Name: ペプチド学研究におけるアミンの還元メチル化を用いたサンプル調製と相対定量 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-11-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min
Description: 学ぶ ペプチド保存と同位体標識による相対定量法。プロテアーゼの熱不活化で内因性ペプチドを安定化し、LC-MSで複数サンプルを同時解析。神経芽細胞や組織サンプルに適用可能な、コスト効率の高いプロテオミクス手法です。

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ここで説明する技術の開発と使用は、ブラジル国立研究評議会の助成金420811/2018-4(LMC)によってサポートされました。フンダサン・デ・アンパロ・ア・ペスキサ・ド・エスタド・デ・サンパウロ(www.fapesp.br)は、2019/16023-6(LMC)、2019/17433-3(LOF)、21/01286-1(MEME)を助成金に与えます。資金提供者は、研究設計、データ収集と分析、出版の決定、または記事の準備に何の役割も持っていませんでした。

ペプチド抽出および還元メチル化に関する以下の手順は、以前に公表された手順24,25,26,27から適応した。この議定書は、全米動物実験管理評議会(CONCEA)のガイドラインに従い、サンパウロ州立大学バイオサイエンス研究所の動物利用倫理委員会(CEUA)によって承認されました。プロトコルの手順を図 1 に示します。
注:超純水ですべての水溶液を準備します。
1. ペプチド抽出
<ol><li>細胞培養<ol>
<li>15%の胎児ウシ血清と1%ペニシリンストレプトマイシンを含むダルベッコの改変イーグル培地で、37°Cから5%CO2 以下で15cmの皿でSHSY5Y細胞を培養します。</li>
		<li>各サンプルに2~3枚のプレートを使用します。細胞を100%合流に成長させます。</li>
		<li>意図した治療の後、リン酸緩衝生理食塩水で細胞を2回洗浄する。次に、リン酸緩衝生理食塩液を10mL加え、細胞を掻き取り、15mLチューブに集めます。</li>
		<li>5分間800 x g で遠心ゲートし、上清を取り除く。ペレットを80°Cの超精製脱イオン水1mLで再懸濁する。</li>
		<li>チューブの内容物(細胞性ライセート)を2mLマイクロフュージチューブに移します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>動物組織(主に神経組織):<ol>
<li>野生型の雄の成人 ダニオ・レリオ (ゼブラフィッシュ)をMS 222(100mg/L)の致死量で麻酔し、すぐに8秒のマイクロ波放射線を受けてペプチダーゼとプロテアーゼを不活性化する。 注意:家庭用電子レンジを使用できます。8~10sのフルパワーで900Wマイクロ波を使用しました。使用するマイクロ波は、10s以内に&gt;80°Cに脳温度を上げることができる必要があります。サンプル間の加熱の再現性は、組織をマイクロ波内の同じ場所に配置することでも利益を得るであろう。</li>
		<li>熱不活性化後、2 mLマイクロフュージチューブに脳全体を集め、分析まで−80°Cで凍結します。</li>
		<li>80°Cで1mLの超精製脱イオン水で組織試料を再懸濁する。 1 sの30パルス(4Hz)を用いて、プローブで組織を超音波処理します。 注:肝臓および腎臓組織の場合、20 sの10,000-30,000 rpmで機械的ホモジナイザーを使用してください。筋肉組織の場合は、磁器のるつぼと害虫を使用して液体窒素で組織を粉砕します。以下のステップは、細胞のライセートまたはホモジネート組織について同様である。</li>
	</ol>
</li>
	<li>細胞のライゼートまたはホモジネート組織を80°Cで20分間インキュベートします。次に氷の上で10〜30分間冷まします。</li>
	<li>1 mLのサンプル量ごとに1M HClストック溶液10μLを加え、10mMの最終濃度を得ます。20 sの渦を混ぜて混ぜ、さらに氷の上で15分間インキュベートします。 注:酸性化する前に、高温での酸性化によって引き起こされるペプチド結合を壊さないように、サンプルが完全に冷却されていることを確認してください。</li>
	<li>細胞のリセートまたはホモゲネート組織を4° Cで 15分間遠心分離する。上清を低結合タンパク質マイクロ遠心チューブに集め、-80°Cで保存します。</li>
	<li>2300 x g で水と遠心分離器を 3 分間加えて、限外ろ過装置(10 kDa カットオフ フィルター)を洗浄します。この手順をさらに 2 回繰り返します。</li>
	<li>上清をあらかじめ洗浄した10kDaカットオフフィルターと遠心分離機を4°Cで2,300 x gに50分間、冷蔵庫で再冷蔵庫で入れます。フロースルーは、ペプチド抽出物を表す。</li>
	<li>以下に説明するように、アセトニトリル(ACN)およびトリフルオロ酢酸(TFA)溶液を使用したメーカーの指示に従って、逆相クリーンアップカラムのサンプルを脱塩します。<ol>
<li>1mLのACNを1mLと平衡化します。</li>
		<li><li><li><li></ol></li><li><ol><li></ol></li></ol><ol><li> </li><li><li> </li><li><li><li><li> </li><li><li></ol><ol><li><ol><li></li><li></li><li></li><li><li><li><li> </li></ol></li><li> </li><li></li><li></li><li></li><li><li><li><li><li><li></ol><ol><li> </li></ol><ol><li><li></li><li><li><li><li><li><li><li> </li></ol><ol><li></li><li> </li><li></ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62971/62971fig01.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62971/62971fig01large.jpg" target="_blank"></a>

