通して濾過する。各ステップに新しいチューブを使用して、細胞破片を除去します。 注:この段階では、EV含有上清は、プロトコルを再開する前に4°Cで1日保存することができます。ただし、記載されたスケジュールに従って直ちにEV精製を行うことを強くお勧めします。</li>
	<li>1 mLの上清と0.5 mLの特定の市販のエキソソーム単離試薬( 材料表を参照)をV字型の1.5 mLチューブで混合する。徹底的にピペットを上下または渦巻きにして、均一な溶液を作成します。4°Cで一晩インキュベートする。</li>
	<li>10,000 x g で4°Cで60分間遠心分離する。 上清を慎重に捨てる。ペーパータオルの上で1.5 mLチューブを逆さまに叩き、底部のEVペレットに触れることなく、細かい先端を持つピペットを通して吸引することによって、残りの滴を取り除きます。<ol>
<li>EVペレットの制御不能な希釈を防ぐために、すべての液体を完全に除去します。また、ペレットが乾燥するのを防ぐために、これらのタスクをすばやく実行してください。</li>
	</ol></li>
	<li>チューブの壁から先端でペレットを傷つけることなく上下にピペッティングして、EVを冷たいPBSに再懸濁します。次に、サスペンションを最初のチューブから最後のチューブに段階的に移してEVをプールします。 注: 5 μL にチューブ数を掛けた容量の PBS を使用してください。最終懸濁液の5 μLは、化学療法下または定常状態で400,000細胞から放出された単離されたEVを含む。</li>
	<li>好ましくは、EVを直接使用する。これが不可能な場合は、EV懸濁液を-80°Cでシリコン処理容器に塗布するまで最大28日間保管してください。 注:ここおよびいくつかの他の出版物に記載されているEVは、その期間に-80°Cで保存してもそれぞれの生物学的機能を失うことはありません19。</li>
	<li>MISEV2018ガイドラインに従ってEV分離株を定量化し、特性評価する20。 注:定量化の可能な方法には、ナノ粒子追跡分析(NTA)21 およびEVの膜結合タンパク質の検出22が含まれる。EVをさらに特徴付けるための可能なアプローチには、電子顕微鏡23 およびウェスタンブロット20が含まれる。</li>
</ol>2. EVによるマウスの免疫
<ol><li>処理細胞、未処理細胞、およびPBS(ビヒクル)に由来するEVをそれぞれ投与された治療群を含むC57BL/6マウス(または腫瘍細胞株に対応する他の同系マウス)による in vivo 実験を計画する。 注:生理学的老化が免疫応答を減少させるのを防ぐために、好ましくは6〜8週齢のマウスを使用してください24。</li>
	<li>5 μLのEV懸濁液と、それぞれの治療群内の各マウスの55 μLの冷PBSを混合し、4.0 x 105 B16-OVA細胞から単離したEVで免疫する。 注:この量のEVは、ナノ粒子追跡分析によって測定された約2 x 109 個の粒子に相当する(データは示されていない)。アジュバントと混合されたOVAタンパク質(例えば、LPS)は、強力なワクチン陽性対照として適用することができる。<ol>
<li>シリンジ(針サイズ26〜30G)にそれぞれ60μLの希釈EVまたはPBSを充填し、直ちに氷上に置く。 注:プロトコルでは、注入されたEVの量は、腫瘍細胞のEV生合成に対するオキサリプラチンの定性的および定量的効果の両方を実験的に考慮するために、EV放出腫瘍細胞の数に正規化される。一部の読者にとって、生産されたEVの特定の濃度への正規化は、科学的質問に応じて実験設定により適している可能性があります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>EVまたはPBSをマウスの大腿部の内側側面に皮下に接種し、7日後に免疫を繰り返す。最初の処置の14日後、マウスを屠殺し、例えば、子宮頸部脱臼によって、免疫応答を分析する。 注:代替皮下注射経路は、地元の基準に従って使用することができる。</li>
</ol>3. 脾臓T細胞のフローサイトメトリー解析
<ol><li>RPMI-1640にFCS(10% v/v)、ペニシリン(100 Units/mL)、ストレプトマイシン(100 μg/mL)、L-グルタミン(2 mM)、およびβ-メルカプトエタノール(50 μM)を補充し、完全なRPMI(cRPMI)を準備して冷却する。</li>
