Name: アノフェレスガンビー蚊からの幼虫唾液腺の解剖と免疫染色 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-09-30T14:45:00.000+00:00
Duration: 6 min 12 s
Description: 学ぶAnopheles gambiae幼虫の唾液腺解剖と免疫染色法。病原体伝播メカニズムの解明と疾患予防戦略への貢献を目指し、顕微鏡観察による形態学的解析を可能にする。

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ジョンズ・ホプキンスマラリア研究所の アンガンビア 幼虫へのアクセスと飼育に感謝します。

1. ソリューションとツールの準備
<ol><li>解剖液の調製<ol>
<li>解剖液を調製するには、15個のプラスチックチューブに7.5mLの蒸留H2Oに2.5mLのエタノールを加えます。チューブを3回反転して混ぜます。 注:このソリューションは、室温で数週間保存することができます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>リン酸緩衝生理食塩分10倍の調製(PBS)ストック<ol>
<li>10x PBSストックを調製するには、17.8 g Na2HPO4• 2H2O, 2.4 g KH2PO4,80 g NaCl, 2 g KCl を 800 mL の脱イオン水に加えます。固形物が完全に溶解するまで、攪拌プレートの上に攪拌棒と混合します。精製水で最終体積を1Lに調整します。 注:このソリューションは、数ヶ月間室温で保存することができます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>1x PBSの調製<ol>
<li>滅菌ガラス瓶に10mLを90mLのH2Oに加えます。蓋をしっかりと閉め、3倍を反転して混ぜます。 注:溶液は、数週間4°Cで保存することができます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>固定剤の調製。<ol>
<li>600 μL のメタノールを 200 μLの氷酢酸に加えます。毎回ソリューションを新鮮にします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>パテプレート(シリコーンゴムを充填した組織培養皿)の構成<ol>
<li>エポキシ(1g)と水(50mL)の成分(1:50)を混ぜ、ペトリ皿に注ぎます。使用する前に、コンポーネントが乾くのを待ちます。 注:一度構築すると、パテプレートは、年間使用することができます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 腺解剖 (図 1A)
<ol><li>後期L4幼虫を収集する(〜10日後のハッチ; 図2)プラスチック転写ピペットを使用して給餌トレイから。 注:標準的な蚊の畜産と幼虫文化13のためのこの役に立つオンラインマニュアルを参照してください。<ol>
<li>解剖顕微鏡のステージにパテプレートを置き、幼虫をパテプレートに移します。 注:最初の解剖のために幼虫をアリクォートする場合、プラスチック転写ピペットを使用して一度に10の幼虫をスライドに移すと便利です。</li>
	</ol>
</li>
	<li>10の幼虫とは別に、解剖液(1:3 EtOH:H2O)をパテプレートに一滴置きます。</li>
	<li>プラスチック転写ピペットまたは使い捨てのガラスピペットを使用して、1つのL4幼虫を25%のEtOHドロップに入れます。</li>
	<li>鉗子(#5)を取り、各手に1つ、そして非支配的な手で、幼虫の頭をつかみます。支配的な手を使って、頭のすぐ下に鉗子で幼虫をつかみ、頭が体の残りの部分から切り離され、腺が頭部に取り付けられたままになるように、最小限の一定の力で穏やかに引っ張ります。幼虫の死体の体の部分を捨てます。 注:解剖する際は、近くにペーパータオルをセットして幼虫の死体を採取してください。</li>