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</ol>

競合する財政的利益は存在しない。

ほとんどのペプチド化研究では、重要なステップの1つは、間違いなく、数分後にプロテアーゼによって生成されるペプチド断片の存在を避けるために慎重に行うべきサンプル調製である。非マイクロ波サンプルから調製された脳抽出物に関する最初の研究では、10-kDaマイクロフィルトレートに存在する多数のタンパク質断片が示された。タンパク質分解によるペプチドスペクトルを避けるためにさまざまなアプローチが記載されている:焦点を合わせたマイクロ波照射動物犠牲6,8、クライオスタット解剖、沸騰抽出buffer31、家庭用型マイクロ波オーブン9,26を使用した組織のポスト犠牲マイクロ波照射.細胞培養およびいくつかの組織の場合、プロテアーゼの不活性化は、80°Cで水を加えることによって直接行うことができる。 しかし、神経組織などの一部のサンプルは、事後変化に対してよ...

「オミクス」科学は、DNA、RNA、タンパク質、ペプチド、代謝物などの分子集合の深い分析によって特徴付けられる。これらの生成された大規模なデータセット(ゲノミクス、トランスクリプトミクス、プロテオミクス、ペプチドミクス、メタボロミクスなど)は生物学に革命をもたらし、生物学的プロセスの高度な理解につながった1.ペプチドミクスという用語は20世紀初頭に導入され始め、一部の著者はプロテオミクス2の分岐と呼んでいます。しかしながら、ペプチド性は、細胞プロセス中に自然に生成されたペプチド含有量を調査すること、ならびにこれらの分子の生物学的活性の特性を調査することが主な関心事である、明確な特殊性を有する3,4。
当初、生理活性ペプチド研究は、エドマン分解および放射性免疫アッセイを通じて神経ペプチドおよびホルモンペプチドに限定された。しかしながら、これらの技術は、高濃度の各ペプチドの単離に応じて、抗体の生成にかかる時間、交差反応性の可能性5以外に、グローバル分析を可能にしない。
ペプチド性分析は、液体クロマトグラフィー結合質量分析(LC-MS)およびゲノムプロジェクトのいくつかの進歩の後にのみ可能となり、プロテオミクス/ペプチドミクス研究のための包括的なデータプールを提供しました6,7。さらに、脳サンプルで神経ペプチドを世界的に分析した最初の研究では、検出がタンパク質の大量分解の影響を受けたことが示されたため、ペプチドームの特定のペプチド抽出プロトコルを確立する必要がありました。これらのペプチド断片の存在は、神経ペプチドシグナルを覆い隠し、生体内でのペプチドドームを表すものではなかった。この問題は、主にマイクロ波照射を用いたプロテアーゼの高速加熱不活性化の適用によって解決され、これらのアーティファクト断片の存在を大幅に減少させ、神経ペプチド断片の同定だけでなく、細胞質、ミトコンドリア、核タンパク質からのペプチドのセットの存在を明らかにした。
これらの方法論的手順は、主にプロテアソームの作用によって生成された数百の細胞内ペプチドが酵母10、ゼブラフィッシュ11、げっ歯類組織12、およびヒトcells13で同定されている、よく知られた神経ペプチドを超えてペプチドを拡大することを可能にした。これらの細胞内ペプチドの数十は、生物学的および薬理学的活性の両方を有することが広範囲に示されている14,15。さらに、これらのペプチドは、疾患バイオマーカーとして使用することができ、おそらく臨床的意義を有する、頭蓋内嚢胞瘤を有する患者からの脳脊髄液において示されるように16。
現在、ペプチド配列の同定に加えて、質量分析を通じて絶対定量と相対定量のデータを得ることが可能である。絶対定量では、生物学的試料中のペプチドレベルは合成標準と比較され、一方、相対的定量では、ペプチドレベルは2つ以上のサンプル間で比較される17。相対定量は、次の方法で実行できます: 1) "ラベルフリー"18;2)生体内代謝標識または3)化学標識。最後の2つは、ペプチド19,20に組み込まれた安定な同位体形態の使用に基づいている。無ラベル分析では、LC-MS18の間にシグナル強度(スペクトルカウント)を考慮してペプチドレベルを推定します。しかし、同位体標識は、ペプチドのより正確な相対レベルを得ることができる。
多くのペプチド研究では、トリメチルアンモニウム・ブチレート(TMAB)標識試薬を化学標識として使用し、さらに最近では、ホルムアルデヒドおよびシアノボロヒドリル酸ナトリウム試薬を有するアミンの還元メチル化(RMA)が使用されている。しかし、TMABラベルは市販されておらず、合成プロセスは非常に面倒です。一方、RMAでは、試薬が市販されており、他のラベルに比べて安価で、手順が簡単に行われ、標識ペプチドが安定している23,24である。
RMAの使用は、ペプチドがホルムアルデヒドと反応することを可能にすることによってシッフ塩基を形成することを含み、続いてシアノボロヒドロヒドを介して還元反応を行う。この反応は、N末端およびリジン側鎖およびモノメチル化N末端プロリン上の遊離アミノ基のジメチル化を引き起こす。プロリン残基がN末端でまれであることが多く、N末端に遊離アミンを有する実質的にすべてのペプチドが2つのメチル基23,24,25で標識される。