	<li>開いた腹腔から脾臓を切除する。湿らせた100μmの細胞ストレーナーとシリンジのプラスチックプランジャーで脾臓をマッシュアップし、脾臓細胞を5〜10mLのcRPMIで50mLチューブに流します。400 x g で4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てる。 注: 可能な限り、細胞を氷の上に置きます。脾臓免疫応答ではなく局所的な免疫応答を分析するために、同じプロトコルに従って、排液性膝窩および鼠径リンパ節を切除する。この場合、赤血球の溶解のための次のステップをスキップする。</li>
	<li>細胞懸濁液から赤血球を除去するために、ペレットを2mLの赤血球溶解緩衝液( 材料表を参照)で再懸濁し、室温で5分間インキュベートする。その後、cRPMIを加えて反応を停止させた。400 x g で4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てる。</li>
	<li>播種のために、細胞ペレットをcRPMIに再懸濁し、U字型の底部を有する96ウェルプレートを使用して、200,000細胞の3連を200μLのcRPMIと共に各ウェルに配置するように細胞をカウントする。37°Cで48時間インキュベートする。 注:活性化T細胞の抗原特異性に対処するには、それぞれ1μg/mLの可溶性オボアルブミン(または調査中の細胞株に対応する別の腫瘍抗原)を添加するか、追加の刺激を受けずに放置してください。完全長オボアルブミンの代わりに免疫優性ペプチドエピトープSIINFEKLを添加すると、より短い潜伏期間が可能になる。フローサイトメトリー以外にも、48時間のインキュベーション後のマウスの血清および細胞培養上清を、種々のサイトカインについて分析することができる。</li>
	<li>48時間後、とりわけゴルジ体媒介性タンパク質分泌を遮断することにより細胞内IFN-γ染色を増強するために、ブレフェルジンA(5ng/mL)、PMA(20ng/mL)、およびイオノマイシン(1μg/mL)を細胞培養物に加える。37°Cで4時間インキュベートする。</li>
	<li>表面バイオマーカーを染色する前に、脾細胞をV字型底部を有する96ウェルプレートに移し、PBSで2回洗浄する。次いで、局所的に入手可能なフローサイトメーターと適合性の蛍光抗体を、表面バイオマーカー、CD3、CD8、およびCD4( 材料表を参照)に対して向け、1:400に希釈し、固定可能な生存率色素を加え、PBSで1:1,000に希釈した。ペレット状の脾細胞を染色液に再懸濁し、4°Cで30分間インキュベートし、光から保護した。</li>
	<li>脾細胞の固定および透過処理のために、FACS緩衝液(PBSプラス3% v/v FCS)で2回洗浄し、次いで1ウェルあたり100μLの固定/透過流化緩衝液( 材料表を参照)に再懸濁する。4°Cで30分間インキュベートし、光から保護した。</li>
	<li>細胞内IFN-γの染色のために、脾細胞を固定/透過処理バッファーで洗浄し、IFN-γに対する蛍光抗体で再懸濁し、バッファーで1:200に希釈する。光から保護し、4°Cで少なくとも1時間(最大12時間まで)インキュベートする。</li>
	<li>フローサイトメトリーでサンプルを測定する前に、脾細胞を固定/透過処理バッファーで2回洗浄し、FACSバッファーに再懸濁してください。 図2に示したゲーティング戦略に従って細胞傷害性T細胞の活性化を分析する。<ol>
<li>まず、単一細胞を検出するために、FSC-HをFSC-Aに対してブロットする。次いで、リンパ球系細胞を検出するために、FSC-Aに対してSSCをブロットする。続いて、生きたCD3+、CD4-、CD8+細胞を選択し、それらのIFN-γ産生サブセットを決定して、脾臓における細胞傷害性T細胞の活性化を定量化する。 注: IFN-γ に対して標的とする蛍光色素を除くすべての蛍光色素を含む蛍光マイナス 1 (FMO) 染色をネガティブ テクニカル コントロールとして含めます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Kroemer, G., Galluzzi, L., Kepp, O., Zitvogel, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunogenic+cell+death+in+cancer+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Immunogenic cell death in cancer therapy.</a> Annual Review of Immunology. 31, 51-72 (2013).</li>
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</ol>

