Name: モスキートAedes aegyptiにおける高解像度メルト分析を用いたCRISPR/Cas9突然変異誘発に続くインデル検出 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-09-10T14:45:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: 学ぶCRISPR/Cas9誘導インデルの高解像度メルト分析による迅速検出法。Aedes aegyptiを用いた遺伝子変異体の効率的な選別と、複数生物種への応用可能性について解説します。

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すべての数字は、テキサスA&M大学へのライセンスの下で Biorender.com で作成されました.この研究は、国立アレルギー・感染症研究所(AI137112およびAI115138からZ.N.A.)、昆虫ベクター病グラントプログラムの下のテキサスA&M AgriLife研究、およびUSDA国立食品農業研究所の資金によって支えられ、ハッチプロジェクト1018401。

1. 一塩基多型(SNPs)、HRMAプライマー設計、プライマー検証のスキャン
<ol><li>野生型実験室コロニー蚊におけるSNP同定<ol><li>適切なポリペプチド翻訳を中断する標的エキソンを選択します。 注:ターゲットは、開始コドンに近いか、タンパク質機能に必要な主要な残基の中にあるべきです。エキソンが短いほど(例えば、≤200塩基)、より困難なターゲットと分析が困難である。これは、HRMAプライマーの1つがイントロンを横断するか、イントロンに入ることを強制するので、エキソンの境界に近い編集を避けてください。SNP率は、これらの地域ではるかに大きくなる傾向があるため、これは望ましくありません。</li>
		<li>プライマーデザイン<ol>
<li>NCBIブラスト - プライマーブラストウェブサイト15に移動し、ページの上部にあるボックスに選択した エキソン をコピーして貼り付けます| PCR 製品サイズ を選択 (エキソンのほとんどを含む) |生物を選 ぶ。</li>
			<li>[詳細パラメータ]|をクリックします 。( PCR製品のTmの場合)を選び、 60(60 °Cの最適温度)を加| プライマーを取得します。他のパラメータはデフォルトのままにします。</li>
		</ol></li>
		<li>野生型の実験室コロニーからゲノムDNA(gDNA)を取得する。10個の蚊を脇に置き、CO2で麻酔し、氷の上のペトリ皿に入れて非アクティブに保ちます。組織からDNAを放出するための試薬0.5μLと希釈バッファーの20 μLを含む10個のチューブを設置し、いずれも 材料表に示されているDNA放出キットに用意されています。</li>
		<li>鉗子を使用して単一の蚊から片方の脚を取り出し、DNA放出試薬の希釈溶液の対応するチューブ(ステップ1.1.3から)に入れ、脚を溶液中に完全に浸します。残りの蚊と一緒にこのステップを繰り返し、鉗子を70%エタノールで拭いてから次の蚊に向かってください。</li>
		<li>脚含有溶液を室温で2〜5分間インキュベートし、98°Cで2分間、PCR反応を設定しながら冷却します。 注:リリースされたgDNAを含むプレートは-20°Cで保存することができ、この時点でプロトコルを一時停止することができます。</li>
		<li>10 μLの2倍 PCRマスターミックスを含む10個のチューブ、プライマーを0.5 μMの最終濃度に、分子グレードの水を最終体積20 μLに準備し、希釈したサンプルの1μLを各チューブに移します。これらのサイクリングパラメータに従ってPCRを実行する:98 °C 5分、5 sのための98°Cの40サイクル、60 °C 30 s、72 °C 20 s/kb;72°Cの最終延長を1分間延長。</li>
		<li>残留PCRプライマーを分解し、過剰なdNTPsまたはカラムクリーンアップキットを脱リン酸化する酵素でPCR製品を精製します。サンプルのシーケンスを続行します。</li>
		<li>各エレクトロフェログラムを分析して、二重ピーク/あいまいな塩基の存在を調べ、適切な縮退ベースコードを使用して各シーケンスでベースコールを手動で調整します。 注: この手順は、複数のシーケンスのアライメントの前に実行する必要があります。.</li>
		<li>材料表または ClustalW16 や T-Coffee17 などの他のオープンソースアライメントソフトウェアに記載されているアライメントソフトウェア SeqMan Pro を使用して、複数のシーケンスアライメントを実行します。<ol>
<li>アライメント ソフトウェア |を開く[ シーケンスの追加] を クリック|目的のシーケンスを選択し、[ 追加 ]をクリック|すべてのシーケンスが選択されたら、[完了]をクリック します。</li>