	<li>1.5 mLマイクロ遠心チューブで1x PBSの1 mLにヘッド/腺を収集します。1 mL の PBS を、頭部を取り付けた状態で約 40 個の解剖腺に使用してください。ヘッド/SG がバッファの底面に沈むのを待ちます。</li>
</ol>抗体染色のための3.固定(図1B)
<ol><li>ガラストランスファーピペットを使用してマイクロ遠心チューブの上部からPBSを排出し、粘着性の蚊組織を避け、組織を損傷することなくできるだけ多くのPBS溶液を取り除きます。溶液をメタノールから氷酢酸までの3:1混合物の800 μLに交換してください。チューブを一晩4°Cに置きます(12〜24時間推奨;19時間が好ましい)。</li>
	<li>翌日、溶液を水切りし、1mLの冷たい100%アセトンに交換します。90 sに残します。</li>
	<li>アセトンを取り出し、毎回1mLの1倍のPBSで組織を3回軽くすすます。 注:サンプルは流れに合わせてゆっくりと浮いてから、PBSの追加が完了するまでにチューブの底に戻ります。</li>
</ol>4. 免疫染色 (図1B)
<ol><li>1x PBSの全容量の200 μLに適切な希釈液(1:100)で一次抗体(例えば、Rab11)を加える。ピペットチップでチューブの内容物をそっと旋回します。4°Cで一晩インキュベートする。</li>
	<li>一次抗体溶液を取り出し、1mLの1x PBSで3回洗浄します(溶液をピペットの出入りで静かにピペットします)。</li>
	<li>200 μL の全容で適切な希釈液(1:200)に二次抗体(アレックス・フルーター 488 ヤギ抗ウサギ)を加えます。ピペットチップでチューブの内容物をそっと旋回します。室温で90分間インキュベートします。</li>
	<li>この段階で、ナイルレッド(脂質、5 μLの1 μg/μL)および/またはHoechst(DNA、3 μLの1 μg/μL)などの色素をPBSの200 μLに加えます。室温で60分のインキュベートを行います。1倍PBSで3回やさしく洗います。</li>
</ol>5. 顕微鏡用染色腺の取り付け (図 1C)
<ol><li>ピペット200μLの100%グリセロールを顕微鏡スライドに取り付けます。 注:グリセロールは粘性であるため、ピペットチップは適切な体積になるまで液体に入れておきます。100%グリセロールに直進する際に組織の縮小は認められなかった。しかし、研究者は、サンプルを100%グリセロールに移動する前に、チューブ内のグリセロールの 30% と 50% のスロッシュを通過することができます。</li>
	<li>染色された頭部(スライドあたり最大20個)を、柔らかいブラシを使用して(他の内部構造と共に)取り付けた腺を顕微鏡スライドに移す(図3A)。サンプルを広げて、ガラススライドに沿って均等に分散させます。 注: ブラシでカバースライドに腺を堆積させる場合、鉗子を使用して SG の向きを穏やかにして、すべての方向が同じ方向に向くようにすることができます。</li>
	<li>解剖顕微鏡で見て、2組の鉗子を使って腺から幼虫の頭部を分離し、2つの組織を慎重に反対方向に引っ張る。 注: SG を完全に分離するのは難しいので、SG と関連する内部構造を残したまま、ヘッドを取り外すだけです。SGが他の組織と関連し続けても、Hoechstや他のマーカーで染色すると容易に認識されます(図3B,C)。</li>
	<li>ヘッドを取り外して破棄し、各SGの分離プロセスを繰り返します。 注:ヘッドを取り外す際は、近くにペーパータオルをセットして集めます。</li>
	<li>厚さ1.5mmのカバースリップを上にそっと置き(気泡を避ける)、透明なマニキュアで密封します。</li>
	<li>4°Cで軽量容器に保管してください。 注:染色腺の準備スライドは、品質の顕著な変更なしに1年まで6ヶ月まで暗闇の中で4°Cに保つことができます。月が経つうにつれてグリセロールが漏れ始めたら、カバースリップとピペットをよりグリセロールでそっと持ち上げて穴を埋めます。</li>
</ol>