著者らは、利益相反はないと宣言している。

このプロトコルは、化学療法誘発ストレス下での黒色腫細胞に由来するEVの免疫学的 in vivo 評価を提供し、様々な治療下で様々な癌から放出されるEVに適応する。例えば、オキサリプラチン処理したB16-OVA細胞に由来するEVでマウスを免疫すると、脾臓内のIFN-γ産生CD8+ T細胞が拡張され、オボアルブミンとの エクスビボ インキュベーションによってさらに刺激され、腫瘍特異的免疫応答を示す。したがって、このプロトコールによるスクリーニングによる免疫原性EVの検出は、従来のがん治療法のより包括的な理解を容易にし、がん免疫学におけるEVの役割に焦点を当てた調査を可能にする。
注目すべきは、EVを使った実験にはいくつかの特別な考慮事項が必要であることです。このプロトコールでは、EVは24時間以内に放出される腫瘍細胞の数に半定量的に正規化される。このアプローチは、放出されたEVの質または量の変化から生じるかどうかにかかわらず、増強された免疫原性を同定する目的を反映している。したがって、再現性のある インビボの結果</em...

免疫系は、免疫チェックポイント阻害によって誘発された場合および従来の癌治療の有効性の両方において、癌との闘いにおいて極めて重要な役割を果たしている。化学療法剤オキサリプラチンやドキソルビシンなどの遺伝毒性療法、または電離放射線治療に屈した腫瘍細胞は、適応抗腫瘍免疫応答を開始する可能性のある抗原および危険関連分子パターン(DAMP)を放出する可能性があります1。免疫原性細胞死の文脈で最も顕著なDAMPには、走化性ATPなどのfind-meシグナル、抗原提示細胞による腫瘍細胞の取り込みを促進するカレチクリンの曝露などのeat-meシグナル、およびパターン認識受容体を活性化し、それによって腫瘍抗原の交差提示を増強するHMGB1の放出が含まれる2。さらに、腫瘍由来の免疫原性核酸または他の刺激を介して誘導されるI型インターフェロン(IFN-I)は、樹状細胞によって感知され、腫瘍特異的細胞傷害性T細胞を効果的にプライミングすることを可能にする3,4。臨床的には、腫瘍に浸潤する活性化および増殖するCD8+ T細胞は、多くの癌患者において生存期間を延長するための独立した予後因子を提供する。このような活性化T細胞から放出されるIFN-γは、がん細胞に対する直接的な抗増殖作用を媒介し、Th1分極および細胞傷害性T細胞分化を駆動し、それによってがんに対する効果的な免疫サーベイランスに寄与する5,6。オキサリプラチンは、がんに対するこのような適応免疫応答を媒介する、正真正銘の免疫原性細胞死誘導物質です7。しかし、治療誘発ストレス下で腫瘍細胞によって放出される多数の初期免疫原性シグナルは、まだ完全に明らかにされていない。がん免疫療法の著しい進歩にもかかわらず、その利益をより大きな患者に拡大することは依然として課題である。T細胞活性化を開始する免疫原性シグナルのより詳細な理解は、新規治療法の開発を導く可能性がある。
細胞外小胞(EV)として知られる膜密閉構造の不均一なグループは、細胞間通信デバイスとして機能するようである。事実上すべての細胞型から放出されるEVは、機能的なタンパク質、RNA、DNA、およびその他の分子をレシピエント細胞に運んだり、細胞表面の受容体に結合するだけで細胞の機能状態を変化させる可能性があります。それらの生物学的に活性な貨物は、生成セル8の種類および機能状態によって大きく変化する。がん免疫学では、腫瘍細胞から放出されるEVは、最終的に浸潤増殖を促進し、転移ニッチをプリフォームし9、免疫応答を抑制するため、免疫療法の敵対的とみなされてきました10。対照的に、いくつかの研究では、EVが腫瘍抗原を樹状細胞に転写して効果的なクロスプレゼンテーションを行うことができることが示されています11,12。EVは、治療誘発ストレス下で出現すると免疫刺激核酸を提供し、抗腫瘍免疫応答を促進する可能性があります13,14。腫瘍微小環境におけるこのようなRNAおよびDNA先天性免疫リガンドの感知は、チェックポイント遮断に対する応答性を有意に調節することが最近示されている15、16、17。したがって、異なる治療誘発ストレス下で腫瘍細胞によって放出されるEVの免疫原性の役割は、さらに解明される必要がある。EVは、まだ成長途上の研究分野であるため、手法の標準化はまだ進んでいます。したがって、EVとがん免疫学の相互作用に関する研究再現性を向上させるためには、知識の共有が不可欠です。これを念頭に置いて、この原稿は、インビボでの腫瘍由来EVの免疫原性効果を評価するための簡単なプロトコルを記述している。
この評価は、腫瘍由来のEVを生成し、レシピエントマウスにそれらのEVを免疫し、フローサイトメトリー を介して 脾臓T細胞を分析することによって行われる。EV生成は、理想的には、マウス腫瘍細胞を高純度のEVフリー細胞培養培地に播種することによって行われる。細胞を化学療法などの特定の細胞ストレス刺激で処理し、それぞれの腫瘍由来EVのベースライン免疫原性に対する治療誘発EVの効果を比較する。EVの単離は、 インビボでの 適用性および局所的な利用可能性に応じて選択されるべきである様々な技術によって十分に実施され得る。以下のプロトコールは、EV精製のための市販キットを用いた沈殿ベースのアッセイを記載する。マウスは、これらのEVで2回免疫される。最初の注射から14日後、T細胞を脾臓から抽出し、フローサイトメトリー を介して IFN-γ産生について分析し、全身性免疫応答を評価した。これにより、異なる治療レジメンの下で出現する腫瘍由来EVが抗腫瘍T細胞応答を誘導する可能性が、比較的容易、迅速、かつ高い妥当性で評価される13。従って、本方法は、種々の条件下での癌細胞由来のEVの免疫学的スクリーニングに適している。