<table><tbody><tr><td>10 kDa カットオフフィルター</td><td>Merck Millipore</td><td>UFC801024</td><td>Amicon Ultra-4、PLGC Ultracel-PL メンブレン、10 kDa</td></tr><tr><td>アセトン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>179124</td><td></td></tr><tr><td>アセトニトリル</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1000291000</td><td></td></tr><tr><td>重炭酸アンモニウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11213</td><td></td></tr><tr><td>分析カラム (EASY-カラム)</td><td>EASY-Column</td><td>(SC200)</td><td>&nbsp;10 cm、ID75 & マイクロ;メートル、3、マイクロ;m、C18-A2</td></tr><tr><td>エチル3-アミノ安息香酸メタンスルホン酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E10521</td><td>MS-222</td></tr><tr><td>Fluorescamine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F9015</td><td></td></tr>ホル<tr><td>ムアルデヒド溶液</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>252549</td><td></td></tr><tr><td>ホルムアルデヒド-13C、d2、溶液</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>596388</td><td></td></tr><tr><td>ホルムアルデヒド-d2solution</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>492620</td><td></td></tr><tr><td>ギ酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>33015</td><td></td></tr><tr><td>ヒュームフード</td><td>Quimis</td><td>Q216</td><td></td></tr><tr><td>塩酸 - HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>258148</td><td></td></tr><tr><td>LoBind-Protein 保持チューブ</td><td>Eppendorf</td><td>EP0030108116-100EA</td><td></td></tr><tr><td>LTQ-Orbitrap Velos</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>LTQ Velos</td><td></td></tr><tr><td>電子レンジ</td><td>Panasonic</td><td>NN-ST67HSRU</td><td></td></tr><tr><td>n Easy-nLC II nanoHPLC</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>LC140</td><td></td></tr><tr><td>PEAKS Studio</td><td>Bioinformatics Solutions Inc.