			<li>[アセンブリ]をクリックして、線形を実行します。線形を開くには、Contig 1 をクリックして、位置合わせを分析し、SNPs を特定します(図 1)。 注: ステップ 1.1.3-1.1.6 の代替として、バルクサンプルから得られた単離されたゲノム DNAから PCR を実行できます (>10 個の個体由来)。シーケンスアンプリコンは、エレクトロフェログラムの二重ピークとして現れるSNPsの存在について直接分析することができますが、まれなスニックは検出するのがより困難になります。</li>
		</ol></li>
		<li>設計3-5単一ガイドRNA(sgRNA)は、上記で特定された任意のSNPを含む領域を避け、18で説明したプロトコルに従う。</li>
	</ol></li>
	<li>HRMA プライマー設計<ol>
<li>mFold19 を使用して PCR 中に二次構造の形成が可能なエキソン配列をテストします。<ol>
<li>UNAFold Web サーバー |に移動します。 [mFold] | をクリックしますドロップダウン メニューで、[ アプリケーション ] をクリック| DNA折りたたみフォーム。</li>
			<li>ボックスに シーケンス名 を入力し、 エクソンを貼り付けます。</li>
			<li>折り畳み温度を 60°Cに変更します。 イオン条件で[Mg++]を 1.5 に変更し、ユニットで mMに切り替えます。DNAの 折りたたみをクリックします。</li>
			<li>[出力]の[構造1]の下で、pdf をクリックして[円構造プロット]を開きます。</li>
		</ol>
</li>
		<li>プライマーデザインの場合は、NCBIブラスト - プライマーブラスト15 に移動します。</li>
		<li>ページ上部のボックスに、ステップ 1.1 のシーケンス (SN または SNP がない数が最も少ないシーケンス) で指定したシーケンスをコピーして貼り付けます。</li>
		<li>シンボル < > を使用して、SNPs、ターゲットサイト、および二次構造の形成が可能なリージョンを含むシーケンスをマークおよび除外します。</li>
		<li>PCR製品サイズを80~150bpに選択し、生物を選択します。 注: より大きなフラグメントサイズを使用できます (300 bp)。ただし、アンプリコンが長くなると、1 つまたは数個の塩基対で異なるシーケンス間の感度が低下する場合があります。</li>
		<li>プライ マーを取得をクリックします。試験するプライマーの2~3組を選択します(理想的には、プライマーサイトは、任意のCRISPRターゲットサイトから ≥20〜50bp離れています)。</li>
	</ol></li>
	<li>プライマー検証<ol>
<li>単一の個体からgDNAを用いて、グラジエントPCRを行う。<ol>
<li>マスターミックスを準備し、別のチューブ内の非テンプレート コントロール (NTC) の 1 つのサンプルを削除します。残りのマスターミックスにテンプレートを追加し、96ウェルプレートにアリコートを追加します。</li>
			<li>サイクリングの変数に従ってください:98 °C 30 s、10 sのための98 °Cの34周期、55-65 °C 30 s、72 °C 15 s;72°Cの最終延長を10分間延長。</li>
			<li>パラメータに従って熱溶融プロファイルを生成する:変性ステップ95°C1分間、1分間60°Cのアニーリング、0.2°C増分で75°Cと95°Cの間の溶融曲線検出、各温度で10 sのホールドタイムを有します。 注: 単一の熱溶融プロファイルを持つアニーリング温度のみを使用する必要があります。</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>in12に記載されているように胚注射を伴う変異線の生成を進める。</li>
</ol>2. 蚊の足からのゲノムDNAの作製
<ol><li>彼らはジェノタイピングの前に交尾しないように、パパルの段階でセックスによってG1 蚊を分離し、年齢に一致した野生型のコントロール蚊が参照や裏クロスに使用できることを確認してください。同様にセックス分離します。</li>
	<li>必要な材料(図2A)を収集し、DNA放出試薬0.5 μLと希釈バッファー20 μL(gDNAリリースキットから)を1個につきジェノタイプにして氷の上に残す96ウェルPCRプレートを用意します。NTCに対して2つの反応を予約します。</li>
	<li>96プレートの各井戸がトレイ内のそれぞれの蚊バイアルに対応するように、蚊バイアル(ショウジョウバエ バイアル)のトレイにラベルを付けます。</li>
	<li>G1蚊をCO2で麻酔し、ガラスペトリ皿に入れて鎮静させ続けます(図2C、D)。麻酔をして、2番目のペトリ皿に8つの野生型の蚊を入れます。</li>
	<li>70%エタノールでピンセットを拭き、蚊の後ろ足の1つを取り除きます(図2E、F)。</li>