<table><tbody><tr><td>抗CD3 FITC</td><td>Biolegend</td><td>100204</td><td>クローン17A2</td></tr><tr><td>抗CD4 PacBlue</td><td>Biolegend</td><td>100428</td><td>クローンGK1.5</td></tr><tr><td>抗CD8 APC</td><td>Biolegend</td><td>100712</td><td>Clone 53-6.7</td></tr><tr><td>Anti-IFN&gamma;PE</td><td>eBioscience</td><td>RM90022</td><td>クローン XMG1.2</td></tr><tr><td>ブレフェルジン A</td><td>バイオレジェンド</td><td>420601</td><td>ブレフェルジン A 溶液 (1,000x)</td></tr><tr><td>Cell Strainer, 100 & micro;m</td><td>Greiner</td><td>542000</td><td>EASYstrainer 100 & マイクロ;m</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D6429</td><td>D-グルコース (4.5 g/L) と L-グルタミン (4 mM) を配合したダルベッコ改変イーグルス培地</td></tr><tr><td>FBS Good Forte</td><td>PAN BIOTECH</td><td>P40-47500</td><td>子牛胎児血清 (FCS)</td></tr><tr><td>固定生存率色素 eFluor 506</td><td>eBioscience, Thermo Fischer Scientific</td><td>65-0866-14</td><td></td></tr><tr><td>固定/透過化濃縮液</td><td>eBioscience</td><td>00-5123-43</td><td>固定/透過濃縮液 (10x)</td></tr><tr><td>固定/透過化希釈剤</td><td>eBioscience</td><td>00-5223-56</td><td></td></tr><tr><td>Ionomycin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>407952</td><td>Streptomyces conglobatus - CAS 56092-82-1, &ge; 97% (HPLC)</td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>Gibco</td><td>25030-032</td><td>L-グルタミン (200 mM)</td></tr><tr><td>オボアルブミン</td><td>InvivoGen</td><td>vac-pova</td><td>オボアルブミンと 1 EU/mg エンドトキシン - CAS 9006-59-1</td></tr><tr>オ<td>キサリプラチン</td><td>MRI 病院</td><td></td><td></td>の薬局</tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td>塩化カルシウムおよび塩化マグネシウムを含まないリン酸緩衝生理食塩水</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン</td><td>Gibco</td><td>1514-122</td><td>ペニシリン (10,000 U/mL) とストレプトマイシン (10,000 ug/mL) の混合物</td></tr><tr><td>PMA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1585</td><td>ホルボール 12-ミリスチン酸 13-アセテート、&ge; 99% (HPLC)</td></tr><tr><td>PVDF フィルター、0,22 &micro;m、シリンジ用</td><td>Merck Millipore</td><td>SLGV033RS</td><td>Millex-GVフィルターユニット0.22 &micro;m デュラポア PVDF 膜</td></tr><tr><td>赤血球溶解バッファー</td><td>Invitrogen</td><td>00-4333-57</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>11875</td><td>ロズウェルパークメモリアルインスティテュート 1640 培地 D-グルコース (2.00 g/L) および L-グルタミン (300 mg/L)、HEPES</td></tr><tr><td>シリンジなし、26 G</td><td>BD Biosciences</td><td>305501</td><td>1 mL Sub-Q シリンジ、針付き (0.45 mm x 12.7 mm)</td></tr><tr><td>トータルエキソソーム単離試薬</td><td>Invitrogen</td><td>4478359</td><td>細胞培養培地からの単離</td></tr><tr><td>&beta;-メルカプトエタノール</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>31350</td><td>&ベータ;-メルカプトエタノール (50 mM)</td></tr></tbody></table>