</td><td>VERSION 8.5</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水</td><td>Invitrogen</td><td>3002</td><td>錠</td></tr><tr><td>プレカラム (EASY-Column)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>(SC001)</td><td>2 cm, ID100 &micro;メートル、5、マイクロ;m, C18-A1</td></tr><tr>冷蔵<td>遠心分離機</td><td>Hermle</td><td>Z326K</td><td>コニカルチューブ用</td></tr><tr><td>冷蔵遠心分離機</td><td>Vision</td><td>VS15000CFNII</td><td>マイクロチューブ用</td></tr><tr><td>逆相クリーンアップカラム&nbsp;&nbsp;(オアシスHLB 1 ccカートリッジ)</td><td>Waters</td><td>186000383</td><td>Oasis HLB 1 cc カートリッジ</td></tr> シア<tr><td>ノホウ素添加ナトリウム - NaBD3CN</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>190020</td><td></td></tr><tr><td>シアノボ水素化ホウ素ナトリウム - NaBH3CN</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>156159</td><td></td></tr><tr><td>リン酸二塩基性</td><td>ナトリウム Sigma-Aldrich</td><td>S9763</td><td>注:0.2 M PB= 0.1 Mリン酸緩衝液pH 6.8(26.85 mL Na2HPO3 1M)と0.1 Mリン酸緩衝液pH 6.8(23.15 mL NaH2PO3 1M)から250 mlの水</td></tr><tr><td>リン酸ナトリウム 一塩基性</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3139</td><td></td></tr><tr><td>Sonicator</td><td>Qsonica</td><td>Q55-110</td><td></td></tr><tr><td>標準ペプチド</td><td>Proteimax</td><td></td><td>アミノ酸配列: LTLRTKL</td></tr><tr><td>トリエチルアンモニウム緩衝液 - TEAB 1 M</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T7408</td><td></td></tr><tr><td>トリフルオロ酢酸 - TFA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6508</td><td></td></tr><tr><td>超精製水</td><td>Milli-Q</td><td>Direct-Q 3UV</td><td></td></tr><tr><td>真空遠心分離機</td><td>GeneVac</td><td>MiVac DNA 濃縮器</td><td></td></tr><tr><td>ウォーターバス</td><td>Cientec</td><td>266</td><td></td></tr><tr><td>Xcaliburソフトウェア</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>OPTON-30965</td><td></td></tr></tbody></table>

ペプチド学研究におけるアミンの還元メチル化を用いたサンプル調製と相対定量

Sample Preparation and Relative Quantitation using Reductive Methylation of Amines for Peptidomics Studies

ペプチド性は、生物学的試料中のペプチドの定性的および定量的分析として定義することができる。その主な用途は、疾患または環境ストレスのペプチドバイオマーカーの同定、神経ペプチド、ホルモン、および生理活性細胞内ペプチドの同定、タンパク質加水分解物からの抗菌および栄養補助ペプチドの発見、およびタンパク質分解プロセスを理解する研究で使用することができる。近年のサンプル調製の進歩により、分離法、質量分析技術、およびタンパク質シーケンシングに関連する計算ツールが、同定されたペプチド数およびペプチドドームの増加を特徴付けている。ペプチド学的研究は、細胞内で自然に生成されるペプチドを頻繁に分析します。.ここでは、熱不活性化に基づくサンプル調製プロトコルが記載されており、これはプロテアーゼ活性を排除し、軽度の条件で抽出するので、切断されたペプチド結合が存在しない。また、アミンの還元メチル化による安定同位体標識を用いたペプチドの相対定量も示されている。この標識法は、試薬が市販されており、他に比べて安価で、化学的に安定であり、かつ1回のLC-MSランで最大5個のサンプルの分析を可能にする利点を有する。