	<li>脚をDNA放出試薬溶液に沈め、蚊を対応するバイアルに入れ、スポンジで閉じます(図2G、H)。</li>
	<li>70%エタノールでピンセットを再び拭き取り、次の蚊から脚を取り除きます。96ウェルプレートが完了するまで、ステップ2.5~2.7を繰り返します。 注:ピンセットを70%エタノールで拭き取ることが重要です。これにより、DNA交差汚染を最小限に抑えます。</li>
	<li>プレートを光学PCRプレートシール(図2I)で密封し、脚を含む96ウェルプレートを室温(RT)で2〜5分間、98°Cで2分間インキュベートします。PCR ミックスの準備中にプレートを RT まで冷却します。 注: プロセス全体は通常 3 ~ 4 時間かかります。蚊が予想される期間(特に≥1日)よりも長くバイアルに保管されなければならない場合は、各蚊と一緒にレーズン(または砂糖と水の供給源)を小さくして、拡張インキュベーション中の蚊の生存を確実にします。</li>
</ol>3. HRMA
<ol><li>PCR を実行します。<ol>
<li>各反応ごとに、2xバッファーの10 μL(gDNAリリースキットから)、各プライマーの0.5 μM、EvaGreen色素1μL、ポリメラーゼ0.4μL(gDNA放出キットから)、分子グレードの水で19μLに完了します。</li>
		<li>マルチチャンネルパイプを使用して、マスターミックスの19 μLを各ウェルに転送します。セクション2で作製した蚊のDNAを含むDNA放出溶液の1μLをプレートに移す(図3A)。光学PCRプレートシールでプレートをシールします。</li>
		<li>サイクリングパラメータに従ってPCRを実行:5分間98°C、10sの98°Cの39サイクル、30sの選択されたアニーリング温度(72°C);最終延長72°C 2分間。</li>
	</ol>
</li>
	<li>パラメータに従って熱溶融プロファイルを生成する:変性ステップ95°C1分間、1分間60°Cのアニーリング、0.2°C増分で75°Cと95°Cの間の溶融曲線検出、各温度で10 sのホールドタイムを有します。CFX96 リアルタイム システムを使用した HRMA 実行のソフトウェア セットアップの詳細については、 補足資料 および 補足図 S1-S5 を参照してください。</li>
	<li>メルトプロファイルを調べます(図3B)。参照クラスタにワイルド タイプのコントロールを割り当てます。 注: ソフトウェア( 材料表を参照)は、データを自動的に正規化し、異なるメルトカーブの色を持つクラスタを指定します。</li>
	<li>96 ウェル テンプレートで、対応する色を使用して異なるクラスターにマークを付けます (図 3C)。</li>
	<li>目的のカーブを持つ個人を選択し、チューブからそれらを削除し、バッククロス(図3D)します。血中の雌を養い、G2 卵を集める。</li>
</ol>4. サンガーシーケンシングによるシーケンス検証
<ol><li>選択した蚊(セクション3.1で調製したプレートから)でウェルからPCR産物を精製し、酵素を使用して残留PCRプライマーを分解し、過剰なdNTPsを脱リン酸化します。または、任意のカラムクリーンアップキットを使用し、サンプルのシーケンス処理を続行します。 注: PCR 製品サイズが小さい場合(≤200 bp)、直接シーケンス処理の方が困難な場合があります。このような場合、標的部位を包含するより大きな断片(≥250bp)を増幅し、96ウェルプレート内のDNAを用いてPCRにより増幅するようにプライマーを設計する(ステップ2.2)。</li>
	<li>トレース ビューア ソフトウェアを使用してインデルを分析および識別します (図 4)。あるいは、ポリピークパーサソフトウェア20 は、ヘテロ接合個体の突然変異を検出するのに役立つ。<ol>
<li>Poly Peak Parser Web サイトに移動し、[ 参照 ] メニューのミュータントされた個人からシーケンスを選択し、参照シーケンスをコピーしてボックスに貼り付けます。 メモ:代替対立と参照の間の位置合わせは、画面の右側に自動的に表示されます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>WHO. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dengue+Guidelines+for+diagnosis%2C+treatment%2C+prevention+and+control%5BTitle%5D)+AND+%22WHO%22%5BJournal%5D)">Dengue Guidelines for diagnosis, treatment, prevention and control.</a> WHO. , Report No. 978 160(2009).</li>
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</ol>