インビボ 脾臓t細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング

In Vivo Immunogenicity Screening of Tumor-Derived Extracellular Vesicles by Flow Cytometry of Splenic T Cells

化学療法または照射によって引き起こされる腫瘍の免疫原性細胞死は、危険に関連する分子パターンを放出し、I型インターフェロンの産生を誘導することによって、腫瘍特異的T細胞応答を誘発し得る。チェックポイント阻害を含む免疫療法は、治療効果を発現させるために、主に既存の腫瘍特異的T細胞に依存している。したがって、免疫原性細胞死を固有の抗癌ワクチンとして利用する相乗的な治療アプローチは、それらの応答性を改善し得る。しかし、治療誘発ストレス下で細胞によって放出される免疫原性因子のスペクトルは、特に細胞外小胞(EV)に関して、不完全な特徴のままである。EVは、事実上すべての細胞から放出されるナノスケールの膜状粒子であり、細胞間通信を促進すると考えられており、癌では腫瘍抗原に対するクロスプライミングを媒介することが示されている。様々な条件下で腫瘍に由来するEVの免疫原性効果を評価するために、適応性、拡張性、および有効な方法が求められている。したがって、本明細書では、EVsの インビボ 免疫原性を評価するための比較的容易で堅牢なアプローチが提示される。このプロトコールは、マウスをEVで in vivo 免疫した後の脾臓T細胞のフローサイトメトリー分析に基づいており、治療または定常状態条件下での腫瘍細胞培養物からの沈殿ベースのアッセイによって単離された。例えば、この研究は、B16-OVAマウスメラノーマ細胞のオキサリプラチン曝露が、腫瘍反応性細胞傷害性T細胞の活性化を媒介することができる免疫原性EVの放出をもたらしたことを示している。したがって、 in vivo 免疫およびフローサイトメトリーによるEVのスクリーニングは、免疫原性EVが出現し得る条件を特定する。免疫原性EV放出の条件を同定することは、がんに対するEVの治療効果を試験し、根底にある分子メカニズムを探求し、最終的にがん免疫学におけるEVの役割に関する新しい洞察を明らかにするための不可欠な前提条件を提供する。