質量分析計で行われたランから得られた結果は、質量分析計ソフトウェアで開くことができる生データファイルに保存されます。MSスペクトルでは、2〜5ラベルの範囲で、使用される標識スキームに従って標識ペプチドを表すピーク基を観察することができる。例えば、 図2では、クロマトグラフィー時間で検出された一対のピークが、同じ実行で2つの異なるサンプルで使用された同位体ラベルが2つだけの実験で表されている。 図 3 は 、LC-MS の実行ごとに 3 と 4 つの異なるラベルを使用して、肯定的な結果の他の可能性を示しています。LC/MSランで4または5のラベルを使用する場合、各ピークの実際の強度値を得るために修正する必要がある異なるタグを持つ標識ペプチドのピークの重複がある可能性があります(図4)。
同位体標識は、図5に示すように、所定のプロテアーゼまたはペプチ...

この記事では、熱不活性化に基づくサンプル調製方法を、後分析による分解を回避する内因性ペプチドを保存し、続いて同位体標識とLC-MSを使用した相対定量を行う方法について説明します。

Peptidomics can be defined as the qualitative and quantitative analysis of peptides in a biological sample. Its main applications include identifying the ...

ここでは、自然な細胞内ペプチドを保存し、細胞や組織の分解を避け、続いて同位体標識を用いたペプチドの相対的な定量化を行うプロテアーゼの速い熱不活性化に基づく指導方法について述べた。このラベリング方法には非常に多くの利点があります。この試薬は市販されており、安価で化学的に安定であり、1つの血清中で最大5個のサンプルの分析が可能です。15%FBSおよび1%ペニシリンストレプトマイシンを含むDMEMで15センチメートルの皿でヒト神経芽細胞細胞を培養することから始めます。5%の二酸化炭素の下で摂氏37度で細胞を維持します。PBSで細胞を2回洗い、PBSを10ミリリットル加え、細胞を掻き取り、15ミリリットルのチューブに集めます。Gの800倍の細胞を5分間遠心し、上清を取り除きます。ペレットを80°Cの超精製脱イオン水の1ミリリットルで再懸濁し、チューブの内容物を2ミリリットルマイクロフュージチューブに移します。ゼブラフィッシュの熱不活性化後、2ミリリットルマイクロフュージチューブに脳全体を収集し、分析までマイナス80°Cで凍結します。80°Cの超精製脱イオン水の1ミリリットルで組織サンプルを再中断し、1秒間の30パルスを使用してプローブで超音波処理します。細胞のlysateまたはホモジネート組織を摂氏80度で20分間インキュベートし、氷の上で10〜30分間冷却します。1ミリリットルのサンプル容量ごとに1モル塩酸ストック溶液10マイクロリットルを加えます。20秒間渦を混ぜて混ぜ、氷の上で15分間インキュベートします。細胞のリセートまたはホモゲネート組織を摂氏4度で12,000倍のGで15分間遠心する。低結合タンパク質マイクロ遠心チューブに上清を収集し、マイナス80°Cで保存します。水と遠心分離機を2,300倍Gで3分間洗浄し、その後、限外濾過装置から水を捨てます。上清を予め洗浄した10キロダルトンカットオフフィルターにピペットし、冷蔵遠心分離機で4°Cで回転します。サンプルの pH を確認します。100%アセトニトリルの1ミリリットルでカラムを平衡化し、0.1%トリフルオロ酢酸で5%アセトニトリルの1ミリリットルで洗浄します。カラムにサンプルの完全な体積をロードし、0.1%トリフルオロ酢酸で5%アセトニトリルの1ミリリットルでカラムを洗浄します。0.15%トリフルオロ酢酸を有する1%アセトニトリルの1.8ミリリットルのカラムから、タンパク質の低結合マイクロ遠心チューブにペプチドを溶出する。