著者は宣言する利害の対立を持っていません。

高解像度の溶融解析は、ベクター蚊Ae.aegyptiでCRISPR / Cas9技術によって生成されたインデルの同定のためのシンプルで迅速なソリューションを提供します。それは柔軟性を提供し、飛行筋肉から鉄代謝およびより多くへの遺伝子の広い範囲のために変異する蚊のジェノタイピングを可能にする13,14。HRMAはサンプル収集から最終分析までわずか数時間で行うことができます。プライマー設計には追加の時間が必要であり、必要なシーケンシング結果(SNPsの識別用)、シーケンス解析、プライマーの順序付けの時間にも依存します。
ここで示すプロトコルは、分析を成功させるためのステップバイステップの方法を詳述しています。このプロセスで最も重要なステップの 1 つはプライマーの適切な設計です。HRMAは、増幅された断片内の単一のSNPの存在でさえ、突然変異と誤解され得る強い差異曲線をもたらすことができることを十分に敏感である。CRISPR変異誘発の前に実験室コロニー...

デング熱1、ジカ2、チクングニア3 ウイルス、マラリア原虫4などの病原体のベクターとして、蚊は人間にとって重大な公衆衛生上の脅威を表しています。これらすべての疾患について、蚊のベクターの制御に伝染介入の実質的な焦点があります。例えば、病原体への寛容さ、蚊の適性、生存、生殖、殺虫剤に対する耐性に関する重要な遺伝子の研究は、新しい蚊対策戦略を開発するための鍵です。このような目的のために、蚊のゲノム編集は、特に、ES、ZFN、タリン、そして最近ではCas9を用いたCRISPRなどの技術の開発に伴い、一般的な習慣になりつつあります。遺伝子編集株の確立は、通常、オフターゲットおよび創始者(ボトルネック)効果を最小限に抑えるために数世代にわたり所望の突然変異を運ぶ個体を裏切り、続いてヘテロ接合個体を交えてホモ接合または異種間間線を生成することを含む。支配的なマーカーがない場合、多くの場合、ヘテロ接合性変異体に対して明確な形質の形質が検出されないため、このプロセスでは分子ジェノタイピングが必要です。
シーケンシングはジェロティピック特性評価のゴールドスタンダードですが、これを何百人、あるいは何千人もの個人にわたって行うことは、結果を得るのに必要な多大なコスト、労力、時間をもたらし、蚊などの寿命が短い生物にとって特に重要です。一般的に使用される選択肢は、測量ヌクレアーゼアッセイ5 (SNA)、T7E1アッセイ6、および高解像度メルト分析(HRMA、レビューイン7)です。SNA と T7E1 の両方で、不一致のベースのみを切断するエンドヌクレアーゼを使用します。ヘテロ接合変異体ゲノムの変異領域が増幅されると、変異型アレルと野生型対立遺伝子からのDNA断片がアニールされ、不一致の二本鎖DNA(dsDNA)が作られます。SNAは、ミスマッチ特異的なエンドヌクレアーゼと単純なアガロースゲル電気泳動による消化を介してミスマッチの存在を検出します。あるいは、HRMAはdsDNA結合蛍光色素によって検出されたdsDNAの熱力学的性質を使用し、変異の存在とタイプに基づいて色素の逆結合温度が変化する。HRMAは、一塩基多型(SNPs)8、シマウマ魚9の変異型遺伝子型、微生物学的用途10、植物遺伝子研究11の検出に使用されている。
本論文では、CRISPR/Cas9技術により生成される変異型蚊の分子ジェノタイピングの簡便な手法であるHRMAについて述べている。代替技術に対するHRMAの利点は、様々な遺伝子、幅広いインデルサイズ、異なるインデルサイズとヘテロ接合、ホモ接合、および異種性分化12、13、14、2)コストの区別に有用であることが証明されている1)柔軟性、および3時間短縮、および3時間短縮を含む。 それはほんの数時間で実行することができるので。さらに、このプロトコルはDNAの供給源として小さな身体部分(脚)を使用し、蚊がジェノタイピングプロセスを生き残ることを可能にし、突然変異線の確立および維持を可能にする。