<ol><li>World malaria report 2020: 20 years of global progress and challenges. World Health Organization. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://apps.who.int/iris/handle/10665/337660">https://apps.who.int/iris/handle/10665/337660</a> (2020).</li>
<li>Feachem, R. G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malaria+eradication+within+a+generation%3A+ambitious%2C+achievable%2C+and+necessary%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Malaria eradication within a generation: ambitious, achievable, and necessary.</a> Lancet. 394 (10203), 1056-1112 (2019).</li>
<li>Adolfi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+population+modification+gene-drive+rescue+system+in+the+malaria+mosquito+Anopheles+stephensi%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Efficient population modification gene-drive rescue system in the malaria mosquito Anopheles stephensi.</a> Nature Communications. 11, 5553(2020).</li>
<li>Kyrou, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+CRISPR-Cas9+gene+drive+targeting+doublesex+causes+complete+population+suppression+in+caged+Anopheles+gambiae+mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">A CRISPR-Cas9 gene drive targeting doublesex causes complete population suppression in caged Anopheles gambiae mosquitoes.</a> Nature Biotechnology. 36 (11), 1062-1066 (2018).</li>
<li>Rostami, M. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR%2FCas9+gene+drive+technology+to+control+transmission+of+vector-borne+parasitic+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Parasite+Immunology%22%5BJournal%5D)">CRISPR/Cas9 gene drive technology to control transmission of vector-borne parasitic infections.</a> Parasite Immunology. 42 (9), 12762(2020).</li>
<li>Bhatt, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coverage+and+system+efficiencies+of+insecticide-treated+nets+in+Africa+from+2000+to+2017%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Coverage and system efficiencies of insecticide-treated nets in Africa from 2000 to 2017.</a> Elife. 4, 09672(2015).</li>
<li>Mellink, J. J., Vanden Bovenkamp, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+aspects+of+mosquito+salivation+in+blood+feeding+of+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22Mosquito+News%22%5BJournal%5D)">Functional aspects of mosquito salivation in blood feeding of Aedes aegypti.</a> Mosquito News. 41 (1), 115(1981).</li>
<li>Ribeiro, J. M., Rossignol, P. A., Spielman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+mosquito+saliva+in+blood+vessel+location%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Role of mosquito saliva in blood vessel location.</a> Journal of Experimental Biology. 108, 1-7 (1984).</li>
<li>Yamamoto, D. S., Sumitani, M., Kasashima, K., Sezutsu, H., Matsuoka, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+malaria+infection+in+transgenic+Anopheline+mosquitoes+lacking+salivary+gland+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Inhibition of malaria infection in transgenic Anopheline mosquitoes lacking salivary gland cells.</a> PLoS Pathogens. 12 (9), 1005872(2016).</li>
<li>Rishikesh, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphology+and+development+of+the+salivary+glands+and+their+chromosomes+in+the+larvae+of+Anopheles+stephensi+sensu+stricto%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+the+World+Health+Organization%22%5BJournal%5D)">Morphology and development of the salivary glands and their chromosomes in the larvae of Anopheles stephensi sensu stricto.</a> Bulletin of the World Health Organization. 20 (1), 47-61 (1959).</li>
<li>Jensen, D. V., Jones, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+the+salivary+glands+in+Anopheles+albimanus+Wiedemann+%28Diptera%2C+Culicidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+the+Entomological+Society+of+America%22%5BJournal%5D)">The development of the salivary glands in Anopheles albimanus Wiedemann (Diptera, Culicidae).</a> Annals of the Entomological Society of America. 50 (5), 40824(1957).</li>