サンプルを真空遠心分離機で30°Cで完全に乾燥させ、ディスプレイ上の濃度時間を監視します。サンプルをマイナス80°Cで保存します。ペプチドサンプルを100~200マイクロリットルの超精製水とピペット2.5マイクロリットルの標準ペプチド濃度とサンプルを白色96ウェルプレートに再懸濁します。0.2モルリン酸緩衝液25マイクロリットル、蛍光アミン12.5マイクロリットルを加えます。軌道回転器で1分間、穏やかに均質化します。次に、110マイクロリットルの水を加えた後、反応を止めます。分光フルオロメーターの設定を調整し、プレートを読みます。1/10体積の1/10分の1のモルトリメチルアンモニウム臭化物を各ペプチドサンプルに25マイクログラムまで添加します。必要に応じて、pHが5~8個であることを確認し、塩酸または水酸化ナトリウムで調整します。非重水素、重水素、または炭素13重水素の4マイクロリットルを加える。渦をかいて5秒間混ぜます。4マイクロリットルのシアンボロヒドリドナトリウムまたは重水素化ナトリウムをペプチドサンプルに加えます。その後、渦をかいて5秒間サンプルを混ぜます。ペプチドサンプルをヒュームフードに室温で2時間インキュベートし、30分ごとに渦を出します。非重水素、重水素、または炭素-13の加加を繰り返し、ホルムアルデヒドおよびシアノ水素化ナトリウムまたはシアノ水素化ナトリウム、または各添加後にボルテックスする。室温で一晩ヒュームフードにサンプルをインキュベートします。16マイクロリットルの重炭酸アンモニウムを加え、渦を混ぜて混ぜます。サンプルを氷の上に置きます。さらに5秒間、5%のギ酸と渦の8マイクロリットルを加えます。ペプチドサンプルを組み合わせ、2つと4の間でpHを調整し、次に前述のようにアセトニトリルおよびトリフルオロ酢酸を使用して逆相クリーンアップカラム上の結合サンプルを脱塩する。サンプルを真空遠心分離機で30°Cで完全に乾燥させ、マイナス20度で保管します。標識されたペプチドは、質量スペクトルを用いて観察される。赤い矢印は、2つの異なるサンプルS1とS2の比較のために、L1およびL5の2つの同位体形態で標識された異なるペプチドのピーク対の存在を示す。3つの異なるサンプルに存在するペプチドの質量スペクトルを、それぞれL1、L3、およびL5タグで標識したS1、S2、およびS3が示されている。4重化標識が行われました。対照試料S1及びS3をそれぞれL1及びL3で標識し、2つの実験サンプルと比較して、L2で標識したS2及びS4と、有意差 L4.No 有意な差が認められた。同位体標識は、所与のプロテアーゼまたはペプチダーゼに対するインビトロの製品の基質を示すために使用された。神経リシン酵素の存在下で変化しないペプチドをここに示す。酵素の存在下で消失または減少するペプチドは基質であり、増加するものは製品とみなされます。この図は、3つの異なる形式のタグでラベル付けされたデータベース検索エンジンによって実行されるペプチド配列を同定する例である。定義する前に、固い酸性化によって引き起こされるペプチド結合を壊さないように、サンプルが完全に冷却されていることを確認してください。また、限外ろ過装置の洗浄も不可欠です。質量分析法は、ペプチド質の基質を同定することにより、異なる実験条件間でペプチドを定量化し、分析研究に優れた方法です。

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

還元的に13C-メチル化N末端リジンのα-およびε-ジメチルアミン核磁気共鳴信号を割り当てるための2つの方法が説明されています。1つの方法は、還元的メチル化反応のpH誘導選択性を利用し、もう1つの方法はアミノペプチダーゼを使用してN末端リジンを選択的に除去します。...