<table><tbody><tr><td>70% エタノール</td><td></td><td></td><td>70% エタノール溶液 水</td></tr><tr><td>96 ウェル PCR およびリアルタイム PCR プレート</td><td>VWR</td><td>82006-636</td><td>ゲノム DNA (蚊の脚から) 96</td></tr> <tr><td>ウェル プレート テンプレート</td><td></td><td></td><td>自家製 印刷済み、遺伝子型記録用</td></tr><tr><td>バイオ ラッド CFX96</td><td>バイオ ラッド</td><td></td><td>グラジエントおよびHRMA機能を備えた</td></tr><tr><td>PCRマシン多様化したバイオテクノロジー試薬リザーバー</td><td>VWR</td><td>490006-896</td><td></td></tr><tr><td>Exo-CIP 迅速 PCR クリーンアップキット</td><td>ニューイングランド バイオラボ</td><td>E1050S</td><td></td></tr><tr><td>ガラスペトリ皿</td><td>VWR</td><td>89001-246</td><td>150 mm x 20 mm</td></tr><tr><td>ハードシェル薄肉 96 ウェルスカート PCR プレート</td><td>バイオ・ラッド</td><td>HSP9665</td><td>HRMA</td></tr><tr><td>マルチチャネルピペッター (P10)</td><td>Integra Biosciences</td><td>4721</td><td></td></tr><tr><td>マルチチャンネルピペッター(P300)</td><td>Integra Biosciences</td><td>4723</td><td></td></tr><tr><td>Nuncポリオレフィンアクリレートシーリングテープ、Thermo Scientific</td><td>VWR</td><td>37000-548</td><td>96ウェル&nbsp;ゲノムDNA取得用PCRプレート</td></tr><tr><td>光学シーリングテープ</td><td>バイオ・ラッド</td><td>2239444</td><td>HRMA用96ウェルスカート付きPCRプレートと併用</td></tr><tr><td>動物組織ダイレクトPCRキット(サンプリングツールなし)</td>サー<td>モフィッシャー</td><td>F140WH</td><td>ゲノムDNA取得およびPCR</td></tr><tr><td>プラスチックフライバイアルディバイダー</td><td>Genesee</td><td>59-128W</td><td></td></tr><tr><td>精密溶融解析ソフトウェア</td><td>バイオ・ラッド</td><td>1845025</td><td>蚊のDNAサンプルのジェノタイピングに使用され、二本鎖DNAの熱変性特性を分析します(プロトコルステップ3.3を参照)</td></tr><tr><td>SeqMan Pro</td><td>DNAstar Lasergeneソフトウェア</td><td></td><td>マルチシーケンスアライメント</td></tr><tr><td>用 シングルチャンネルピペットー</td><td>ギルソン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ピンセット デュモン#5 11 cm</td><td>WPI</td><td>14098</td><td></td></tr><tr><td>ホワイトフォームプラグ</td><td>VWR</td><td>60882-189</td><td></td></tr><tr><td>ワイド ショウジョウバエ バイアル、ポリスチレン</td><td>ジェネシー</td><td>32-117</td><td></td></tr><tr><td>ワイド フライ バイアル トレイ、ブルー</td><td>ジェネシー</td><td>59-164B</td><td></td></tr></tbody></table>