<li>Chiu, M., Trigg, B., Taracena, M., Wells, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diverse+cellular+morphologies+during+lumen+maturation+in+Anopheles+gambiae+larval+salivary+glands%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Diverse cellular morphologies during lumen maturation in Anopheles gambiae larval salivary glands.</a> Insect Molecular Biology. 30 (2), 210-230 (2021).</li>
<li>Benedict, M. Q. MR4. Methods in Anopheles research. Center for Disease Control. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.beiresources.org/Portals/2/ VectorResources/2016%20Methods%20in%20Anopheles%20Research%20full%20manual.pdf">https://www.beiresources.org/Portals/2/ VectorResources/2016%20Methods%20in%20Anopheles%20Research%20full%20manual.pdf</a> (2015).</li>
<li>Wells, M. B., Andrew, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salivary+gland+cellular+architecture+in+the+Asian+malaria+vector+mosquito+Anopheles+stephensi%5BTitle%5D)+AND+%22Parasites+%26+Vectors%22%5BJournal%5D)">Salivary gland cellular architecture in the Asian malaria vector mosquito Anopheles stephensi.</a> Parasites & Vectors. 8, 617(2015).</li>
<li>Wells, M. B., Villamor, J., Andrew, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salivary+gland+maturation+and+duct+formation+in+the+African+malaria+mosquito+Anopheles+gambiae%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Salivary gland maturation and duct formation in the African malaria mosquito Anopheles gambiae.</a> Scientific Reports. 7 (1), 601(2017).</li>
<li>Wells, M. B., Andrew, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anopheles+salivary+gland+architecture+shapes+plasmodium+sporozoite+availability+for+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22mBio%22%5BJournal%5D)">Anopheles salivary gland architecture shapes plasmodium sporozoite availability for transmission.</a> mBio. 10 (4), 01238(2019).</li>
<li>Clements, A. N. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aClements%2C+AN+%22The+physiology+of+mosquitoes%22">The physiology of mosquitoes</a>. , Pergamon Press. Paris. (1963).</li>
<li>Imms, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+larval+and+pupal+stages+of+Anopheles+maculipennis%2C+meigen%5BTitle%5D)+AND+%22Parasitology%22%5BJournal%5D)">On the larval and pupal stages of Anopheles maculipennis, meigen.</a> Parasitology. 1 (2), 103-133 (1908).</li>
<li>Favia, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacteria+of+the+genus+Asaia+stably+associate+with+Anopheles+stephensi%2C+an+Asian+malarial+mosquito+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Bacteria of the genus Asaia stably associate with Anopheles stephensi, an Asian malarial mosquito vector.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (21), 9047-9051 (2007).</li>
<li>Neira Oviedo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+salivary+transcriptome+of+Anopheles+gambiae+%28Diptera%3A+Culicidae%29+larvae%3A+A+microarray-based+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Biochemistry+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">The salivary transcriptome of Anopheles gambiae (Diptera: Culicidae) larvae: A microarray-based analysis.</a> Insect Biochemistry and Molecular Biology. 39 (5-6), 382-394 (2009).</li>
<li>Linser, P. J., Smith, K. E., Seron, T. J., Neira Oviedo, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carbonic+anhydrases+and+anion+transport+in+mosquito+midgut+pH+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Carbonic anhydrases and anion transport in mosquito midgut pH regulation.</a> Journal of Experimental Biology. 212 (11), 1662-1671 (2009).</li>
<li>Linser, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Slc4-like+anion+transporters+of+the+larval+mosquito+alimentary+canal%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">Slc4-like anion transporters of the larval mosquito alimentary canal.</a> Journal of Insect Physiology. 58 (4), 551-562 (2012).</li>
</ol>