還元的にメチル化されたタンパク質上の13C-ジメチルN末端アミンのNMR共鳴を同定する方法

還元ジメチル化（REDIラベリング）によるペプチドの安定同位体標識は、正確な質量分析に基づく定量的プロテオミクスのための迅速、安価な戦略である。ここでは、ほぼすべてのサンプルタイプに適用することができるのRediアプローチを使用してタンパク質混合物の調製および分析のためのロバストな方法を示す。...

安定同位体標識するための還元ジメチル化を用いた定量的プロテオミクス

このプロトコルは、選択された反応モニタリングを使用して、複雑な生物学的サンプル内の標的タンパク質の絶対定量アッセイを実行する方法を説明しています。これは、マウスマクロファージ走化性シグナル伝達経路のタンパク質を正確に定量するために使用されました。標的ペプチドの選択、アッセイ開発、定性的および定量的アッセイについて詳しく説明します。...

絶対タンパク質定量のための質量分析法を選択反応モニタリング

組み合わせ前駆同位体標識およびアイソバリックタグ（cPILOT）は、アイソバリックタグのサンプル多重化機能を強化し、定量プロテオミクス戦略です。このプロトコルは、アルツハイマー病のモデルマウスと野生型対照からの組織へのcPILOTの適用を説明しています。...

拡張サンプル複合前駆同位体標識と同重体タグ付けを使用して組織の多重化（cPILOT）

ここでは、長尺の静電反発力 - 親水性相互作用クロマトグラフィー - タンデム質量分析（LERLIC-MS / MS）方法のステップバイステップのプロトコルを提示します。これは、ショットガンプロテオミクスによってグルタミンとアスパラギン脱アミド化アイソフォームを初めて定量および特徴付けのために有効に小説の方法論です。...

ショットガンプロテオミクスにある深さの特徴付けのためLERLIC-MS / MSおよびグルタミンの定量化およびアスパラギン脱アミド

前駆体同位体標識とアイソバリックタグ(cPILOT)は、利用可能なアイソバリックタグで同時に分析できるサンプル数を増やすことができる、強化されたサンプル多重化戦略です。ロボットプラットフォームの組み込みにより、実験のスループット、再現性、定量的精度が大幅に向上しました。...

組み合わせ前駆体等位同位体ラベリングとアイソバリックタギング(cPILOT)を使用した自動サンプル多重化

このプロトコルは、臨床サンプルからのタンパク質の多重反応モニタリング(MRM)のための三重四重極質量分析計の使用を導入することを目的としています。我々は、サンプル調製から臨床サンプルのデータ分析に始まる体系的なワークフローを提供し、必要な予防措置をすべて講じています。...

ヒト脳組織からのタンパク質の多発反応モニタリングを用いた定量的プロテオミクスワークフロー

タンパク質アルギニン(R)-メチル化は、複数の生物学的経路を調節する広範な翻訳後修飾です。質量分析は、修飾ペプチド濃縮のための生化学的アプローチと組み合わせると、R-メチルプロテオームをグローバルにプロファイリングするための最良の技術です。ここでは、ヒト細胞における全体的なR-メチル化を高信頼で同定するために設計されたワークフローについて説明します。...

質量分析に基づくプロテオミクスアプローチによるグローバルで信頼性の高いタンパク質R-メチル化分析

本プロトコルは、1H-NMR分光法による遊離およびタンパク質結合アルギニンおよびメチルアルギニンの調製および定量的測定を記載している。...

核磁気共鳴分光法によるアルギニンメチロームの探索

RNA 結合蛋白質を識別し、紫外線による光架橋と質量分析法を用いた生細胞におけるその RNA...

質量分析を用いた識別 RNA 結合領域のための試料作製

学ぶ ペプチド保存と同位体標識による相対定量法。プロテアーゼの熱不活化で内因性ペプチドを安定化し、LC-MSで複数サンプルを同時解析。神経芽細胞や組織サンプルに適用可能な、コスト効率の高いプロテオミクス手法です。

ペプチド学研究におけるアミンの還元メチル化を用いたサンプル調製と相対定量

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