モスキートaedes aegyptiにおける高解像度メルト分析を用いたcrispr/cas9突然変異誘発に続くインデル検出

Indel Detection following CRISPR/Cas9 Mutagenesis using High-resolution Melt Analysis in the Mosquito Aedes aegypti

蚊の遺伝子編集は、転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ(TALENs)、ジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZCN)、ホーミングエンドヌクレアーゼ(HE)などのシステムを確立したいくつかの研究室で日常的になっています。最近では、クラスター化された定期的に間隔を合わせた短いパリンドローム反復(CRISPR)/CRISPR関連タンパク質9(Cas9)技術は、精密ゲノム工学のためのより簡単で安価な代替手段を提供しています。ヌクレアーゼ作用に続いて、DNA修復経路は壊れたDNA末端を固定し、しばしばインデルを導入する。これらのフレーム外突然変異は、標的生物の遺伝子機能を理解するために使用される。しかし、欠点は、突然変異体が支配的なマーカーを持たないことであり、特に多くの実験に必要なスケールでは、突然変異対立胞の同定と追跡が困難である。 
高分解能溶融解析(HRMA)は、核酸配列の変動を同定する簡単な方法であり、PCR融解曲線を利用してそのような変化を検出します。このPCR後の分析法では、温度ランプ制御データキャプチャ機能を備え、96ウェルプレートフォーマットに容易にスケーリングできる計装付き蛍光二本鎖DNA結合色素を使用します。ここでは、CRISPR/Cas9誘導インデルの迅速な検出と蚊 Ae.aegyptiにおける突然変異線の確立のためのHRMAを使用した簡単なワークフローがあります。重要なことに、すべてのステップは少量の脚組織で行われ、生物を犠牲にする必要はなく、遺伝子型入力後に遺伝的十字架または表現型アッセイを行うことができます。

遺伝子 AaeZIP11 (推定鉄輸送因子21)および ミオフェム (飛行筋13に関連する女性偏ったミオシン遺伝子)に変異を含む蚊がCRISPR/Cas9技術を用いて得られ、HRMAを用いて遺伝子型型化され、配列検証された(図5)。 図5A および 図5C は、 AaeZIP11 および ミオフェム 変異体サンプルからのHRM曲線からの正規化された蛍光強度を、それぞれ野生型制御と共に示す。 図4B および 図4D は、各曲線を野生型基準から引いた後にソフトウェアによって割り当てられた異なるクラスターの溶融プロファイル間の差曲線( AaeZIP11 および <e...

この記事では、CRISPR/Cas9によって誘導されるインデルの迅速な同定と、高解像度の溶融分析を用いた蚊 Aedes aegypti の突然変異線の選択のためのプロトコルについて詳しく説明します。

モスキートAedes aegyptiにおける高解像度メルト分析を用いたCRISPR/Cas9突然変異誘発に続くインデル検出

Mosquito gene editing has become routine in several laboratories with the establishment of systems such as transcription-activator-like effector nucleases ...