このプロトコルは、腫瘍由来EVの免疫原性の簡単で再現性の高い評価を容易にすることを意図している。これにより、マウスは、モデル抗原であるニワトリオボアルブミン(OVA)を発現する腫瘍細胞の in vitro 培養に由来するEVsを接種する。その後の免疫応答は、フローサイトメトリー を介して 脾臓T細胞において分析される。
図 1 に、プロトコル全体の実際の手順の概要を示します。この研究は、免疫原性細胞死、交差提示、およびEV誘導抗腫瘍免疫に焦点を当てているため、このプロトコルはCD8+細胞傷害性T細胞の機能に制限されている。図2に示されているように、細胞は単一細胞、リンパ球サブセット(サイズおよび粒度別)、生存細胞(生命/死マーカーを除く)、およびCD3+ CD4-CD8+細胞傷害性T細胞としてゲーティングされた。IFN-γの細胞内蓄積を活性化のための代理マーカーと...

この原稿では、フローサイトメトリーを用いて腫瘍細胞由来細胞外小胞(EV)の in vivo 免疫原性を評価する方法を説明しています。治療誘発免疫原性細胞死を受けている腫瘍に由来するEVは、腫瘍免疫サーベイランスにおいて特に関連しているようである。このプロトコールは、オキサリプラチン誘発免疫刺激性腫瘍EVの評価を例示するが、様々な設定に適合させることができる。

インビボ 脾臓T細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング

Immunogenic cell death of tumors, caused by chemotherapy or irradiation, can trigger tumor-specific T cell responses by releasing danger-associated ...