著者らは開示する利益相反はない。

本明細書に記載されたプロトコルは、ショウジョウバエSG解剖プロトコルおよび成体蚊解剖プロトコル14、15、16から適応した。しかし、成人解剖およびSG染色法を使用する場合、ほとんどのマーカーは、元素膜(データは示さない)に浸透しなかった。成人プロトコルの適応には、25%のEtOH溶液中の腺の解剖、MeOHと氷河酢酸の組み合わせで腺を洗浄すること、および90 sアセトン洗浄を含む。元の成人の議定書では、成人SGは1x PBS14、15、16で解剖された。25%のEtOH溶液で解剖することでSGを保存し、染色期間中の損傷を防ぎました。最初の解剖を行うとき、頭を非支配的な手に向け、支配的な手をそっと外側に引っ張るようにして幼虫SGを向けるのが最も簡単でした(幼虫は非常に活発...

マラリアは公衆衛生上の主要な脅威であり、2019年には約2億3000万人の感染と推定409,000人の死亡を引き起こしている。死者の大半はサハラ以南のアフリカで、このビデオデモンストレーションの主題であるアノフェレス・ガンビアである寄生虫熱帯熱マラリア原虫によって引き起こされます。この数字は、世紀の変わり目以来、年間死亡率の大幅な低下(年間死亡者数>30万人減少)を示しているが、2000年から2015年まで観察された疾患率の有望な減少は先細りであり、疾患伝染を制限するための新しいアプローチの必要性を示唆している2。マラリアを制御し、おそらく排除するための有望な追加戦略の中で、CRISPR/Cas9ベースの遺伝子編集および遺伝子駆動3、4、5を使用して蚊ベクター容量を標的にしている。実際、病気の伝染を減らすに最も大きな影響を与えたのは、蚊ベクターの標的化(長期にわたる殺虫剤処理されたベッドネットの拡大を通じて)である。
雌の蚊は、血液中に感染したヒトからプラスモジウム様の解剖学を取得する。受精、成熟、中腸上皮横断、集団拡張、および彼らの義務的な蚊の宿主におけるヘモコウムナビゲーションに続いて、数百から数万のプラスモジウム・スポロゾイテが蚊SGに侵入し、構成分泌細胞の分泌空洞を埋める。分泌空洞内に入ると、寄生虫は唾液管に直接アクセスし、次の血液食事時に新しい脊椎動物宿主に伝染する準備ができている。SGはマラリアを引き起こすスポロゾアをヒト宿主に伝染させるのに重要であり、実験室での研究は、SGが血液供給、蚊の生存、または胎児性7、8、9に不可欠ではないことを示唆しているので、伝達遮断対策の理想的な標的である。成虫の蚊SGは、初期の子犬SGヒストリシス10を超えて持続する幼虫SGの「ダクト芽」残骸の精緻化として形成され、幼虫SGは成人期疾患の伝染を制限するための介入のための理想的な標的となる。
SG開発の幼虫段階を特徴付けても、その形態と機能適応の理解を深めるだけでなく、主要なSGレギュレータの遺伝子編集を通じてこの器官を標的とする新しい介入を評価するのにも役立ちます。幼虫唾液腺アーキテクチャのこれまでの研究は、免疫染色および現代のイメージング技術10,11より前に、種々の抗体および細胞マーカー12を用いて唾液腺を単離および染色するためのプロトコルを開発した。このビデオは、共焦点イメージングのためのアノフェレスガンビアL4幼虫からの幼虫SGの抽出、固定、染色に対するこのアプローチを示しています。

<table><tbody><tr><td>&nbsp;KH2PO4</td><td>ミリポアシグマ</td><td>P9791</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;Na2HPO4 > ブル;2H2O</td><td>ミリポアシグマ</td><td>71643</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;NaCl</td>ミリ<td>ポアシグマ</td><td>S7653</td><td></td></tr>アセ<tr><td>トン</td><td>ミリポアシグマ</td><td>179124</td><td></td></tr><tr><td>ブラシ、柔らかい毛の</td><td>アマゾン(SN NJDF)詳細ペイントブラシセット</td><td>B08LH63D89</td><td></td></tr><tr><td>カバースリップ(22 x 50 mm)</td><td>VWR</td><td>48393-195</td><td></td></tr><tr><td>DAPI(DNA)</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>エチルアルコール200プルーフ</td><td>ミリポアシグマ</td><td>EX0276</td><td></td></tr><tr><td>ギルソン ピペットマン P200 ピペット</td><td>ギルソン</td><td>P200</td><td></td></tr><tr><td>氷酢酸</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>695092</td><td></td></tr><tr><td>ジュエラーズ鉗子、デュモン No. 5</td><td>ミリポア シグマ</td><td>F6521</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>ミリポア シグマ</td><td>58221</td><td></td></tr><tr><td>メタノール</td><td>ミリポア シグマ</td><td>1414209</td><td></td></tr><tr><td>マニキュア</td><td>アマゾン(サリー・ハンセン)</td><td>B08148YH9M</td><td></td></tr><tr><td>ナイルレッド(脂質)</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>N1142</td><td></td></tr><tr><td>ペーパータオル・ワイプ</td><td>ULINE</td><td>S-7128</td><td></td></tr><tr><td>ペトリプレート(パテプレート用)</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>FB0875712</td><td></td></tr><tr><td>ピペットチップ</td><td>ギルソン</td><td>チップ E200ST</td><td></td></tr><tr><td>プラスチックトランスファーピペット</td><td>フィッシャー科学的</td><td>S304671</td><td></td></tr><tr><td>一次抗体(例:Crb、Rab11)</td><td>Developmental Studies Hybridoma Bank (DSHB);Andrew Lab</td><td>Mouse anti-Crb (Cq4) or Rabbit anti-Rab11</td><td></td></tr><tr><td>Secondary antibodies with fluorescent tags (e.g., Alexa Fluor 488 Goat-anti Rabbit)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>A11008</td><td></td></tr><tr><td>Silicone resin and curing agent for putty plate</td><td>Dow Chemicals - Ximeter Silicone</td><td>PMX-200</td><td></td></tr><tr><td>Slides, frosted on one end for labelling</td><td>VWR&nbsp; 20 X 50 mm</td><td>48393-195</td><td></td></tr><tr><td>コムギ胚芽凝集素サー</td><td>モフィッシャーサイエンティフィック</td><td>W834</td><td></td></tr></tbody></table>