このプロトコルは、CRISPR/Cas9技術によって生成された変異体を多数の個人から検出する非常にシンプルで効率的な方法です。この技術の2つの主な利点は、それが数時間で行うことができることと、それが多数の生物に適用できることです。プライマー設計は、特定の遺伝子に対して挑戦的であり、複数のプライマー設計と検証がHRMAを効率的にするために必要とされる場合がある。勾配 PCR を実行するには、マスター ミックスを準備して開始します。次に、非テンプレートコントロール用のマスターミックスの19マイクロリットルまたは96ウェルプレートのNTCを取り除きます。次に、残りのマスター ミックスにテンプレートを追加します。サンプルのアリコート20マイクロリットルは、96ウェルプレートに混合する。サイクリングパラメータに従ってPCRを実行し、原稿に記載されているパラメータを使用して熱溶融プロファイルを生成します。必要な材料をすべて集めた後、0.5マイクロリットルのDNA放出試薬と20マイクロリットルの希釈バッファーを遺伝子型にしてマスターミックスを調製します。マルチチャネルピペットを使用して、20マイクロリットルの混合液をPCRプレートに組み込み、PCRプレートを氷の上に残します。次に、麻酔したG1蚊をガラスのペトリ皿に入れて鎮静させ、2番目のペトリ皿に8匹の野生型蚊を入れます。70%エタノールでピンセットのペアを拭き、消毒されたピンセットを使用して蚊の後ろ足の1つを取り除きます。次いで、DNA放出試薬溶液中に脚を沈下する。対応するバイアルに蚊を入れ、スポンジでバイアルを閉じます。完了したら、ピンセットを70%エタノールで拭き取ってから、次の蚊から脚を取り除き、96ウェルプレートが完成するまで進みます。その後、プレートを光学PCRプレートシールで密封し、脚を含むPCRプレートを室温で2〜5分間インキュベートし、続いて摂氏98度で2分間インキュベーションします。プレートを室温まで冷却します。PCRの場合は、好ましい成分を含むマスターミックスを準備し、マルチチャンネルピペットを使用して、マスターミックスの19マイクロリットルを96ウェルプレートの各ウェルに転送します。以前に調製した蚊のDNAを含むDNA放出溶液の1マイクロリットルをプレートに移し、光学PCRプレートシールでプレートを密封する。適切なサイクリングパラメータを使用してPCRを実行し、原稿に記載されているパラメータに従って熱溶融プロファイルを生成し、次に野生型制御を参照クラスタに割り当てることで溶融プロファイルを調べます。96 ウェル テンプレートで、対応する色を使用して異なるクラスターをマークします。次に、目的の曲線を持つ個人を選択し、選択した個人をチューブから取り除き、クロスを戻します。血液はそれを女性にし、続いてG2Aを採取した。代表的な分析では、Aedes aegyptiのZIP11変異体の配列解析が示されている。Aedes aegypti ZIP11ヘテロ接合体からのエレクトロフェログラムは、インデルが発生したヌクレオチド位置を示した。インデルは、多形の位置が両方のヌクレオチドを併発して示すように、単一から二重のピークへのシフトによって表される。実行の最後に、削除または挿入された基本ペアの数は、単一のピークをカウントして計算されました。Aedes aegypti ZIP11およびmyo-fem遺伝子に変異を含む蚊は、HRMAの高解像度メルト分析を用いて遺伝子型および配列化が検証された。サンプルの蛍光シグナルを1~0の相対値に正規化した。さらに、各曲線を野生型の参照から差し引き、対応する倍率を示しました。グループ間で適切な区別が行われなかった代表的な結果には、失敗した自動クラスター割り当てが表示されます。また、各試料を個別に分析し、ヘテロ接合量、ホモ接合体、およびトランスヘテロ接合体のサンプルを参照する類似性に基づいて正しいグループに割り当てた。HRMを行った後、突然変異した個体からのDNAのシーケンシングは、インデルを分析し、標的配列内の他の突然変異を同定するために必要である。

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Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

このビデオは、DNAサンプルのインデル変異を特定する際のデジタル液滴ポリメラーゼ連鎖反応の役割を示しています。ddPCRの高精度と感度により、サンプル中に存在するまれな変異を、低レベルでも正確かつ一貫して検出することができます。ゲノムのさまざまな領域におけるインデル変異を同定し、定量化することができ、突然変異のメカニズムとこれらの突然変異の機能的影響について貴重な洞察を得ることができます。...