このビデオは、フローサイトメトリーを使用して、腫瘍由来の細胞外小胞(EV)のin vivo免疫原性を評価する方法を示しています。本明細書に記載されるスクリーニング方法は、比較的容易に実施でき、様々な設定に適合させることができる。癌において、特に翻訳的関連性の免疫原性細胞外小胞放出の条件を同定する。そのため、自家製EVはパーソナライズされた抗がん治療として使用される可能性があります。手順の最初の部分を実演するのは、私の研究室の技術助手であるTatiana Nedelkoです。細胞外小胞またはEVに必要な細胞培養培地の調製を開始するには、FCS培地中のウシEVを100,000倍gで摂氏4度で24時間超遠心分離することによって枯渇させる。遠心分離後にペレットを捨てる。培養物からオボアルブミンを発現するマウスB16メラノーマ細胞、またはB16-OVA細胞を回収し、PBSで細胞を2回洗浄する。次いで、EV枯渇培地中に1ミリリットル当たり400,000細胞の濃度で細胞を播種する。次に、B16-OVA細胞を1ミリリットルあたり30マイクログラムのオキサリプラチンで処理し、未処理の対照サンプルと共に摂氏37度で24時間インキュベートする。24時間後、上清を回収し、摂氏4度で5分間、400倍gで遠心分離する。ペレットを捨てる前に、摂氏4度で2,000倍gで30分間再度遠心分離する。ペレットを廃棄した後、上清を220ナノメートルPVDFメンブレンフィルターを通して新鮮なチューブにろ過する。次いで、1ミリリットルの上清を、特定の市販のエキソソーム単離試薬の0.5ミリリットルと混合する。ボルテックスおよび混合物を1.5ミリリットルのチューブに移し、続いて摂氏4度で一晩インキュベートした。翌日、混合物を摂氏4度で60分間、10,000倍gで遠心分離する。上澄み液を慎重に捨てた後、ペーパータオルの上で1.5ミリリットルのチューブを逆さまに叩き、底部のEVペレットに触れることなくピペットの細かい先端を通して吸引することによって、残りの滴を取り除きます。ペレットを先端で引っ掻くことなく上下にピペッティングすることにより、ペレットを冷たいPBSに再懸濁する。次に、すべてのチューブからEVをプールします。すぐに使用しない場合は、EVサスペンションを80°Cでシリコン処理容器に塗布するまで最大28日間保管してください。4.0 x 10から5番目のB16-OVA細胞に単離されたEVで治療群の各マウスを免疫するには、5マイクロリットルのEV懸濁液を55マイクロリットルの冷PBSと混合する。次に、26~30ゲージの針を装着したシリンジに60マイクロリットルの希釈EVまたはPBSを充填し、直ちにシリンジを氷上に置きます。EVまたはPBSをマウスの大腿部の内側側面に皮下に接種する。7日後に予防接種を繰り返す。最初の処置の14日後、マウスを屠殺し、脾臓を切除した。次に、切除した脾臓を湿らせた100マイクロメートルのセルストレーナーとシリンジのプラスチックプランジャーでマッシュアップします。脾臓細胞を50ミリリットルのチューブに5〜10ミリリットルの冷却完全RPMIでフラッシュします。次に、細胞を400倍gで4°Cで5分間遠心分離してから上清を捨てる。細胞懸濁液から赤血球を除去するために、細胞ペレットを再懸濁し、2ミリリットルの赤血球溶解緩衝液と共に室温で5分間インキュベートする。次いで、5〜10ミリリットルの完全RPMIを加えて反応を停止し、続いて前述のように遠心分離を行った。細胞ペレットを完全なRPMIで再懸濁した後、すべてのマウスからの細胞をカウントし、200マイクロリットルのcRPMIを含む200,000の脾細胞の3連を、底部がU字型を有する96ウェルプレートの各ウェルに入れる。その後、プレートを摂氏37度で48時間インキュベートする。48時間後、細胞培養物を、1ミリリットルあたり5ナノグラムのブレフェルジンA、1ミリリットルあたり20ナノグラムのPMA、および1ミリリットルあたり1マイクログラムのイオノマイシンで摂氏37度で4時間処理する。インキュベーション後、脾細胞を底部がV字型である96ウェルプレートに移し、PBSで細胞を2回洗浄した。ペレット状の脾細胞を新たに調製した染色溶液に再懸濁し、細胞懸濁液を光から保護された摂氏4度で30分間インキュベートする。固定および透過処理のために、FACS緩衝液で脾細胞を2回洗浄し、次いで脾細胞を固定および透過処理溶液のウェルあたり100マイクロリットルで再懸濁し、続いて前述のように暗闇中でインキュベーションする。細胞内インターフェロンγを染色するために、脾細胞を固定または透過処理バッファーで洗浄してから、バッファーで1:200に希釈したインターフェロンγに対する蛍光抗体で細胞を再送する。脾細胞を暗所で摂氏4度で1〜12時間インキュベートする。FACS緩衝液中での徹底的な洗浄および再懸濁の後、原稿で説明されたゲーティング戦略に従って細胞傷害性T細胞の活性化を分析する。代表画像では、細胞傷害性T細胞の活性化を分析するためのゲーティング戦略が表示されている。細胞を単一細胞、リンパ球サブセット、生存可能なCD3陽性T細胞、およびCD4陰性CD8陽性細胞傷害性T細胞としてゲーティングした。インターフェロンγの細胞内蓄積を、活性化のための代理マーカーとして評価した。腫瘍細胞に由来するEVsによる免疫後、レシピエントマウスにおける抗原特異的T細胞応答の誘導が検討された。オキサリプラチン処理などの遺伝毒性ストレス条件下で培養された腫瘍由来EVsは、未処理のEVとは対照的に脾臓細胞傷害性T細胞の強力な活性化を誘導した。ビヒクル処置群の動物は、最も低い応答を示した。脾臓T細胞の活性化は、オボアルブミンの存在下または非存在下のいずれかでのエクスビボ再刺激後に決定した。インターフェロンγの産生は、腫瘍EV処置動物の脾細胞を、分析前にモデル腫瘍抗原オボアルブミンで再刺激したときに増加した。再現可能な結果は、EVの一定の絶縁効率に依存することに注意してください。したがって、乾燥を避けるために、EVペレットが完全かつ迅速に再懸濁されていることを確認してください。このプロトコールにより、腫瘍細胞由来EVの免疫原性を決定する腫瘍細胞内の特定の経路を解析することができました。これは、このような免疫原性EVをがん治療に活用する道を開くかもしれない。

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インビボ脾臓T細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング

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