アノフェレスガンビー蚊からの幼虫唾液腺の解剖と免疫染色

Dissection and Immunostaining of Larval Salivary Glands from Anopheles gambiae Mosquitoes

蚊の唾液腺(SG)は、昆虫媒介病原体の伝染に必要なゲートウェイ器官である。ウイルスやマラリアを引き起こすマラリア原虫を含む疾患を引き起こす薬剤は、SG細胞の分泌空洞に蓄積する。ここでは、その後の血液食事中に脊椎動物の宿主に伝染する準備ができています。成人の腺は、幼虫SG芽の残骸の精緻化として形成され、初期のプパルSGのヒストリシスを超えて持続するので、幼虫SGは病気の伝染を制限する介入のための理想的な標的である。幼虫SGの開発を理解することは、その形態と機能的適応のより良い理解を開発し、この器官を標的とする新しい介入の評価に役立ちます。このビデオプロトコルは、 アノフェレスガンビア 蚊から幼虫SGを単離、固定、染色するための効率的な技術を示しています。25%エタノール溶液中で幼虫から解剖した腺は、メタノール・氷酢酸混合物中に固定され、続いて冷たいアセトン洗浄が行われます。リン酸緩衝生理食塩分(PBS)で数回のリンスの後、SG発現タンパク質に対する広範なマーカー染料および/またはアンチセラでSGを染色することができます。幼虫SGの分離のためのこの方法はまた、 その他の転 写応用、およびプロテオミクス研究における組織を収集するために使用することができる。

唾液腺は、すべてのステージ4の幼虫から比較的容易に解剖できる。男性と女性の幼虫は、後期L4幼虫期において、女性の胸郭に沿った赤い縞によって区別することができるが、男性は区別できない(図2)。また、この構造の違いが、成体の蚊に見られるのと同様に、女性のL4幼虫(図2)よりも、男性の方が触形形態の方がはるかに精巧であることを観察しています。L4段階でのかなりの全体的な成長に伴い、唾液腺はL412の間に内腔を形成する。Hoechstで染色された初期のL4段階から分離された唾液腺は狭い収縮によって分離された近位および遠位の葉を明らかにする(図3B,C)。形成管腔は、近位最も近い端(図示されていない)の唾液管から遠位葉を通ってずっと伸びる。形成管腔は、中~後期L4幼虫の免疫染色遠位唾液腺に見ることができる(図4)。形成された内腔を...

成体の蚊の唾液腺(SG)は、ウイルスや寄生虫を含む人間の宿主にすべての蚊媒介病原体の伝染に必要である。このビデオは、幼虫(L4)ステージ アノフェレスガンビア 蚊からのSGの効率的な分離とさらなる分析のためのL4 SGの調製を示しています。

Mosquito salivary glands (SGs) are a requisite gateway organ for the transmission of insect-borne pathogens. Disease-causing agents, including viruses and ...