標的遺伝子のインデル変異検出のためのデジタル液滴ポリメラーゼ連鎖反応

このビデオは、プライマーのアニーリング温度を最適化するためのグラジエントポリメラーゼ連鎖反応を示しています。これにより、ウェルに沿ってグラジエントアニーリング温度が設定されます。異なるアニーリング温度の影響は、反応条件の最適化に役立つ増幅生成物の収率によって決まります。...

最適なアニーリング温度を決定するためのグラジエントポリメラーゼ連鎖反応

このプロトコルは哺乳類細胞における点突然変異の修復システムを編集 CRISPR/Cas9 ベースの遺伝子のワークフローについて説明します。ここで、ターゲット ・ サイトで塩基形成測定の詳細な後続実験的戦略と遺伝子編集へのコンビナトリアル...

点突然変異修復 CRISPR/Cas9 とひと細胞での SsODN によって触媒の機能として敷地内変異原性を調べるための標準方法論

このプロトコルは、CRISPR/Cas9遺伝子編集ツールで動作するように最適化された Culex quinquefasciatus...

キュレックス・キンケファシアトゥスにおける効率的な部位特異的変異誘発のための胚微小注入技術

CRISPR/Cas9は、非モデル生物の遺伝子機能を特徴付けるためにますます使用されています。このプロトコルは、注射ミックスの調製から蚊の胚の取得と注入に、および必要な突然変異のために注入された蚊とその子孫を飼育、横断、およびスクリーニングする方法に 、Culex...

CRISPR/Cas9を使用してヌル突然変異を生成するための Culex 蚊の胚の調製と注入

ここでは、CRISPR/Cas9ゲノム編集によって作成された Helicoverpa armigera...

CRISPR/Cas9ゲノム編集 ヘリコベルパ・アルミゲラ (Hübner)の胚マイクロインジェクションとノックアウト変異体の同定

このプロトコルは、φC31システムを使用してアノフェレスマラリア蚊のゲノムにおいて部位特異的修飾を達成する方法を記述している。記載される改変には、attP含有ドッキングラインのゲノムにおけるトランスジェニックカセットの統合および交換の両方が含まれる。...

マラリアのアノフェレスベクターにおける部位特異的φC31媒介集積分とカセット交換

このプロトコルは、gRNA誘導Cas9切断およびDNA修復後の標的部位における非相同性端結合(NHEJ)事象の同定および定量化に関する分析を含む、DNA抽出からデジタル液滴PCR(ddPCR)の実験的セットアップまでのステップを提供する。この方法の他の用途としては、多型検出や遺伝子編集バリアント検証などの用途が挙げられる。...

遺伝子組み換えアノフェリン蚊集団におけるインデル変異を検出するデジタル液滴PCR

ここでは、CRISPR-Cas9技術を用いた蚊A . aegypti...

CRISPR-Cas9を用いた黄熱病ネ ッタイシマカ のゲノム編集

遺伝的にコードされたヒストンminiSOGは、青色光依存的にゲノムワイドな遺伝変異を誘発します。この突然変異誘発法は、高速で、単純な有毒化学物質の自由、およびフォワード遺伝子スクリーニングおよび導入遺伝子組込みに適しています。...

でヒストンminiSOGを使用した光遺伝学ランダム突然変異誘発<em&gt; C。エレガンス</em

学ぶCRISPR/Cas9誘導インデルの高解像度メルト分析による迅速検出法。Aedes aegyptiを用いた遺伝子変異体の効率的な選別と、複数生物種への応用可能性について解説します。

モスキートAedes aegyptiにおける高解像度メルト分析を用いたCRISPR/Cas9突然変異誘発に続くインデル検出

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