昆虫の唾液腺には、多くのヒト疾患を伝える上で必要とされている。だから、給与腺生物学のより良い理解は、病気予防のための既存の戦略に追加し、私たちを助ける必要があります。この技術は、候補レギュレータの突然変異が、マラリア原虫の感染に影響を与え、マラリアの感染に影響を与える可能性があるかどうかを迅速に尋ねることができます。あなたが蚊の幼虫と一緒に働く最初の数回は、彼らがすぐに動くように把握するのが難しいです。練習すればするほど、良い結果が得られる。手順を開始すると、私の研究室の学部研究アシスタントであるマリソル・ルチェッティです。実験を開始するには、解剖顕微鏡のステージにトイレプレートを置き、10個の蚊L4幼虫をトイレプレートに移します。次に、幼虫とは別のトイレプレートに解剖液の滴を置きます。鉗子を使用して、25%エタノールの解剖液ドロップに1つのL4幼虫を配置します。各手に5本の鉗子を持ち、頭のすぐ下の鉗子で幼虫をつかみ、支配的な手で幼虫の頭をつかみ、頭を最小限の力でそっと引っ張り、体の残りの部分から切り離し、腺は頭に取り付けられたままです。幼虫の死体の体部分を捨て、頭または唾液腺を1ミリリットルのPBSに集め、1.5ミリリットルのマイクロ遠心分離チューブで、唾液腺が緩衝液の底に沈むのを待つ。翌日、溶液を排出して組織を固定し、1ミリリットルの冷たい100%アセトンを90秒間分ける。アセトンを取り除いた後、PBSの1ミリリットルで、組織を3回やさしくすすます。免疫染色の場合、RAB 11のような一次抗体を添加し、適切な希釈で、PBSの総容積の200マイクロリットルに入れる。ピペットチップでチューブの内容物をそっと旋回します。一次抗体を一晩4度でインキュベートし、続いてPBSを1ミリリットルで3回洗浄する。次に、二次抗体であるAlexa Fluor 488ヤギ抗ウサギを適切な希釈液に200マイクロリットルの総体積で添加します。内容物をピペットチップと混合した後、ナイルレッド、Hoechstなどの染料で組織を200マイクロリットルのPBSにインキュベートし、室温で60分間、続いてPBSで3回洗浄します。顕微鏡スライドを準備し、ピペットで200マイクロリットルのグリセロールを加え、柔らかいブラシを使用して顕微鏡スライドごとに、腺と内部構造を取り付けた20までの染色ヘッドを移します。ヘッドサンプルを広げ、グラススライドに沿って均等に配布します。解剖顕微鏡で見て、2組の鉗子を使用して、2つの組織を慎重に反対方向に引っ張ることによって、幼虫の頭部を腺から分離する。すべてのサンプルが完了したら、1.5ミリメートルの厚さのカバースリップをスライドの上にそっと置き、気泡の形成を避け、滑らかなマニキュアでスライドを密封します。唾液腺は、ステージ4の幼虫から比較的簡単に解剖できる。オスとメスの幼虫は、女性の胸郭に沿って、赤いストライプによって後期L4幼虫段階で区別することができます。触角形態はまた、男性では、見ることができるように女性のL4幼虫よりも精巧で、白い矢印が指摘され、女性のアンテナが左側の画像に、男性のアンテナが右側にあります。初期のL4段階の幼虫から分離された唾液腺は、Hoechstで染色され、狭い収縮によって分離された近位および遠位葉を明らかにする。形成管腔を調べ、免疫染色遠位唾液腺において、中~後期L4幼虫を調べた。分泌細胞の有端領域は、形成された内腔を取り囲んで、濃いナイル赤染色を有し、微細絨毛のような構造を示唆した。ラブ11染色は、近く、尖体表面に観察された。時間と一歩しかなく、それは冷たいアセトンの組織の90秒のインキュベーションです。このプロトコルは最近開発されたばかりですが、蚊の唾液腺に取り組んでいる人には役に立つと期待しています。私たちは完全に頻繁にそれを使用することを期待しています。

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